CC BY
14
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2017 УДК 617.55-007.43
Р. М. Бадыров1, Н. Т. Абатов1, М. М. Тусупбекова1, И. Н. Альбертон2, И. К. Мусабеков1
ОЦЕНКА СТРУКТУРНЫХ ИЗМЕНЕНИЙ ЗОНЫ ИМПЛАНТАЦИИ ПОСЛЕ ПРИМЕНЕНИЯ ВНЕКЛЕТОЧНОГО МАТРИКСА КСЕНОБРЮШИНЫ ДЛЯ РЕКОНСТРУКЦИИ ПЕРЕДНЕЙ БРЮШНОЙ СТЕНКИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ
карагандинский государственный медицинский университет (Караганда, Казахстан), 2Медицинский центр Шаарей Цедек (Иерусалим, Израиль)
Разработан и получен опытный образец нового биологического имплантата - внеклеточный матрикс бычьей брюшины для реконструкции передней брюшной стенки.
Целью настоящего исследования было изучение структурных изменений зоны имплантации внеклеточного матрикса ксенобрюшины с тканями передней брюшной стенки в сравнении с биоимплантатом «Регтасо1» на ранних (до 30 сут) сроках эксперимента. Опытным путем были изучены особенности течения раневого процесса после применения нового материала, проведен морфометрический анализ зоны имплантации. Выявлены статистически значимые внутригрупповые и межгрупповые различия (р<0,05) между количественными составами клеточного инфильтрата в двух группах. По результатам эксперимента исследуемый материал на данном этапе демонстрирует адекватную биосовместимость с макроорганизмом, с формированием зрелого, состоятельного контакта с тканями передней брюшной стенки и достоверно минимальными тканевыми воспалительными реакциями.
Ключевые слова: внеклеточный матрикс ксенобрюшины, Регтасо!, грыжа передней брюшной стенки, морфометрия
Несмотря на успехи в хирургической технике и эволюции имплантируемых сеток, результаты (в том числе продолжительность пребывания имплантата, необходимость повторных операций, частота рецидивов) значительно не улучшились с течением времени [4]. Более того, риск развития несостоятельности послеоперационной раны, нагноение, формирование сером в 10 раз выше при пластике грыжевых ворот с применением синтетических материалов, чем при других чистых общехирургических вмешательствах [2, 6, 7]. Приведенные в литературе данные свидетельствуют о том, что у пациентов, имеющих в анамнезе нагноение раны, в случае применения сетчатого имплантата риск развития раневых осложнений возрастает до 41%, в то время как пациенты с «чистой историей» подвержены риску только в 12% случаях грыжесечения [7]. Таким образом, пластика грыжевых ворот с применением сетчатых эндопротезов, равно как и другие хирургические манипуляции на передней брюшной стенке, сохраняют высокий риск развития раневых осложнений, в том числе инфицирование.
Непрекращающаяся работа по поиску новых пластических материалов и исследованию их поведения в макроорганизме, привела к изучению имплантатов биологического происхождения. Биоимплантаты, получаемые из донорского материала человека (аллографт) или животного (ксенографт: свиной, бычий), с применением технологий тканевой инженерии
представляют собой внеклеточный матрикс (ВКМ) - комплекс структурных и функциональных белков, объединенных в уникальную тка-неспецифичную архитектуру. Помимо его ведущей роли в поддержании структуры, «каркаса» ткани, ВКМ участвует в процессах передачи сигнала, регуляции роста клеток и их дифференцировки. Применение данных биоматериалов имеет большой потенциал в хирургическом лечении грыж передней брюшной стенки, так как это может позволить минимизировать воспалительную реакцию в ответ на имплантацию эндопротеза, уменьшить вероятность образования спаек органов брюшной полости с имплантатом, а также снизить риск возникновения раневой инфекции [5].
Однако существование данных биоим-плантатов не решает ряда вопросов, связанных с их применением в хирургии грыж живота, а именно - нет консенсуса о том, как и в каких случаях, использовать биологические имплантаты, отсутствует в достаточном количестве информация об отдаленных результатах их применения, и, что немало важно, они имеют высокую стоимость [3].
