CC BY
20
8 Duane P. Bartholomew (2009). "'MD-2' Pineapple Transforms the World's Pineapple Fresh Fruit Export Industry" (PDF). Pineapple News 16: 2-5. Retrieved 3. 2014. - P 86.
9 Morton, Julia F (1987). "Pineapple, Ananas comosus". Retrieved 2011. - P 68.
Л.С.Кожамжарова, А.С.Кожамжарова, * З.Б.Есимсеиитова**
Таразский Государственный университет имени М.Х.Дулати *Казахский Национальный медицинский университет имени С.Д.Асфендиярова **Казахский национальный университет имени аль-Фараби
ТЕХНОЛОГИЯ ИНТОДУЦИРОВАНИЯ КУЛЬТУР ANANAS COMOSUS В ТЕПЛИЧНЫХ УСЛОВИЯХ
Резюме: В статье приведены технология интродуцирования в теплицах растения Ananas comosus. Первым начал выращивать Ананас страны, это Бразилия, но со временем люди научились создавать благоприятные условия для выращивания ананаса, в результате, по всему миру теперь можно встретить на плантации ананас. Ананас тропических растений, произрастающих в странах с горячим и влажным климатом, поскольку использование становится эффективным методом выращивания интодуцирленген состояния. Ключевые слова: Ananas comosus, хвощевой-розетка, вегетативная кома укоренения черенков, Porteanus,Variegatus.
L.S.Kozhamzharova, A.S.Kozhamzharova,* Z.B. Yesimseiitova **
M. Kh. Dulaty TarazState University *Asfendiyarov Kazakh National Medical University ** al-Farabi Kazakh National University
TECHNOLOGY OF INTANGING OF ANANAS COMOSUS CULTURES IN GREEN CONDITIONS
Resume: In the article the technology of cultivation in greenhouses of the plant Ananas comosus. First to plant Annesty country is Brazil, but over time people have learned to create favourable conditions for the cultivation of pineapple, as a result, around the world can now be seen on the plantation pineapple. Pineapple is a tropical plant grown in countries with hot and humid climate, as the use becomes an effective method of growing introducingthe state.
Keywords: Ananas comosus, homeway socket, vegetative coma rooting, Porteanus,Variegatus.
УДК:617.735-08:547.495.2
Э.Г. Канафьянова1, А.Ж.Аубакирова2,М.С.Аль-Асталь1, А.Ж. Алтаева1, С.Б. Нукибаева"
1АО «Казахский ордена «Знак почета» научно-исследовательский институт глазных болезней», Алматы, Казахстан 2Казахский национальный медицинский университет им.С.Д.Асфендиярова, кафедра офтальмологии, Алматы, Казахстан
ОРГАНИЗАЦИЯ ПРОВЕДЕНИЯ ЭКСПЕРИМЕНТА ДЛЯ ОБОСНОВАНИЯ ПРИМЕНЕНИЯ МОЧЕВИНЫ ПРИ ВИТРЕОРЕТИНАЛЬНОЙ
ПАТОЛОГИИ
В данной работе определяется оптимальный, безопасный и эффективный способ для индукции задней отслойки стекловидного тела при интравитреальном введении водного раствора мочевины.
Максимальное эффективное действие интравитреального введения водного раствора мочевины с целью индукции задней гиалоидной мембраны наблюдалось в группе с 6% дозировкой мочевины, однако данная дозировка оказала умеренное местно-раздражающее действие на ткани глаза после интравитреального введение. Развитие катаракты наблюдалось 33,4% случаев. В дозировках с 1,5% и 3% мочевины полная отслойка задней гиалоидной мембраны наблюдалась в 66,6% случаях, при этом в группе 3% раствора мочевины случаи катаракты отмечались чаще 2 раза по сравнению с 1,5% мочевиной. Введение 1% раствора мочевины приводила к полной отслойке задней гиалоидной мембраны в 50% случаев.
Водный раствор мочевины в дозировке 1,5% является оптимальным, безопасным и несомненно эффективным способом для
индукции задней отслойки стекловидного тела при интравитреальном введении.
Ключевые слова: мочевина, неферментный витреолизис, пролиферативная витреоретинопатия.
Задняя гиалоидная мембрана стекловидного тела, является первоначальным матриксом для роста пролиферативной ткани, играющей основную роль в патогенезе развития многих витреоретинальных патологий. Индукция задних слоев стекловидного тела играет важную роль в профилактике, лечении и стабилизации пролиферативного процесса при витреоретинальной патологии [1]. Клинические наблюдения показывают, что после полного удаления задней гиалоидной мембраны стекловидного тела в ходе витрэктомии новообразованные сосуды редуцируются, а рост фиброваскулярной ткани полностью прекращается [2,3].
