CC BY
18
11. Приказчикова З.И. О морфологии нервных волокон, нервов тонкого отдела кишечника овцы // Матер. конф. молодых учёных, посвящ. 100-летию со дня рождения В.И. Ленина. Казань, 1970. С. 233 - 234.
12. Никулин В.М. Возрастная миелоархитектоника внутриствольного отдела блуждающего нерва собаки // Проблемы миелоархитектоники висцеральных нервов. Ярославль, 1971. Вып. 1. С. 43 - 50.
Светлана Николаевна Хохлова, кандидат биологических наук, доцент. ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный аграрный университет имени П.А. Столыпина». Россия, 432017, г. Ульяновск, бульвар Новый Венец 1, xoxlova_cveta@mail.ru
Марина Анатольевна Богданова, кандидат биологических наук, доцент. ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный аграрный университет имени П.А. Столыпина». Россия, 432017, г. Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1, bm2474@mail.ru
Алсиня Набиуловна Фасахутдинова, кандидат биологических наук, доцент. ФГБОУ ВО «Ульяновский государственный аграрный университет имени П.А. Столыпина». Россия, 432017, г. Ульяновск, бульвар Новый Венец, 1, fasahutdinova@mail.ru
Svetlana N. Khokhlova, Candidate of Biologу, Associate Professor. Ulyanovsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin. 1, Novy Venets Ave., Ulyanovsk, 432017, Russia, xoxlova_cveta@mail.ru
Marina A. Bogdanova, Candidate of Biologу, Associate Professor. Ulyanovsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin. 1, Novy Venets Ave., Ulyanovsk, 432017, Russia, bm2474@mail.ru
Alsinya N. Fasakhutdinova, Candidate of Biologу, Associate Professor. Ulyanovsk State Agrarian University
named after P.A. Stolypin . 1, Novy Venets Ave., Ulyanovsk, 432017, Russia, fasahutdinova@mail.ru
-♦-
Научная статья
УДК 619:616.9:636.4(470.56)
Проблемы африканской чумы в современных условиях
Рахима Мукташевна Нургалиева, Ирина Сергеевна Пономарёва,
Анастасия Михайловна Вязикова, Екатерина Алексеевна Заикина
Оренбургский государственный аграрный университет
Аннотация. Свиноводство - ведущая отрасль в обеспечении населения продуктами животноводства, сдерживающим фактором её стабильного развития являются инфекционные болезни животных. Исследование проведено с целью мониторинга инфекционных болезней в свиноводстве и оценки эпизоотической ситуации на современном этапе. Основное внимание уделено африканской чуме свиней, занесённой Международным эпизоотическим бюро в список А. Показано, что в Российской Федерации в 2020 г. зарегистрировано 246 неблагополучных по африканской чуме свиней пунктов, в Оренбургской области - 5 пунктов. Геном вируса выделен из биоматериалов диких кабанов. Материалом для изучения проблемы служили документация ветеринарной отчётности и результаты собственных исследований авторов. В работе был применён эпизоотологический метод исследования по И.А. Бакулову (1995). Ввиду того что лечение больных животных запрещено и не предусмотрено применение специфических вакцин при неблагоприятной ситуации по африканской чуме свиней, самыми эффективными профилактическими и оздоровительными средствами остаются контроль за эпизоотической ситуацией, регулярное проведение серологического тестирования в популяции диких кабанов и контроль за перемещением животных данного вида, жёсткость санитарно-гигиенических требований к содержанию домашних свиней, ликвидация эпизоотических очагов африканской чумы свиней путём эвтаназии всех особей в очаге, определение территории угрожаемой зоны и зоны наблюдения для эффективного выполнения комплекса соответствующих противоэпизоотических мероприятий.
Ключевые слова: свиноводство, эпизоотическая ситуация, африканская чума свиней, противоэпизоо-тические мероприятия.
Для цитирования: Проблемы африканской чумы в современных условиях / Р.М. Нургалиева, И.С. Пономарёва, А.М. Вязикова [и др.] // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2021. № 3 (89). С. 207 - 211.