Несмотря на достаточное количество работ по проблеме использования ксеноим-плантатов при герниопластике в мировой науке, следует признать неоднозначность приводимых данных разными учеными, а отсутствие в этих работах исследований по изучению внеклеточного матрикса ксенобрюшины в хирургическом лечении грыж передней брюш-
ной стенки определяет актуальность данного исследования.
Цель работы - изучить структурные изменения зоны имплантации внеклеточного матрикса ксенобрюшины с тканями передней брюшной стенки в сравнении с ацеллюлярным дермальным коллагеном «Permacol» на ранних сроках эксперимента.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Объектом сравнительного экспериментального исследования является новый биологический имплантат отечественной разработки - внеклеточный матрикс бычьей брюшины, полученный путем децеллюляризации детергент-ферментативным методом с последующей стерилизацией гамма-излучением [1]. В качестве материала сравнения выступал ацеллю-лярный дермальный коллаген
«Permacol» (Covidien, США), сходный по свойствам биологический имплантат, уже применяющийся в клинической практике для пластики дефектов передней брюшной стенки.
Эксперимент проводился на 48 белых нелинейных короткошерстных половозрелых крысах обоего пола массой 180-220 г. Животные были распределены по 8 особей в 2 группах, в 3 подгруппах случайным образом. Каждая группа соответствовала применяемому биоимплантату, каждая подгруппа - сроку наблюдения и выведения животного из эксперимента. Периоды наблюдения составили 5, 21 и 30 сут.
Имплантация внеклеточного матрикса ксенобрюшины и ацеллюлярного дермального коллагена «Permacol» осуществлялась посредством вшивания данных материалов в переднюю брюшную стенку экспериментальных животных. Для этого под эфирным наркозом (индукционная камера объемом 3 лит, 3 мл эфира, время экспозиции 5 мин) каждой крысе моделирован дефект передней брюшной стенки, с последующим закрытием его исследуемыми материалами, размером 15х15 мм, путем фиксации их к передней брюшной стенке «край в край» с использованием шелковой нити 4/0 на атравматичной игле. Для профилактики раневой инфекции в течение 5 сут после операции проводилась антибактериальная терапия энрофлоксацином («Энфлорекс») в дозировке 0,1 мл - 10 мг.
Забор гистологического материала у экспериментальных животных проводился согласно дизайну исследования на сроках 5, 21 и 30 сут. Гистологическому исследованию подвергался фрагмент контакта ткани передней брюшной стенки с биологическим импланта-
том.
Гистологические срезы были окрашены в двух сериях стандартными методиками гематоксилином и эозином и пикрофуксином по Ван-Гизону с целью изучения морфологической картины зоны имплантации, оценки структурных изменений, а также активности и степени созревания соединительной ткани.
Морфометрический анализ клеточного инфильтрата проводился с помощью микроскопа Arcturus XT с лазерным микродиссектором в 300 клетках при 400-кратном увеличении в репрезентативном участке между внеклеточным матриксом ксенобрюшины/ ацеллюлярным дермальным коллагеном «Permacol» и тканями передней брюшной стенки, вне шовного материала. Клеточный инфильтрат формирующейся/созревающей грануляционной ткани характеризовался стадийно сменяющимся составом гранулоцитар-ных, лимфоцитарных, плазматических клеток, макрофагов и стромальных клеток (фибробласты, фиброциты). Также проведен количественный просчет сосудов в репрезентативном участке гистологического среза с целью оценки активности ветвления микро-циркуляторного русла стадийно созревающей грануляционной ткани.
Для всех количественных данных вычисляли групповое среднее арифметическое ( х
), среднеквадратичное отклонение (SD). Достоверность различий между исследуемыми группами определена статистическими методами с помощью непараметрических критериев: критерий Mann-Whitney для сравнения независимых групп («опыт-контроль»), для оценки различий между долями в группах использовался критерий Х2. Достоверность внутригруп-повых различий определена статистическим методом с помощью непараметрическим критериев: критерий Kruskal-Wallis для сравнения независимых групп. Для расчетов использовалось программное обеспечение «Statistica 8.0» и табличный процессор Excel из пакета Microsoft Office 2012.
РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Проанализирован клеточный состав репрезентативного участка зоны имплантации, а также стадийно-специфические изменения в течение раневого процесса в опытной группе (табл. 1) и в группе сравнения (табл. 2). Таблица 1 - Клеточный состав зоны имплантации внеклеточного матрикса ксенобрюшины в исследуемые сроки после операции
Клетки 5 сут 21 сут 30 сут
Гранулоциты Х=42,50 *=4,46* Х=3,17*
5Р=3,94 5Р=1,18 5Р=1,32
Лимфоциты X=28,92 Х=19,4#* 18,29*
5Р=2,76 5Р=6,19 5Р=3,07
Плазматические Х=7,33 ^=0,96* *=0,67*
клетки 5Р=1,36 5Р=0,84 5Р=0,62
Макрофаги Х=7,04 Х=9,63 Х=5,75#
5Р=1,36 5Р=2,8 5Р=3,72
Фиброциты/ Х= 14,21 ^=65,54* Х=72,13*
фибробласты 5Р=2,96 5Р=7,25 5Р=3,72
21 сут
30 сут
Гранулоциты
*=4,46* БР=1Д8
Х=3,17* 50=1,32
Х=19,4#* 5Р=6,19
Я= 18,29* 50=3,07
*=0,96* 50=0^84
*=0,67* 5Р=0^62
50=1,36
Х=9,63 50=2,8
Х=5,75# 50=3,72
Фиброциты/ фибробласты
*= 14,21 5Р=2,96
*=65,54* 5Р=7,25
^=72,13* 5Р=3,72
Таблица 2 - Клеточный состав в зоне имплантации ацеллюлярного дермального коллагена «Регтасо!» в исследуемые сроки после операции
Анализ полученных данных показал, что процесс созревания соединительной ткани в обеих группах завершился к 30 сут с образованием состоятельного рубца. Однако течение раневого процесса, смена фаз экссудации и пролиферации в опытной группе и группе сравнения отличалось по срокам и процентному соотношению состава клеточного инфильтрата на исследуемых сроках наблюдения.
Так, в опытной группе с применением
внеклеточного матрикса ксенобрюшины, на 5 сут регистрировалась лимфоцитарная инфильтрация в зоне имплантации с формированием юной грануляционной ткани (рис. 1А). В клеточном инфильтрате отмечено преобладание гранулоцитарных клеток над другими клеточными элементами, что характеризует экссуда-тивную фазу тканевой реакции в ответ на имплантацию, операционную травму. Формирующаяся грануляционная ткань с ново-
А
В
Рисунок 1 - Репрезентативный фрагмент контакта имплантата с передней брюшной стенкой на 5 сут.
образующимися тонкостенными сосудами, инфильтрация полиморфноядерными лейкоцитами: А - внеклеточный матрикс ксенобрюшины; B - «Permacol». Окр.: гематоксилином и эозином. Ув.: х100
В группе сравнения наблюдалась идентичная морфологическая картина (рис. 1Б), с преобладанием гранулоцитарных клеток в клеточном инфильтрате.
Однако, исходя из данных (табл. 1) в ходе динамически изменяющегося количественного состава клеточного инфильтрата в
А
опытной группе, уже к 5-7 сут регистрировалось формирование «перекреста» между гра-нулоцитарными клетками и лимфоцитами, что свидетельствует о переходе экссудативной фазы в пролиферативную фазу течения раневого процесса.
соединительная ткань как в так и группе сравнения ха-рассеянным образованием нитевидных ретикулярных волокон и составила менее 10% в поле зрения (рис. 2).
