CC BY
24
ОБЗОРЫ1 ! | REVIEWS
ОПТИМАЛЬНЫЙ ВЫБОР ЖИВОТНОГО ДЛЯ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ РАБОТЫ НА КРУПНЫХ СУСТАВАХ В ТРАВМАТОЛОГИИ И ОРТОПЕДИИ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
© Г.А. Айрапетов, А.Ж. Хуртуев
Ставропольский государственный медицинский университет, Ставрополь, Российская Федерация
Проблема заболеваний и повреждений крупных суставов является одной из самых актуальных в травматологии и ортопедии. Регулярно разрабатываются и внедряются новые, эффективные методы лечения. Для апробации новых технологий необходимо проведение экспериментальных исследований. Наиболее достоверными могут считаться результаты, полученные при использовании животных с выявлением патогенеза развития заболевания и механизмов его предотвращения. Для этих целей могут использоваться разнообразные животные. В работе проанализированы 30 источников литературы. Выполнялся анализ экспериментальных проспективных исследований и системных метаанализов. Данные литературы систематизированы и проанализированы. Установлено, что при планировании экспериментального исследования на крупных суставах животных необходимо учитывать сходство биохимических процессов и структур компонентов сустава с человеческим, а также возможность наблюдения за животным. Так, необходимо особое внимание уделять характеристикам нагрузки на сустав, от которых радикально меняются отдаленные результаты лечения. При моделировании экспериментальной работы связанной с внедрением нового метода хирургического лечения повреждений или заболеваний крупных суставов, предпочтительнее использовать крупных животных, таких как овцы. При изучении влияния консервативного лечения возможно использование мелких существ, таких как крысы или кролики. Ключевые слова: экспериментальное животное; экспериментальная модель; остеохон-дральный дефект; крупный сустав.
OPTIMAL CHOICE OF ANIMAL FOR EXPERIMENTAL WORK ON LARGE JOINTS IN TRAUMATOLOGY AND ORTHOPEDICS (LITERATURE SURVEY)
G.A. Airapetov, A.Zh. Khurtuev
Stavropol State Medical University, Stavropol, Russian Federation
Diseases of and damages to large vessels make the most urgent problem in traumatology and orthopedics. New and effective methods of treatment are constantly being developed and introduced. Approbation of new technologies requires experimental studies. Most reliable are considered the results obtained with use of animals that permit to elicit the pathogenesis of diseases and mechanisms of its prevention. For these purposes different animal can be used. In the work 30 literature sources were analyzed. Analysis of experimental promising research works and systemic mechanisms was conducted. It was found that in planning experimental works on large joints of animals it is important to take into account similarity of their biochemical processes and structures of joint
components with those of humans, and also a possibility of observation of animals. Thus, it is required to pay special attention to characteristics of loads on the joints which radically change the long-term results of treatment. In modeling of experimental work for introduction of a new method of treatment for damages or diseases of large vessels, it is preferable to use large animals like sheep. In study of conservative treatment it is possible to use small animals like rats or rabbits. Keywords: experimental animal; experimental model; osteochondral defect; large joint.
Проблема заболеваний и повреждений крупных суставов является одной из самых актуальных в травматологии и ортопедии [1]. При этом первое место, безусловно, занимает остеоартрит, который по некоторым данным наблюдается в 55% случаев [2]. Стоит отметить так же высокую частоту встречаемости рассекающего остеохондрита и других повреждений крупных суставов, которые диагностируются у пациентов молодого возраста [3].
Сегодня предложено множество различных методов лечения, начиная от консервативных и заканчивая большими, агрессивными хирургическими вмешательствами [4-6]. Учитывая тот факт, что в медицинской литературе регулярно появляется информация о новых методах лечения заболеваний крупных суставов, можно сделать вывод о недостатках существующих.
Естественно, что для апробации новых технологий необходимо проведение экспериментальных исследований. Наиболее достоверными могут считаться результаты, полученные при использовании животных с выявлением патогенеза развития заболевания и механизмов его предотвращения.
В специальной литературе описываются разнообразные модели ятрогенно-го формирования заболеваний или повреждений крупных суставов у животных:
1. Спонтанный остеоартрит (возрастные изменения, дисплазия);
2. Химически индуцированные изменения (введение химопапаина, коллаге-назы, разнообразных растворов и химических средств);
3. Травматически индуцированные изменения (менискэктомия, формирование дефектов хряща и субхондральной кости и др.) [7,8].
Преимуществом изучения заболеваний или повреждений крупных суставов у жи-
вотных является возможность оценить полученные результаты на всех уровнях, начиная от клеточного и заканчивая органным, в том числе с проведением дополнительных инструментальных исследований (рентгенография, компьютерная томография, магнитно-резонансная томография и др.).
Несомненно, что использование животных в качестве экспериментальных моделей имеет свои недостатки. К примеру, не представляется возможным оценить жалобы (болевой синдром, мышечная слабость и др.), что является очень важным маркером у человека. Так же невозможно полностью оценить идентичность экспериментальной модели остеоартрита или дефекта животного с таковыми у человека.