Original article
Problems of African plague in modern conditions
Rakhima M. Nurgalieva, Irina S. Ponomareva, Anastasia M. Vyazikova, Ekaterina A. Zaikina
Orenburg State Agrarian University
Abstract. Pig breeding is the leading industry in providing the population with livestock products, and infectious animal diseases are a deterrent to its stable development. The study was carried out with the aim of monitoring infectious diseases in pig breeding and assessing the epizootic situation at the present stage. The main attention is paid to African swine fever, listed by the International Epizootic Bureau in list A. It is shown that in the Russian Federation in 2020 there were registered 246 points unfavorable for African swine fever, in the
Orenburg region - 5 points. The genome of the virus was isolated from wild boar biomaterials. The material for studying the problem was the documentation of veterinary reporting and the results of the authors' own research. The epizootological research method according to I.A. Bakulov (1995). In view of the fact that the treatment of sick animals is prohibited and the use of specific vaccines in case of an unfavorable situation with African swine fever is not provided, the most effective preventive and health-improving means remain the control over the epizootic situation, regular serological testing in the wild boar population and control over the movement of animals of this species , the severity of sanitary and hygienic requirements for the maintenance of domestic pigs, the elimination of epizootic foci of African swine fever by euthanizing all individuals in the outbreak, the definition of the territory of the threatened zone and the observation zone for the effective implementation of a set of appropriate antiepizootic measures.
Keywords: pig breeding, epizootic situation, African swine fever, antiepizootic measures.
For citation: Problems of the African plague in modern conditions / R.M. Nurgalieva, I.S. Ponomareva, A.M. Vyazikova et al. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2021; 89(3): 207 - 211. (In Russ.).
Африканская чума свиней (АЧС) вызывается ДНК-содержащим вирусом семейства Asfarviridae, рода Asfivirus. Источником возбудителя инфекции служат больные и латентно инфицированные свиньи различных возрастных групп, которые выделяют вирус с фекалиями, мочой, слюной, молоком, носовыми и глазными секретами [1].
Свиньи - единственные домашние животные, которые болеют АЧС, у них болезнь протекает в острой форме, но для человека она не опасна. При геномном анализе обнаружено эволюционное родство АЧС с «гигантским» ДНК-содержащим вирусом HcDNAV, который размножается в океанском планктоне Heterocapsa circularisquama [2 - 6, 9 - 13].
Цель исследования - мониторинг инфекционных болезней в свиноводстве и оценка эпизоотической ситуации на современном этапе.
Материал и методы. Исследование проведено по результатам анализа документации ветеринарной отчётности и собственных наблюдений. В работе применяли эпизоотологический метод исследования по И.А. Бакулову (1995). Биометрическая обработка данных осуществлена в электронных таблицах Microsoft Excel с применением графического построения.
Результаты исследования. Африканская чума свиней занесена Международным эпизоотическим бюро (МЭБ) в список А из-за её способности к быстрому распространению и нанесению огромного ущерба.
В 2007 г. АЧС была морским путём завезена в Грузию, где быстро распространилась среди домашних свиней, после чего с кабанами проникла в Армению, Азербайджан и Россию [7]. Несмотря на принимаемые меры борьбы, эпизоотическая ситуация по АЧС остаётся напряжённой (рис. 1).
Анализ полученных результатов в Оренбургской области с 2007 г. по настоящее время свидетельствует, что нозологическая структура инфекционных болезней в свиноводческой отрасли определена в 19 % случаев патогенами вирусной этиологии, 72 % случаев приходится на бактериозы и 9 % — на нозопатологии смешанной этиологии. В 36,4 % случаев посредниками в передаче возбудителя служат домашние животные, а
в 63,6 % случаев роль посредников выполняют и дикие, и домашние животные.
Среди инфекционных болезней АЧС - одна из наиболее опасных, что объясняется её особенностями. Это контагиозная септическая болезнь домашних свиней, в том числе декоративных, и диких кабанов. Источником возбудителя африканской чумы свиней являются больные, вирусоно-сители или павшие от АЧС животные. Основной путь заражения - алиментарный; респираторный путь способствует распространению вируса в пределах эпизоотического очага, а трансмиссивный путь приводит к формированию стойких природных очагов в местах обитания аргасовых клещей рода Ornithodoros [4].
