CC BY
14ЭФФЕКТИВНОЕ № 7 сентябрь ЖИВОТНОВОДСТВО
2021
УДК 578.834.11:636.09
Нуралиев Е.Р., к.б.н., главный ветеринарный врач «Научно-производственного учебного центра»
Инновационно-Технический университет Республики Казахстан
ПРАКТИЧЕСКИЕ
АСПЕКТЫ
БИОЛОГИЧЕСКОГО
КОНТРОЛЯ ОТХОДА
ИНКУБАЦИИ
ПРИ ИНФЕКЦИОННОМ
БРОНХИТЕ КУР
j j. *
У"
Инфекционный бронхит кур вызывает РНК-со-держащий Coronavirusavia.
Исследования с некоторыми коронавирусами показали, что белок S является детерминантом диапазона хозяина и его патогенности.
В случае инфекционного бронхита кур белок S, возможно, является детерминантой, но не обязательно детерминантом патогенности. Таким образом, когда ген S непатогенного штамма Бодетта был заменен геном патогенного штамма М41, спектр хозяина Бодетта был изменен в vitro: вирус больше не реплицируется в клетках vero.
Когда этот рекомбинант с замененным шипом инокулировали (через нос и глазные капли) в цыплят, он все еще оставался непатогенным, хотя он стимулировал защитный иммунитет против заражения M41.
В дополнение к четырем структурным белкам (S, E, M и N), которыми обладают все коронавирусы, группы 2 содержат четвертый мембранно-ассоции-рованный белок, гемагглютинин-эстеразный белок.
Инфекционный бронхит кур имеет два таких гена, 3 и 5, которые кодируют четыре ^)-белка, 3a и 3b и 5a и 5b. Белок Е кодируется третьей ORF гена 3 корона v ирисы у птиц M4l Downloaded. Среди генов, кодирующих структурные белки, распределены некоторые относительно небольшие гены, которые кодируют то, что считается неструктурными белками. Количество таких генов варьируется среди корона-вирусов, в том числе среди видов в данной группы.
В случае с инфекционным бронхитом кур TCoV и PhCoV существует два таких гена, номера 3 и 5.
Каждый из этих генов кодирует два неструктурных белка: 3a и 3b, 5a и 5b. Ни один из этих четырех белков не требуется для репликации в культуре клеток, в культуре органов трахеи или в куриных эмбрионах; рекомбинантные инфекционным бронхитом кур, в которых эти гены были инактивирова-ны или удалены, все еще реплицируются до тех же титров, что и родительский вирус.
Функции небольших неструктурных белков не известны ни одному коронавирусу. Белки вириона имеют в 40% аминокислотной идентичности между видами в разных группах. Группа 1 довольно разнородна и разделена на две подгруппы с В 45% структурных белковых аминокислотных идентичностей между подгруппами.
Инфекционный бронхит кур был первым коро-навирусом, который был выделен в 1930-х годах. Учитывая его важность для экономики птицеводства, что частично связано с ее обширной антигенной вариацией, он широко изучался в течение более полувека.
Хотя он вызывает обширное повреждение слизистой оболочки дыхательных путей, его воздействие усиливается вследствие усиления заболеваний, связанных с коронавирусной инфекцией бактериями и микоплазмами.
Контроль частично достигается повсеместным использованием живых аттенуированных вакцин, хотя они чаще всего связаны с обострением вторичных бактериальных инфекций.
Несмотря на свое название, инфекционный бронхит реплицируется на многих эпителиальных поверхностях.
К ним относится большая часть желудочно-кишечного тракта, а также почки, гонады и бурса. Патология обычно не связана с инфекцией пищеварительного тракта инфекционным бронхитом, хотя провентрикулит приписывают штаммам инфекционного бронхита.
Давно известно, что некоторые штаммы вируса являются высокопатогенными.