Отличие ответа животного с моделированным заболеванием или повреждением и человека на лечение во многом зависит от исходного уровня некоторых ферментов, которые, как полагают, принимает активное участие в патогенезе.
При выборе экспериментального животного исследователи основываются на различных факторах [9,10]. Важной составляющей является стоимость покупки и содержания объектов исследований. Естественно, что стоимость содержания и наблюдения животных возрастает пропорционально его размеру. Это является одной из причин выбора в пользу мелких животных, таких, как крысы и кролики.
Другим преимуществом является возможность выбора генетически схожих существ, что может снизить вариабельность полученных результатов. Однако трудно перейти от экспериментальной работы к клинической, имея результаты исследования только на мелких объектах. По данным литературы суставы мелких животных радикально отличаются от че-
ловеческих (рис. 1) [11]. Они значительно меньше, хрящ тоньше, а близость субхон-дральной кости, которая повреждается
при формировании дефекта, не позволяет создать полностью соответствующий человеческому суставу дефект.
Рис. 1. Коленные суставы (масштаб 1:1)
Крупные животные, такие, как лошади, овцы, собаки и др. требуют больших затрат на содержание и ветеринарную поддержку. Конечно, если все эти условия не являются помехой, то это наиболее предпочтительный вариант проведения экспериментальной работы.
По данным специальной литературы наиболее популярными экспериментальными животными являются собаки, кролики, крысы и овцы. Некоторые биохимические и механические процессы, которые наблюдаются у собак и кроликов не являются таковыми у человека, ввиду выраженной амортизационной способности субхон-дральной кости у этих животных [12,13]. Кроме того, малый размер суставных поверхностей у таких существ, как крысы и кролики создает большую проблему для отработки многих предлагаемых хирургических методов лечения, особенно с формированием остео-хондральных дефектов.
В 2010 году Американское общество по тестированию и материалам опубликовало рекомендации по проведению экспериментальных исследований имплантов для регенерации суставного хряща. Согласно этим рекомендациям критическим является дефект, который не может самостоятельно восстановиться без внешнего воздействия. Формируемый дефект сус-
тавного хряща должен не превышать 1520% от площади суставной поверхности или 50-60% от площади суставной поверхности мыщелка, а глубина дефекта не должна превышать 10 мм [14].
В ряде стран по законодательству запрещено использовать некоторые виды животных в экспериментальных целях (собаки, кошки). В Российской Федерации существует закон «О защите животных от жестокого обращения», от 1 декабря 1999 года, где стоит запрет на использование экспериментальных животных с высокоорганизованной центральной нервной системой (приматы, собаки, кошки, дельфины). Овцы не относятся к этой категории и разрешены к использованию в качестве экспериментальных животных. Ещё с 1962 года некоторые авторы отмечали, что хондроци-ты овцы однотипны с человеческими [15].
De Rousseau и соавторы считают, что существуют большие различия между данными полученными в результате исследований на животных и человеке [16]. Примером может служить высокая эффективность НПВС при моделировании артрита у грызунов, что привело к переоценке эффективности данной группы препаратов у человека.
В другой работе авторы так же проводили исследование на крысах и кроликах.
Суть работы была в оценке влияния карто-генина на хондрогенез [17]. Обоснование выбора в качестве экспериментальной модели мелких животных в работе не указана.
Проанализировав доступную литературу, мы пришли к выводу, что все же наиболее часто в качестве экспериментальных животных используют овец, которые имеют ряд преимуществ. Данные животные хорошо переносят анестезию, неприхотливы в уходе, а строение их суставного хряща и субхондральной кости сходно с человеческим.
Интересной представляется экспериментальная работа из Хорватии, где авторы использовали хондроциты из носовой перегородки для выполнения методики аутотрансплантации культивированных хондроцитов ^О). В работе выполняли 2 не полнослойных дефекта диаметром 4 мм по внутреннему и наружному мыщелку бедра овцы при помощи инструмента для мозаичной аутохондропла-стики. Перед этим выполняли биопсию носовой перегородки с целью получения хондроцитов, которые культивировались в течение 5 недель. Во время второй операции, один из выполненных дефектов увеличивался до 6.5 мм с глубиной 5 мм, после чего выполнялось заполнение дефекта культивированными хондроцитами. Авторы заключили, что хондроциты полученные из носовой перегородки показывают многообещающие результаты в рамках методики ACI [18].
Одним из новых направлений в лечении дегенеративно-дистрофических заболеваний крупных суставов является применение лазерного облучения с низкими дозами [19,20]. Так Bayat и соавторы выполняли остеохондральный дефект на надколеннике в эксперименте на 41 кролике и изучали влияние лазерного облучения на регенерацию дефекта. Авторы заключили, что в группе, где применялось лазерное облучение формировался более стабильный регенерат. Обоснование выбора кроликов для работы не указано [21]. В другом исследовании авторы выполняли костно-
хрящевой дефект коленного сустава у 45 кроликов и также изучали влияние ЛО на регенерацию. Иммуногистохимический анализ показал, что в контрольной группе определялись более высокая плотность хондроцитов и содержание гликозаминог-ликанов, а в группе без ЛО, дефект не восстанавливался [22]. В другой работе оценивалось количество гликозаминогликанов после применения ЛО на крысах, после чего сообщалось о более высокой концентрации их в контрольной группе [23].
