CC BY
46
ISSN 2304-9081
ЭЛЕКТРОННЫЙ ЖУРНАЛ
On-l i ne версия жу рнала на сайте
http://www.eimag.uran.ru
БЮЛЛЕТЕНЬ
ОРЕНБУРГСКОГО НАУЧНОГО ЦЕНТРА УрО РАН
2019
УЧРЕДИТЕЛЬ
ОРЕНБУРГСКИЙ НАУЧНЫЙ ЦЕНТР УрО РАН
© Коллектив авторов, 2019 УДК: 574.24:634.723
Е.З. Савин1, Н.В. Немцева2, О.С. Сидорова3, Т.В. Березина4, О.В. Маленкова5
ПРИМЕНЕНИЕ БИОПРЕПАРАТОВ И АНТИБИОТИКОВ ДЛЯ ПОДАВЛЕНИЯ ТРАХЕОМИКОЗНОГО УВЯДАНИЯ ЧЕРНОЙ СМОРОДИНЫ ПРИ РАЗМНОЖЕНИИ ОДРЕВЕСНЕВШИМИ ЧЕРЕНКАМИ
1 Оренбургский федеральный исследовательский центр УрО РАН (Институт степи УрО), Оренбург, Россия
2 Оренбургский федеральный исследовательский центр УрО РАН (Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН), Оренбург, Россия
3 Университетский колледж ОГУ, Оренбург, Россия
4 Оренбургский государственный университет, Оренбург, Россия
5 Оренбургский филиал ФГБУ «Россельхозцентр», Оренбург, Россия
Цель. Комплексная оценка подавляющего действия биопрепаратов и антибиотиков на трахеомикозное увядание черной смородины при размножении одревесневшими черенками.
Материалы и методы. Исследования проводили в период с 2013 по 2018 годы в хозяйстве «Сакмарское» и в стационаре Бузулукского национального парка с. Партизанское. Исследования проводили согласно «Программе и методике сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур». В опыт были включены биофунгициды, химические фунгициды, антибиотики. Для этого черенки черной смородины сорта Вологда перед осенней посадкой обрабатывали путем замачивания в растворах препаратов, в концентрации, рекомендованной производителями, в течение 24 часов. Оценку проводили по 5 бальной шкале.
Результаты. Выявлена группа биофунгицидов («Алирин Б», «Битоксибацилин», «Фитолавин», «Бактофит СП», «Фитоспорин», «Триходерма Вериде»), оказывающих защитное воздействие на саженцы черной смородины, как в год черенкования, так и на второй год с сохранностью растений до 80-100 % и в состоянии более 4 баллов. Установлено стимулирующее влияние биофунгицидов на укоренение черенков, способствующее защите от трахеомикозного увядания смородины черной.
Заключение. Использование биофунгицидов способствует уменьшению количества используемых химических препаратов, а также улучшению экологического состояния насаждений смородины черной. Полученные результаты применимы в технологии защиты смородины черной от трахеомикозного увядания.
Ключевые слова: смородина черная, трахеомикозы, увядание, фитопатогены, биофунгициды, антибиотики, устойчивость к болезни.
E.Z. Savin1, N.V. Nemtseva2, O.S. Sidorova3, T.V. Berezina4, O.V. Malenkova5
APPLICATION OF BIOLOGICALS AND ANTIBIOTICS FOR THE SUPPRESSION OF TRACHIOMYCOSIS WITNING OF BLACK CURRANT WHEN PREPARING BY WOODEN SHEARS
1 Orenburg Federal Research Center, UB RAS (Institute of the Steppe UB RAS), Orenburg, Russia
2 Orenburg Federal Research Center, UB RAS (Institute of Cellular and Intracellular Symbiosis, UB RAS), Orenburg, Russia
3 University College of OSU, Orenburg, Russia
4 FSBI HE "Orenburg State University", Orenburg, Russia
5 Orenburg branch of FSBI "Russian Agricultural Center", Orenburg, Russia
Objective. Comprehensive assessments of the inhibitory effect of biologies and antibiotics on tracheomycotic wilt of blackcurrant when propagated by lignified cuttings.
Materials and methods. The studies were carried out during the period from 2013 to 2018 at the Sakmarskoye farm and in the hospital of the Buzuluk National Park s. Partisan. The studies were carried out according to the "Program and methodology of variety studies of fruit, berry and nut-bearing crops." Biofungicides, chemical fungicides, antibiotics were included in the experiment. For this, Vologda blackcurrant cuttings before the autumn planting were treated by soaking in solutions of preparations at the concentration recommended by the manufacturers for 24 hours. The assessment was carried out on a 5 point scale.