Возможно, что некоторые штаммы инфекционного бронхита, связаны с патологическими проявлениями, которые еще не были признаны. Способность вируса реплицироваться во многих тканях может способствовать разнообразию последовательностей его белков, особенно белка S. штаммы инфекционного бронхита различаются по своей вирулентности, и генетический фон хозяина может влиять на исход инфекции.
Таким образом, инфекционный бронхит не является простым патогеном, и его гетерогенность в отношении его белковых последовательностей, широкого тканевого тропизма и патогенности следует учитывать в контексте диапазона хозяина вируса, который, может быть широким.
Индейский коронавирус 30 лет назад было показано, что коронавирус связан с энтеритом индеек в США, где он был наиболее тщательно изучен. У молодых особей это может быть связано со смертностью, в то время как у старых птиц это ослабляет, что приводит к недостаточной производительности в отношении производства мяса и яиц.
Вирус был подтвержден как находящийся в Великобритании в 2001 году и был впоследствии продемонстрирован в Бразилии и Италии. Полевые исследования в лаборатории, включая обнаружение вируса с помощью обратной транскриптазы-поли-меразной цепной реакции (ОТ-ПЦР) и обнаружение антител в сыворотке индейки путем иммуно флюоресценции с клетками, инфицированными инфекционным бронхитом, и иммуноферментного анализа указывают на распространенность.
92 Щ Птицеводство
www.agroyug.ru
Исследования в Университете Северной Каролины в середине 1990-х годов показали, что корона-вирусы индеек были генетически и антигенно тесно связана с инфекционным бронхитом кур.
Действительно, антитела, связывающиеся с антигенами инфекционного бронхита кур, были обнаружены в сыворотке индейки еще в 1987 году. Последовательности генов коронавирусов индейки в США и те, которые впоследствии обнаружены в Великобритании, имел от 85 до 90% идентичности с инфекционным бронхитом кур, что является высоким, учитывая, что штаммы инфекционного бронхита кур, обычно отличаются друг от друга на это количество. Исключение составлял спайк белка; недавнее исследование показало, что существует только приблизительно 34 %-ная идентичность между белком шипа изолятов TCoV и таковым у инфекционного бронхита кур, более низкая идентичность, чем самая низкая, но наблюдаемая между штаммами инфекционного бронхита кур.
Электронная микроскопия и некоторые антигенные исследования показали, что фазаны были заражены коронавирусом (PhCoV), иногда связанным с респираторным заболеванием, а иногда связанным с заболеванием почек.
Последовательность генов впоследствии подтвердила, что это был коронавирус.
С тех пор PhCoV был обнаружен во многих фазанах, собранных из многих фазанов, которые испытывали респираторное заболевание.
У цесарок инфекционный бронхит проявляется высокой смертностью и низким потреблением корма, и сообщается об энтерите. Когда изолят был экспериментально (интраназально) инокулирован в цыплят и в цесарку, оба вида проявили респираторный синдром и водянистые испражнения. Сыворотки из близлежащих несушек цыплят (которые были многократно вакцинированы против инфекционного бронхита кур) действительно нейтрализовали вирус цесарки, что указывает на антигенную родственность.
Коронавирусы часто описывались как привередливые. Это утверждение возникло из-за трудностей, с которыми столкнулись вирусологи при поиске типов клеток для выращивания коронавирусов в vitro.
В задачи исследований входило анализ правильности проведения эффективных методов ветери-нарно-санитарных мероприятий на птицефабрике. Топография проявления нарушение эмбрионального развития в инкубационных яйцах - это карликовость и шаровидность эмбрионов, у кур-несушек поражение почек в виде мраморности, и выявление рифлёных яиц.
Исходя из вышеизложенного, хочу познакомить с целью нашей работы - это изучить отклонения от нормы показателей биологического контроля инкубации яиц кросса «Родонит 3», «Хайсекс-Бра-ун» на птицефабрике в Республики Казахстан, результаты анализов при применений эффективных методов ветеринарно-санитарных мероприятий и проверка правильности проведенной вакцинопро-филактики при инфекционном бронхите почечной формы кур-несушек родительского стада с использованием традиционных вакцинных препаратов, также обеспечения надежной защиты птицепоголовья от данного заболевания.