Известны механические и биохимические способы индукции задней отслойки стекловидного тела. Так, механический способ индукции задней отслойки стекловидного тела от внутренней пограничной мембраны с помощью эндовитреальных инструментов обладает рядом недостатков: не обеспечивает полного удаления задних гиалоидных слоев стекловидного тела и, как следствие, наблюдается высокий риск развития ятрогенных
осложнений. В настоящее время большой интерес у хирургов вызывает биохимический метод, как менее травматичный в сравнении с механическим способом. Однако введение в стекловидное тело различных ферментативных агентов, лизирующих компоненты стекловидного тела, имеет ряд недостатков: токсичность, возникновение различных аутоиммунных реакций. Кроме того, ферментативные препараты в допустимой, не токсичной концентрации не вызывают отслоения стекловидного тела, что сдерживает их широкое клиническое использование [4,5].
Индукция отслойки задних слоев стекловидного тела с помощью фармакологического неферментного
витреолизиса является перспективным направлением в консервативном и хирургическом лечении пациентов с витреоретинальной патологией.
Цель. Разработать и обосновать в эксперименте новый способ неферментного витреолизиса для индукции задней отслойки стекловидного тела.
Материал и методы животных (кролики породы Шиншилла весом от 2,0 до 3,5
Экспериментальное интравитреальное введение препарата кг в возрасте 4-6 месяцев (таблица 1).
мочевины выполнено на 36-ти глазах 18-ти опытных
Таблица 1 - Распределение материала по группам исследования
Группа Вводимая доза мочевины и физиологический раствор Количество кроликов (глаз) Сроки наблюдения
1 OD - Urea 1 % -0.1мл 6(12) 1,7,14,30 суток, 3 и 6 месяцев
OS - Urea 1,5% -0.1мл
2 OD- Urea 3 % -0.1мл 6(12) 1,7,14,30 суток, 3 и 6 месяцев
OS- Urea 6 % -0.1мл
3 OD - NaCl 0,9% - 0.1мл 6(12) 1,7,14,30 суток, 3 и 6 месяцев
OS- Интактные глаза (контрольные)
Раствор для интравитреального введения готовят непосредственно перед инъекцией.
Для достижения медикаментозного мидриаза всем животным за 30 минут до интравитреального введения инстиллируется 1-2 капли раствора мидримакса. Анестезию осуществляется внутримышечным введением раствора ксиланит (1-3 мг/кг) и 3-х кратной инстилляцией в конъюнктивальную полость 1% раствора алкаина. После наложения векорасширителя под контролем бинокулярного офтальмоскопа в проекции плоской части цилиарного тела в 3-х мм от лимба тонкой инсулиновой иглой на шприце, не вскрывая конъюнктиву, выполняют сквозной прокол оболочек глаза и вводят в витреальную полость опытных глаз 0,1 мл раствора, содержащего различные концентрации мочевины. В контрольной группе в витреальную полость правого глаза вводят 0,1 мл 0,9% изотонического раствора ШС1, а левые глаза контрольной группы оставались интактными (табл. 1). Введение препарата осуществляют под визуальным контролем кончика иглы, который располагается в центральных отделах витреальной полости. Место прокола не герметизируется наложением шва. По завершению инъекции, в конъюнктивальную полость инстиллируют 0,5% раствора левомицетина и 0,1% раствора дексаметазона.