Results. A group of biofungicides ("Alirin B", "Bitoxibacilin", "Fitolavin", "Bactofit SP", "Fitosporin", "Trichoderma Veride") was identified that have a protective effect on blackcurrant seedlings, both in the year of cuttings and on the second year with plant safety up to 80100% and in a state of more than 4 points. The stimulating effect of biofungicides on the rooting of cuttings helped to protect blackcurrant from tracheomycotic wilting.
Conclusion. The use of biofungicides helps to reduce the amount of chemicals used, as well as improve the ecological state of blackcurrant plantings. The results obtained are applicable in the technology of protecting blackcurrant from tracheomycosis wilting.
Key words: black currant, tracheomycosis, wilt, phytopathogens, biofungicides, antibiotics, disease resistance.
Введение
В почве обитает свыше 200 видов грибов. Среди них регистрируются фитопатогены, вовлеченные в трахеомикозное (сосудистое) увядание, относящиеся к родам Fusarium, Verticillium, Rhizoctonia, Alternaria, поражающие около 45 семейств различных растений, включая плодовые культуры [4, 18, 19, 25].
Фитопатогенные грибы, для которых почва является естественной средой обитания, широко распространены в различных географических зонах. [3, 9, 10, 21, 22]. Весной при температуре почвы 15-20°С под воздействием корневых выделений мицелий гриба прорастает и колонизирует поверхность
корня, далее грибные гифы проникают через неповрежденные клетки эпидермиса в центральный цилиндр корня [18]. Разрастаясь в сосудах, мицелий гриба закупоривает их, блокируя поступление воды и питательных веществ, что в совокупности с токсинами приводит к увяданию растений. Повреждение растений фитопатогенными грибами ослабляет процессы метаболизма [11]. Этому способствует почвенная и воздушная засуха, которая снижает устойчивость черной смородины к микозам [9].
Впервые эта болезнь была обнаружена в начале текущего века на территории Восточной Украины в Донецкой, Луганской и Харьковской областях [13]. Отсюда она распространялась дальше на восток, а также на юг и запад Украины. За последнее десятилетие в южных районах России отмечено массовое увядание смородины черной (Ribes nigrum L.). В эту зону входят Воронежская, Ростовская, Оренбургская области, Нижнее и Среднее Поволжье. Кроме того, эта болезнь охватила растения, произрастающие на Северо-Западе Казахстана [12, 17]. В итоге, на значительной территории наблюдается массовое увядание и гибель большинства сортов этой культуры.
В качестве своевременной и грамотной обработки черной смородины от грибковых заболеваний рекомендован широкий спектр различных препаратов, включая фунгициды и антибиотики [4, 7, 15]. В ответ на озабоченность общественности относительно использования опасных химических веществ в окружающей среде в последние годы всеобщее внимание к себе привлек биологический контроль над болезнями растений [20, 21]. Однако, имеющиеся в научной литературе сведения, касающиеся сравнительного анализа их эффективности в противодействии трахеомикозному увяданию черной смородины малочисленны и противоречивы.
Исходя из этого, целью исследования была комплексная оценка подавляющего действия биопрепаратов и антибиотиков на трахиомикозное увядание черной смородины при размножении одревесневшими черенками.
Материалы и методы
Исследования проводили в период с 2013 по 2018 годы. В опыт были включены биофунгициды, химические фунгициды, антибиотики. Для изучения эффективного подавления микозного увядания черной смородины черенки сорта Вологда перед осенней посадкой обрабатывали путем замачивания в растворах препаратов, в концентрации, рекомендованной производителями, в течение 24 часов.
Опыты закладывали в экспериментальном хозяйстве «Сакмарское» и в стационаре Бузулукского национального парка с. Партизанское. Исследования проводили согласно «Программе и методике сортоизучения плодовых, ягодных и орехоплодных культур» [14].
