CC BY
20
ОРИГИНАЛЬНЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
Опыт применения аутологичной эритроцитной массы ив пуповинной крови у новорожденных с гастрошизисом в послеоперационном периоде
К. В. Титков, О.В. Теплякова, Ю.Л. Подуровская,
A.А. Буров, Т.А. Федорова, О.В. Рогачевский, Д.Н. Дегтярев,
B.В. Зубков
ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва
Цель. Оценить клиническую эффективность применения аутоэритроцитной массы из пуповинной крови для коррекции анемии у новорожденных с гастрошизисом в послеоперационном периоде.
Методы. Трансфузия отмытой аутоэритроцитной массы из пуповинной крови проводилась после специальной подготовки. Забор крови осуществлялся после извлечения ребенка и пересечения пуповины закрытым способом путем пункции вены дистального (плацентарного) конца пуповины дренажной иглой, входящей в состав специальной трансфузионной системы. Далее аутологичная пуповинная кровь в маркированных контейнерах передавалась в отделение гравитационной хирургии крови, где она закладывалась на хранение при температуре +4 °С на 21 день в целях ее дальнейшей обработки и трансфузии по показаниям. Непосредственно перед аутотрансфузией пуповинная кровь разделялась путем центрифугирования на эритроцитную массу и плазму. Затем аутоэритроцитная масса подвергалась отмывке в стерильном физиологическом растворе и фильтрации через микроагрегатный фильтр. Маркированный пакет с отмытой аутоэритроцитной массой передавался в отделение хирургии новорожденных в целях дальнейшей ауто-трансфузии по показаниям. Трансфузия аутоэритроцитов проводилась согласно действующим на момент проведения работы приказам Минздрава России: от 25 ноября 2002 г. № 363 «Об утверждении Инструкции по применению компонентов крови» и от 2 апреля 2013 г. № 183н «Об утверждении правил клинического использования донорской крови и (или) ее компонентов».
Результаты. В отделении хирургии, реанимации и интенсивной терапии новорожденных ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России с 2007 по 2015 г. в целях коррекции анемии проведена аутотрансфузия отмытой эритроцитной массы из пуповинной крови 21 новорожденному с гастрошизисом.
Во всех случаях никаких посттрансфузионных реакций у детей не отмечалось. У большинства (81%) детей объем заготовленной и перелитой аутоэритроцитной массы был достаточным для купирования анемии, и только 19% новорожденных с анемией в дальнейшем потребовались дополнительные трансфузии донорской эритроцитной массы. В результате трансфузии, по данным клинического анализа крови, уровень показателей гемоглобина и гематокрита у таких новорожденных имел тенденцию к росту, значения биохимического анализа крови и общего анализа мочи оставались в пределах возрастной нормы.
Заключение. Использование аутоэритроцитной массы из пуповинной крови в послеоперационном периоде у новорожденных с гастрошизисом позволит расширить возможности инфузионно-трансфузионной терапии у детей данной категории, являясь, по сути, единственной сравнимой по эффективности и наиболее безопасной альтернативой применению компонентов донорской крови.
Ключевые слова:
новорожденный, гастрошизис, ауто-гемотрансфузия, аутоэритроцитная масса из пуповинной крови, хирургия новорожденных
Experience of autologous packed red blood cells administration from umbilical blood of newborns with gastroschisis in postoperative period
K V Titkov O V Teptyakova V.I. KuLakov Obstetrics, Gynecology and Perinatology Research
Yu L Podurovskaya A A Burov Center of Ministry of Healthcare of the Russian Federation, Moscow T.A. Fedorova, O.V. Rogachevskiy, D.N. Degtyarev, V.V. Zubkov
Aim. Assess the clinical efficacy of autologous packed red blood cells administration from umbilical blood for anemia correction in newborns with gastroschisis in postoperative period.
Methods. Transfusion of washed autologous packed red blood cells administration from umbilical blood was performed after special training. Blood sampling was carried out after delivery of a child and closed technique omphalotomy by a vein puncture distal (placental) end of a navel by the drainage needle which is a part of special transfiusion system. Further autologous umbilical blood in the marked containers was pitched in branch of gravitational surgery of blood and then it was put on storage at +4 °C for 21 day for further analysis and transfusion. Directly ahead of autotransfusion umbilical blood was pitched in branch of gravitational surgery of blood where its centrifiugal separation on erythrocyte mass and plasma was made. Then concentrated red cells was exposed to washing out in sterile physiological solution and a filtration through the micromodular filter. Then the marked package with the washed erythrocytes was pitched in branch of surgery of newborns for the purpose of further autotransfusion under indications. The transfusion autoerythrocytes was made according to reacting at the moment of carrying out of work to orders of Ministry of Health of the Russian Federation: to the Order of Ministry of Health of the Russian Federation from November, 25th, 2002 No 363 "About the statement of the Instruction on application of components of blood" and to the Order of Ministry of Health of the Russian Federation from April, 2nd, 2013 N 183n «About the statement of rules of clinical use of donor blood and (or) its components».