На птицефабрике в Республике Казахстан нами проведены производственные опыты по изысканию наиболее приемлемой схемы вакцинации против инфекционного бронхита кур. В производственном опыте по вакцинации кур кроссов «Родонит 3» и «Хайсекс-Браун» против ИБК использовали «АВИВАК-ИБК» штамм Н-120 серотип Массачусетс и инактивированную трехвалентную вакцину «АВИВАК-ИБК+НБ+ССЯ-76», вакцина против инфекционного бронхита Ньюкаслской болезни и синдрома снижения яйценоскости инактивированная.
Молодняк цыплят контрольной группы вакцинировали сухой живой вакциной из штамма Н-120 против ИБК по 1-й схеме спрей - методом путем мелкокапельного распыления в суточном возрасте затем ревакцинировали в 4, 21, 56 и 72-дневном возрасте опытную группу методом выпойки.
За период проведения производственного опыта по изысканию наиболее приемлемой схемы вакцинации против инфекционного бронхита кур и правильности выбора проведенной методики провели биологический контроль инкубационного яйца с постановкой диагноза на инфекционный бронхит эмбрионов путем проведения патологоанатомического вскрытия 1015% отхода инкубации представлены в таблицах 1, 2.
Таблица 1.
Показатели биологического контроля отхода инкубации кросса «Родонит 3» в результате применения различных схем вакцина профилактики против инфекционного бронхита кур на птицефабрике в Республике Казахстан 2009-2011 году.
Инкуб. Шкаф (Группа) 2009 год апрель, май 2010 год апрель, май 2011год апрель, май
Контрольная Опытная Контрольная Опытная Контрольная Опытная
Заложено на инкубацию яиц, шт. 14500 14500 14500 14500 14500 14500
Выводимость яиц 11324 78,1±0,34 11795 81,1±0,32*** 11411 78,7±0,34 12426 85,7±0,29* 11440 78,9±0,34 12194 84,1±0,30*
Отходы инкубации (шт.) 3176 21,9±0,34 2705 18,9±0,32 3089 21,3±0,33 2074 14,3±0,29* 3060 22,5±0,34 2306 11,5±0,26
Вскрытие 15% отхода (шт.) 476 405 463 311 459 345
Не оплодотворенные яйца 187 39,3±0,64 204 50,3±0,65*** 192 41,4±0,68 167 53,9±0,70*** 193 41,9±0,67 169 56,1±0,68***
Кровяное кольцо 64 13,5±0,44 47 11,6±0,41* 60 13,1±0,47 36 11,4±0,4** 61 13,2±0,46 40 11,6±0,44**
Замершие 94 19,7±0,50 71 17,5±0,49* 92 19,8±0,55 55 17,6±0,53* 89 19,5±0,54 67 17,4±0,52**
Задохлики 85 17,9±0,5 51 12,7±0,43*** 82 17,6±0,53 40 12,8±0,46*** 78 17,1±0,51 61 12,6±0,45*
С признаками ИБК 46 9,6±0,38 32 7,9±0,35* 37 8,1±0,98 13 4,3±0,73* 38 8,3±0,94 8 2,3±0,52***
ЭФФЕКТИВНОЕ № 7 сентябрь ЖИВОТНОВОДСТВО
2021 ^ 93
Таблица 2.
Показатели биологического контроля отхода инкубации кросса «Хайсекс-Браун» в результате применения различных схем вакцина профилактики против инфекционного бронхита кур на птицефабрике в Республике Казахстан 2012-2013 году.
Инкуб. Шкаф (Группа) 2012 год апрель, май 2013 год апрель, май
Контрольная Опытная Контрольная опытная
Заложено на инкубацию яиц, шт. 14500 14500 14500 14500
Выводимость яиц 11672 80,5±0,33 13006 89,7±0,25*** 11600 80±0,33 13079 90,2±0,24***
Отходы инкубации (шт.) 2828 19,5±0,33 1494 10,3±0,25* 2900 20±0,33 1421 9,8±0,24
Вскрытие 15% отхода инкубации яиц (шт.) 424 224 435 213
Не оплодотворенные яйца 247 58,2±0,75 133 59,8±0,75 252 58,1± 0,75 128 59,5±0,75
Кровяное кольцо 48 11,4±0,48 26 11,5±0,49 51 11,6± 0,49 25 11,9± 0,49
Замершие 78 18,6±0,59 42 18,6±0,59 80 18,4± 0,57 39 18,5± 0,58
Задохлики 41 9,7±0,49 20 9,3±0,45** 47 10,8± 0,49 20 9,8± 0,45**
С признаками ИБК 10 2,1±0,27 3 0,8±0,23*** 5 1,1±0,19 1 0,3±0,14*
Рис. 1, 2. Рифлёные яйца при ИБК
Рис. 3-5. Эмбрионы, пораженные вирусом ИБК
Нрссчкр
Диаграмма. Уменьшение процента насечки на предприятии в результате применения комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий при инфекционном бронхите кур.
Таким образом, обобщая результаты полученных исследований, можно сделать вывод, что биологический контроль инкубационного яйца с постановкой диагноза на инфекционный бронхит эмбрионов при выборе методики вакцинации наиболее эффективна.
ЛИТЕРАТУРА
1. Bijlenga, G., Cook, J.K.A., Gelb, J., Jr. & de Wit, J.J. (2004). Development and use of the H strain of avian infectious bronchitis virus from the Netherlands as a vaccine: a review. Avian P athology, 33, 550-557.
2. Boursnell, M.E.G., Brown, T.D.K., Foulds, I.J., Green, P.F., Tomley, F.M. &Binns, M.M. (1987) Completion of the sequence of the genome of the coronavirus infectious bronchitis virus. Journal of General Virology, 68, 57/77.
3. Breslin, J.J., Smith, L.G., Barnes, H.J. & Guy, J.S. (2000). Comparison of virus isolation, immunohistochemistry, and reverse transcript tasepolymerase chain reaction procedures for detection of turkey coronavirus. A v ianDiseases, 44, 624 / 631.
4. Breslin, J.J., Smith, L.G., Fuller, F.J. & Guy, J.S. (1999). Sequence analysis of the turkey coronavirus nucleocapsid gene and 3? untranslated region identi-fifififies the virus as a close relative of infectious bronchitis virus. Virus Research, 65, 187/ 198.
5. Casais, R., Davies, M., Cavanagh, D. & Britton, P. (2005). Gene 5 of the avian coronavirus infectious bronchitis virus is not essential for replication. Journal of Virology, 79, 8065 / 8078.
6. Casais, R., Dove, B., Cavanagh, D. & Britton, P. (2003). A recombinant avian infectious bronchitis virus expressing a heterologous spike gene demonstrates that the spike protein is a determinant of cell tro-pism. Journal of Virology, 77, 9084 / 9089.
7. Casais, R., Thiel, V., Siddell, S., Cavanagh, D. & Britton, P. (2001). A reverse genetics system for the avian coronavirus infectious bronchitis virus. JournalofVirology, 75, 12359 / 12369.
8. Cavanagh, D. & Naqi, S. (2003). Infectious bronchitis. In H.J. Barnes, A.M. Fadly, J.R. Glisson, L.R. McDougald& D.E. Swayne (Eds.), Diseases of Poultry, 11th edn (pp. 101 / 119). Ames: lowaStateUniversityPress.
9. Cavanagh, D. (2001). A nomenclature for avian coronavirus isolates and the question of species status. A v ianPathology, 30, 109/115.
10. Cavanagh, D. (2005). Coronaviridae: a review of coronaviruses and toroviruses. In A. Schmidt & M.H. Wolff (Eds.), Corona v iruses with Special Emphasis on First Insights Concerning SARS (pp. 1/54). Basel: Birkha"user.
Полный список литературы в редакции.