Учет приживаемости осуществляли на следующий год после начала активного роста прижившихся растений (июнь). Состояние сохранившихся растений оценивали в августе - сентябре, когда наиболее четко можно выявить проявления микозного увядания. Оценку проводили по 5 бальной шкале [16]: 5 баллов - отличное состояние, 0 баллов - гибель растения. По результатам степени поражения вегетативных и генеративных органов болезнями, изученные образцы по устойчивости к ним выделяли в следующие группы:
1 - иммунные или высокоустойчивые сорта (3.1-5.0 баллов)
2 - устойчивые (2.1-3.0 балла)
3 - среднеустойчивые (1.1-2.0 балла)
4 - сильно поражаемые (0 - 1 балл)
Опытный участок в КХ «Сакмарское» размещен на первой надпойменной террасе р. Сакмара. Почва здесь характеризуется средними суглинками с преобладанием илистых частиц в пахотном горизонте. Содержание гумуса в пределах 4.0%. Реакция почвенного раствора щелочная, рН изменяется от 7.9 в верхнем горизонте, до 8.7 - в нижнем. На глубине 32-40 см отмечается вскипание почвы. Обеспеченность элементами питания низкая: Р2О5 - 0.52 мг, К2О - 10.3 мг на 100 г почвы. Грунтовые воды залегают на глубине 6 м в гравийно-песчаных отложениях [16].
Почва в Бузулукском бору (с. Партизанское) сформирована на средне-зернистых песках (1.0-0.05 мм) мощностью более 20 м с незначительным количеством глины (менее 0.001%) [7, 12]. На этих песках размещены дерново-подбурые почвы, мощностью до 40 см с содержанием гумуса до 1.5%, слабо-подзоленные, легкосуглинистые, супесчаные, карбонатные. Эти почвы характеризуются низкой теплопроводностью, что приводит в бесснежный период к глубокому промерзанию и низким температурам пахотного горизонта [5, 8].
Климат резко континентальный. Норма осадков по КХ Сакмарское составляет 363 мм, по бору - 530 мм. В течение года осадки выпадают неравномерно. Зима продолжительная с неустойчивым снежным покровом [1]. В малоснежный период температура в почве на глубине 20 см часто опускается до критической отметки (от -160С до -19.50С), с промерзанием ее до 1.7 м.
Зимой температура воздуха опускается по г. Оренбургу до -420С, в бору до -530С. Северные и северо-восточные ветры приводят к зимнему иссушению надземной части плодового дерева, а солнечная инсоляция в феврале-марте к солнечным ожогам скелетных ветвей, штамба.
В летний период отмечаются высокие температуры воздуха до +400С, а на почве до +60...70°С. Относительная влажность воздуха за вегетационный период составляет 50-60%, число дней с относительной влажностью <30%, часто более 100. За время проведения опытов погодные условия были крайне неравномерными (табл. 1).
Таблица 1. Метеоданные за вегетационный период проведения опытов
Годы Температура 0С Осадки Относительная
влажность
воздуха
Средняя тах воздуха тах на почве мм % от нормы % <30% дней
КХ Сакмарское
2013 17.9 37 63 276.0 148.4 60.3 89
2014 17.5 41 61 84.3 45.3 57.8 108
2015 17.3 40 66 218.0 117.2 57.7 88
2016 17.9 38 62 190.0 102.1 56.6 106
2017 16.7 39 60 132.0 71.0 56.6 56
2018 17.4 40 64 123.0 66.1 56.1 58
норма 16.7 42 67 186.0 100 57.6 84
Бузулукский бор п. Опытный
2013 16.4 26.8 36.0 173.5 67.2 65.4 83
2014 15.8 29.0 39.0 273.2 105.8 61.1 107
2015 16.9 29.8 36.1 350.5 135.7 60.7 85
2016 15.7 30.9 40.2 304.5 117.9 61.3 92
2017 14.7 28.8 35.0 196.9 76.2 67.8 45
2018 16.4 26.1 36.3 250.6 97.0 60.4 103
норма 15.9 42.0 40.2 258.2 100 61.9 80
Особенно жаркая по Южному Уралу погода с высокой температурой воздуха на почве, с незначительным выпадением осадков и низкой относительной влажностью воздуха была в 2014, 2016 и 2018 гг. В Бузулукском бору за это время отмечалась более влажная погода. Осадков выпало на 70 мм больше, температура за вегетационный период была на 20С ниже, чем КХ Сакмарское. Температура на почве не поднималась выше +400С. Относитель-
ная влажность воздуха была выше на 4,3%, меньше было число сухих дней. Результаты и обсуждение
При первых попытках снизить негативное влияние трахеомикозного увядания черной смородины при ее размножении черенками в питомнике с помощью антибиотиков («Пенициллина», «Стрептомицина»), биофунгицидов («Фитоспорин»), иммуномодуляторов (препарат «Эмистим», «Идеал», «Циркон») и химических фунгицидов («Скор», «Топаз», «Кинмикс»), значимых результатов отмечено не было (табл. 2 и 3).