Results. In the department of surgery, intensive care and Newborn Intensive Care Unit of «Research Center for Obstetrics, Gynecology and Perinatology» in the period from 2007 to 2015 for the purpose of anemia correction autotransfusion of washed packed red blood cells from umbilical blood of 21 newborns with gastroschisis was made. In all cases, there were no post-transfusion reactions in children. In the majority (81%) of cases volume of prepared and transfused autologous packed red blood cells was sufficient for anemia relief, and only 19% of infants with anemia further required additional transfusions of donated red blood cells. As a result of transfusion, according to clinical blood analysis data, hemoglobin and hematocrit levels trended upward, values of biochemical blood assay and common urine examination were within the expected range for age.
Conclusion. Autologous packed red blood cells administration from umbilical blood of newborns with gastroschisis in postoperative period will increase infusion-transfusion treatment options in children of this category, being, in fact, the only comparable in effectiveness and the most safe donated blood alternative.
Keywords:
newborn, gastroschisis, autologous blood transfusion, autologous packed red blood cells from umbilical blood, surgery in newborns
В структуре пороков развития новорожденных, в том числе недоношенных, одно из ведущих мест занимает гастрошизис [1-4].
Гастрошизис - порок развития передней брюшной стенки, при котором через дефект ее мягких тканей эвентрируют органы брюшной полости. Частота встречаемости в среднем составляет от 1:1500 до 1:5000 живорожденных детей [5-8].
Благодаря активному внедрению пренатальной ультразвуковой диагностики в клиническую практику выявление гастрошизиса у плода возможно начиная с 13-й недели ге-стации. Однако, несмотря на раннюю пренатальную выявля-емость заболевания и готовность медицинского персонала к рождению ребенка с данным пороком развития, смертность в группе новорожденных с гастрошизисом в отдельных странах Африки и Европы варьирует от 6,5 до 45%, а в отдельных регионах достигает 95%, тогда как в ведущих мировых клиниках этот показатель остается в пределах 3-10% [8-15].
Лечение новорожденных с гастрошизисом - одна из сложных задач в неонатологии, включая оперативное вмешательство и интенсивную терапию в послеоперационном периоде. Учитывая накопленный опыт, предложены различные варианты хирургической коррекции данного порока, однако в интенсивной терапии детей с гастрошизисом в настоящее время актуальным остается ряд вопросов. В частности одной из задач послеоперационного периода у этой категории новорожденных детей является коррекция анемии.
Традиционно проблема восполнения кровопотери и коррекции анемии у новорожденных с пороками развития в послеоперационном периоде решалась за счет эритро-цитсодержащих компонентов донорской крови. Многочисленные и широко известные исследования доказали отрицательные стороны трансфузии компонентов аллогенной донорской крови новорожденным: опасность заражения вирусными инфекциями, возможность развития тяжелых гемотрансфузионных осложнений, метаболические реак-
ции, значительные сдвиги в клеточном и гуморальных звеньях иммунитета, подавление собственного эритропоэза, значительное несоответствие биохимического состава крови новорожденных и взрослых. Актуальность приобретают проблемы религиозного, этического и правового характера, связанные с трансфузией аллогенной крови и ее компонентов [16].
Эти факторы, свидетельствующие о небезопасности донорской гемотрансфузии, потребовали переоценки показаний к ней. Вместе с тем возникла необходимость в поиске, разработке и внедрении эффективных альтернативных методов кровесбережения у новорожденных. Однако те методики аутодонорства, которые хорошо зарекомендовали себя при хирургических вмешательствах у взрослых (предоперационная заготовка крови, нормоволемическая гемодилюция, интраоперационная реинфузия аутоэритроци-тов), в периоде новорожденности использовать невозможно в силу объективных причин, связанных с техническими ограничениями сбора и обработки малых объемов крови. Исходя из этих реалий актуален и вполне обоснован выбор принципиально иного подхода к аутогемотрансфузиям у новорожденных - применению аутологичной эритроцит-ной массы из пуповинной/плацентарной крови в терапии анемии, поскольку использование аутопуповинной крови не вызывает осложнений, присущих переливанию компонентов донорской крови [17-22].