В то же время в опытной группе отме-
В
На 5 сут опытной группе, рактеризовалась
Рисунок 2 - Формирование нитевидных соединительнотканных волокон в участке контакта передней брюшной стенки с имплантатом на 5 сут: А - внеклеточный матрикс ксенобрюшины, В -«Permacol». Окр.: пикрофуксином по Ван-Гизону. Ув.: х40
чено статистически значимое увеличение стро-мальных клеток в сравнении с группой, где был применен ацеллюлярный дермальный коллаген «Permacol» (р=0,001), с увеличением зрелых соединительнотканных структур, которые составили от 10 до 50% в поле зрения.
В опытной группе плазматические клетки (7,33±1,36%) и макрофаги (7,04±1,36%) распределялись в клеточном инфильтрате зоны имплантации очагово, равно как и в группе сравнения - 8,08±2,05% и 7,21±2,37% соответственно, среди тонких нитевидных ретикулярных волокон и в перивас-кулярном пространстве тонкостенных сосудов.
Статистически значимых различий между группами по данным критериям на сроке 5 сут не выявлено (р>0,05).
Процесс ангиогенеза на 5 сут в обеих группах характеризовался формированием тонкостенных полнокровных сосудов с наличием единичных набухших эндотелиальных клеток, что характеризует активный процесс ветвления микроциркуляторного русла. В опытной группе количество сосудов в репрезентативном участке гистологического среза составило п=7,0±1,3 на 5 сут, и достоверно не отличалось от группы сравнения п=7,88±1,72 ^>0,05) (табл. 3).
Таблица 3 - Результаты статистического анализа количественного просчета сосудов в репрезентативном участке гистологического среза
Материал 5 сут 21 сут 30 сут
Внеклеточный матрикс ксенобрюшины Х=7,0 БО=1,3 *=9,63 Бй=2ДЗ Х=10,9 БО=4,12
Ацеллюлярный дермальный коллаген «Регтасо!» Х=7,88 БО=1,72 Х=12,9 БЭ=2,95 Х= 15,25 БР=4,3
Р (а=0,05) о=0.29 р=0,025 р=0,057
К 21 сут наблюдения в опытной группе регистрировалось преобладание зрелой соединительной ткани, прорастание нежных колла-геновых волокон как в материал, так и в мышечный массив передней брюшной стенки (рис. 3). В клеточном инфильтрате наблюдалось статистически значимое уменьшение кле-
ток экссудативной и продуктивной фаз тканевой реакции по сравнению с начальными сроками наблюдения со значительным преобладанием стромальных клеток (табл. 1), что свидетельствует об отсутствии реактивного и перси-тирующего воспалительного процесса в формирующемся рубце (рис. 5А).
Рисунок 3 - внеклеточный матрикс ксенобрюшины, 21 сут. Превалирование фибробластов и фиброцитов в клеточном инфильтрате, очаговая увядающая периваскулярная инфильтрация полиморфноядерными лейкоцитами. Окр.: гематоксилином и эозином. Ув.: х100
Рисунок 4 - «Permacol», 21 сут. Преобладание фибробластов и фиброцитов в клеточном инфильтрате, персистирующая периваскулярная инфильтрация полиморфноядерными лейкоцитами.
Окр.: гематоксилином и эозином. Ув.: х100
В группе сравнения к 21 сут морфологическая картина зоны имплантации характеризовалась единичной инфильтрацией лимфо-
А
цитами, крупноочаговым разрастанием соединительной ткани (рисунок 4, 5В).
Также, согласно результатам, можно от-
B
Рисунок 5 - Зрелые волокнистые коллагеновые волокна с формированием зрелой рубцовой ткани на 21 сут: А - внеклеточный матрикс ксенобрюшины, В - «Permacol». Окр.: пикрофуксином по Ван-Гизону. Ув. х100
метить комбинированный «перекрест» грану-лоцитарных и лимфоцитарных клеток со стро-мальными клетками (табл. 2). Данное явление можно расценивать как задержку смены экссу-дативной фазы в пролиферативную фазу, и может свидетельствовать о персистенции ре-
активного воспалительного процесса на сроках до 21 дня.
В опытной группе, равно как и в группе сравнения, сохранялось очаговое распределение плазматических клеток и макрофагов в клеточном инфильтрате среди соединительно-
тканных волокон и в периваскулярном пространстве сосудов, однако наблюдалось статистически достоверное снижение количества данных видов клеток по сравнению с начальными сроками (5 сут) наблюдения (табл. 1, 2).
Процесс ангиогенеза на 21 сут в обеих группах характеризовался наличием полнокровных сосудов со сформированной мышечной стенкой. В опытной группе количество сосудов в репрезентативном участке гистологического среза составило п=9,93±2,13, в группе сравнения - п=12,9±2,95. Статистически зна-
чимое уменьшение числа сосудов в опытной группе свидетельствует о более скором переходе пролиферативной фазы течения раневого процесса в фазу формирования полноценного и состоятельного послеоперационного рубца в данной группе (р=0,025) (табл. 1).
К 30 сут наблюдения в опытной группе морфологическая картина характеризовалась коллагенизацией зоны имплантации, ее организацией в зрелую соединительную ткань (рис. 6).
Рисунок 6 - внеклеточный матрикс ксенобрюши-ны, 30 сут. Структурные клетки волокнистых структур, значительно превалирующие над рассеянными единичными полиморфоноядерными лейкоцитами. Окр.: гематоксилином и эозином. Ув.: х200
В группе сравнения к 30 сут наблюдалась схожая морфологическая картина (рис. 7) с преобладанием стромальных клеток в клеточном инфильтрате.
Обе исследуемые группы к 30 сут характеризовались мелкоочаговой инфильтрацией гранулоцитарными, лимфоцитарными, плазматическими клетками и макрофагами, в среднем не превышающими 20% от общего количества клеток, как в опытной группе, так и в группе сравнения.
Также в обеих группах наблюдалось преобладание зрелой соединительной ткани (рис. 8) в корреляции с увеличением количества стромальных клеток в клеточном инфильтрате, что свидетельствует о формировании состоятельного соединительнотканного рубца в обеих группах. Количественное содержание стромальных клеток статистически достоверно увеличилось к 30 сут по отношению к начальным срокам наблюдения в обеих группах (р<0,05) (табл. 1, 2).Процесс ангиогенеза на 30 сут в обеих группах характеризовался наличием полнокровных сосудов со сформирован-
Рисунок 7 - «Permacol», 30 сут. Персистенция пролиферативной фазы с трансформацией в хроническое воспаление. Клетки волокнистых структур с персистенцией лимфоцитов и макрофагов, трансформированные в гигантские моногоядер-ные клетки. Окр.: гематоксилином и эозином. Ув.:х200
ной мышечной стенкой. В опытной группе количество сосудов в репрезентативном участке гистологического среза составило п=10,9±4,12, в группе сравнения -п=15,25±4,3, статистически значимых межгрупповых и внутригрупповых различий не выявлено ^>0,05) (табл. 3).
При оценке и сравнении морфологической картины зоны имплантации внеклеточного матрикса ксенобрюшины и ацеллюлярного дермального коллагена «Регтасо!» критерием благоприятного исхода имплантации в настоящем исследовании является формирование полноценного и состоятельного послеоперационного рубца в месте контакта имплантата с тканями передней брюшной стенки без признаков активного воспаления. Известно, что процессы альтерации (повреждения) клеток/ тканей посредством механических воздействий, в частности оперативных вмешательств с целью закрытия дефектов ткани ауто- или аллотрансплантатом, сопровождаются последующим стадийным развитием и сменой тканевых реакций (экссудативной и продуктивной),
Рисунок 8 - Зрелые волокнистые коллагеновые волокна с формированием зрелой рубцовой ткани, 30 сут. после имплантации: А - внеклеточный матрикс ксенобрюшины, В - «Permacol». Окр.: пикрофуксином по Ван-Гизону. Ув.: х100
итогом которых является полное и/или частичное восстановление структуры ткани. Так, экс-судативная реакция, являющаяся нормальным этапом регенерации тканей, и в среднем протекающая 7 сут, характеризуется преобладанием в клеточном инфильтрате гранулоцитар-ных лейкоцитов. В дальнейшем происходит уменьшение гранулоцитов, ассоциирующееся с повышением лимфоцитарных клеток, макрофагов, что характеризует стадию продуктивной реакции.
Анализ полученных данных показал, что при использовании внеклеточного матрик-са ксенобрюшины, происходит стадийно-специфическая смена тканевых реакций, характеризующая нормальный раневой процесс. В период между 5 и 21 сут, приблизительно к 10 сут после имплантации зарегистрирован переход экссудативной фазы в пролифератив-ную фазу раневого процесса с гистологическим и морфометрическим подтверждением созревания и формирования соединительнотканных волокон. К 30 сут послеоперационного периода наблюдалось формирование зрелой соединительной ткани. Количественный состав клеточного инфильтрата к 30 сут после имплантации статистически значимо изменился в сторону увеличения числа структурных стро-мальных клеток с обратно пропорциональным снижением клеток экссудативной и пролифе-ративной фаз воспалительно-регенераторного процесса в сравнении с начальными (5 сут) сроками наблюдения. Постимплантационный период применения ацеллюлярного дермаль-ного коллагена «Permacol» характеризуется более поздним переходом (к 20 сут) и сменой тканевых реакций с достоверно большим коли-
чеством клеток воспалительного инфильтрата на всех сроках послеоперационного наблюдения. Данное явление былорасценено как задержка смены экссудативной фазы в пролифе-ративную, и может свидетельствовать о перси-стенции реактивного воспалительного процесса на сроках до 21 сут. Формирование состоятельного соединительнотканного рубца в группе сравнения также, как и в опытной группе, завершилось к 30 сут после имплантации.
ВЫВОДЫ
При использовании внеклеточного мат-рикса ксенобрюшины для реконструкции передней брюшной стенки отмеченя более ранний переход экссудативной фазы в пролифе-ративную фазу раневого процесса, чем в группе сравнения, с гистологическим и морфомет-рическим подтверждением созревания и формирования соединительнотканных волокон (р<0,05).
Результаты применения внеклеточного матрикса ксенобрюшины демонстрируют адекватное течение раневого процесса в послеоперационный период на ранних сроках (до 30 сут) эксперимента, без выраженного постим-плантационного воспаления, с формированием полноценного и состоятельного соединительнотканного рубца в месте контакта имплантата с тканями передней брюшной стенки.
ЛИТЕРАТУРА
1 Отчет о НИР (промежуточ.) / Караг. гос. мед. унив-т; рук. Абатов Н.Т.; исполн.: Бадыров Р.М. [и др.]. - Караганда, 2015. - 67 с. - № ГР 0115РК00305. - Инв. № 0215РК02890.
2 Abdominal wall hernias: risk factors for infection and resource utilization /J. R. Dunne, D. L. Malone, J. K. Tracy, L. M. Napolitano //J. Surg. Res. - 2003. - №111. - P. 78-84.
3 Bello'n J. M. Biological prostheses: indications and usefulness in the repair of abdominal wall defect //Cir. Esp. - 2008. - №83. - P. 283289.
4 Flum D. R. Have outcomes of incisional hernia repair improved with time? A population-based analysis /D. R. Flum, K. Horvath, T. Koepsell //Ann. Surg. - 2003. - №237. - P. 129135.
5 Lo'pez-Cano M. Biological scaffolds in reparative surgery for abdominal wall hernias /M.
Lo'pez-Cano, M. Armengol-Carrasco //Am. J. Surg. - 2012. - №203. - Р. 555.
6 Luijendijk R. W. A comparison of suture repair with mesh repair for incisional hernia /R. W. Luijendijk, W. C. Hop, M. P. Van den Tol //N. Engl. J. Med. - 2000. - №343. - P. 392-398.
7 Repair of incisional hernia /J. P. Houck, E. B. Rypins, I. J. Sarfeh et al. //Surg. Gynecol. Obstet. - 1989. - №169. - P. 397-399.
