Ранозаживляющее действие культивированных аллофибробластов в составе гелеобразующего носителя при лечении термических ожогов Текст научной статьи по специальности «Биотехнологии в медицине»

Скрининг 560 образцов ПК методом ПЦР показал, что ни в одном образце РНК ВГС, РНК ВИЧ и ДНК ВГВ обнаружены не были.

Выводы. Таким образом, проведение скрининга образцов методом ПЦР одновременно с исследованием их на наличие антител и антигенов гемотрансмиссивных вирусов дает возможность повысить инфекционную безопасность гемопродукции. Большое количество образцов, содержащих антитела к ЦМВ и T. gondii свидетельствует о высокой встречаемости данных инфекций в популяции и не является показанием к утилизации образцов ПК. Результаты исследований показали, что для уменьшения процента утилизации образцов ПК для общественного регистра в обязательный лабораторный скрининг должен быть включен анализ на Anti-HBcor у матерей-доноров ПК наряду с сохранением необходимости определения маркеров инфекционных агентов в соответствии с приказом МЗ РФ №325 от 25.07.2003 г.

Ю.В. Юркевич, А.Б. Смолянинов, А.С. Хрупина, К.М. Крылов, П.К. Крылов, И.Д. Козулин

РАНОЗАЖИВЛЯЮЩЕЕ ДЕЙСТВИЕ КУЛЬТИВИРОВАННЫХ

АЛЛОФИБРОБЛАСТОВ В СОСТАВЕ ГЕЛЕОБРАЗУЮЩЕГО НОСИТЕЛЯ ПРИ ЛЕЧЕНИИ ТЕРМИЧЕСКИХ ОЖОГОВ

Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова; ООО «Покровский банк стволовых клеток»;

НИИ скорой помощи им. И.И. Джанелидзе, Санкт-Петербург;

Yurkevich2@yandex. ru

Использование ранозаживляющих свойств аллогенных культур клеток, в частности дермальных фибробластов, для лечения открытых раневых поверхностей является перспективным направлением регенеративной медицины. Наибольший опыт аппликационного применения культивированных аллофибробластов достигнут в восстановительной коррекции обширных ожогов, гранулирующих ран, пролежней, трофических язв. Тем не менее, несмотря на реальные перспективы использования препаратов на основе культур клеток в комбустиологии и хирургии, должного практического опыта к настоящему времени не накоплено. По-прежнему, лимитирующими остаются технологии переноса клеточного трансплантата на раны. В качестве подложки для выращивания клеток предложены различные биополимерные пленки, такие как коллаген, хитозан, глюкозаминогликаны. Использование пленочных биополимерных покрытий позволяет формировать клеточный монослой, что

значительно сокращает время культивирования; создает условия для мониторингового контроля.. Тем не менее, с помощью плотных раневых покрытий не удается обеспечить тесного и продолжительного контакта клеточного монослоя с раневой поверхностью, а, следовательно, создать условия, благоприятные для репаративной регенерации. Принципиально новым подходом к совершенствованию результатов клеточной регенеративной терапии является использование гелей. Преимущества гелевых покрытий очевидны. Главное отличие - удобство аппликации клеточного продукта, возможность создания композиций живых клеток разного типа: стволовых клеток, кератиноцитов, фибробластов. Результаты клинических наблюдений показывают, что трансплантация кератиноцитов и фибробластов в составе гелеобразующих биополимеров стабильно приводит к быстрой нормализации раневого процесса. К сожалению, «дермальный эквивалент» до сих пор не нашел широкого клинического применения, что связано с технологическими трудностями получения трехмерного коллагенового геля в объемах, отвечающих запросам лечебных учреждений. В этой связи нами предложены синтетические монокомпонентные гелеобразующие носители, в частности полимер гидроксиэтилцеллюлозы («Натросол»). Клинические наблюдения показали перспективность и экономическую целесообразность внедрения в медицинскую практику данной регенеративной биотехнологии. Применение гелевых повязок с аллофибробластами в ранние сроки после термической травмы обеспечивает ускоренное заживление обширных ожоговых ран II ст. с 12-14 суток до 5-6 суток. Восстановление целостности кожи при термических ожогах 111-а ст. происходит через 7-9 суток в отличие от традиционного метода лечения, при котором раны заживают на 18-24 сутки. При лечении донорских ран применением гелевого носителя с культивированными аллофибробластами срок полной эпителизации раневых участков составлял 7-8 суток. Аналогичные результаты при традиционном лечении достигаются в среднем через 12-14 суток. Аппликация гелевой формы аллофибробластов на ячейки перфорированных кожных лоскутов значительно ускоряет их эпителизацию по сравнению с использованием традиционных методик лечения. При аутодермопластике с коэффициентом перфорации 1/4 - 1/6 у обожженных отмечается заживление зон сетчатого аутотрансплантата кожи через 6-7 суток после операции, что в 2 раза быстрее, чем традиционная аутодермопластика с аналогичным коэффициентом перфорации. Препарат в гелевой форме быстро апплицируется на обширные раневые поверхности, обладает высокими адгезивными свойствами, продолжительно (до 56 суток) удерживается на раневой поверхности под сетчатым инертным покрытием. Прозрачность геля позволяет проводить динамический визуальный контроль раневого процесса.

Таким образом, разработанный в Покровском банке стволовых клеток клеточный препарат, содержащий аллофибробласты в составе синтетического гелеобразующего носителя, может успешно использоваться для ускоренной эпителизации обширных ожоговых ран П-Ша ст., быстрого заживления донорских участков, зон перфорации сетчатых аутотрансплантатов при хирургическом лечении ожогов Шб-1У ст., подготовке вялогранулирующих глубоких ожоговых ран к аутодермопластике. Препарат не обладает цитотоксичностью, не препятствует адгезии и распластыванию фибробластов на раневой поверхности, способен к продолжительному удержанию на всей поверхности раны, обладает гидрофильностью, противоболевыми и противовоспалительными свойствами, дает возможность быстрого покрытия и моделирования обширных поверхностей тела со сложным рельефом, удобен в общем применении.