Материал и методы
В данное исследование включен 31 новорожденный с диагнозом «гастрошизис», у которого в послеоперационном периоде проводилась коррекция анемии аутологичной или/и донорской эритроцитной массой. Все дети наблюдались в отделении хирургии, реанимации и интенсивной терапии новорожденных ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России (ОХРИТН) с 2007 по 2015 г. Во всех случаях диагноз «гастрошизис» был установлен внутриутробно. Все дети поступали в ОХРИТН сразу после рождения из родильных отделений Центра. В исследование были включены только те новорожденные, законные представители которых подписали утвержденное этическим комитетом Центра информированное согласие на проведение данного исследования и процедуру переливания компонентов крови, в том числе аутологичных.
Все новорожденные с гастрошизисом были распределены в 2 группы. В 1-ю группу вошли дети (п=21), получившие трансфузию аутоэритроцитной массы из пуповинной крови, во 2-ю (п=10) - донорскую эритроцитную массу. По тендерному признаку в 1-й группе преобладали девочки, во 2-й -мальчики. Количество недоношенных детей во 2-й группе было больше, чем в 1-й. По антропометрическим показателям существенных различий не выявлено. Данные представлены в табл. 1.
Каждая группа новорожденных с гастрошизисом включала детей с наличием висцероабдоминальной диспропорции: в 1-й группе таких новорожденных было 4 (19%), во 2-й -1 (10%). Висцероабдоминальная диспропорция - состояние, при котором объем эвентрированных органов значительно больше размера брюшной полости, что исключает возможность выполнить одноэтапную операцию. В связи с этим формируется временная брюшная полость и проводится отсроченная пластика передней брюшной стенки в среднем на 3-5-е сутки после первой операции. В нашем исследовании 4 детям из 5 потребовалось 2 оперативных вмешательства, в 1 случае - оперативное лечение было выполнено в 3 этапа в связи со значительной диспропорцией.
Основанием для заготовки аутологичной пуповинной крови стало наличие у новорожденного антенатально диагностированного порока развития (гастрошизис), требующего хирургической коррекции, и подписанного законным представителем ребенка информированного согласия на заготовку пуповинной аутокрови.
Противопоказания к заготовке аутологичной пуповин-ной крови:
■ со стороны матери - наличие особо опасных инфекций (гепатита А, В, С и др., ВИЧ, сифилиса), острого инфекционно-воспалительного или септического процесса любой локализации, а также признаков хо-рионамнионита по данным УЗИ;
■ со стороны плода - наличие гемолитической болезни любой степени тяжести при конфликте по системам группы крови АВ0 и/или резус, наличие пороков развития, не совместимых с жизнью, онкологические заболевания (бластомы).
Критерии включения в исследование
Новорожденные с гастрошизисом, в том числе с висце-роабдоминальной диспропорцией, нормальными значени-
Таблица 1. Клинические характеристики новорожденных
Характеристика 1-я группа (п=21) 2-я группа (п=10)
1 абс. % 1 абс. %
Пол
Мальчики 9 42,8 6 60
Девочки 12 57,2 4 40
Срок гестации
Доношенные 11 52,4 4 40
Недоношенные 10 47,6 6 60
Антропометрические показатели*
Масса, г 2734±131 2639±129
Длина, см 48,2±2,3 46,4±2,1
* Для антропометрических данных приведены средние значения и доверительный интервал, а=0,05.
Таблица 2. Показания к переливанию эритроцитной массы новорожденным в ОХРИТН
Значение Значение Клиническая ситуация
гемоглобина, гематокрита, и состояние новорожденного
г/л л/л
<150 <0,45-0,50 Процедура экстракорпоральной мембранной оксигенации Врожденный порок сердца «синего типа»
<130 <0,40-0,45 Потеря 10% ОЦК за 1 нед с нарушенной доставкой О2 в ткани: с острым кровотечением, персистирующими фетальными коммуникациями, респираторными нарушениями или болезнями легких, заболеваниями сердца или дисфункциональными гемоглобинопатиями
<120 <0,30-0,35 Спонтанное дыхание с дотацией O2 >35% в кислородную палатку или кювез Режим пСРАР и/или ИВЛ в режиме IMV с MAP >6-8 см вод.ст. Первые 24 ч жизни Послеоперационный период на 2-й неделе жизни
<110 <0,30-0,35 Плановое оперативное вмешательство Послеоперационный период на ИВЛ или на 1-й неделе жизни
<100 <0,30 Стабильный доношенный или недоношенный новорожденный с наличием по крайней мере одного из следующих состояний: - зависимость от O2, тахипноэ (ЧД >80 в минуту более суток), усиленная работа дыхания, усиление респираторной поддержки или невозможность снижения респираторной поддержки; - апноэ (более 6 эпизодов за 12 ч или 2 эпизода за 24 ч, требующих масочной ИВЛ на фоне приема метилксантина); - тахикардия (устойчивая ЧСС >180 в минуту в течение 24 ч); - низкая прибавка в массе тела (<10 г в сутки в течение 4 дней при дотации >100 ккал/кг в день), снижение аппетита, активности или другие знаки/симптомы, связанные со снижением оксигенации, вялость, сонливость
<70 >0,20 Стабильный ребенок без симптомов анемии и количеством ретикулоцитов <5%
ями гемоглобина и гематокрита при рождении и клинико-лабораторными признаками анемии в послеоперационном периоде.