Возбудитель сохраняется в мясе от больных животных 155 сут., в копчёной ветчине - до 5 мес., в навозе свинарников - до 3 мес. Экскреты и секреты являются важными факторами передачи инфекции, особенно в зимний период, потому что в охлаждённом состоянии на загрязнённых патогенами объектах сохраняются вирулентные свойства вируса и его способность к реализации механизма передачи в тёплое время года. В летний период вирус инактивируется на обсеменённых объектах и фракциях биологических отходов в течение 14 сут., в воде он сохраняется от 4 до 13 мес., а в почве - до 4,5 мес.
1=
и f= 1 [=
1 1 1 1 7
2007 2008 2009 20L0 2011 2012 2013 2014 2015 201в 2017 2018 2020 Годы
Рис. 1 - Количество зарегистрированных случаев АЧС в РФ, 2007 - 2020 гг.
Инфекционный процесс характеризуется высокой температурой тела - до 42 °С, усилением жажды, появлением одышки, кашля, рвоты, обширными геморрагиями во внутренних органах и параличом задних конечностей. На коже внутренней поверхности бёдер, на животе, шее, у основания ушей, на пятачке и хвосте возникают красно-фиолетовые пятна. При надавливании они не бледнеют.
Установлено, что возбудитель болезни Монтгомери (АЧС), изолированный и идентифицированный в период с 2016 по 2017 г. от домашних свиней и кабанов в различных регионах РФ, приводит к летальным исходам восприимчивого поголовья в сроки, характерные для острой, подострой и сверхострой форм болезни, без манифестации полного симптомокомплекса клинического проявления болезни и патоморфо-логических изменений. Наиболее характерными являются: геморрагический диатез в результате разрыва эндотелия сосудов (рис. 2); отёк лёгких; серозно-геморрагическая пневмония с резким студенисто-желатинозным отёком междольковой соединительной ткани и паренхимы (рис. 3);
Рис. 2 - Некроз, разрыв сосудистых стенок, кровотечение
Рис. 3 - Студенисто-желагинозный отёк в лёгких
многочисленные кровоизлияния в почках; лимфатические узлы, особенно желудочные, печёночные, почечные и брыжеечные, увеличены и напоминают сгусток свернувшейся крови или гематомы (рис. 4); селезёнка сильно увеличена, края её закруглены, при надавливании легко разрывается (рис. 5).
'Г
г id J^
Рис. 4 - Лимфатические узлы напоминают сгусток крови
Рис. 5 - Селезёнка увеличена, края закруглены
Патоморфологические изменения наименее выражены у свиней, экспериментально заражённых изолятами возбудителя, выделенными от кабанов. Это обстоятельство свидетельствует о снижении уровня патогенности возбудителя в популяции кабанов на территории России, что может осложнить эффективность диагностики и своевременность проводимых противоэпизооти-ческих мероприятий.
В срочном сообщении МЭБ (2020 г.) нотифицированы вспышки африканской чумы свиней в Российской Федерации, в том числе в ряде районов Оренбургской области - Бузулукском, Грачёвском и Асекеевском. Геном вируса АЧС выделен при исследовании патматериала, отобранного от диких кабанов. За исследуемый
Районы, на территории которых были зарегистрированы неблагополучные пункты по АЧС
Рис. 6 - Районы, на территории которых были зарегистрированы неблагополучные пункты по АЧС
период времени (2007 - 2020 гг.) в Оренбургской области регистрировались неблагополучные пункты по АЧС на территориях следующих районов (рис. 6): в Оренбургском (2008 г.), Тоцком (2011 г.), Асекеевском, Абдулинском, Бузулукском и Грачёвском районах (2020 г.).
По данным на ноябрь 2020 г., в Российской Федерации зарегистрировано 246 неблагополучных по АЧС пунктов (92 - среди диких, 154 - среди домашних свиней).
