CC BY
95
скота / П.К. Аракелян, С.К. Димов, В.Г. Ощепков, А.С. Донченко // Ветеринария.- 2008.- №2.- С.20-22.
СРАВНИТЕЛЬНОЕ ИЗУЧЕНИЕ АНТИГЕННЫХ И ИММУНОГЕННЫХ СВОЙСТВ ЖИВЫХ И ГАММА-ИНАКТИВИРОВАННЫХ ПРОТИВОБРУЦЕЛЛЕЗНЫХ ВАКЦИН ПРИ ВАКЦИНАЦИИ МОРСКИХ СВИНОК
Фомин А.М., Сафина Г.М., Косарев М.А., Федорова Н.Ю., Чернов А.Н.,
Хабибуллин Р.Р., Галиуллин А.К.
Резюме
В данной статье представлены результаты сравнительного изучения антигенных и иммуногенных свойств живых и гамма-инактивированных противобруцеллезных вакцин из слабоагглютиногенного штамма В. abortus 82 и агглютиногенного штамма В. melitensis Рев-1 при вакцинации морских свинок.
COMPARATIVE STUDYING ANTIGENIC AND IMUNOGENIC PROPERTIES LIVE
AND GAMMA INACTIVATING ANTIBRUCELLOSIS OF VACCINES AT VACCINATION OF GUINEA PIGS
Fomin A.M., Safina G.M., Kosarev M.A., Fedorova N.J., Habibullin R.R.,
ChernovA.N.,Galiullin A.K.
Summary
In given article results of comparative studying antigeniec and imunogenic properties live and gamma inactivating antibrucellosis vaccines from weak agglutinagenic strain B.abortus 82 are presented and agglutinagenic strain B. melitensis Rev-1 at vaccination of guinea pigs.
УДК 619:616.981.42:615.371
ОПЫТ И ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОВЕДЕНИЯ СПЕЦИАЛЬНЫХ ОЗДОРОВИТЕЛЬНЫХ МЕРОПРИЯТИЙ ПРИ БРУЦЕЛЛЕЗЕ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА НА ЗАКЛЮЧИТЕЛЬНОМ ЭТАПЕ
ОЗДОРОВЛЕНИЯ ХОЗЯЙСТВ
Хабибуллин Р.Р. - аспирант ФГБУ «ФЦТРБ-ВНИВИ»
Ключевые слова: бруцеллез, крупный рогатый скот, оптимизация системы специальных противобруцеллезных мероприятий,
заключительный этап оздоровления хозяйств.
Key words: Brucellosis, cattle, optimization of the system of special antibrucellosis events, the final stage of rehabilitation of farms.
Итоги многолетних экспериментальных и производственных наблюдений, проведенных учеными и ветспециалистами России, показывают, что в условиях неблагополучия и прямой угрозы заражения иммунизация животных против бруцеллеза является одной из основных мер, обеспечивающих надежную защиту и оздоровление хозяйств от этой инфекции (KM. Салмаков и др., 1978; А.А. Новицкий и др., 1988; О.З. Исхаков, 1991; В.В. Сочнев и др., 1991; С.И. Джупина, 1998; ВМ. Авилов и др., 2000; Л.Н. Гордиенко и др., 2011).
При этом исследователи отмечают, что максимального эффекта специфическая профилактика может достичь лишь при создании у животных перманентного иммунитета на весь период оздоровления и в течение нескольких лет после него во избежание рецидивов, т.е. при применении вакцин по научно-обоснованным схемам, по разработанным системам.
Официально принятая в Российской Федерации система специальных противобруцеллезных мероприятий, базирующаяся на применении вакцины из слабоагглютиногенного штамма B. abortus 82, обладает высокой противоэпизоотической эффективностью и сыграла решающую роль в оздоровлении от бруцеллеза крупного рогатого скота многих регионов РФ и стран СНГ.
Однако в последние годы в связи с разработкой новых средств и методов профилактики, диагностики и дифференциальной диагностики, а также с изменением эпизоотической ситуации по бруцеллезу и форм собственности в сельском хозяйстве назрела необходимость в оптимизации существующей системы специальных противобруцеллезных мероприятий.
