CC BY
49
УДК 591.16:597.8
ПЕРВЫЙ СЛУЧАЙ РАЗМНОЖЕНИЯ ЖАБЫ ЛАТАСТА, BUFOTES LATASTII (BOULENGER, 1882) В ЛАБОРАТОРНЫХ УСЛОВИЯХ
А. А. Кидов 1, К. А. Матушкина 1, С. Н. Литвинчук 2, С. А. Блинова 1, К. А. Африн 1, Е. Г. Коврина 1
1 Российский государственный аграрный университет -Московская сельскохозяйственная академия имени К. А. Тимирязева Россия, 4127550, Москва, Тимирязевская, 49 E-mail: kidov_a@mail.ru 2 Институт цитологии РАН Россия, 194064, Санкт-Петербург, Тихорецкий просп., 4
Поступила в редакцию 14.01.2015 г.
Приводятся данные по размножению жабы Латаста, Bufotes latastii в лабораторных условиях. В летний период животных содержали при температуре 26 - 30°C и длительности светового дня 16 ч в террариуме горизонтального типа с грунтом из измельченной коры. Кормом для взрослых жаб служили двупятнистые сверчки, Grillus bimaculatus лабораторного разведения. В течение 28 суток в начале февраля - начале марта животных содержали при температуре 9.4 - 15.8°C, влажности 20 - 48% и естественном освещении. После окончания периода охлаждения жаб переносили в аквариум с уровнем воды 5 см и островом для выхода на сушу. Нерест стимулировали двукратной инъекцией сурфагона. Икрометание началось через 10 ч после второй инъекции и длилось 7 ч. Общая длина икряных шнуров равнялась 572 см, а количество яиц в кладке составило 6804 шт. Инкубация яиц длилась 3-5 сут., а еще через 3 сут. личинки начинали питаться. Личиночное развитие длилось 56-86 суток. Молодь при выходе из воды имела длину тела 12.9-16.8 мм и массу 0.2 -0.4 г. Уже через 2 месяца после метаморфоза самцы обладали способностью к вокализации, а через 3 месяца имели брачные мозоли и предпринимали попытки спариваться.
Ключевые слова: жаба Латаста, Bufotes latastii, лабораторное разведение.
DOI: 10.18500/1814-6090-2016-16-1-2-20-26
ВВЕДЕНИЕ
Содержание и разведение земноводных в искусственных условиях является не только непременным условием для разработки технологий их сохранения «ex situ» но и нередко служит основным источником информации об экологии редких, узкоареальных, скрытных видов. Трудно-доступность местообитаний некоторых амфибий для исследователя, обусловленная географическими и, зачастую, политическими факторами, а также строго ограниченная определенным сезоном наземная активность животных способствуют тому, что для целого ряда видов все сведения по репродуктивной биологии ограничены лишь результатами лабораторных исследований. Не являются исключением и настоящие жабы семейства Bufonidae: так, на данных, полученных в неволе, основаны современные знания о биологии Atelo-pusflavescens Dumeril et Bibron, 1841; A. hoogmoe-di Lescure, 1974; Ingerophrynus galeatus (Günther, 1864); Nectophrynoides asperginis Poynton, Howell, Clarke, et Lovett, 1999; Rhaebo blombergi (Myers et Funkhouser, 1951) и многих других (Ткаченко и др., 2015 а, б; Burchfield, 1975; Maruska, 1986;
Johnson, 1994; Wiese, Hutchins, 1994; Ryboltovsky, 1997; Lee et al., 2006; Luger et al., 2009; Gawor et al., 2012).
Выявление «очага» видового разнообразия зелёных жаб «Bufotes viridis complex» в Центральной Азии сопровождалось множеством работ, посвященных филогении и систематике этого комплекса (Литвинчук и др., 2006, 2012; Боркин, Литвинчук,2013; Stöcketal.,2005, 2006; Borkinet al., 2006). В то же время, очевидно, что для подавляющего большинства видов центальноазиатских жаб сведения о биологии и, прежде всего, размножении, остаются фрагментарными (Кузьмин, 2012; Dubois, Mertens, 1977; Stöcketal., 2001 а).