Таблица 2. Влияние различных препаратов при замачивании черенков смородины сорта Вологда на приживаемость и повреждение трахеомикозом (данные за 2013-2016 гг.; КХ Сакмарское)
Прижи- Сохран- Состояние Общее
ваемость ность от 4-5 баллов состояние
% прижив. % % %
20 13 год
стрептомицин 32.2 20.0 85.0 1.9
стрептомицин + идеал 30.8 20.0 85.0 2.1
стрептомицин + идеал + циркон 31.7 21.1 83.0 2.8
контроль 29.0 5.4 100 1.8
фитоспорин 6.0 25.0 80.0 4.2
фитоспорин +идеал 4.0 30.0 80.0 4.5
Фитоспорин + пенициллин. + эмистрим. Р 4.0 25.0 90.0 4.5
контроль 13.0 30.0 76.3 2.1
20 14 год
Фитоспорин 6.0 16.7 51.8 3.2
Фитоспорин + пенициллин 4.0 25.0 60.4 3.5
Фитоспорин + пенициллин + эмистрим Р 4.0 0 - -
контроль 13.0 23.0 10.4 1.3
20 15 год
Фитоспорин 40.0 61.9 40.0 3.1
Фитоспорин + стрептомицин + идеал 41.0 55.3 20.7 3.0
Скор - - - -
контроль 34.0 86.2 59.0 1.4
20 16 год
1 сутки стрептомицин+ фитоспорин+ фи- 52.0 52.0 24.0 1.6
товерм+ кинмикс
контроль 38.0 75.0 75.0 3.0
контроль (2) 75.0 75.0 52.0 3.0
2 суток стрептомицин+ фитоспорин+ фи- 36.0 100 64.0 1.7
товерм+ кинмикс
3 суток стрептомицин+ фитоспорин+ фи- 32.0 100 68.0 1.6
товерм+ кинмикс
Определенное замедление микозного увядания было отмечено под воздействием иммуномоделяторов «Циркон», «Эмистин», а также химических фунгицидов «Скор» и «Топаз». Приживаемость черенков и состояние растений в этих вариантах, по сравнению с контролем, улучшилось на 10-15%.
Таблица 3. Влияние различных препаратов при замачивании черенков смородины сорта Вологда на приживаемость и повреждение трахео-микозом (данные за 2013-2016 гг.; Стационар Бузулукского бора)
Приживаемость, % Сохранность от прижившихся, % Состояние 4-5 баллов, % Общее состояние, %
2013 год
стрептомицин 59.0 100 81.4 4.6
стрептомицин + идеал 50.0 100 86.0 4.8
стрептомицин + идеал + циркон 62.0 100 82.3 4.9
контроль 52.0 100 76.2 3.9
фитоспорин 18.0 100 77.0 4.2
фитоспорин +идеал 19.0 100 72.0 4.8
Фитоспорин + пенициллин. + эмистрим. Р 9.0 90.0 73.0 4.8
контроль 30.0 100 72.0 3.8
2014 год
Фитоспорин 18.0 100 68.3 4.2
контроль 30.0 100 41.4 3.6
2015 год
Фитоспорин 26.0 100 69.2 4.1
Фитоспорин + стрептомицин + идеал 26.0 100 68.4 4.0
Скор 35.0 100 73.5 4.4
контроль 29.0 100 63.6 3.4
2016 год
Стрептомицин 20.0 80.0 30.0 2.4
Скор 28.0 99.8 28.6 2.8
Стрептомицин + фитоверм +топаз 20.0 90.0 60.0 3.6
контроль 12.0 100 16.7 2.7
Следует отметить, что в более умеренном климате Бузулукского бора состояние растений черной смородины было заметно лучше. В этих условиях не наблюдалось массовой гибели растений от микозного увядания. В наиболее жаркий период 2014 и 2015 гг. болезнь проявлялась на отдельных растениях в виде хлороза, краснолистности, образования пазушных побегов, заканчиваясь гибелью только отдельных растений (рис. 1).
При вовлечении в испытание большего набора биофунгицидов и антибиотиков было отмечено (по отдельным вариантам) значительное повышение
приживаемости черенков и улучшение состояния как в год укоренения, так и в последующем, что можно рассматривать как пролонгирующее действие препаратов (табл. 2 и 3; рис. 2 и 3).