В связи с этим научными сотрудниками лаборатории по изучению бруцеллеза ФГБУ "ФЦТРБ-ВНИВИ" совместно с ветслужбой Самарской области (АМ. Фомин и др., 2003) была усовершенствована, апробирована и внедрена в регионе новая система специальных мероприятий по профилактике и ликвидации бруцеллеза крупного рогатого скота.
Благодаря внедрению в производство данной системы, Самарская область была оздоровлена от бруцеллеза крупного рогатого скота.
Основу системы составляло применение для специфической профилактики заболевания вакцины из штамма 82. Ее вводили первый раз телочкам 4-6 месячного возраста, спустя 10 месяцев (или за 2-3 месяца перед случкой) животных ревакцинировали, коров ревакцинировали один раз в два года. У ревакцинированных телок проверяли иммунный ответ с помощью R-антигена ВНИВИ. Дифференциальную диагностику проводили с применением набора препаратов ВНИВИ, а затем и РИД с О-ПС-антигеном ИЭВСиДВ. В некоторых случаях осуществляли вакцинацию животных двухэтапным способом. На первом этапе вводили вакцину из инагглютиногенного штамма B. abortus R-1096 для
предотвращения абортогенного действия вакцины из штамма 82 при применении ее на интактных к бруцеллезному антигену беременных животных, а также для провокации латентного бруцеллеза. На втором этапе животных ревакцинировали вакциной из штамма 82 для создания напряженного иммунитета.
После оздоровления региона от бруцеллеза возникла необходимость в дальнейшей оптимизации системы противобруцеллезных мероприятий, ибо в области не осталось неблагополучных по этому заболеванию пунктов, а за год выделялось значительное количество животных, положительно реагирующих по РА или РСК с единым бруцеллезным антигеном с поствакцинальным характером реакций, которые необходимо было дифференцировать, затрачивая время и средства.
С целью оптимизации специальных противобруцеллезных мероприятий во ВНИВИ была разработана и апробирована на большом поголовье животных новая система по профилактике и ликвидации бруцеллеза крупного рогатого скота на заключительном этапе оздоровления хозяйств (В .А. Апалькин и др., 2005).
Основной целью, по данным авторов, при разработке этой системы являлось применение таких средств и методов, которые обеспечивали бы поддержание перманентного иммунитета в оздоровленных районах без наличия поствакцинальной серопозитивности у привитых животных.
В качестве средства специфической профилактики для вакцинации и ревакцинации телок исследователи предложили использовать, как и ранее было, вакцину из слабоагглютиногенного штамма 82, а коров ежегодно, в течение 3-х лет, ревакцинировать вакциной из инагглютиногенного штамма B. abortus R-1096.
У ревакцинированных телок предложено было осуществлять контроль иммунного ответа с помощью бруцеллезного R-антигена ВНИВИ в РСК, чтобы на воспроизводство стада шли только иммунные к бруцеллезу животные.
Диагностические исследования коров на бруцеллез проводили спустя 15 суток после введения вакцины из штамма R-1096. В это же время с помощью R-антигена ВНИВИ у них контролировали иммунный ответ на введение биопрепарата. Этими приемами авторы добивались в кратчайший после вакцинации срок обнаруживать больных бруцеллезом животных и выявлять не привитых животных, которых допрививали повторно.
Апробацию предлагаемой системы мы проводили в СПК "Победа" Волжского района и АКХ "Березовая Роща" Хворостянского района Самарской области. Иммунизацию и исследование животных осуществляли в той последовательности, как было предложено авторами.
У ревакцинированных коров, кроме того, изучали иммунный ответ с применением S- и R-антигенов в РА и РСК в различные сроки после введения вакцины из штамма R-1096.
В других хозяйствах этих районов коров продолжали ревакцинировать вакциной из штамма 82.