Жаба Латаста, Bufotes latastii (Boulenger, 1882) (рис. 1), также в англоязычных работах нередко называемая «ладахской» (Ladakh toad), «кашмирской» (Kashmir toad) или «окаймлено-позвонковой» (vertebral-banded toad) (Frost, 2014), населяет аридные ландшафты высокогорий (1500 - 3250 м над уровнем моря) северо-восточного Пакистана (провинция Азад Джамму и Кашмир) и северо-западной Индии (штат Джамму и Кашмир) (Боркин, Литвинчук, 2013; Hemmer et
al., 1978; Stöcketal., 2001 6;Ficetolaetal.,2010).no немногочисленным наблюдениям в природе (Chanda, 2002; Khan, 2006; Ficetola et al., 2010), жабы этого вида ведут ночной образ жизни и зачастую придерживаются выходов термальных вод, в которых проводят существенную часть времени. Теплая вода источников позволяет кашмирским жабам переживать резкие суточные и сезонные колебания температур. О размножении жабы Латаста до настоящего времени сведений нет.
Рис. 1. Икрометание жабы Латаста, Би/о1ез \atastii (Вои1е^ег, 1882)
В данной работе впервые приводятся сведения о размножении и росте кашмирской жабы в искусственных условиях.
МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ
Исследования проводили в лаборатории зоокультуры кафедры зоологии РГАУ - МСХА имени К. А. Тимирязева (Москва) в 2013 - 2014 гг. Материалом послужили взрослые кашмирские жабы (длина тела самки - 66.7 мм, самца - 55.2 мм), отловленные 30 апреля 2013 г. в окрестностях селения Тангмарг (штат Джамму и Кашмир, Индия), и их потомство.
Содержание взрослых животных осуществляли по стандартным для палеарктических жаб методикам (Кидов и др., 2014; К1ёоу е! а1., 2014): в террариуме горизонтального типа размером 40*20*25 см на пару. Субстратом служила измельченная кора хвойных пород деревьев (мульча) фракцией 2-4 см. Террариум был оборудован пластиковым бассейном объемом 0.5 л, вода в котором заменялась 2-3 раза в неделю. Температурный режим в летний период поддерживался на уровне 26-30°С, а фотопериод - 16 ч.
Кормление взрослых жаб осуществляли 2 раза в неделю. В качестве кормовых объектов использовали двупятнистых сверчков, ОтШт Ыта-оиШш Эе веег, 1773 лабораторного разведения с
добавлением минеральной подкормки MicroCalcium (производитель - JBL GmbH & Co, Германия).
За неделю до зимовки жабам устраивали голодную выдержку. Зимнее охлаждение животных проводили при естественном освещении в течение 28 суток с 3 февраля по 3 марта 2014 г. в пластиковом контейнере размером 56*39*42 см с субстратом из увлажненного опада дубовых листьев толщиной 10 см. Температура в зимовальном помещении варьировала в пределах 9.4 - 15.8°C (рис. 2), а влажность-20-48% (рис. 3).
U 20
Й
&15Н с
S
V í-
10
"Г
-1-1-1-
1 8 15 22 29
Продолжительность, сут.
Рис. 2. Динамика температуры воздуха в период проведения зимовки
После зимовки животных сразу перенесли в нерестовый аквариум размером 56*39*28 см с уровнем воды 5 см и островом для возможности выхода на сушу. Пару производителей на шестые сутки после помещения в нерестовые ёмкости стимулировали введением в паховые лимфатические мешки синтетического аналога гипоталами-ческого нейрогормона люлиберина (ЬИЯИа) -сурфагона. И самца и самку инъецировали дважды из расчета 12.5 мкг препарата на 1 г живой массы животного с временным интервалом между инъекциями 24 ч. После икрометания взрослых жаб высаживали из нерестовой ёмкости.