Поступила 10.10.2017
R. M. Badyrov1, N. T Abatov1, M. M. Tussupbekova1, J. N. Albbertorf, I. K. Mussabekov1 ESTIMATION OF STRUCTURAL CHANGES OF THE IMPLANTATION AREA AFTER APPLICATION OF THE EXTRACELLULAR BOVINE-DERIVED PERITONEUM MATRIX FOR ABDOMINAL WALL RECONSTRUCTION IN THE EXPERIMENT
1 Karaganda state medical university (Karaganda, Kazakhstan),
2 Shaare Zedek Medical Center (Jerusalem, Israel)
A prototype of a new biological implant - extracellular bovine-derived peritoneum matrix for abdominal wall reconstruction was developed and obtained. The aim of this research was to study the structural changes in the implantation area of the extracellular bovine-derived peritoneum matrix with the tissues of the anterior abdominal wall in comparison with the «Permacol» biological implant at the early stages (up to 30 days) of the experiment. The features of the course of the wound process after the application of a new material were studied experimentally, the morphometry analysis of the implantation area was carried out. Statistically significant intragroup and intergroup differences (p<0,05) between the quantitative compositions of the cellular infiltrate in two groups were revealed. Based on the results of the experiment, the new biological implant at this stage demonstrates an adequate biocompatibility with organism, with the formation of a mature, consistent contact with tissues of the anterior abdominal wall and authentically minimal tissue inflammatory responses.
Key words: extracellular bovine-derived peritoneum matrix, Permacol, hernia of anterior abdominal wall, mor-phometry
Р. М. Бадыров1, Н. Т Абатов1, М. М. Тусупбекова1 , И. Н. Альбертон2, И. К. Мусабеков1 АЛДЫ^Ы КОРСАК КАБbPPFACblHЭКСПЕРИМЕНТБАРЫСЫНДА РЕКОНСТРУКЦИЯЛАУ YШIН ИМПЛАНТАЦИЯ AЙМAFЫНКСЕНО1ШАСТАРЖАСУША1Ш1Л1КМАТРИКСТ1КОЛДАНАННАНКЕЙ1НГ1 К¥РЫЛЫМДЫК ЭЗТЕР1СТЕР1Н БAFAЛAУ
1КараFанды мемлекеттк медицина университетi (Караанды, Казахстан), 2 Шаарей Цедек медициналыц орталыFы (Иерусалим, Израиль)
Биологиялык имплантаттын жана б1л1кт1 Yлгiсi - 1р1 кара малдын жасушаштк матрикс алдынры К¥рсаК кабыррасын реконструкциялау Yшiн эз1рленд1 жэне алынды. Бул зерттеудН мащсаты ксено1шастарды курсактын алдынры щабыррасынын т1ндер1не имплантациялау аймарындары курылымдык езгер1стерд1 «Permacol» биоимплантатымен эксперименттН ерте кезендер1нде (30 тэул1к) салыстыруды зерттеу болды. Жана материалды колданраннан кей1нп ерте арымнын ерекшел1ктер1 б1л1кт1 тэстмен зерттелд1, имплантация аймарынын морфометриялыщ анализ! жYргiзiлдi. Ею топтары жасушалык инфильтраттын сандыщ курамы арасындары статистикалык манызды топтыщ жэне топаралыщ айырмашылыщтар (p<0,05) аныщталды. Эксперимент нэтижелер1не CYЙене отырып, осы сатыда зерттеле™ материал макрорганизммен б1рге жетк1л1кт1 био^йлес1мдт1кт1 керсет1п, алдынры ш кабыррасынын т1ндер1мен жэне тYпнускалы минималды т1ндердщ кабыну реакцияларын калыптастыра отырып, жеттген, дэйект1 байланыс калыптастырады.
Шлт сездер: жасушадан тыс ксено1шастарлык матрикс, Permacol, алдынры 1ш кабыррасынын жарыры, морфометрия