Критерии исключения из исследования
Новорожденные с гастрошизисом при наличии сопутствующего диагноза «атрезия кишечника», дети с исходно низким уровнямим гемоглобина и гематокрита при рождении, наличием септического процесса, развившегося внутриутробно, клинически и лабораторно подтвержденной гемолитической болезни по системам группы крови АВ0 и/или резус.
Методика заготовки, хранения и предтрансфузионной обработки пуповинной крови
После извлечения ребенка и пересечения пуповины осуществлялся сбор пуповинной крови закрытым способом путем пункции вены дистального (плацентарного) конца пуповины дренажной иглой, входящей в состав специальной трансфузионной системы. Кровь самотеком поступала в стерильный контейнер. Далее аутологичную пуповинную кровь в маркированных контейнерах передавали в отделение гравитационной хирургии крови, где ее взвешивали и закладывали согласно групповой принадлежности на хранение в медицинский холодильник при постоянной средней температуре 4 °С (3-5 °С) на 21 день в целях ее дальнейшей обработки и трансфузии по показаниям. Пригодными для получения аутологичной эритроцитной массы являлись образцы цельной пуповинной крови массой не менее 60 г.
По истечении срока годности неиспользованные образцы утилизировали. На этом этапе также проводили бактериологическое исследование образцов пуповинной крови.
На следующем этапе по показаниям к переливанию новорожденному эритроцитсодержащего компонента крови образец цельной пуповинной крови подвергался фракционированию путем центрифугирования на эритроцитную массу и плазму. Затем образцы аутоэритромассы проходили процедуру отмывки в стерильном физиологическом растворе путем центрифугирования с последующей фильтрацией через микроагрегатный фильтр, после чего все образцы отмытой аутологичной эритроцитной массы из пуповинной крови проходили второй этап контроля качества - определение степени гемолиза эритроцитов в образце путем анализа на свободный гемоглобин. При определении низкой (менее 1%) степени гемолиза эритроцитов образцы считались годными для применения. Контейнер с отмытыми аутоэритроцитами со сроком годности 24 ч маркировали этикеткой, содержащей фамилию, имя, отчество матери, номер истории болезни, группу крови матери, группу крови ребенка, дату и время отмывания эритроцитов, массу продукта, подпись врача, ответственного за обработку образца, и передавали в ОХРИТН для проведения аутотрансфузии [23].
Методика аутотрансфузии эритроцитной массы из пуповинной крови
Показания к использованию аутологичной эритроцитной массы не отличались от таковых для трансфузий донор-
ских компонентов крови, согласно действующим на момент исследования приказам Минздрава России от 25 ноября 2002 г. № 363 «Об утверждении Инструкции по применению компонентов крови» и от 2 апреля 2013 г. № 183н «Об утверждении правил клинического использования донорской крови и (или) ее компонентов».
В соответствии с данными приказами, а также отечественными [16, 24] и зарубежными руководствами по трансфузионной терапии в неонатологии [25-29] были разработаны показания к переливанию эритроцитной массы новорожденным в ОХРИТН на основании таких критериев, как уровень гемоглобина и гематокрита крови и клиническое состояние ребенка в пред- и послеоперационном периоде (табл. 2).
Объем переливаемых отмытых эритроцитов рассчитывали по формуле:
Целевое значение Hb (г/дл) -актуальный Hb (г/дл) х массу (кг) х 3,
[16]
где НЬц - целевое значение гемоглобина, НЬа - актуальное значение гемоглобина.
Критерии оценки эффективности и безопасности гемотрансфузий
Эффективность гемотрансфузий определялась динамикой лабораторных показателей и клинического состояния ребенка.
Наиболее важным лабораторным критерием эффективности было достижение целевых значений гематокрита и гемоглобина. Помимо этих данных учитывалась динамика общего состояния новорожденного, связанного с коррекцией гемической гипоксии: нормализация перфузии, кислотно-основного состояния (КОС) и газов крови, ЧСС, коррекция ацидоза, снижение степени зависимости детей от респираторной поддержки. Учитывались случаи повторных гемотрансфузий у наблюдавшихся в отделении детей в периоде новорожденности, не связанные с повторными оперативными вмешательствами. Подсчитывались сроки пребывания (койко-дни) детей исследуемых групп в стационаре.
Критериями безопасности гемотрансфузий служили: стабильность мониторируемых показателей гемодинамики, КОС и газовый состав крови, термостабильность, отсутствие аллергических реакций и признаков гемолиза в первые 24 ч после переливания эритроцитной массы. Дополни-
тельно в посттрансфузионном периоде проводилась ПЦР-диагностика новорожденного для исключения основных гемотрансмиссивных инфекций.
Статистический анализ проводился на нерандомизированной выборке, сформированной из двух групп пациентов, получавших в качестве трансфузии компонентов крови ауто-логичные отмытые эритроциты пуповинной/плацентарной крови (1-я группа) и получавших в качестве трансфузии компонентов крови аллогенные отмытые эритроциты взрослых доноров (2-я группа).
Базу данных формировали на персональном компьютере с помощью электронных таблиц в Microsoft Excel из пакета MS Office 2013.
Для статистической обработки данных использовалась программа StatSoft Statistica 10 (StatSoft Inc., США).
При проведении сравнительного анализа количественных данных в исследуемых группах при нормальном виде распределения данных определяли среднее значение со стандартным отклонением и доверительным интервалом на уровне значимости 0,05.
Для установления статистической достоверности различий средних значений в группах применяли методы параметрической статистики - t-критерий Стьюдента (t-тест для сравнения данных в 2 независимых выборках).
Для уменьшения ошибки выборки использовались строгие критерии отбора пациентов. Для уменьшения информационной ошибки исследования использовались одни и те же методы диагностики (на базе одних и тех же лабораторий) для всех пациентов.
Результаты и обсуждение
Результаты работы показали, что у 17 детей в 1-й группе (81% случаев) объем заготовленной и перелитой ауто-эритромассы был достаточным для купирования анемии и восстановления нормальных (целевых) показателей гемоглобина и гематокрита. Дополнительные трансфузии донорских эритроцитов потребовались 4 новорожденным (19%) новорожденным в 1-й группе и 3 детям (30%) во 2-й.
В среднем объем перелитых эритроцитов в 1-й группе составил 30,8 мл (от 10 до 55 мл) , во 2-й - 45,4 мл (от 26 до 80 мл), что в пересчете на массу тела составило соответственно 12,7 и 21,3 мл/кг.
Уровень гемоглобина перед трансфузией аутологичной эритромассы составлял в среднем 103,2 г/л, гематокрита -0,30 л/л, во 2-й группе - соответственно 97,2 и 0,26 л/л (табл. 3).
Таблица 3. Динамика уровня гемоглобина в наблюдаемых группах
Группа Уровень гемоглобина, г/л
до трансфузии на 1-е сутки на 1-й неделе на 2-й неделе на 3-й неделе
после трансфузии после трансфузии после трансфузии после трансфузии
1-я 103,21±8,63 137,50±5,73 131,95±5,52 129,26±5,26 130,94±7,38
2-я 97,24 ±9,68 142,50±6,38 133,96±7,58 128,80±9,03 131,13±5,96
Достоверность различий н/д ** * н/д н/д
Примечание. * - уровень значимости 0,1; ** - уровень значимости 0,05; *** - уровень значимости 0,01; н/д - различие недостоверно.
В первые сутки после переливания значения гемоглобина и гематокрита у новорожденных в обеих группах имели закономерную тенденцию к росту с последующим плавным снижением показателей в течение 2 нед, показатели общего анализа крови, биохимического анализа крови и общего анализа мочи оставались в пределах возрастной нормы. Достоверных различий между группами в показателях гемодинамики, респираторного статуса, КОС и газового состава крови после трансфузии не отмечалось. Достоверно значимых различий по времени пребывания в стационаре и срокам введения энтерального питания не выявлено.
У новорожденных в обеих группах не отмечалось пост-трансфузионных реакций и осложнений.
Полученные нами результаты исследования во многом совпадают с ранее опубликованными работами зарубежных авторов. В частности наш опыт подтверждает вывод коллег о возможности и безусловной целесообразности применения аутоэритроцитной массы из пуповинной крови у новорожденных с пороками развития, требующими ранней оперативной коррекции [20-22]. Наши результаты демонстрируют высокую эффективность применения малых объемов (12,7 мл/кг) аутоэритроцитов, которая сопоста-
вима с эффективностью относительно больших объемов (21,3 мл/кг) донорской эритромассы, традиционно используемых в неонатальной хирургии.
Заключение
Приведенные результаты исследования позволяют сделать вывод о том, что использование аутоэритроцитной массы из пуповинной крови в терапии анемии в послеоперационном периоде у новорожденных с гастрошизисом перспективно и позволяет расширить возможности инфузионно-трансфу-зионной терапии у детей этой категории, являясь наиболее доступной, безопасной и эффективной альтернативой применению компонентов донорской крови. Внедрение в практику аутотрансфузий позволит сократить частоту переливаний донорских компонентов крови, обеспечивая тем самым значительное снижение риска посттрансфузионных осложнений.
Вместе с тем требуют совершенствования технологии сбора, обработки и хранения пуповинной крови для максимального увеличения объема ее заготовки и обеспечения ее качества, а также необходимы дальнейшая разработка и совершенствование локальных протоколов гемотрансфу-зий новорожденным.
СВЕДЕНИЯ О ВЕДУШИХ АВТОРАХ
Титков Константин Валентинович - врач анестезиолог-реаниматолог, специалист симуляционно-тренингового центра ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва Е-таН: [email protected]
Теплякова Ольга Викторовна - анестезиолог-реаниматолог, специалист симуляционно-тренингового центра ФГБУ «Научный центр акушерства, гинекологии и перинатологии им. акад. В.И. Кулакова» Минздрава России, Москва Е-таН: [email protected]
ЛИТЕРАТУРА
1. Skarsgard E.D., Claydon J., Bouchard S. et al. Canadian Pediatric Surgical Network: a population-based pediatric surgery network and database for analyzing surgical birth defects. The first 100 cases of gastroschisis // J. Pediatr. Surg. 2008. Vol. 43. P. 30-34.
2. Хаматханова Е.М. Пути совершенствования качества медицинской помощи при врожденных пороках развития : дис. ... д-ра мед. наук. М., 2011.
3. Vu L.T., Nobuhara K.K., Laurent C. et al. Increasing prevalence of gastroschisis: population-based study in California // J. Pediatr. 2008. Vol. 152. P. 807-811.
4. Keys C., Drewett M., Burge D.M. Gastroschisis: the cost of an epidemic // J. Pediatr. Surg. 2008. Vol. 43. P. 654-657.
5. Baer R.J., Chambers C.D., Jones K.L., Shew S.B. et al. Maternal factors associated with the occurrence of gastroschisis // Am. J. Med. Genet A. 2015. Vol. 167, N 7. P. 1534-1541.
6. Loane M., Dolk H., Bradbury I., EUROCAT Working Group. Increasing prevalence of gastroschisis in Europe 1980-2002: a phenomenon restricted to younger mothers? // Paediatr. Perinat. Epidemiol. 2007. Vol. 21, N 4. P. 363-369.
7. John Wiley & Sons, Ltd. The Cochrane Collaboration. Elective preterm birth for fetal gastroschisis (review). Copyright, 2013.
8. Castilla E.E., Mastroiacovo P., Oriol I.M. Gastroschisis: international epidemiology and public health perspectives // Am. J. Med. Genet. C Semin. Med. Genet. 2008. Vol. 148C. P. 162-179.
9. Sekabira J., Hadley G.P. Gastroschisis: a third world perspective // Pediatr. Surg. Int. 2009. Vol. 25, N 4. P. 327-329.
10. Bradnock T.J., Marven S., Owen A., Johnson P. et al. Gastroschisis: one year outcomes from national cohort study // BMJ. 2011. Vol. 343. Article ID d6749.
11. Tarca E., Ciongradi I., Aprodu S.G. Birth weight, compromised bowel and sepsis are the main variables significantly influencing outcome in gastroschisis // Chirurgia (Bucur). 2015. Vol. 110, N 2. P. 151-156.
12. Gamba P., Midrio P. Abdominal wall defects: prenatal diagnosis, newborn management, and long-term outcomes // Semin. Pediatr. Surg. 2014. Vol. 23, N 5. P. 283-290.
13. Apfeld J.C., Wren S.M., Macheka N., Mbuwayesango B.A. et al. Infant, maternal, and geographic factors influencing gastroschisis related mortality in Zimbabwe // Surgery. 2015. Vol. 158, N 6. P. 1475-1480.
14. Carvalho N.S., Helfer T.M., Serni P.O., Terasaka O.A. et al. Postnatal outcomes of infants with gastroschisis: a 5-year follow-up in a tertiary referral center in Brazil // J. Matern. Fetal Neonatal Med. 2015. Vol. 29, N 3. P. 418-422.
15. Wright N.J., Zani A., Ade-Ajayi N. EpidemioLogy, management and outcome of gastroschisis in Sub-Saharan Africa: ResuLts of an internationaL survey // Afr. J. Paediatr. Surg. 2015. VoL. 12, N 1. P. 1-б.
16. Неонатальная хирургия / под ред. Ю.Ф. Исакова, Н.Н. Володина, А.В. Гераськина. M. : Династия, 2011. б87с.
17. Khodabux C.M., von Lindern J.S., van HiLten J.A., Scherjon S. et aL. A cLinicaL study on the feasibiLity of autoLogous cord bLood transfusion for anemia of prematurity // Transfusion. 2008. VoL. 48, N 8. P. 1б34-1б43.