60-,
И 40
Л
§30. к
I 20-
s
ffl 10-
т—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I—I
1 7 12 15 20 23 28
Длительность зимовки, сут.
Рис. 3. Динамика влажности воздуха в период проведения зимовки
Количество яиц в кладке определяли полным поштучным пересчетом, а суммарную длину икряных шнуров-линейкой с погрешностью 1 см.
Инкубацию икры и последующее выращивание молоди до метаморфоза проводили в пластиковых контейнерах размером 78*56*18 и 56*39*28 см и с уровнем воды 15 и 25 см соответственно (рис. 4). Подмену 2/3 объема воды в контейнерах от икрометания до перехода личинок на экзогенное питание осуществляли трижды в неделю, а в последующем - ежедневно. Принудительная аэрация воды производилась круглосуточно.
Кормление личинок (рис. 6) проводили ежедневно, задавая по мере поедания ошпаренные кипятком листья крапивы, шпината и салата, желток вареного куриного яйца, кусочки морских беспозвоночных (мидии, осьминоги, кальмары) и новорожденных лабораторных мышей, полнорационные комбикорма для декоративных рыб - Tetra Pleco Waters (производитель - Tetra GmbH, Германия).
Рис. 4. Стойка с бассейнами для выращивания личинок жабы Латаста
Гидрохимические показатели воды в период выращивания личинок: водородный показатель (рН) - 8.0; общая жесткость ^Н°) - 7.0°; карбонатная жесткость (кН°) - 7.0°.
Температурный режим в аквариумах при проведении нереста, эмбриогенезе и личиночном развитии представлен на рис. 5.
У 25-
& & §20"
и
15-
10-
„22.5
i i i i i i i i i i i i i i i i i i i i
15 29 43 57 71 85 99
Длительность, сут.
Рис. 5. Температурный режим в бассейнах для проведения размножения, инкубации икры и выращивания личинок жабы Латаста: 1 -икрометание, 2 - выход из яйцевых оболочек, 3 - начало экзогенного питания, 4 - начало выхода на сушу
Рис. 6. Питание личинок жабы Латаста листьями шпината
При прорыве передних конечностей личинок переносили в расположенный под углом контейнер, в котором создавалась возможность для выхода метаморфов на сушу (рис. 7).
После полной редукции хвоста животных пересаживали в пластиковые террариумы размером 56*39*28 с субстратом из вискозных салфеток Practi Universal (производитель - ООО «Вис-текс», Россия). Световой день при выращивании молоди, как и при содержании взрослых животных, поддерживали на уровне 16 ч при помощи люминесцентных ламп ReptiLight (производитель - NARVA, Germany) мощностью 30 В и световым потоком 1150 лм. Кормление сеголетков осуществляли ежедневно. Основным кормом служили двупятнистые сверчки, а дополнительными кормами являлись личинки большой восковой моли, Gallería mellonella Linnaeus, 1758 и большого мучного хрущака, Tenebrío molítor Linnaeus, 1758.
Взрослых животных, предли-чинок, личинок и молодь после прохождения метаморфоза измеряли штангенциркулем с погрешностью 0.1 мм по стандартным методикам (Банников и др., 1977). Взвешивали животных при помощи электронных
-1 - 2
- 3
- 4
лабораторных весов ВК-300 (производитель -ЗАО «Масса-К», Россия) с погрешностью 0.005 г.