Проанализировав медицинскую литературу, мы сделали сводную таблицу, включающую в себя преимущества разнообразных животных для эксперимента (табл. 1) [24-29].
Интересным является тот факт, что на результаты лечения влияет не только возраст животного, но и время года. Это подтверждено в исследовании, проведенном Arens и соавт. в Швейцарии. Авторы с помощью компьютерной томографии и сцинтиграфии в течение 18 месяцев изучали плотность костной ткани трубчатых костей овец. Была выявлена её абсолютная зависимость от времени года: так, весной и летом костная масса больше на 5 % относительно зимы и осени [30].
Заключение
Мы считаем, что при планировании экспериментального исследования на крупных суставах животных необходимо учитывать сходство биохимических процессов и структур компонентов сустава с человеческим, а также возможность наблюдения за животным. Так, необходимо особое внимание уделять характеристикам нагрузки на сустав, от которых радикально меняются отдаленные результаты лечения. При моделировании экспериментальной работы связанной с внедрением нового метода хирургического лечения повреждений или заболеваний крупных суставов, предпочтительнее использовать крупных животных, таких как овцы. При изучении влияния консервативного лечения возможно использование мелких существ, таких как крысы или кролики.
Таблица 1
Животное Сустав Средняя толщина хряща, мм Дефект Использование П\о период Результаты
Хирургически сформирован- Чаще скрининг для дальнейшего ис- Лабораторные анали- МРТ, КТ, Rg, морфология
ныи хондраль- пользования на зы, колесо
Крыса Коленный 0,1 ный или остео-хондральный дефект от 0.75 мм до 3 мм крупных животных для бега
Хондральный Чаще скрининг для Лаборатор- МРТ, КТ, Rg,
Кролик Коленный, плечевой 0,210,56 или остеохонд-ральный дефект от 2 мм до 4 мм дальнейшего использования на крупных животных ные анализы морфология, биохимия
Коленный, плечевой, тазобедренный, голеностопный Хондральный или остеохонд- Применение новых методов лечения с Применение банда- Артроскопия, МРТ, КТ, Rg,
Собака 0,95-1,3 ральный дефект от 3 мм до 12 мм окончательной оценкой результа- жей, иммобилизации, морфология, биохимия,
тов фиксаторов, отсутствие нагрузки кинетика и кинематика
Хондральный Применение новых Примене- Артроскопия,
или остеохонд- методов лечения с ние банда- МРТ, КТ, Rg,
Овца Коленный 0,4-1,5 ральный дефект от 4 мм до 15 мм окончательной оценкой результатов жей, иммобилизации, фиксаторов, отсутствие нагрузки морфология, биохимия, кинетика и кинематика
Хондральный Применение новых Примене- Артроскопия,
или остеохонд- методов лечения с ние банда- МРТ, КТ, Rg,
Коленный, ральный дефект окончательной жей, иммо- морфология,
Лошадь голено- 1,5-2 от 6 мм до 20 мм оценкой результа- билизации, биохимия,
стопный тов фиксаторов, отсутствие нагрузки кинетика и кинематика
Дополнительная информация тов интересов, о которых необходимо сообщить в
Конфликт интересов. Авторы деклариру- связи с пуботкацжй данной статьи. ют отсутствие явных и потенциальных конфлик-
Литература
1. Kim Y.S., Choi Y.J., Lee S.W., et al. Assessment of clinical and MRI outcomes after mesenchymal stem cell implantation in patients with knee osteoarthritis: a prospective study // Osteoarthritis Cartilage. 2016. Vol. 24. P. 237-245.
2. Hunter D.J. Pharmacologic therapy for osteoarthritis - the era of disease modification // Nature Reviews Rheumatology. 2011. Vol. 7, №1. P. 13-22. doi:10.103 8/nrrheum. 2010.178
3. Jacobi M., Villa V., Magnussen R.A., et al. MACI - a new era? // Sports Medicine, Arthroscopy, Rehabilitation, Therapy & Technology. 2011. Vol. 3, №1. P. 10. doi:10.1186/1758-2555-3-10
4. Chang K.V., Hung C.Y., Aliwarga F., et al. Comparative effectiveness of platelet-rich plasma injections for treating knee joint cartilage degenerative pathology: a systematic review and meta-analysis // Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 2014. Vol. 95, №3. P. 562-575. doi:10.1016/ j.apmr.2013.11.006
5. Andia I., Abate M. Knee osteoarthritis: hyaluronic acid, platelet-rich plasma or both in association? // Expert Opinion on Biological Therapy. 2014. Vol. 14, №5. P. 635-649. doi:10.1517/14712598.2014. 889677
6. