CC BY
60Материалы всероссийского научного форума студентов с международным участием «СТУДЕНЧЕСКАЯ НАУКА - 2020» 121
деляли уровень инсулина; в гомогенатах ткани печени содержание общего белка, альбуминов и мочевины на 61, 67 и 74 дни после начала эксперимента.
Результаты: показано, что диета с высоким содержанием жиров приводит к развитию незначительной гиперинсулинемии во все дни наблюдения соответственно на 4%, 13% и 36% относительно контроля. Содержание исследуемых белков в гомогенатах ткани печени изменялось разнонаправленно: концентрация общего белка достоверно возрастала на 61, 67 и 74 дни соответственно на 74,1%, 69,4% и 61,3% по сравнению с контролем, а уровень альбуминов, равно как и мочевины, снижались во все дни эксперимента соответственно на 23,4%, 35,6% и 18,7% и на 21,5%, 46,3% и 44,9% по сравнению с контрольной группой животных. Полученные результаты обсуждаются с позиций влияния инсулина и инсулинорезистентности на показатели белкового обмена.
Выводы: высококалорийная диета у крыс способствует развитию инсулинорезистентно-сти, накоплению в гомогенатах ткани печени содержания общего белка, а также снижению уровня альбуминов и мочевины. Литература
1. Лещенко Д.В., Костюк Н.В., Белякова М.Б., Егорова Е.Н. и др. Диетически индуцированные животные модели метаболического синдрома (обзор литературы) // Верхневолжский медицинский журнал. 2015. — Т. 14, вып. 2. С. 34-39.
2. Метаболический синдром / Под ред. чл. — корр. РАМН Ройтберга Г.Е. М.: МЕД-пресс-ин-форм. 2007. — 224 с.
проточная цитометрия как современный метод биохимического анализа
Ищенко И. О., Оппедизано М. Д. Л.
Научный руководитель: д.м.н. профессор Данилова Любовь Андреевна Кафедра биологической химии
Санкт-Петербургский государственный педиатрический медицинский университет
Контактная информация: Ищенко Илья Олегович — студент 2 курса лечебного факультета. E-mail: [email protected]
Ключевые слова: проточная цитометрия; биохимический анализ; проточный цитофлюориметр; внутриклеточные ферменты.
Актуальность: Применение метода проточной цитометрии в биологической химии прев-несёт высокую точность измерения физиологических внутриклеточных параметров и заметно изменит скорость полученных данных для каждой конкретной клетки [1]. Данный метод анализа может быть использован не только в биологической химии, но и в других смежных областях [2].
Цель исследования: изучить принцип работы современного проточного цитометра и показать универсальность его применения.
Материалы и методы: проведён анализ научно-исследовательской литературы отечественных и зарубежных авторов по данной проблематике.
Результаты: проточная цитометрия — это современная технология быстрого измерения физических и химических параметров клеток, их органелл и происходящих в них процессов [1]. Она основана на регистрации флюоресценции и светорассеяния каждой отдельной клетки и её частиц, проходящих через лазерный луч в струе жидкости [2]. Разработка и внедрение в лабораторную практику данного метода позволяют проводить исследования метаболизма конкретной клетки в отдельности от всей клеточной субпопуляции. Главными преимуществами этого метода является высокая точность, простота использования и минимальная затрата времени. Современные проточные цитометры позволяют производить анализ с большой скоростью, регистрируя при этом до 106-108 клеток в образце [1].
Методом проточной цитометрии проводится измерение потенциала клеточной мембраны, концентрации свободных ионов и оценка активности внутриклеточных ферментов [3]. При необходи-
forcipe
том 3 спецвыпуск 2020
elSSN 2658-4182
Abstracts Nationwide scientific forum of students with international participation «STUDENT SCIENCE - 2020»
мости с помощью цитофлюориметрии можно количественно измерять уровни содержания белков, липидов и углеводов в клетке [2]. Кроме этого, с помощью метода проточной цитометрии проводится исследование минеральных компонентов, в частности, кальция и его концентрации [3].
Выводы: проточная цитофлюориметрия является одним из этапов биохимических исследований, позволяющим с высокой точностью получить конечные результаты исследования. Литература
1. Балдуева И.А., Нехаева Т. Л., Новик А.В., Данилова А.Б., Авдонкина Н.А., Емельянова Н.В. Дендритноклеточные вакцины в иммунотерапии солидных опухолей: учебное пособие для врачей и обучающихся в системе высшего и дополнительного проф. образования. — М: НМИЦ онкологии им. Н.Н.Петрова, 2019. — 130 с.
2. Хайдуков С. В., Зурочка А.В. Проточная цитометрия как современный метод анализа в биологии и медицине. СПб Институт Биоорганической химии им. акад. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН, Москва // Медицинская иммунология, 2007. Т. 9, № 4-5. С. 373-378.
3. Janeway Ch. Immunobiology 5Е: The immune system in health and disease. — Garland Publising, 2001. — P. 307-309.
фракционный состав гликоЗАМиногликАнов в печени крыс с индуцированным метаболическим синдромом
Капустина Е. И., Маратканов М. В., Мутаев Ш. М.
Научные руководители: к.м.н., доцент Н.В. Савинова, ассистент М.В. Терещенко Кафедра биохимии
Ижевская государственная медицинская академия
Контактная информация: Маратканов Максим Вадимович — студент 3 курса, лечебный факультет maratkanov@mail. ru
Ключевые слова: метаболический синдром; инсулинорезистентность; гликозаминогликаны.
. E-mail: max. печень;
Актуальность: метаболический синдром — симптомокомплекс, связанный с возникновением инсулинорезистентности, на фоне которой формируется нарушение углеводного обмена. В результате метаболических изменений развиваются функциональные и морфологические повреждения различных органов, в том числе печени, строму которой составляет соединительная ткань. Одним из структурных компонентов соединительной ткани являются гликозамино-гликаны (ГАГ). Исследованиями последних лет показано, что изменения в обмене ГАГ лежат в основе деструктивных процессов, развивающихся при патологических состояниях [1].
Цель исследования: исследовать содержание общих ГАГ, а также их сульфатированных и несульфатированных фракций в левой доле печени крыс с индуцированным метаболическим синдромом.
Материалы и методы: в эксперименте было использовано 30 белых беспородных самцов крыс, включая контрольную группу, массой 250-300 грамм. Метаболический синдром моделировали (п = 22), используя диету, обогащенную фруктозой (60% от суточной калорийности). Крысы находились в режиме свободного доступа к еде. Контрольную группу составили 8 крыс. Животных выводили из опыта под кратковременным эфирным наркозом на 21, 35 и 60 дни исследования. о воспроизведении метаболического синдрома судили по развитию гипергликемии, гиперхолестеринемии и увеличении окружности средней части туловища крысы. Для определения содержания ГАГ использовали левую долю печени. Количество ГАГ определяли по уровню гексуроновых кислот карбозоловым методом [2]. Определение сульфатированных ГАГ проводили по методике Е. В. Карякиной [3]. Несульфатированные ГАГ находили по разности суммарных и сульфатированных ГАГ.
Результаты: содержание общих ГАГ в гомогенатах печени контрольной группы крыс составило 311,14 (287,34; 330,50) ммоль/кг. Уровень данного показателя у животных с метаболи-
FORCIPE
VOL. 3 SUPPLEMENT 2020
ISSN 2658-4174
