ПОЛИМОРФИЗМ ГЕНОВ СИСТЕМЫ БИОТРАНСФОРМАЦИИ КСЕНОБИОТИКОВ И ЕГО РОЛЬ В ИНДИВИДУАЛИЗАЦИИ ФАРМАКОТЕРАПЕВТИЧЕСКОЙ ПОДДЕРЖКИ ЛИЦ, ПОДВЕРГАЮЩИХСЯ ТЯЖЕЛЫМ ПСИХОФИЗИЧЕСКИМ НАГРУЗКАМ
УДК 575.1
© А. С. Козлова1, А. О. Пятибрат2, С. Б. Мельнов3, Н. С. Смольник3, П. Д. Шабанов4
1 Республиканский научно-практический центр спорта, Минск;
2ФГБУ «Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины им. А. М. Никифорова» МЧС России, Санкт-Петербург; 3Международный государственный экологический университет им. А. Д. Сахарова, Минск; 4 ФГБВОУ ВПО «Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова» МО РФ, Санкт-Петербург
Ключевые слова:_
фармакогенетика; биотрансформация ксенобиотиков; гены-маркеры; однонуклеотидный полиморфизм.
Резюме_
Представлены результаты анализа распространенности полиморфизмов по генам CYP1A1, EPHX1, GSTM1, GSTP1, GSTT1 у 111 лиц, подверженных высоким психофизическим нагрузкам (на примере спортсменов высоких достижений). Квалификация обследуемых варьировала от кандидатов в мастера спорта до мастеров спорта международного класса. Сравнительный анализ выявил значимые различия между основной группой и группой сравнения по частоте встречаемости аллелей генов GSTM1, GSTT1, CYP1A1 и тенденцию к преобладанию генотипа GSTP1 Val/Val в основной группе.
ВВЕДЕНИЕ
Расшифровка генома человека и развитие методов молекулярной генетики открыли широкие возможности выявления генетических маркеров, определяющих перспективное развитие и ранее проявление особых физических и психических особенностей человека [1]. В качестве таких маркеров широко используются однонуклеотидные полиморфизмы (ОНП) — отличия в последовательности ДНК размером в один нуклеотид между гомологичными участками гомологичных хромосом, возникающие в результате точечных мутаций. Подобные изменения в кодирующих последовательностях генов могут приводить к изменению экспрессии генов, формированию мутантного продукта или полному подавлению экспрессии, что, в свою очередь, оказывает влияние на физиологический статус.
В настоящее время существует множество работ, описывающих роль отдельных генов при выявлении предрасположенности к тем или иным видам физической деятельности или развитию мультифактори-альных заболеваний. Анализ частот аллелей таких генов позволил идентифицировать генотипы, ассоциированные с различным проявлением базовых
психофизических качеств человека, включая предрасположенность к некоторым видам профессиональной деятельности, а также с ранним развитием патологических состояний [1].
В настоящее время в развитых странах все более широкое использование находят методы фарма-когенетики — направления медицинской генетики и фармакологии, которое исследует генетические особенности пациентов, влияющие на фармакологический ответ. Основной интерес в настоящее время сосредоточен в той области фармакогене-тики, которая анализирует изменения генов, участвующих в метаболизме лекарственных средств, с особым упором на усиление их безопасности, т. к. статистические исследования, проведенные в США и Европе, продемонстрировали, что побочные реакции на лекарственные препараты вызывают около 106 тыс. смертей и 2,2 млн серьезных нарушений ежегодно [1].
На наш взгляд, перспективным направлением молекулярно-генетических исследований является оценка уровня активности ферментов биотрансформации ксенобиотиков, защищающих организм от воздействия чужеродных химических соединений, осуществляя детоксикацию и выведение из организма самых разнообразных по своей химической структуре и биологической активности веществ как экзогенного, так и эндогенного происхождения.
Сравнительный анализ перечня лекарственных средств, наиболее часто вызывающих побочные реакции, и перечня ферментов, связанных с известными ОНП показал, что препараты, обычно участвующие в развитии неблагоприятных реакций в большинстве случаев метаболизируются ферментами с известными полиморфизмами [12]. Показано, что наибольшее влияние на характер реакций организма на лекарственные средства оказывает ОНП генов белков, участвующих в процессах фармакокинетики или фармакодинамики лекарственных средств. Это, в первую очередь, гены, кодирующие ферменты биотрансформации и гены транспортеров, участвующих во всасывании, распределении и выведении лекар-
ственных средств из организма. Принято считать, что процесс биотрансформации протекает в две фазы. Ключевым элементов первой фазы является ферментативная система цитохромов Р450 (CYP), основной реакцией которых является монооксиге-назная активность. Так, к этому семейству принадлежит CYP1A1, который участвует в детоксикации полициклических ароматических углеводородов. В настоящее время известно несколько основных полиморфизмов в этом гене. Мутантные аллели полиморфных вариантов Т6235 С, A4889G, T5639C ассоциируют с повышенной активностью фермента [11]. Также к суперсемейству цитохрома Р450 относится изоформа 2 Е1 (CYP2 Е1), которая осуществляет биотрансформацию липофильных веществ экзогенного и эндогенного происхождения и активно вовлекается в процессы регуляции про-антиоксидантного баланса в клетках [2]. В гепатоцитах CYP2E1 активно участвует в процессах детоксикации ксенобиотиков и осуществляет метаболизм таких эссенциальных нутриентов, как омега-3 полиненасыщенные жирные кислоты [3].
Ключевыми ферментами второй фазы детоксикации является глутатион S-трансферазы (GST) — мультигенное семейство энзимов, детоксицирую-щих различные алифатические, ароматические и гетероциклические соединения путем их конъюгации с глутатионом. Таким образом обезвреживаются продукты перекисного окисления липидов, и также тяжелые металлы. Найдено большое количество полиморфных вариантов генов GST. Известны деле-ционные полиморфизмы (GSTM1, GSTT1), обусловливающие функционально неактивные нулевые аллели. Считается, что у индивидуумов, являющихся носителями этих делеций в гомозиготном состоянии, снижена способность детоксикации химических веществ.
В последние годы начато изучение влияния на фармакокинетику лекарственных средств полиморфизма генов-транспортеров: Р-гликопротеина (MDR1), транспортеров органических катионов (ОСТ-1), транспортеров органических анионов (OATP-C, ОАТ-1, ОАТ-3) [7] и др. Кроме того, важное значение для фармакогенетики имеют гены, кодирующие «молекулы-мишени» лекарственных средств (рецепторы, ферменты, ионные каналы) и гены, продукты которых вовлечены в патогенетические процессы (факторы свертывания крови, апо-липопротеины и т. д.).
Таким образом, генетически детерминированные особенности организма могут существенно влиять на фармакокинетику и все этапы метаболизма лекарственного препарата. В связи с этим совершенствование применения лекарственных препаратов должно включать индивидуальную оптимизацию фармакотерапии на основе комплексной оценки генетически предетерминированных процессов метаболизма препаратов в конкретном организме. Очевидно, что применение фармакогенетических
тестов, отражающих наличие конкретных полиморфных аллелей генов, вовлеченных в метаболизм лекарственных препаратов, может позволить прогнозировать ответ пациента на эти препараты, а, следовательно, индивидуализировано подойти к выбору лекарственного средства и режиму его дозирования.
В настоящей работе предпринята попытка выявить специфические генотипы по некоторым базовым генам, характерные для лиц, подверженных интенсивным психофизическим нагрузкам и нуждающихся в системной фармакологической поддержке (например, спортсмены спорта высоких достижений), по следующим генам: CYP1A1, ЕРНХ1, GSTM1, GSTP1, GSTT1.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Объектом исследования служили образцы буккального эпителия 110 клинически здоровых спортсменов, подверженных высоким физическим и психическим нагрузкам и специализирующихся в различных видах единоборств (60) и академической гребле (50). Возраст спортсменов варьировал от 16 до 30 лет; 1 из них являлся заслуженным мастером спорта (ЗМС), 47 — мастерами спорта международного класса (МСМК), 41 — мастерами спорта (МС), 22 — кандидатами в мастера спорта (КМС).
В качестве группы сравнения выступили 120 клинически здоровых добровольцев в возрасте 15-40 лет со сходными социально-демографическими характеристиками, не занимающиеся спортом. Сбор биологического материала проводился с соблюдением процедуры информированного согласия.
Экстракция ДНК проводилось по стандартной методике [6].
Основной метод исследования — сайт-специфическая ПЦР. Для определения размеров продуктов ПЦР инсерционно-делеционных полиморфизмов проводился предварительный электрофорез в 2 % агарозном геле. Гели окрашивали бромистым этидием и визуализировали в трансиллюминаторе CN-1000 Darkroom с использованием оригинального программного обеспечения. Статистическая обработка и анализ параметричности выборок данных проводились с использованием пакета программ Statistica 8.0, а все необходимые промежуточные расчеты выполнялись с помощью программы Microsoft Office Excel 2007.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
В настоящем исследовании анализировалось частотное распределение полиморфных аллелей генов, ассоциированных с системой биотрансформации ксенобиотиков (табл. 1): CYP1A1 (^1048943), ЕРНХ1 (^1051740), GSTM1 (^147565), GSTP1 (^1695), GSTT1 (^71748309).
■ Таблица 1. Аллельные варианты исследуемых генов
Ген Полиморфизм Генотип
CYP1A1 (ген цитохрома Р450, семейства 1) А1384в, Ile462Val 1048943 АА, Ав, вв
EPHX1 (эпоксидгидролаза микросом) Туг113Н^ 1051740 СС, СТ, ТТ
GSTM1 (глутатион Б-трансфераза М1) +/0 147565 00/+
GSTT1 (глутатион Б-трансфераза Т1) +/0 71748309 00/+
GSTP1 (глутатион-Б-трансфераза Р1) А/в I105V Ile105Val 1695 АА, Ав, вв
Основные результаты проведенных исследований суммированы в таблицах 2-5 и на рисунке 1.
Нами проведена оценка распространенности как отдельных аллелей, так и вариантов генотипов по исследуемым генам. Необходимость подобного анализа связана с тем, что при отсутствии статистически значимых различий по частоте встречаемости аллелей может, тем не менее, наблюдаться преобладание гомозиготного или гетерозиготного генотипа в одной из групп (см. табл. 2-5).
Полиморфизм генов первой фазы детоксикации
Эпоксидная гидролаза играет важную роль в детоксикации ряда химических веществ, включая полициклические ароматические углеводороды.
Hassett и соавторы (1994) описали связь между му-тантным аллелем EPHX1 и снижением ферментативной активности. Они продемонстрировали, что замена His113/Tyr113 в экзоне 3 приводит к уменьшению активности фермента примерно на 40 % и, как следствие, гетерозиготный генотип связан со сниженной степенью обезвреживания токсичных метаболитов, а мутантный гомозиготный генотип является функционально неполноценным. Sarmanova и соавторы (2001) предположили, что полиморфизм этого гена может играть существенную роль в развитии лим-фоидных злокачественных новообразований [14]. Также ряд исследований показал наличие значимой связи между ОНП этого гена и риском развития рака легких [13].
■ Таблица 2. Частота встречаемости отдельных аллелей и генотипов по гену ЕРНХ1 в группах сравнения
Ген Частота,% Р
ОГ ГС
EPHX1 Аллель Туг 68,63 ± 6,50 72,00 ± 6,35 >0,05
Н^ 31,37 ± 6,50 28,00 ± 6,35
Генотип Туг/Туг 43,14 ± 6,94 46,20 ± 7,05 >0,05
Туг/Н^ 50,98 ± 7,00 40,00 ± 6,93 >0,05
5,88 ± 3,29 13,80 ± 4,88 >0,05
* — р < 0,05 между двумя группами
■ Таблица 3. Частота встречаемости отдельных аллелей и генотипов по гену CYP1A1 в группах сравнения
Ген Частота, % Р
ОГ ГС
CYP1A1 Аллель А 51,96 ± 7,00 60,38 ± 6,72 >0,05
в 48,04 ± 7,00 39,62 ± 6,72
Генотип АА 5,88 ± 3,29 41,51 ± 6,78 <0,001
Ав 92,16 ± 3,76 37,74 ± 6,66 <0,001
1,96 ± 1,94 20,75 ± 5,57 <0,01
* — р < 0,05 между двумя группами
■ Таблица 4. Частота встречаемости отдельных аллелей и генотипов по генам GSTM1 и GSTT1 в группах сравнения
Ген Аллель Частота, % Р*
Основная группа Группа сравнения
GSTM1 + 88,33 ± 4,14 74,17 ± 6,20 р < 0,05
00 11,67 ± 4,14 25,83 ± 6,20
GSTT1 + 11,67 ± 4,14 71,67 ± 6,35 р < 0,001
00 88,33 ± 4,14 28,33 ± 6,35
* — р < 0,05 между двумя группами
Гены глутатион-S-трансфераз
100 % 90 % Н
70 % -60 % -50 % -40 % -30 % -20 % -10 % -0 %
11,67 %
76,67 %
11,67 %
13,33 %
15,83 %
12,50 %
Основная группа Группа сравнения
■ — GSTM1 (+) + GSTT1 (+)
■ — GSTM1 (00) + GSTT1 (+) I — GSTM1 (+) + GSTT1 (00)
I — GSTM1 (00) + GSTT1 (00)
■ Рисунок 1. Распространенность генотипов GSTM1 + GSTT1 в группах сравнения
Проведенный нами анализ аллельного распределения по гену EPHX1 показал, что преобладающим генотипом среди успешных спортсменов является гетерозиготный генотип EPHX1 Tyr/ His (50,98 % ± 7,00 %), связанный со снижением ферментативной активности в физиологических пределах; в группе сравнения — функционально неполноценный гомозиготный генотип EPHX1 Tyr/ Tyr (46,20 % ± 7,05 %). Статистически значимых различий между двумя группами не обнаружено (табл. 2).
Ген CYP1A1 кодирует один из ферментов, участвующих в 1 фазе процесса биотрансформации. Продукт экспрессии гена CYP1A1 участвует в метаболизме полициклических ароматических углеводородов (таких как бензопирен), многие метаболиты которых являются признанными канцерогенами. Неоднократно показана связь некоторых полиморфных вариантов этого гена с различными формами онкопатологии, включая рак молочной железы [15], рак щитовидной железы [16], немелкоклеточный рак легких [18], и др. Ряд авторов показали связь курения во время беременности и снижения массы тела новорожденных с полиморфизмом генов CYP1A1 и GSTT1, отметив, что наибольшая разница с контролем наблюдается при наличии мутантных аллелей по обоим генам [17].
Анализ распределения генотипов гена CYP1A1 показал наличие статистически значи-
мых различий в двух группах (табл. 3). Для спортсменов преобладающим является гетерогизот-ный генотип CYP1A1 AG (92,16 % ± 3,76 %), в группе сравнения частота гетерозигот CYP1A1 AG и гомозигот CYP1A1 АА практически не отличается (37,74 0% ± 6,66 % и 41,51 0% ± 6,78 % соответственно). Гомозиготный функционально неполноценный генотип CYP1A1 GG практически отсутствует в основной группе (1,96 о% ± 1,94 %%), однако его частота в группе сравнения составляет 20,75 %± 5,57 % (р < 0,01).
Полиморфизм генов второй фазы биотрансформации
GST (глутатион^-трансферазы) — это семейство ферментов, катализирующих коньюгацию различных ксенобиотиков; опосредуя вторую фазу де-токсикации непосредственно их, а также вредных продуктов первой фазы. Глутатион^-трансферазы обладают широкой субстратной специфичностью, а наличие полиморфизма кодирующих их генов приводит к появлению широкого изоморфного спектра ферментов, что модифицирует их способность ме-таболизировать ксенобиотики. При делеции по обеим аллелям в гене GSTM1, кодирующем фермент глутатион^-трансферазу класса ц, полностью отсутствует синтез белкового продукта. Обычно деле-ция наблюдается в 40-45 % случаев в европеоидных популяциях, а ее наличие сопровождается увеличением риска онкологических и кардиоваскуляр-ных заболеваний [5]. Результаты ранее выполненных исследований показали, что влияние курения на частоту развития коронарной болезни сердца связано с генотоксичными атерогенами, приводящими к повреждению хромосом [9]. Обширная де-леция в структурной части гена GSTT1 (глутатион S-трансфераза е-1) ассоциируется с низкой эффективностью детоксикации ряда распространенных потенциальных канцерогенов [5]. Частота распространенности делеции гена в европеоидных популяциях составляет 16-25 % и обуславливает повышенный риск развития раковых опухолей и коронарной болезни сердца. Также сравнение распределения частот аллелей по генам GSTM1 и GSTT1 показало наличие статистически значимых различий между основной группой и группой сравнения (табл. 4).
Для обеих групп наблюдения характерно преобладание GSTM1 (+) генотипа, однако его частота выше у спортсменов (88,33 %± 4,14 % против 74,17 %%± 4,20 %%, р < 0,05). Для гена GSTT1 наблюдается противоположная картина: в группе сравнения также преобладает (+) генотип (71,67 % ± 6,35 % против 11,67 %± 4,14 %, р < 0,001), в то время как для основной группы характерна делеция в структурной части гена (00-генотип) (88,33 %± 4,14 % против 28,00 %% ± 4,10 %%, р < 0,001), что свидетельствует о задействовании иных путей детоксикации вредных веществ у лиц, успешно преодолевающих тяжелые психофизические нагрузки.
Таким образом, наиболее распространенным генотипом в основной группе является
GSTM1 (+) / GSTT1 00 (76,67 % ± 5,46 %), в то время как GSTM1 (+) / GSTT1 (+) генотип встречается только в 11,67 % ± 4,14 % случаев. В группе же сравнения превалирует генотип GSTM1 (+) + GSTT1 (+) (58,33 % ± 4,50 %, p < 0,001), частота гетерозиготных состояний в сумме составляет 29,17 % ± 4,15 % (p < 0,001) (рис. 1). Распространенность сочетания делеции по обоим генам значимо не отличается в обеих группах, тем не менее, для спортсменов вероятность формирования функционально мутант-ного генотипа (GSTM1 00 + GSTT1 00) почти в 2 раза превышает аналогичный показатель для группы сравнения (50,00 % против 27 %).
При таком генотипе для нивелировки его отрицательного воздействия показано назначение специальной диеты и антиоксидантов. Для более точной оценки значимости этих характеристик необходимо увеличение объема выборки и расширение спектра исследуемых генов семейства GST.
Экспрессия GSTP1 осуществляется, прежде всего, в сердце, легких и тканях мозга, и является наиболее распространенным GST-изоферментом, экспрессируемым вне печени. На основании его экспрессии в большинстве опухолевых клеточных линий человека и распространенности при химиотерапевтически-устойчивых опухолях было выдвинуто предположение о том, что GSTP1 играет важную роль в канцерогенезе и потенциальной резистентности опухолей к лекарственной терапии. Еще одним подтверждением этого является и то, что GSTP1 может селективно ингибиро-вать JNK-фосфорилирование (с участием c-Jun N-терминальнх киназ), предотвращая апоптоз [8]. Gilliland и соавторы (2004) обнаружили, что мутации по GSTP1 и GSTM1 изменяют аллергический ответ организма. Показано, что делеция по GSTM1 или GSTP1 Ile105 дикого типа связаны со значительным увеличением выработки IgE и гистамина после действия аллергенов; при наличии одновременно генотипов GSTP1 Ile / Ile и GSTM1 00 наблюдаются еще более выраженные изменения [4]. Выявлено также, что подростки (13 до 21 лет), регулярно подвергающиеся дома воздействию табачного дыма, страдают более тяжелыми формами астмы при наличии гомозиготной мутации по гену GSTP1 [10].
Результаты проведенного молекулярно-гене-тического анализа показали, что для обеих групп характерно преобладание GSTP1 AA (Ile/Ile), гено-
типа, однако его частота незначительно выше среди лиц, не занимающихся спортом (41,18 % ± 6,89 % против 51,67 % ± 6,45 %) (табл. 5). Кроме того, отмечается выраженное (p < 0,02)преобладание генотипа GSTP1 GG (Val/Val) среди спортсменов относительно группы сравнения (21,57%± 5,76% против 5,00 % ± 2,81 %).
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Проведенное исследование позволило выявить
ряд особенностей.
1. Наиболее часто у успешных профессионалов-единоборцев встречаются следующие генетические характеристики: ген GSTT1 (88,33 % ± 4,14 %00), генGSTM1 (88,33 % ± 4,14 %+), ген CYP1A1 (92,16 % ± 3,76 % AG). Для выявления генетически обусловленных индивидуальных особенностей биотрансформации фармакологических препаратов анализ по этим генам является весьма перспективным.
2. Анализ данных по гену ЕРНХ1, показал, что особенности этого гена не является ключевым (для представителей выбранных видов спорта).
3. Вероятность формирования функционально неполноценного генотипа по генам второй фазы детоксикации GSTM1 и GSTT1 (00 + 00) почти в 2 раза выше в основной группе (50 против 27 %). Для более точной оценки значимости гена GSTP1 целесообразным представляется увеличение размеров выборки.
4. Результаты исследований свидетельствуют о высокой частоте встречаемости генотипов, связанных с частичным уменьшением активности ферментов систем биотрансформации (ЕРНХ1, CYP1A1, GSTT1) в основной группе. Формирование этих генотипов приводит к снижению степени обезвреживания токсичных метаболитов, что требует назначение антиоксидантных средств и специальной диеты. С другой стороны, связь между высокой устойчивостью к психофизическим нагрузкам лиц основной группы и наличие указанных особенностей, косвенно указывают на возможность задействования иных путей де-токсикации ксенобиотиков и вредных метаболитов, что подчеркивает необходимость расширения спектра исследуемых генов системы детоксикации ксенобиотиков.
■ Таблица 5. Частота встречаемости отдельных аллелей и генотипов по гену GSTP1 в группах сравнения
Ген Частота, % P*
ОГ ГС
GSTP1 Аллель A 59,80 ± 6,87 73,33 ± 5,71 p > 0,05
G 40,20 ± 6,87 26,67 ± 5,71
Генотип AA 41,18 ± 6,89 51,67 ± 6,45 p > 0,05
AG 37,25 ± 6,77 43,33 ± 6,40 p > 0,05
GG 21,57 ± 5,76 5,00 ± 2,81 p > 0,02
* — p < 0,05 между двумя группами
ЛИТЕРАТУРА
1. Akhmetov I. I. Molecular genetics of sport. Moscow: Soviet Sport, 2009: 126-8, 144-6.
2. Anzenbacher P., Anzenbacherov E. Cytochromes P450 and metabolism of xenobiotics. Cell Mol Life Sci. 2001; 58 (5-6): 737-7.
3. Arnold C., Konkel A., Fischer R. et al. Cytochrome P450-dependent metabolism of omega-6 and omega-3 long-chain polyunsaturated fatty acids. Pharmacol. Rep. 2010; 62 (3): 536-47.
4. Gilliland F. D., Li Y.-F., Saxon A. et al. Effect of glutathi-one-S-transferase M1 and P1 genotypes on xenobi-otic enhancement of allergic responses: randomised, placebo-controlled crossover study. Lancet. 2004; 363: 119-25.
5. Hung R. J., Boffetta P., Brockm^ler J. et al. CYP1A1 and GSTM1 genetic polymorphisms and lung cancer risk in Caucasian non-smokers: a pooled analysis. Carcinogenesis. 2003; 24 (5): 875-82.
6. Johanson H., Hyland V., Wicking C. et al. DNA elution from buccal cells stored on Whatman FTA Classic Cards using a modified methanol fixation method. Botechniques. 2009; 46 (4): 309-11.
7. Kalliokoski A., Niemi M. Impact of OATP transporters on pharmacokinetics. Brit. J. Pharmacol. 2009; 158: 693-705.
8. Laborde E. Glutathione transferases as mediators of signaling pathways involved in cell proliferation and cell death. Cell Death Differ. 2010; 17 (9): 1373-80.
9. Masetti S., Botto N., Manfredi S. et al. Interactive effect of the glutathione S-transferase genes and cigarette smoking on occurrence and severity of coronary artery risk. J. Mol. Med. 2003; 81 (8): 488-94.
10. Palmer C. N., Doney A. S., Lee S. P. et al. Glutathione S-trans-ferase M1 and P1 genotype, passive smoking, and peak expiratory flow in asthma. Pediatrics. 2006; 118 (2): 710-6.
11. Pavanello S., Clonfero E. Biological indicators of genoto-xic risk and metabolic polymorphisms. Mutat. Res. 2000; 463: 285-308.
12. Phillips K. A., Veenstra D. L., Oren E. et al. Potential role of pharmacogenomics in reducing adverse drug reactions: a systematic review. JAMA. 2001; 286 (18): 2270-9.
13. Rotunno M., Yu K., Lubin J. H. et al. Phase I metabolic genes and risk of lung cancer: multiple polymorphisms and mRNA expression. PLoS One. 2009; 4 (5): e5652.
14. Sarmanov J., Benesov K., Gut I. et al. Genetic polymorphisms of biotransformation enzymes in patients with Hodgkin's and non-Hodgkin's lymphomas. Hum. Mol. Genet. 2001; 10 (12): 1265-73.
15. Shin A., Kang D., Choi J. Y. et al. Cytochrome P450 1A1 (CYP1A1) polymorphisms and breast cancer risk in Korean women. Exp. Mol. Med. 2007; 39 (3): 361-6.
16. Siraj A. K., Ibrahim M., Al-Rasheed M. et al. Polymorphisms of selected xenobiotic genes contribute to the development of papillary thyroid cancer susceptibility in Middle Eastern population. BMC Med. Genet. 2008; 5: 9-61.
17. Wang X., Zuckerman B., Pearson C. et al. Maternal cigarette smoking, metabolic gene polymorphism, and infant birth weight. JAMA. 2002; 287: 195-202.
18. Wright C. M., Larsen J. E., Colosimo M. L. et al. Genetic association study of CYP1A1 polymorphisms identifies risk haplotypes in nonsmall cell lung cancer. Eur. Respir. J. 2010; 35 (1): 152-9.
POLYMORPHiSMS OF XENOBiOTiC BiOTRANSFORMATiON GENES AND THEiR ROLE iN iNDiViDUALiZATiON OF PHARMACOLOGiCAL THERAPY AND SUPPORT OF HUMANS AFTER HEAVY PSYCHOPHYSiCAL LOADiNG
A. S. Kozlova, A. O. Pyatibrat, S. B. Melnov, N. S. Smolnik, P. D. Shabanov
♦ Summary: We analyzed the frequency distribution of CYP1A1, EPHX1, GSTM1, GSTP1, GSTT1 genes polymorphisms in 111 persons exposed to high physical and mental stress (elite athletes). Qualifications of sportsmen ranged from candidates for master of sports to world-class athlete. Comparative analysis revealed significant differences between the main group and the comparison group in the frequency of GSTM1, GSTT1, CYP1A1 genotypes, and a tendency to a predominance of genotype GSTP1 Val / Val in the main group.
♦ Keywords: sport genetics; pharmacogenetics; xeno-biotic and drug metabolism; genetic marker; single nucleo-tide polymorphism.
♦ Информация об авторах
Козлова Анна Сергеевна — заведующая лабораторией фармакологии и спортивного питания. Республиканский научно-практический центр спорта. 220007, Минск, ул. Воронянского, д. 50/1, республика Беларусь. E-mail: [email protected].
Пятибрат Александр Олегович — к. м. н., зав. научно-организ. отделом. ФГБУ «Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины им. А. М. Никифорова» МЧС РФ. 194044, Санкт-Петербург, ул. Акад. Лебедева, д. 4/2. E-mail: [email protected].
Мельнов Сергей Борисович — д. биол. н., профессор, заведующий отделом окружающей среды и молекулярной медицины. Международный государственный экологический университет им. А. Д. Сахарова. 220070, Минск, ул. Долгобродского, д. 23, республика Беларусь. E-mail: [email protected].
Смольник Надежда Сергеевна — Международный государственный экологический университет им. А. Д. Сахарова. 220070, Минск, ул. Долгобродского, д. 23, республика Беларусь.
Шабанов Петр Дмитриевич — д. м. н., профессор, заведующий кафедрой фармакологии. ФГБВОУ ВПО «Военно-медицинская академия им. С. М. Кирова» МО РФ. 194044, Санкт-Петербург, ул. Акад. Лебедева, д. 6. E-mail: [email protected].
Kozlova Anna Sergeevna — Master of Sci., Head, Laboratory of Pharmacology and Sport Nutrition. Respublic Scientific and Practical Centre of Sport. 220007, Minsk, Voronyanskogo St., 50/1, Belarus. E-mail: [email protected].
Pyatibrat Alexandre Olegovich — PhD (Pathophysiology), Head of Dept. of Organization and Sc. Activity. A. M. Nikiforov All-Russian Centre of Extreme and Radiation Med., Emercom of Russia. 194044, St. Petersburg, Acad. Lebedev St., 4/2, Russia. E-mail: [email protected].
Melnov Sergei Borisovich — Dr. Biol. Sci. (Genetics), Professor, Head. Dept. of Environmental and Molecular Medicine. A. D. Sakharov International State Ecological University. 220070, Minsk, Dolgobrodskogo St., 23, Belarus. E-mail: [email protected].
Smolnik Nadezhda Sergeevna — A. D. Sakharov International State Ecological University. 220070, Minsk, Dolgobrodskogo St., 23, Belarus.
Shabanov Petr Dmitriyevich — Professor, Head, Dept. of Pharmacology. S. M. Kirov Military Medical Academy. 194044, St. Petersburg, Acad. Lebedev St., 6, Russia. E-mail: [email protected].