Рис. 7. Молодь жабы Латаста при прохождении метаморфоза
РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
В первую половину зимовки и самец, и самка теряли в весе, однако с третьей недели охлаждения у самки, а с четвертой недели - у самца масса тела начала увеличиваться (рис. 8). Временное увеличение веса у палеарктических жаб при проведении зимовки в искусственных условиях многократно отмечалось нами и ранее (Кидов, Сер-бинова, 2008; Кидов и др., 2014; Kidov et al., 2014), однако для представителей видового комплекса «Bufo bufo» эта тенденция отмечалась лишь на первом этапе зимнего охлаждения. Предполагалось (Кидов и др., 2014), что это связано с депонированием животными резервной влаги для предотвращения ее возможного дефицита в зимовальном убежище в период гибернации.
В целом за 28 суток зимовки самка потеряла 8% массы (с 37.5 г до 34.5 г), а самец - 4.17% (с
•40-,
35-
30
25-
20-
1503.02.14
10.02.14 17.02.14 24.02.14 03.03.14 Дата проведения измерений
19.3 г до 18.5 г) (рис. 9). К концу зимовки животные активно перемещались по поверхности субстрата, подолгу сидели в поилке.
Й? 100-
§ 991 98-
| 97-
к
§ 96-
I 95 Ч
§ 94-
н
О 939291
90
Рис. 8. Изменение массы производителей жабы Латаста на протяжении зимнего охлаждения: о - самка,
• - самец
1 7 14 21 29
Длительность зимовки, сут.
Рис. 9. Изменения относительной массы производителей жабы Латаста на протяжении периода зимнего охлаждения: о - самка, • - самец
Самец делал попытки образования амплек-суса, начиная с третьего дня после высадки животных в бассейн, однако пара быстро распадалась. Устойчивый амплексус был отмечен через 7чпос-ле первой (предварительной) инъекции сурфаго-на. Начало икрометания наблюдалось при температуре 17°С через 10 ч после второй (разрешающей) инъекции в 9-00. Животные производили откладку яиц в течение 7 ч, а спустя 40 мин после окончания икрометания амплексус распался.
От выхода из зимовки до окончания икрометания самка потеряла 15.7% массы (с 34.5 до 29.1 г), а самец-9.2% (с 18.5 до 16.8 г). Суммарная длина икряных шнуров составила 572 см, а количество яиц в кладке - 6804 шт.
Первые предличинки начали отделяться от икряного шнура на третьи сутки развития, а на пятые сутки все эмбрионы покинули яйцевые оболочки. Общая длина тела с хвостом у предличинок варьировала от 2.6 до 4.5 мм (таблица). Личинки начинали переходить на внешнее питание на третьи сутки после вылупления. Таким образом, общая длительность эмбрионального развития составляла 6-8 суток.
Жабы Латаста в период личиночного развития имеют высокую склонность к каннибализму
Первые личинки с почками задних конечностей отмечены на 18 сутки от вылупления из яиц, а прорыв передних конечностей - на 33 сутки. Первая молодь, выходящая на сушу, наблюдалась с 56 суток, а все личинки закончили развитие к 86 суткам от вылупления. Таким образом, общая длительность эмбрионального и личиночного развития составила 62 - 94 суток.
Показатели развития молоди жабы Латаста в лабораторных условиях
Половозрастная группа Показатель n M±m (а) min-max
Предличинки при вылуплении Общая длина тела с хвостом (Ь+1сс), мм 43 3.36±0.07 (0.44) 2.6-4.5
Личинки при переходе на экзогенное питание Общая длина тела с хвостом (Ь+1сс), мм 30 6.67±0.11 (0.61) 5.6-8.4
Длина хвоста (/сД мм 3.89±0.11 (0.58) 3.0-5.4
Личинки после прорыва передних конечностей Длина тела (Ь), мм 40 15.46±0.17 (1.04) 13.5-17.4
Длина хвоста (1сл), мм 24.59±0.57 (3.55) 18.6-30.8
Масса, г 0.61±0.03 (0.16) 0.3-1.0
Молодь при выходе на сушу Длина тела (Ь), мм 33 15.08±0.17 (0.96) 12.9-16.8
Масса, г 0.32±0.01 (0.05) 0.2-0.4
Молодь перед первой зимовкой (9 мес. от икрометания) Самки Длина тела (Ь), мм 23 48.76±1.07 (5.01) 38.6-58.0
Масса, г 12.43±0.88 (4.12) 5.7-21.8
Самцы Длина тела (Ь), мм 40 48.42±0.48(3.02) 41.5-53.5
Масса, г 12.33±0.39(2.46) 6.6-17.9
Молодые жабы после завершения метаморфоза на третьи сутки начинали питаться и быстро росли (см. таблицу). Для молоди, как и для взрослых особей, характерно наличие крупного «пьющего пятна», что, вероятно, обусловлено особенностями их экологии, прежде всего - длительным пребыванием в водоёмах (рис. 10).
Рис. 10. Зона «пьющего пятна» у сеголетка жабы Латаста
Уже через 2 месяца самцы демонстрировали сигнал высвобождения («подмышечный рефлекс»), а через 3 месяца обладали хорошо различимыми брачными мозолями и предпринимали попытки образования амплексуса.
Благодарности
Авторы статьи искренне признательны всем участникам Второй Гималайской экспедиции Центра полевых исследований Санкт-Петербургского союза ученых за предоставление животных для разведения, А. А. Бакшеевой и А. Л. Тимошиной - за помощь в проведении лабораторных исследований.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
Банников А. Г., Даревский И. С., Ищенко В. Г., Рустамов А. К., Щербак Н. Н. 1977. Определитель земноводных и пресмыкающихся фауны СССР. М. : Просвещение. 415 с.
Боркин Л. Я., Литвинчук С. Н. 2013. Амфибии Палеарктики : таксономический состав // Тр. Зоол. ин-таРАН. Т. 317, №4. С. 494-541.
Кидов А. А., Матушкина К. А., Африн К. А., Блинова С. А., Тимошина А. Л., Коврина Е. Г. 2014. Лабораторное разведение серых жаб Кавказа (Bufo eichwaldi и B. verrucosissimus) без применения гормональной
стимуляции // Современная герпетология. Т. 14, вып. 1/2. С. 19 - 26.
Кидов А. А., Сербинова И. А. 2008. Опыт разведения кавказской жабы Bufo verrucosissimus (Pallas, [1814]) (Amphibia, Anura, Bufonidae) в лабораторных условиях // Актуальные проблемы экологии и сохранения биоразнообразия : материалы Всерос. конф. Владикавказ : Изд-во Сев.-Осет. ИГСИ им. В. И. Аба-ева. С. 49 - 53.
Кузьмин С. Л. 2012. Земноводные бывшего СССР. М. : Тов-во науч. изд. КМК. 370 с.
Литвинчук С. Н., Боркин Л. Я., Скоринов Д. В., Мазепа Г. А., Пасынкова Р. А., Дедух Д. В., Красикова А. В., Розанов Ю. М. 2012. Необычное триплоид-ное видообразование у зеленых жаб комплекса Bufo viridis высокогорной Азии // Вопросы герпетологии : материалы Пятого съезда Герпетол. о-ва им. А. М. Никольского. Минск : Право и экономика. С. 160 - 165.
Литвинчук С. Н., Розанов Ю. М., Усмано-ва Н. М., Боркин Л. Я., Мазанаева Л. Ф., Казаков В. И. 2006. Изменчивость микросателлитов BM224 и Bcal7 в популяциях зеленых жаб (Bufo viridis complex), различающихся по размеру генома и плоидности // Цитология. Т. 48, № 4. С. 332 - 345.
Ткаченко О. В., Кидов А. А., Матушкина К. А., Блинова С. А., Африн К. А. 2015 а. Линейные размеры предличинок и личинок талышской жабы, Bufo eich-waldi Litvinchuk, Rosanov, Borkin et Skorinov, 2008 на различных стадиях развития // Вестник Бурятского государственного университета. № 4. С. 174 - 179.
Ткаченко О. В., Кидов А. А., Матушкина К. А., Блинова С. А., Африн К. А. 2015 б. Некоторые морфологические особенности развития талышской (Bufo eichwaldi Litvinchuk, Rosanov, Borkin et Skorinov, 2008) и кавказской (B. verrucosissimus (Pallas, 1814)) жаб в лабораторных условиях // Вестник Московского государственного областного университета. Серия: Естественные науки. № 1. С. 6 - 13.
Borkin L. J., Eremchenko V. K., Helfenberger N., Panfilov A. M., Rosanov J. M. 2001. On the distribution of diploid, triploid, and tetraploid green toads (Bufo viridis complex) in south-eastern Kazakhstan // Russ. J. Herpetology. Vol. 8. P. 45 - 53.
Burchfield P. M. 1975. Breeding the Colombian giant toad Bufo blombergi at Brownsville Zoo // International Zoo Yearbook. Vol. 15. P. 89 - 90.
Chanda S. K. 2002. Handbook. Indian Amphibians. Calcutta : Zoological Survey of India. 335 p.
Dubois A., Mertens J. 1977. Sur le crapauds du groupe de Bufo viridis (Amphibiens, Anoures) de l'Himalaya occidental (Cachemire et Ladakh) // Bulletin de la Société Zoologique de France. Vol. 102, № 4. P. 459 - 465.
Ficetola G. F., Crottini A., Casiraghi M., Padoa-Schioppa E. 2010. New data on amphibians and reptiles of the Northern Areas of Pakistan : distribution, genetic variability and conservation issues // North-Western J. of Zoology. Vol. 6. P. 1 - 12.
Frost D. R. 2014. Amphibian Species of the World 6.0, an Online Reference // American Museum of Natural History. New York. Available at: http://research. amnh.org/vz/herpetology/amphibia/ (accessed: 14 December 2014).
Gawor A., Rauhaus A., Karbe D., Van Der Straeten K., Lötters S., Ziegler T. 2012. Is there a chance for conservation breeding? Ex situ management, reproduction, and early life stages of the Harlequin toad Atelopus flavescens Dumeril & Bibron, 1841 (Amphibia : Anura : Bufonidae) // Amphibian and Reptile Conservation. Vol. 5, № 3. P. 29 - 44.
Hemmer H., Schmidtler J. F., Böhme W. 1978. Zur Systematik zentralasiatischer Grünkroten (Bufo viridis -Komplex) (Amphibia, Salientia, Bufonidae) // Zoologische Abhandlungen. Staatliches Museum für Tierkunde in Dresden. Bd. 34. S. 349 - 384.
Johnson R. R. 1994. Model programs for reproduction and management : ex situ and in situ conservation of toads of the family Bufonidae // Captive Management and Conservation of Amphibians and Reptiles : Contributions to Herpetology. Ithaca : Society for the Study of Amphibians and Reptiles. Vol. 11. P. 243 - 254.
Khan M. S. 2006. Amphibians and Reptiles of Pakistan. Malabar : Krieger Publishing Company. 311 p.
Kidov A. A., Matushkina K. A., Uteshev V. K., Ti-moshina A. L., Kovrina E. G. 2014. The first captive breeding of the Eichwald's toad (Bufo eichwaldi) // Russ. J. of Herpetology. Vol. 21, № 1. P. 40 - 46.
Lee S., Zippel K., Ramos L., Searle J. 2006. Captive-breeding programme for the Kihansi spray toad Nec-tophrynoides asperginis at the Wildlife Conservation Society, Bronx, New York // Intern. Zoo Yearbook. Vol. 40, № 1. P. 241 - 253.
Luger M, Hödl W, Lötters S. 2009. Side fidelity, home range behavior and habitat utilization of mail harlequin toads (Amphibia : Atelopus hoogmoedi) from Suriname : relevant aspects for conservation breeding // Salamandra. Vol. 45, № 4. P. 211 - 218.
Maruska E. J. 1986. Amphibians : review of zoo breeding programmes // Intern. Zoo Yearbook. Vol. 24 -25. P. 56 - 65.
Ryboltovsky E. 1997. A note on the wild status and captive management of the mountain toad (Bufo galeatus) of Vietnam // The Vivarium. Vol. 8, № 6. P. 18 - 20.
Stöck M., Frynta D., Grosse W.-R., Steinlein C., Schmid M. 2001 a. A review of the distribution of diploid, triploid and tetraploid Green Toads (Bufo viridis complex) in Asia including new data from Pakistan // Asiatic Herpetological Research. Vol. 9. P. 77 - 100.
Stöck M., Günther R., Böhme W. 2001 b. Progress towards a taxonomic revision of the Asian Bufo viridis group : current status of nominal taxa and unsolved problems (Amphibia : Anura : Bufonidae) // Zoologische Abhandlungen. Staatliches Museum für Tierkunde in Dresden. Bd. 51. S. 253 - 319.
Stöck M., Moritz C., Hickerson M., Frynta D., Dujsebayeva T. N., Eremchenko V. K., Macey J. R., Pa-
penfuss T. J., Wake D. B. 2006. Evolution of mitochondrial relationships and biogeography of Palearctic green toads (Bufo viridis subgroup) with insights in their-genomic plasticity // Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 41, iss. 2. P. 663 - 689.
Stöck M., Steinlein C., Lamatsch D. K., Schartl M., SchmidM. 2005. Multiple origins of tetraploid taxa in the
Eurasian Bufo viridis subgroup // Genetica. Vol. 124, iss. 2. P. 255 - 272.
Wiese R. J., Hutchins M. 1994. The role of zoos and aquariums in amphibian and reptile conservation // Captive Management and Conservation of Amphibians and Reptiles : Contributions to Herpetology. Ithaca : Society for the Study of Amphibians and Reptiles. Vol. 11. P. 37 - 45.
THE FIRST CASE OF REPRODUCTION OF THE LATASTE'S TOAD, BUFOTES LATASTII (BOULENGER, 1882) IN LABORATORY CONDITIONS
A. A. Kidov \ K. A. Matushkina \ S. N. Litvinchuk 2, S. A. Blinova 1, K. A. Afrin 1, and E. G. Kovrina 1
1 Russian State Agrarian University -Timiryazev Moscow Agricultural Academy 49 Timiryazevskaya Str., Moscow 127550, Russia E-mail: kidov_a@mail.ru 2 Institute of Cytology, Russian Academy of Sciences 4 Tikhoretsky Prospekt, St. Petersburg 194064, Russia E-mail: slitvinchuk@yahoo.com
The paper presents data on reproduction of Lataste's toad, Bufotes latastii, in laboratory conditions. During the summer, such animals were kept at temperatures within 26 - 30°C and a daylight duration of 16 hours in a horizontal terrarium with its ground made of shredded bark. Laboratory-bred two-spotted crickets, Grillus bimaculatus, were food for adult toads. Within 28 days (from early February till early March) the animals were kept at temperatures within 9.4 - 15.8°C, humidity within 20 - 48%, and under natural lighting. After the hibernation period, the toads were transferred to an aquarium with a water level of 5 cm and a small artificial island. Spawning was stimulated by double surfagon injection. The spawning began 10 hours after the second injection and lasted 7 hours. The total length of the egg cords was 572 cm, and the egg number per clutch was 6,804. The incubation of eggs lasted 3-5 days, and the larvae began to feed in three days. Larval development lasted 56 - 86 days. The juveniles left water with body lengths within 12.9 - 16.8 mm and weights within 0.2 - 0.4 g. Two months after the metamorphosis, the males were able for vocalization, and three months later they already had nuptial pads and attempted to mate.
Key words: Lataste's toad, Bufotes latastii, captive breeding.