18. Khodabux C.M., van Beckhoven J.M., Scharenberg J.G., EL Bar-jiji F. et aL. Processing cord bLood from premature infants into autoLogous red-bLood-ceLL products for transfusion // Vox Sang. 2011. VoL. 100, N 4. P. 3б7-373.
19. Brune T., Garritsen H., WitteLer R., SchLake A. et aL. AutoLogous pLacentaL bLood transfusion for the therapy of anaemic neonates. Department of Paediatrics, University of Munster, Germany // BioL. Neonate. 2002. VoL. 81. P. 23б-243.
20. Imura K., Kawahara H., Kitayama Y. et aL. UsefuLness of cord-bLood harvesting for autoLogus transfusion in surgicaL newborns with antenataL diagnosis of congenitaL anomaLies // J. Pediatr. Surg. 2001. VoL. 3б. P. 851-854.
21. Taguchi T., Suita S., Nakamura M. et aL. The efficacy of autoLogous cord-bLood transfusions in neonataL surgicaL patients // J. Pediatr. Surg. 2003. VoL. 38, N 4. P. б04-б07.
REFERENCES
1. Skarsgard E.D., Claydon J., Bouchard S. et al. Canadian Pediatric Surgical Network: a population-based pediatric surgery network and database for analyzing surgical birth defects. The first 100 cases of gastroschisis. J Pediatr Surg. 2008; Vol. 43: 30-4.
2. Khamatkhanova E.M. Ways of improving the quality of care in congenital malformations: thesis of the doctor of medical sciences. Moscow, 2011. (in Russian)
3. Vu L.T., Nobuhara K.K., Laurent C. et al. Increasing prevalence of gastroschisis: population-based study in California. J Pediatr. 2008; Vol. 152: 807-11.
4. Keys C., Drewett M., Burge D.M. Gastroschisis: the cost of an epidemic. J Pediatr Surg. 2008; Vol. 43: 654-7.
5. Baer R.J., Chambers C.D., Jones K.L., Shew S.B. et al. Maternal factors associated with the occurrence of gastroschisis. Am J Med Genet A. 2015; Vol. 167 (7): 1534-41.
6. Loane M., Dolk H., Bradbury I., EUROCAT Working Group. Increasing prevalence of gastroschisis in Europe 1980-2002: a phenomenon restricted to younger mothers? Paediatr Perinat Epidemiol. 2007; Vol. 21 (4): 363-9.
7. John Wiley & Sons, Ltd. The Cochrane Collaboration. Elective preterm birth for fetal gastroschisis (review). Copyright, 2013.
8. Castilla E.E., Mastroiacovo P., Oriol I.M. Gastroschisis: international epidemiology and public health perspectives. Am J Med Genet C Semin Med Genet. 2008; Vol. 148C: 162-79.
9. Sekabira J., Hadley G.P. Gastroschisis: a third world perspective. Pediatr Surg Int. 2009; Vol. 25 (4): 327-9.
10. Bradnock T.J., Marven S., Owen A., Johnson P. et al. Gastroschisis: one year outcomes from national cohort study. BMJ. 2011; Vol. 343: Article ID d6749.
11. Tarca E., Ciongradi I., Aprodu S.G. Birth weight, compromised bowel and sepsis are the main variables significantly influencing outcome in gastroschisis. Chirurgia (Bucur). 2015; Vol. 110 (2): 151-6.
22. Hosono S., Mugishima H., Nakano Y. et aL Autologous cord blood transfusion in an infant with a huge sacrococcygeal teratoma // J. Perinat. Med. 2004. Vol. 32, N 2. P. 187-189.
23. Сухих Г.Т., Федорова Т.А., Байбарина Е.Н., Антонов А.Г. и др. Заготовка, хранение и применение аутологичной эритроцитной массы из пуповинной крови для терапии анемии у новорожденных // Эфферентная и физико-химическая медицина. 2012. № 1. C. 68-73.
24. Румянцев А.Г., Аграненко В.А. Гемотрансфузионная терапия в педиатрии и неонатологии. М. : МАКС Пресс, 2002. 644 с.
25. Олс Р., Едер М. Гематология, иммунология и инфекционные болезни / под ред. Р. Полина; пер. с англ.; под ред. А.Г. Румянцева. М. : Логосфера, 2013. 408 c. (Проблемы и противоречия в неонатологии). (Перевод изд. Hematology, Immunology and Infectious Disease: Neonatology Questions and Controversies / Robin K. Ohls, Mervin C. Yoder.)