В результате 3-х летних наблюдений подтвердили, что ежегодная ревакцинация вакциной из штамма R-1096 коров, ранее привитых (телками) вакциной из штамма 82, позволила сохранить эпизоотическое благополучие хозяйства по бруцеллезу. При этом серологические исследования ревакцинированных животных на бруцеллез, проводимые через 10-15 суток после введения вакцины в РА и РСК с единым бруцеллезным антигеном, всегда были с отрицательным результатом, в том числе после 1-й, 2-й и 3-й ежегодных ревакцинаций.
В других хозяйствах Волжского и Хворостянского районов, где продолжали ревакцинировать коров вакциной из штамма 82, обнаруживали животных с положительными серологическими реакциями на бруцеллез поствакцинального характера, устанавливаемого в результате дополнительного дифференциально-диагностического исследования.
Высокие титры антител в РСК с R-антигеном у ревакцинированных животных в течение длительного времени после введения вакцины из штамма R-1096 по фону вакцины из штамма 82 косвенно свидетельствуют о противобруцеллезном иммунитете высокой напряженности. Это положение было подтверждено и в эксперименте на морских свинках, привитых по такой же схеме, при экспериментальном заражении их вирулентной культурой бруцелл.
Заключение. Таким образом, ревакцинации коров вакциной из инаглютиногенного штамма B. abortus R-1096 по фону вакцины из слабоагглютиногенного штамма B. abortus 82 сопровождается выраженным иммунным ответом, сохраняющимся у 50-70% животных в течение года до следующей очередной ревакцинации.
Полученные положительные результаты производственного испытания системы специальных противобруцеллезных мероприятий при бруцеллезе крупного рогатого скота на заключительном этапе оздоровления хозяйств от инфекции дают основание для расширения ее использования в других регионах России.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Салмаков, К. M. Эффективность применения
живой вакцины из штамма 82 на крупном рогатом скоте/KM. Салмаков, Ю.Ш. Абузаров, Б.А. Киршин// Ученые записки КВИ.-Казань.-1978.-Т.29.-С.38-44. 2. Новицкий, А.А. Иммунологический ответ организма телок на введение различных доз противобруцеллезных вакцин из штаммов 82, 19, 104-M/A.A. Новицкий, А.П. Красиков, С.А. Панкратов// Сб. научных трудов ВНИИБТЖ.-1998.-С.17-26. 3. Исхаков, О.З. Система мер борьбы с бруцеллезом животных в РСФСР и ее эффективность/О.З. Исхаков// Тезисы докл., 4-й Всесоюзной конф. по эпизоотологии.-г. Новосибирск, 24-26 сентября 1991.-Новосибирск.-1991.-С.17-18. 4. Сочнев, В.В. Научнообоснованная система противобруцеллезных мероприятий в
Нечерноземной зоне РСФСР/ В.В. Сочнев, Н.П. Старунова, Т. А. Демина//Pекомендации.-M.-1991.-27 с. 5. Джупина, С.И. Основные
направления повышения эффективности противобруцеллезных и противотуберкулезных мероприятий/С.И. Джупина//Диагностика и специфическая профилактика бруцеллеза и туберкулеза животных.-Новосибирск.-1998.-С.8-11. 6. Авилов, ВЖ. Борьба с бруцеллезом крупного рогатого скота с применением вакцины из штамма 82/8.M. Авилов, KM. Салмаков, А.А. Новицкий//Ветеринария.-2000.-№3.-С.3-7. 7. Гордиенко, Л.Н. Эффективность противобруцеллезных мероприятий в Российской Федерации/Л.Н. Гордиенко, В.И. Околелов, П.К. Аракелян// Инф-я патология жив-х.-Mатер. Mеждунар. научно-практич. конф., посвящ. 90-летию СибНИВИ-ВНИИБТЖ.-Омск.-2011.-С.31-35. 8. Фомин, A.M. Оптимизация системы управления процессом борьбы с бруцеллезом крупного рогатого скота в Самарской области/ A.M. Фомин, KM. Салмаков, Р.А. Салахутдинов и др.//Вет. врач.-2003.-№3.-С.50-55. 9. Апалькин, В. А. Оптимизация системы противоэпизоотических мероприятий - путь к искоренению бруцеллеза в России/В. А. Апалькин, А.В. Иванов, KM. Салмаков, A.M. Фомин, T.M. Сафина и др.//Mатер. Mеждунар. симпозиума, 28-30 ноября 2005.-ч П/-Казань.-2005.-С.41-50.