Для оценки структур глаза в динамике, до и после интравитреального введения мочевины, всем кроликам на 1,7,14, 30 сутки а также через 3 и 6 мясецов после начала эксперимента проводили биомикроскопию с помощью переносной щелевой лампы, глазное дно исследовали методом офтальмоскопии в обратном виде с помощью непрямого бинокулярного офтальмоскопа с использованием асферических линз, фотографирование глаз, ультразвуковое офтальмосканирование (В-сканирование) на 1,2,3 месяцах наблюдения. Выведение животных из эксперимента с последующим гистоморфологическим исследованием проведено по истечению 6 месяцев наблюдения. Результаты и обсуждение
После проведения интравитреальных инъекций различных концентраций водного раствора 1%, 1,5%, 3% и 6% мочевины, а также в контрольной группе после интравитреального введения 0,1 мл физиологического раствора в первые сутки отмечен кратковременный
блефароспазм в течение 2-3 минут с умеренной локальной гиперемией конъюнктивы в месте проведения инъекции. Биомикроскопическая и офтальмоскопическая картины непосредственно после интравитреальной инъекций мочевины большинства глаз была схожей с контрольной группой и обусловлена воздействием интравитреальной инъекции. При интравитреальном введении 1%,1,5%,3% и 6% раствора мочевины, а также в контрольной группе, стекловидное тело прозрачно без признаков экссудации и геморрагий, сетчатая оболочка прилежала, без признаков отека или отслойки, изменений со стороны сосудов сетчатки и диска зрительного нерва не отмечалось. Через сутки после инъекции биомикроскопическая картина большинства глаз оставалась практически прежней. Все глаза были спокойны, без признаков светобоязни, слезотечения, блефароспазма. Инъекции сосудов конъюнктивы не отмечалось. Роговица оставалась биомикроскопически прозрачной, все глаза были спокойны, признаки светобоязни, слезотечения, блефароспазма сохранялись в течение первых 2-3 минут после инъекции. Влага передней камеры была также прозрачной. При офтальмоскопии полость стекловидного тела была прозрачной без признаков ее отека, влага передней камеры была также прозрачной. Зрачок был правильной формы, в состоянии умеренного медикаментозного мидриаза. Офтальмоскопия заднего отрезка глаза через сутки после интравитреального введения 1,0%,1,5%,3% и 6% раствора мочевины, а также в контрольной группе в интактных глазах не выявила изменений. Витреальная полость была прозрачной. В контрольной группе в глазах с введенным 0,1 мл физиологическим раствором у 2-х животных выявлены единичные помутнения стекловидного тела. На 3- сутки у одного подопытного животного с дозировкой мочевины 3% отмечены помутнения хрусталика с оводнением хрусталиковых волокон и с подъемом внутриглазного давления, что может быть обусловлено возможным повреждением хрусталика при выполнении интравитреальной инъекции, после чего подопытное животное было выведено из эксперимента (рисунок 1) и заменено на новое с введением соответствующих дозировок мочевины в оба глаза.
Рисунок 1 - Передний отрезок на 3-сутки после интравитреального введения водного раствора мочевины 3% со вторичной
факолитической глаукомой.
На 30 сутки у 1 из опытных животных в глазах с дозировками мочевины 1% (рисунок 2), а также у 1-го с дозировкой 1,5% (рисунок 3), 2-х с дозировкой 3% (рисунок
4), а также у 2-х с дозировкой 6% (рисунок 5) наблюдались помутнения хрусталика различной степени.
Рисунок 2 - Передний отрезок на 30-ые сутки после интравитреального введения водного раствора мочевины 1%
Рисунок 3 - Передний отрезок на 30-ые сутки после интравитреального введения водного раствора мочевины 1,5%
Рисунок 4 - Передний отрезок на 30-ые сутки после интравитреального введения водного раствора мочевины 3%
Рисунок 5 - Передний отрезок на 30-ые сутки после интравитреального введения водного раствора мочевины 6%
Всем подопытным животным проведено ультразвуковое обследование глазных яблок на 1-2-3 месяцах наблюдения. Исследование осуществляли в режиме В-сканирования с использованием портативного компактного ультразвукового аппарата Accutome B-scan. Предварительно зафиксированным животным с нанесенным на область века проводниковым гелем с помощью ручки-наконечника проводили сканирование через верхнее веко (таблица 2).
Таблица 2 - Ультразвуковая картина через 1 месяц наблюдения
Группа Глаз/ вводимая доза мочевины и физ.р-р Нет отслойки ЗГМ(глаз/%) Частичная отслойка ЗГМ (глаз/%) Полная отслойка ЗГМ (глаз/%)
1 OD - Urea 1 % -0.1мл 4(66,6%) 2 (33,4%) -
OS- Urea 1,5% -0.1мл 3(50%) 3 (50%) -
2 OD- Urea 3 % -0.1мл 2(33,4%) 4(66,6%) -
OS- Urea 6% -0.1мл 3(50%) 2(33,4%) 1(16,7%)
3 OD - NaCl 0,9% -0.1мл 6(100%) - -
OS - интактный глаз 6(100%) - -
Как видно из таблицы 2, через 1 месяц после интравитреального введения водного раствора мочевины, частичная отслойка задней гиалоидной мембраны выявлена в группах с дозировкой мочевины 1%, 1,5%, 3% и 6%, кроме контрольной (рисунок 6,7,8).
Рисунок 6 - Ультразвуковая картина подопытного животного из контрольной группы после интравитреального введения 0,1 мл 0,9%
раствора
Рисунок 7 - Ультразвуковая картина подопытного животного из группы после интравитреального введения водного раствора 1%
мочевины
Полная отслойка ЗГМ отмечена лишь у одного подопытного кролика с дозировкой мочевины 6% (рисунок 8).
Рисунок 8 - Ультразвуковая картина подопытного животного из группы после ИВВ водного раствора 6% мочевины
Результаты ультразвукового исследования через 2 месяца после интравитреального введения различных концентраций водного раствора мочевины представлены в таблице 3.
Таблица 3 - Ультразвуковая картина через 2 месяца наблюдения
Группа Глаз/ вводимая доза мочевины и физ. р-р Нет отслойки (глаз/%) Частичная отслойка ЗГМ (глаз/%) Полная отслойка ЗГМ (глаз/%)
1 OD - Urea 1 % -0.1мл 3(50%) 2(33,4%) 1 (16,7%)
OS- Urea 1,5% -0.1мл 2(33,3%) 3(50%) 1 (16,7%)
2 OD- Urea 3 % -0.1мл 2(33,4%) 2(33,4%) 2(33,2%)
OS- Urea 6% -0.1мл 1(16,7%) 3(50%) 2(33,4%)
3 OD - NaCl 0,9% -0.1мл 6(100%) - -
OS - интактный глаз 6(100%) - -
Как видно из таблицы 3, через 2 месяца после интравитреального введения водного раствора мочевины, отмечено увеличение частоты частичной отслойки задней гиалоидной мембраны в группах с дозировкой мочевина 1%, 1,5%, 3% и 6%, выявлено также полная отслойка задней гиалоидной мембраны во всех группах, кроме контрольной, с наибольшей частотой в группе с дозировкой мочевины 3% и 6%.
Результаты ультразвукового исследования через 3 месяца после интравитреального введения различных концентраций водного раствора мочевины представлены в таблице 4.
Таблица 4 - Ультразвуковая картина через 3 месяца наблюдения
Группа Глаз/ вводимая доза мочевины и физ. р-р Нет отслойки (глаз/%) Частичная отслойка ЗГМ (глаз/%) Полная отслойка ЗГМ (глаз/%)
1 OD - Urea 1 % -0.1мл 1 (16,7%) 2(33,3%) 3 (50%)
OS- Urea 1,5% -0.1мл - 2(33,4%) 4 (66,6%)
2 OD- Urea 3 % -0.1мл - 2(33,4%) 4(66,6%)
OS- Urea 6% -0.1мл - 1(16,7%) 5(83,3%)
3 OD - NaCl 0,9% -0.1мл 6(100%) - -
OS - интактный глаз 6(100%) - -
Как видно из таблицы 4, через 3 месяца после интравитреального введения водного раствора мочевины, наблюдается увеличение частоты полной отслойки задней гиалоидной мембраны во всех группах с дозировкой мочевины 1% и 1,5%, 3%, 6%, кроме контрольной (рисунок 9Д0Д1). _
Рисунок 9 - Ультразвуковая картина подопытного животного из группы после интравитреального введения водного раствора 1%
мочевины (полная отслойка задней гиалоидной мембраны)
Рисунок 10 - Ультразвуковая картина подопытного животного из группы после интравитреального введения водного раствора 1,5%
мочевины (полная отслойка задней гиалоидной мембраны)
Рисунок 11 - Ультразвуковая картина подопытного животного из группы после интравитреального введения водного раствора 3%
мочевины (полная отслойка задней гиалоидной мембраны)
Таким образом, максимальное эффективное действие интравитреального введения водного раствора мочевины с целью индукции
задней гиалоидной мембраны наблюдалось в группе с 6% дозировкой мочевины, однако данная дозировка оказала умеренное местно-раздражающее действие на ткани глаза. Развитие катаракты наблюдалось 33,4% случаев. В дозировках с 1,5% и 3% мочевины полная отслойка задней гиалоидной мембраны наблюдалась в 66,6% случаях, при этом в группе 3% раствора мочевины случаи катаракты отмечались чаще 2 раза по сравнению с 1,5% мочевиной. Введение 1% раствора мочевины приводила к полной отслойке задней гиалоидной мембраны в 50% случаев. Выводы:
Водный раствор мочевины в дозировке 1,5% является оптимальным, безопасным и несомненно эффективным способом для индукции задней отслойки стекловидного тела при интравитреальном введении.
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1 Шмыков А.В. Индукция задней отслойки стекловидного тела в хирургическом лечении отслойки сетчатки// Дисс... канд. мед. наук. - Москва, 2014. - 143с.
2 Aniz Girach, Steve Pakola Vitreomacular Interface Diseases // Pathophysiology, Diagnosis and Future Treatment Options Expert Rev Ophthalmol. - 2012. 7(4). - P. 311-323.
3 Tsui I., Pan C.K., Rahimy E., Schwartz S.D. Ocriplasmin for itreoretinal diseases // J Biomed Biotechnol. - 2012; 2012:354979. doi: 10.1155/2012/354979. Epub 2012 Oct
4 Talman, L. S. Longitudinal study of vision and retinal nerve fiber layer thickness in multiple sclerosis / Talman L. S. [et al.] // Ann. Neurol. — 2010. — Vol. 67, is.6. — P. 749-760.
5 Жургумбаева Г.К. Витреосинеретик «Vitrenal» в хирургии пролиферативной витреоретинопатии при отслойке сетчатки: Дисс...канд. мед. наук. - Алматы, 2009. - 79 c.
Э.Г. Канафьянова1, А.Ж.Аубакирова2,М.С.Аль-Асталь1, А.Ж. Алтаева1, С.Б. Нукибаева2
1 «Казац квз аурулары «Курмет белг!с1» ордендi гылъти зерттеу институты» АК, Алматы, Казацстан «СЖ.Асфендияров атындагы Казац ¥лттыц медицина университетi», офтальмология кафедрасы, Алматы, Казахстан
ВИТРЕОРЕТИНАЛЬЩ ПАТОЛОГИЯ КЕЗ1НДЕ НЕСЕПНЭРД1 ЩЛДАНУДЫ НЕГ1ЗДЕУ УШ1Н ТЭЖ1РИБЕ ЖУРПЗУД1
¥ЙЫМДАСТЫРУ
TyWh: Бул жумыста шыны тэр1зд дененщ арт;ы ажырауын тудыру ушш интравитреалды енпзуде несепнэрдщ сулы ертндкшщ оптимум, ;аушйз молшер1 жэне тшмд1 эдта аньщталады.
Несепнэрдщ сулы ертндкш арт;ы гиалоидты мембрана ажырату ма;сатында енпзудщ ец нэтижел1 эсер1 несепнэрдщ 6% молшерл1 тобында бай;алды, алайда осы молшерд1 интравитреалды енпзгеннен кешн коз тшдерше орташа жергШкт1-ттркенд1рпш эсер еттг Катарактаныц дамуы 33,4% жагдайда кездестг Несернэрдщ 1,5% жэне 3% молшерлершде арт;ы гиалоидты мембрананыц толы; ажырауы 66,6% жагдайда кездесп, осы кезде несепнэрдщ 3% ертндта тобында несепнэрдщ 1,5% ертнд1й тобымен салыстырганда катаракта 2 есе жшрек кездескен. Несепнэрдщ 1% ертндкш енг1зу арт;ы гиалоидты мембрананыц толы; ажырауына 50% жагдайда алып келд1.
Несепнэрд1ц сулы ертндкшщ 1,5% молшер1 шыны тэр1зд1 денен1ц арт;ы ажырауын тудыру ушш интравитреалды енпзуде оптимум, ;аушйз жэне ец тшм,щ эд1с болып табылады.
ТYЙiндi свздер: несепнэр, ферментт1 емес витреолизис, пролиферативт1 витреоретинопатия.
E.G. Kanafyanova1, A.Zh. Aubakirova2, M.S. Al-Astal1, A.Zh. Altaeva1, S.B. Nukibaevа2
1JSC Kazakh Awards «Badge of Honor» research institute of eye diseases, Almaty, Kazakhstan 2Kazakh National Medical University named after S.D. Asfendiyarov, Department of Ophthalmology, Almaty, Kazakhstan
ORGANIZATION OF THE EXPERIMENT FOR RATIONALE OF URINARY USE IN VITREORETHINAL PATHOLOGY
Resume: In this paper an optimal, safe and effective method for inducing the posterior detachment of the vitreous humus when intravitreal administration of an aqueous urea solution is determined.
Maximum effective intravitreal injection of an aqueous solution of urea for the purpose of induction of the posterior hyaloid membrane was observed in the group with 6% dose of urea,
however, this dose had a moderate local irritant effects of the eye tissue after intravitreal injection. The development of cataracts was observed in 33.4% of cases. In dosages of 1.5% and 3% urea complete detachment of the posterior hyaloid membrane was observed in 66.6% of cases, while in group 3% urea solution cases of cataracts were observed more than 2 times compared with 1.5% urea. The introduction of a 1% solution of urea leads to the complete detachment of the posterior hyaloid membrane in 50% of cases. Aqueous urea solution in a dosage of 1.5% is the optimal, safe and undoubtedly effective way for inducing posterior detachment of vitreous body with intravitreal.
Keywords: urea, nonfermental vitreolysis, proliferative vitreoretinopathy.