Рис. 1. Трахеомикозное увядание черной смородины.
■ Прижилос Контроль Кларитромицин Амоксицилин {сандоз) Азитромицин Тетрациклин Ампициллин Глиокладилин Сипролет Фитолавин Тиовш Джет Экориз №1 Чистофлор Бактерии №13 Бактофит СП Битоксибациллин АлиринБ Триходерма Вериде ь на 11.06.18, % ■ Сохранилось от прижившихся на 26.08.18, %
Рис. 2. Влияние различных препаратов, при обработке путем замачивания черенков смородины черной сорта Вологда, на приживаемость и сохранность Кх Сакмарское (данные за 2018 г.).
В опыте отмечено стимулирующее действие на укоренение черенков обработки биофунгицидами - «Триходерма Вериде», «Битоксибациллин»,
«Бактофит», «Фитоспорин», «Чистофлор», а также антибиотиками - «Ампициллин», «Тетрациклин». При этом приживаемость улучшилась по сравнению с контролем на 20-30%. Напротив, отрицательный эффект на приживаемость выявлен у препаратов «Стрептомицин», «Кларитромицин», «Глиокладилин».
Контроль Амоксицилин {сандоз) Тетрациклин Глиокладилин Фитолавин Экориз №1 Бактерии №13 Битоксибациллин Триходерма Вериде ■ 4-5 баллов ■ 3 балла ■ 1-2 балла ■ 0 баллов, погибли ,00
0, 30 20 00 40 00 60 00 80 00 ЮС ,00 12С
Рис. 3. Состояние смородины черной сорта Вологда на 28.08.18 под влиянием различных препаратов Кх Сакмарское.
Одним из решений проблемы трахеомикозного увядания растений является применение биотехнологий с использованием микроскопического гриба Trichoderma viride Pers., 1794. С этой точки зрения, представляют интерес полученные нами результаты по воздействию препарата «Триходерма Вериде» (ООО «Ваше хозяйство»). Данный микромицет, активно продуцирующий фермент целлюлазу, способен к глубокой деструкции клеточных стенок растений, а также трудно расщепляемых растительных полисахаридов до мономеров: целлюлозы, гемицеллюлозы, пектина [2]. Симбионтные растениям микроскопические грибы Trichoderma viride, подавляющие развитие ряда патогенов, включая трахеомикозное увядание, производят биологически активные метаболиты трихоцетин и триходермин, защищающие растение от грибковых болезней [6]. В почве споры Trichoderma прорастают, оказывая антагонистическое действие на фитопатогены, формируя здоровую ризосферу растения [23].
Биологические препараты на основе живых бактерий Bacillus subtilis
(«Алирин Б», «Гамаир», «Бактофит») с широким спектром антипатогенного действия, позитивно зарекомендовали себя в качестве эффективных средств защиты растений, альтернативных химическим фунгицидам [9, 21]. Антагонистическая активность биопрепаратов в отношении грибковых фитопатоге-нов, обеспечиваемая продукцией биологически активных соединений антибиотической природы, способствует пролонгированному действию препарата, практически исключающему применение химических фунгицидов [9].
С другой стороны, применение антибиотиков подавляет развитие бактериального инфицирования растений, но слабо действует против микозов. Это мотивирует их использование в комбинированной технологии защиты культуры смородины черной от трахеомикозного увядания.
В эксперименте положительное действие биофунгицидов и антибиотиков сохранялось в течении вегетации, во время активного развития трахио-микозов в почве и растениях. Особенно высокая сохранность саженцев черной смородины до 70-80% в конце вегетации отмечена под действием биофунгицидов - «Алирин Б», «Бактофит», «Бактерин №13», «Триходерма Ве-риде», «Фитолавин», а также антибиотиков «Ампициллин», «Тетрациклин». Общее состояние оценивается в 4.0-4.5 балла, в то время как в контроле в 2017 г. было 1.4 балла, в 2018 г. растения погибли, несмотря на приживаемость черенков 46.7% (рис. 4 и 5).
■ Прижилось 2017 [, % ■ Сохранилось на 1.09.17, % 1 Сохранилось на 25.08.18, %
Контроль 83,3 32 53,3
Тиовш Джет 16.7 76.9
Стрептомицин К 7 ЦП 0
Тетрациклин 73,3 90,9 50
Глиокладин 71 Л 53.3
Бактофит , СП 90 6 2.9 5 2.9
Гамаир 63,3 42,1 62,5
АлиринБ 63 63,1 83,3
Битоксибациллин 30 88,9 100
Фитолавин 40 83,3 60
Триходерма Вериде 80 79,2 42,1
Фитоспорин 86.7 69,2 38,9
Фитоверм 83,3 40 50
Рис. 4. Влияние препаратов, при замачивании черенков черной смородины сорта Вологда, на приживаемость и сохранность при трахеомикозном поражении растений. Кх Сакмарское (данные за 2017 и 2018 гг).
Состояние 2017 г, балл U Состояние 2018 г, балл
Рис. 5. Влияние препаратов, при замачивании черенков черной смородины сорта Вологда, на состояние на фоне трахеомикозного поражения растений. Кх Сакмарское (данные за 2017 и 2018 гг.).
На второй год после укоренения сохранность растений осталась высокой под действием биофунгицидов - «Алирин Б», «Битоксибацилин», «Фи-толавин». Растения сохранились до 80-100%, а их состояние оценивалось в 4.1 балла. Напротив, позитивное действие антибиотиков на второй год было менее значительным.
Отмечен позитивный эффект, наблюдаемый при действии фунгицида «Тиовит Джет», проявляющийся как в первый, так и во второй год наблюдения (рис. 4 и 5).
Заключение
Биофунгициды оказывали стимулирующее влияние на укоренение черенков, способствуя защите от трахеомикозного увядания смородины черной. В период развития микозов (грибов рода Fusarium, Verticillium, Rhizoctonia, Alternaria spp.) растения сохранялись в хорошем состоянии как в год черенкования, так и на следующий.
По результатам проведенных исследований наиболее эффективными оказались биофунгициды «Алирин Б», «Битоксибацилин», «Фитолавин», «Бактофит СП», «Фитоспорин», «Триходерма Вериде», а также химический фунгицид «Тиовит Джет». Использование биологических препаратов способ-
ствует уменьшению количества используемых химических препаратов, а также улучшению экологического состояния насаждений смородины черной. Полученные результаты применимы в технологии защиты смородины черной от трахеомикозного увядания.
ЛИТЕРАТУРА
1. Агроклиматические ресурсы Оренбургской области. Ленинград, 1971. 120.
2. Бабицкая В.Г. Грибы - эффективные деструкторы лигноцеллюлозных субстратов: их морфологическая и физиолого-биохимическая характеристика. Микология и фитопатология. 1993. 27(5): 38 -44.
3. Вишневская Н.А. Динамика и структура фитопатогенного гриба Verticillium dahlia kleb. В почве и на корнях хлопчатника. Дисс. ...канд. биол. наук. Санкт-Петербург, 1999. 118 с.
4. Все в огород. Современные биофунгициды. [Электр. ресурс] (URL: http://www.vse-v-ogorod.ru/uhod-za-ogorodom/1058.html).
5. Гаель А.Г. Облесение бугристых песков засушливых областей. М.: Географгиз, 1952. 220 с.
6. Гнеушева И.А., Павловская Н.Е., Яковлева И.В. Биологическая активность грибов рода Trichoderma и их промышленное применение. Вестник ОрелГАУ. 2010. 3(24): 36-39.
7. Ибрагимова С., Беневьят Л. Сайт о саде, даче и комнатных растениях. Препараты биофунгициды - список и применение от А до Я: отзывы профессионала. [Электр. ресурс]. 2017 (URL: http://vsaduidoma.com/2017/10/15/preparaty-biofungicidy-spisok-i-primenenie-ot-a-do-ya-otzyvy-professionala/)
8. Клементьев А.И. Бузулукский бор: почвы, ландшафт и факторы географической среды. Екатеринбург: УРО РАН. 2010. 305 с.
9. Козлова Е.А. Биопрепараты в защите смородины черной. Вестник Орел ГАУ. 2012. 2(35): 73-75.
10. Лухменов В.П., Ярмухаметова Л.В., Светачев .С.В. Биологическая защита озимой пшеницы от вирусов и фитоплазм. Известия ОГАУ. 2009. (2): 15-20.
11. Михневич Н.И., Сорокопудов В.Н. Связь между поражаемостью сортов ribes nigrum l. антракнозом и септориозом и их засухоустойчивостью в Белгородской области. Biological sciences. 2013. (6): 1420-1425.
12. Немцева Н.В., Горбунова О.С., Богоутдинов Д.З., Савин Е.З., Маленкова О.В. К вопросу об увядании черной смородины. Вестник ОГУ. 2016. (5): 65-69.
13. Обоянский А. Я. «Чума черной смородины». Все о ягодных культурах. 2013.
14. Попкова К. В. Практикум по сельскохозяйственной фитопатологии. М.: Агропром из-дат, 1988. 303 с.
15. Рыжкина С. Огород и земледелие. Современные биофунгициды. [Электр. ресурс]. 2017 (URL: http://nature-home.ru/ogorod/sovremennye-biofungicidy.html).
16. Седов Е.Н., Огольцева Т.П. Программа и методика сортоизучения плодовых, ягодных, орехоплодных культур. Орел, 1999. 608 с.
17. Сухова Е.А., Горбунова О.С, Савин Е.З., Немцева Н.В., Головин С.Е. Чувствительность различных видов и сортов смородины к трахеомикозам. Вестник ОГУ. 2016. (7): 85-91.
18. Филипов В.В., Андреев Л.Н., Базалинская Н.В. Фитопатогенные грибы рода Verticillium. М.: Изд-во Наука, 1980. 445 с.
19. Ягудина С.И. Смородина. Ташкент, 1976. 118 с.
20. Aghighi S., Bonjar G.H. S., Rawashdeh R., Batayneh S., Saadoun I. First Report of Antifungal Spectra of Activity of Iranian Actinomycetes Strains. Against Alternaria sola-
ni, Alternaría alternate, Fusarium solani, Phytophthora megasperma, Verticillium dahl-iae and Saccharomyces cerevisiae. Asian J. of Plant Sciences. 2004. 3(4): 63-471.
21. Al-Fadhal F. A., AL-Abedy A. N., Alkhafije D. A. Isolation and molecular identification of Rhizoctonia solani and Fusarium solani isolated from cucumber (Cucumis sativus L.) and their control feasibility by Pseudomonas fluorescens and Bacillus subtilis. Egyptian J. of Biological Pest Control. 2019. 29:47.
22. Al-Jaradi A., Al-Mahmooli I., Janke R., Maharachchikumbura S., Al-Saady N., M. Al-Sadi A. Isolation and identification of pathogenic fungi and oomycetes associated with beans and cowpea root diseases in Oman. Peer J. 2018. (6): e6064.
23. Benítez T., Rincón A.M., Limón M.C., Codón A.C. Biocontrol mechanisms of Tricho-derma strains. Int Microbiol. 2004. 7(4): 249-60.
24. De vay J.E., Pullman G.S. Epidemiology and ecology of diseases caused by Verticillium specis, with emphasis on verticillium wilt of cotton. Phytopathologia mediterránea. 1984. 23 (2-3): 95-108.
25. Melouk H.A. Verticillium. Methods for research on soilborne phytopathogenic fungi. / Ed. by L. Singleton, J.D. Mihail, C M. Rush. St. Paul.: Amer Phytopathol. Soc. 1992: 175-178.
Поступила 2.12.2019
(Контактная информация: Березина Татьяна Владимировна - ФГБУ ВО «Оренбургский государственный университет», магистр; адрес: Оренбург, пр. Победы, д. 13;
тел. 89228522213; e-mail: gaevskayatatyana@mail.ru)
LITERATURA
1. Agroclimatic resources of the Orenburg region. - Leningrad, 1971. 120p.
2. Babitskaya V.G. Mushrooms are effective destructors of lignocellulosic substrates: their morphological and physiological-biochemical characteristics. Mycology and Phytopathology. 1993. 27 (5): 38-44.
3. Vishnevskaya N.A. Dynamics and structure of the phytopathogenic fungus Verticillium dahlia kleb. In the soil and on the roots of cotton. Diss. ...Cand. Biol. Science. St. Petersburg, 1999.118 p.
4. Everything in the garden. Modern biofungicides. [Electronic resource] (URL: http:// www.vse-v-ogorod.ru/uhod-za-ogorodom/1058.html)/
5. Gael A.G. Afforestation of lumpy sands of arid areas. M.: Geografgiz, 1952. 220 p.
6. Gneusheva I.A., Pavlovskaya N.E., Yakovleva I.V. Biological activity of fungi of the genus Trichoderma and their industrial application. Bulletin of Orel State Agrarian University. 2010.3 (24): 36-39.