Ситуация осложняется тем, что лечение больных животных категорически запрещено, применение специфических вакцин при неблагополучии по АЧС не предусмотрено. По наблюдениям отдельных учёных [4], применение аттенуированных штаммов АЧС приводит к гибели свиней или возникновению хронически протекающего инфекционного процесса, длительной персистенции, реализующихся перикардитами, пневмонией с летальным исходом.
В настоящее время контроль за эпизоотической ситуацией, профилактика и оздоровительная работа в хозяйствах остаются самыми действенными мерами борьбы с инфекционными заболеваниями животных [8]. Они осуществляются на принципах эффективного профессионального взаимодействия ветеринарных специалистов, регулярности серологического тестирования в популяции, жёсткости санитарно-гигиенических требований к содержанию свиней, контроля за перемещением животных данного вида, ликвидация эпизоотических очагов АЧС путём эвтаназии всех свиней в очаге и определения территории
угрожаемой зоны и зоны наблюдения для эффективного выполнения комплекса соответствующих противоэпизоотических мероприятий.
Выводы
1. Нозологический профиль инфекционных патологий включает болезни вирусной этиологии, бактериозы и ассоциативные инфекции. Функционируют паразитарные системы зоонозных, антропозоонозных, эмерджентных, особо опасных инфекций.
2. В Российской Федерации в 2020 г. зарегистрировано 246 неблагополучных по АЧС пунктов, в Оренбургской области - 5 пунктов, геном вируса выделен из биоматериалов диких кабанов.
3. В 36,4 % случаев посредниками в передаче возбудителя служат домашние животные, а в 63,6 % случаев роль посредников выполняют и дикие, и домашние животные.
Литература
1. Пономарёва И.С., Шамова Е.В. Динамика эпизоотической напряжённости заразной патологии в хозяйствах Оренбургской области // Современные проблемы и научное обеспечение развития животноводства: матер. Междунар. науч.-практич. конф. / ФГБОУ ВПО «Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина». Омск, 2016. С. 164 - 168.
2. Биологические свойства вируса африканской чумы свиней, выделенного в Российской Федерации / В.М. Балышев, В.В. Куринов, С.Ж. Цыбанов [и др.] // Ветеринария. 2010. № 7. С. 25 - 27.
3. Информационное сообщение по эпизоотической ситуации в РФ на 30 ноября 2020 г.
4. Козлова Д.И., Бесхлебнов В.А. Современные проблемы африканской чумы свиней. М.: ВНИИТЭИСХ, 1980. 59 с.
5. Львов Д.К., Щелканов М.Ю. Асфарвирусы (Asfar-viridae) // Медицинская вирусология / ред.: акад. РАМН Д.К. Львов. М.: МИА, 2008. С. 251 - 253.
6. Орлянкин Б.Г. Цирковирусные болезни свиней: распространение, диагностика и специфическая профилактика // Ветеринария. 2013. № 8. С. 3 - 9.
7. Алипер Т.И., Набережный А.Д., Гребенникова Т.В. Африканская чума свиней в Российской Федерации [Электронный ресурс] // Вопросы вирусологии. 2012. № S1. URL: https://cyberlenmka.m/article/n/afrikanskaya-chuma-svmey-v-rossiyskoy-federatsii-1 (дата обращения: 04.12.2020)
8. Раев С.А. Специфическая профилактика цирко-вирусных болезней свиней: современное состояние и перспективы // Российский ветеринарный журнал. 2014. № 1. С. 26 - 29.
9. Remarkable sequence similarity between the dino-flagellate infecting marine virus and the terrestrial pathogen African swine fever virus / H. Ogata, K. Toyoda, Y. Tomaru et al. // Virol. J. 2009. V. 6. P. 178.
10. Beer characterization of African swine fever virus Caucasus isolate in European wild boars / C. Gabriel, S. Blome, A. Malogolovkin et al. // Emer. Infect. Dis. 2011. V. 17. P. 2342 - 2354.
11. Segales J. Porcine circovirus type 2 (PCV2) infections: clinical signs, pathology and laboratory diagnostic // Virus Res. 2012. №. 164. P. 10 - 19.
12. The envelope of intracellular African swine fever virus is composed of a single lipid bilayer / P.C. Hawes, C.L. Netherton, T.E. Wileman, P. Monaghan // J. Virol. 2008. V. 82. N 16. P. 7905 - 7912.
13. USDA. Russian Federation. Global Agricultural Information Network, Report RS1144, 2011. Foreign Agriculture Services. www.thepigsite.com, 2011 [Электронный ресурс]. URL: http://www.thepigsite.com/articles/3624/ russianfederation-livestock-and-products-annual-2011
Рахима Мукташевна Нургалиева, кандидат ветеринарных наук, доцент. ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет». Россия, 460014, г. Оренбург, ул. Челюскинцев, 18, sycheva_maria@mail.ru
Ирина Сергеевна Пономарёва, доктор биологических наук, профессор. ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет». Россия, 460014, г. Оренбург, ул. Челюскинцев, 18, konpronir@mail.ru
Анастасия Михайловна Вязикова, соискатель. ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет». Россия, 460014, г. Оренбург, ул. Челюскинцев, 18, Vet_fac@mail.ru
Екатерина Алексеевна Заикина, соискатель. ФГБОУ ВО «Оренбургский государственный аграрный университет». Россия, 460014, г. Оренбург, ул. Челюскинцев, 18, Vet_fac@mail.ru
Rakhima M. Nurgalieva, Candidate of Veterinary Sciences, Associate Professor. Orenburg State Agrarian University. 18, Chelyuskintsev St., Orenburg, 460014, Russia, sycheva_maria@mail.ru
Irina S. Ponomareva, Doctor of Biologу, Professor. Orenburg State Agrarian University. 18, Chelyuskintsev St., Orenburg, 460014, Russia, konpronir@mail.ru
Anastasia M. Vyazikova, research worker. Orenburg State Agrarian University. 18, Chelyuskintsev St., Orenburg, 460014, Russia, Vet_fac@mail.ru
Ekaterina A. Zaikina, research worker. Orenburg State Agrarian University. 18, Chelyuskintsev St., Orenburg, 460014, Russia, Vet_fac@mail.ru,
-Ф-
Научная статья
УДК 619:616.995.132.5:615.036.8
ао1: 10.37670/2073-0853-2021-89-3-211-216
Биохимическая оценка эффективности действия и безопасности новой антигельминтной композиции Цестодоцид А при тизаниезиозе овец
Руслан Борисович Биттиров1, Зайтуна Хамитовна Терентьева2,
Анатолий Мурашевич Биттиров3, Исса Даулетгериевич Газаев1,
Сафият Анатолиевна Бежева1
1 Кабардино-Балкарский государственный аграрный университет
2 Оренбургский государственный аграрный университет
3 Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт
Аннотация. В статье приведены результаты терапии овец при тизаниезиозе и отмечена необходимость разработки и испытания новых отечественных препаратов для лечения и профилактики животных. Опыты проведены в 2018 - 2020 гг. в Кабардино-Балкарской Республике на овцах в возрасте от 6 до 14 мес. с целью установления эффективной и биологически безопасной дозы новой антигельминтной композиции Цестодоцид А при тизаниезиозе овец. Опытный образец нового препарата Цестодоцид А содержит в расчёте на 1 г: комплекс субстанций празалфен (празиквантель, альбендазол, фенбендазол 1:1:1), размер микрочастиц 15 - 30 мкм, 300 мг; сульфат меди - 100 мг; хлористый кобальт - 50 мг; МКЦ «Вивапур», размер микрочастиц 50 - 160 мкм, 250 мг; нанобентонит, размер микрочастиц 30 - 80 мкм, 300 мг. При скармливании в смеси с комбикормами препарат Цестодоцид А при тизаниезиозе овец показал 100%-ные экстенсэффективность и интенсэффективность. Новый препарат Цестодоцид А в дозе 150 мг/кг живой