ОПЫТ И ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРОВЕДЕНИЯ СПЕЦИАЛЬНЫХ ОЗДОРОВИТЕЛЬНЫХ MЕPOПPИЯТИЙ ПРИ БРУЦЕЛЛЕЗЕ КРУПНОГО РОГАТОГО
СКОТА НА ЗAKЛЮЧИТЕЛЬHOM ЭТАПЕ ОЗДОРОВЛЕНИЯ ХОЗЯЙСТВ
Хабибуллин P.P.
Резюме
В данной статье представлены результаты производственного испытания оптимизированной системы специальных
противобруцеллезных мероприятий на заключительном этапе оздоровления хозяйств от бруцеллеза крупного рогатого скота, базирующейся на вакцинации и ревакцинации телок вакциной из слабоагглютиногенного штамма B. abortus 82, ежегодной, в течение 3-х лет ревакцинации коров вакциной из инагглютиногенного штамма B. abortus R-1096 и контроля иммунного ответа у ревакцинированных животных с применением R-антигена ВНИВИ в РСК.
EXPERIENCE AND EFFECTIVENESS OF THE SPECIAL HEALTH ACTION IN BRUCELLOSIS IN CATTLE IN THE FINAL STAGE RECOVERY FARM
Khabibullin R.R.
Summary
This paper presents the results of the production test system optimized special antibrucellosis events at the final stage of rehabilitation farms of brucellosis in cattle, based on vaccination and booster vaccination of heifers
weak agglutinagenic strain B. abortus 82, yearly, during the 3-year booster vaccination of cattle inagglutinogenic strain B. abortus R-1096 and control the immune response in revaccinated animals using R-antigen ARVI in CFT.
УДК 663.053:616.013(018) ЦИТОГЕНЕТИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ КУЛЬТУРЫ КЛЕТОК ЛИНИИ
LEK
Хазиев Л.Р. - аспирант ФГБУ «ФЦТРБ-ВНИВИ», г. Казань, E-mail: vnivi@mail.ru
Ключевыеслова: культура клеток, сыворотка, кариология.
Key words: cell culture, serum, karyology.
Введение. Клеточные культуры играют важную роль в биотехнологии при производстве вакцин и биологически активных веществ (Л.П. Дьяконов 2009). Концентрация, общее количество и доля жизнеспособных клеток являются необходимыми и важными характеристиками клеточного пула. Современные исследования и биологические производства требуют, чтобы и концентрация, и процент живых клеток были определены с максимальной точностью. Только оптимальная посевная концентрация позволит получить качественную культуру к заданному сроку. Изменения общего количества клеток и их жизнеспособности в процессе тестирования препаратов на токсичность и противовирусную активность invitro являются основными определяющими параметрами, но кроме них решающее значение имеет общая морфология клеток и их индекс пролиферации, а также стерильность культуры клеток от каких-либо микроорганизмов, в том числе микоплазм и вирусов. В этой связи в специализированных лабораториях, имеющих коллекции или криобанки клеточных культур, следует проводить регулярный контроль их видовой принадлежности. С этой целью широко используют методы цитогенетическнх исследований, которые позволяют контролировать генетическое постоянство клеток по набору и характеристике хромосом. Известно, что такие факторы культивирования, как нестандартность питательных сред и сывороток, вирусы и микоплазмы, могут явиться причиной дестабилизации различных клеточных характеристик, в том числе и кариологических. На сегодняшний день в лаборатории культур клеток и гибридомной технологии ФГБУ «ФЦТРББ-ВНИВИ» одной из наиболее часто используемых и востребуемых клеточных культур В работе является перевиваемая линия клеток LEK (происхождение: крупный рогатый скот, легкие эмбриона). В криобанке ФГБУ «ФЦТРББ-ВНИВИ» хранятся образцы данной линии разных годов заморозки, начиная с 1982 года.