7. Ibragimova S., Benevyat L. Site about the garden, cottage and indoor plants. Biofungicides -a list and application from A to Z: reviews of a professional. [Electronic resource]. 2017. (URL: http://vsaduidoma.com/2017/10/15/preparaty-biofungicidy-spisok-i-primenenie-ot-a-do-ya-otzyvy-professionala)
8. Klementyev A.I. Buzuluk pine forest: soils, landscape and factors of the geographical environment. Yekaterinburg: UrB RAS. 2010. 305 p.
9. Kozlova E.A. Biological products in the protection of black currants. Bulletin Orel GAU. 2012.2 (35): 73-75.
10. Lukhmenov V.P., Yarmukhametova L.V., Svetachev .S.V. Biological protection of winter wheat from viruses and phytoplasmas. News of the OGAU. 2009. (2): 15-20.
11. Mikhnevich N.I., Sorokopudov V.N. The relationship between the susceptibility of varieties ribes nigrum l. Anthracnosis and Septoria and their drought tolerance in the Belgorod region. Biological sciences. 2013. (6): 1420-1425.
12. Nemtseva N.V., Gorbunova O.S., Bogoutdinov D.Z., Savin E.Z., Malenkova O.V. To the question of withering of black currant. Bulletin of OSU. 2016. (5): 65-69.
13. Oboyansky A. Ya. "Plague of black currant." All about berry crops. 2013.
14. Popkova KV. Workshop on agricultural phytopathology. M.: Agroprom Publishing House, 1988. 330 p.
15. Ryzhkina S. Vegetable garden and agriculture. Modern biofungicides. [Electr. resource]. 2017. URL: http://nature-home.ru/ogorod/sovremennye-biofungicidy.html.
16. Sedov E.N., Ogoltseva T.P. The program and methodology of variety studies of fruit, berry, nut-bearing crops. Eagle, 1999. 608 p.
17. Sukhova EA, Gorbunova O.S., Savin E.Z., Nemtseva N.V., Golovin S.E. Sensitivity of various types and varieties of currant to tracheomycosis. Bulletin of OSU. 2016. (7): 85-91.
18. Filipov VV, Andreev L.N., Bazalinskaya N.V. Phytopathogenic fungi of the genus Verticil-lium. M.: Publishing House of Science, 1980. 445 p.
19. Yagudina S.I. Currant. Tashkent, 1976: 118.
20. Aghighi S., Bonjar G.H.S., Rawashdeh R., Batayneh S., Saadoun I. First Report of Antifungal Spectra of Activity of Iranian Actinomycetes Strains. Against Alter-naria solani, Alternaría alternate, Fusarium solani, Phytophthora megasper-ma, Verticillium dahliae and Sac-charomyces cerevisiae. Asian J. of Plant Sciences. 2004.3 (4): 463-471.
21. Al-Fadhal F.A., AL-Abedy A.N., Alkhafije D.A. Isolation and molecular identification of Rhizoctonia solani and Fusarium solani isolated from cucumber (Cucumis sativus L.) and their control feasibility by Pseudomonas fluorescens and Bacillus subtilis. Egyptian J. of Biological Pest Control. 2019. 29: 47.
22. Al-Jaradi A., Al-Mahmooli I., Janke R., Maharachchikumbura S., Al-Saady N., M. Al-Sadi A. Isolation and identification of pathogenic fungi and oomycetes associated with beans and cowpea root diseases in Oman. Peer J. 2018. (6): e6064.
23. Benítez T., Rincón A.M., Limón M.C., Codón A.C. Biocontrol mechanisms of Tri-choderma strains. Int Microbiol. 2004. 7 (4): 249-60.
24. De vay J.E., Pullman G.S. Epidemiology and ecology of diseases caused by Verticillium specis, with emphasis on verticillium wilt of cotton. Phytopathologia mediterránea. 1984. 23 (2-3): 95-108.
25. Melouk H.A. Verticillium Methods for research on soilborne phytopathogenic fungi. / Ed. by L. Singleton, J.D. Mihail, C M. Rush. St. Paul.: Amer Phytopathol. Soc. 1992: 175-178.
Образец ссылки на статью:
Савин Е.З., Немцева Н.В., Сидорова О.С., Березина Т.В., Маленкова О.В. Применение биопрепаратов и антибиотиков для подавления трахиомикозного увядания черной смородины при размножении одревесневшими черенками. Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. 2019. 4. 13с. [Электр. ресурс] (URL: http://elmag.uran.ru:9673/magazine/ Numbers/2019-4/Articles/SEZ-2019-4.pdf). DOI: 10.24411/2304-9081-2019-15023