26. Transfusion of blood components to infants under four months: Review and guidelines / J.M. O'Riordan, J. Fitzgerald, O.P. Smith, J. Bonnar, et al. for the National Blood Users Group // Ir. Med. J. Suppl. 2007. Vol. 100, N 6. Suppl 1-24, following 496.
27. Transfusion guidelines for neonates and older children // Br. J. Haematol. 2004. Vol. 124. P. 433-453.
28. Clinical Guide to Transfusion Medicine / Canadian Blood Services with Gwen Clarke and Sophie Cha^. Online edition, 2013.
29. Practice guidelines for blood transfusion: A compilation from recent peer-reviewed literature, 2nd ed. American National Red Cross, 2007.
12. Gamba P., Midrio P. AbdominaL waLL defects: prenataL diagnosis, newborn management, and Long-term outcomes. Semin Pediatr Surg. 2014; VoL. 23 (5): 283-90.
13. ApfeLd J.C., Wren S.M., Macheka N., Mbuwayesango B.A. et aL. Infant, maternal, and geographic factors influencing gastroschisis reLated mortaLity in Zimbabwe. Surgery. 2015; VoL. 158 (б): 1475-80.
14. CarvaLho N.S., HeLfer T.M., Serni P.O., Terasaka O.A. et aL. PostnataL outcomes of infants with gastroschisis: a 5-year foLLow-up in a tertiary referraL center in BraziL. J Matern FetaL NeonataL Med. 2015; VoL. 29 (3): 418-22.
15. Wright N.J., Zani A., Ade-Ajayi N. EpidemioLogy, management and outcome of gastroschisis in Sub-Saharan Africa: ResuLts of an internationaL survey. Afr J Paediatr Surg. 2015; VoL. 12 (1): 1-б.
16. NeonataL surgery / ed, by Yu.F. Isakov, N.N. VoLodina, A.V. Geras'kin. Moscow : Dinastiya, 2011: 687p. (in Russian)
17. Khodabux C.M., von Lindern J.S., van HiLten J.A., Scherjon S. et aL. A cLinicaL study on the feasibiLity of autoLogous cord bLood transfusion for anemia of prematurity. Transfusion. 2008; VoL. 48 (8): 1б34-43.
18. Khodabux C.M., van Beckhoven J.M., Scharenberg J.G., EL Barjiji F. et aL. Processing cord bLood from premature infants into autoLogous red-bLood-ceLL products for transfusion. Vox Sang. 2011; VoL. 100 (4): 3б7-73.
19. Brune T., Garritsen H., WitteLer R., SchLake A. et aL. AutoLogous pLacentaL bLood transfusion for the therapy of anaemic neonates. Department of Paediatrics, University of Munster, Germany. BioL Neonate. 2002; VoL. 81: 23б-43.
20. Imura K., Kawahara H., Kitayama Y. et aL. UsefuLness of cord-bLood harvesting for autoLogus transfusion in surgicaL newborns with antenataL diagnosis of congenitaL anomaLies. J Pediatr Surg. 2001; VoL. 3б: 851-4.
21. Taguchi T., Suita S., Nakamura M. et al. The efficacy of autologous cord-blood transfusions in neonatal surgical patients. J Pediatr Surg. 2003; Vol. 38 (4): 604-7.
22. Hosono S., Mugishima H., Nakano Y. et al. Autologous cord blood transfusion in an infant with a huge sacrococcygeal teratoma. J Perinat Med. 2004; Vol. 32 (2): 187-9.
23. Sukhikh G.T., Fedorova T.A., Baybarina E.N., Antonov A.G. et al. Procurement, storage and use of autologous red cells from cord blood for treatment of anemia in newborns (medical technology). Efferent and Physico-Chemical Medicine. 2012; 1: 68-73. (in Russian)
24. Rumyantsev A.G., Agranenko V.A. Transfusion therapy in pediatrics and neonatology. Moscow : MAKS Press, 2002: 644 p. (in Russian)
25. Ols R., Eder M. Hematology, immunology and infectious disease / ed. by R. Pauline; transl. from eng.; ed. by A.G. Rumyantsev. Moscow: Logo-sphere, 2013: 408 p. (Neonatology Questions and Controversies).
26. Transfusion of blood components to infants under four months: Review and guidelines / J.M. O'Riordan, J. Fitzgerald, O.P. Smith, J. Bonnar, et al. for the National Blood Users Group. Ir Med J Suppl. 2007; Vol. 100 (6, Suppl 1-24, following 496).
27. Transfusion guidelines for neonates and older children. Br J Haematol. 2004; Vol. 124: 433-53.
28. Clinical Guide to Transfusion Medicine / Canadian Blood Services with Gwen Clarke and Sophie Chargy. Online edition, 2013.
29. Practice guidelines for blood transfusion: A compilation from recent peer-reviewed literature, 2nd ed. American National Red Cross, 2007.
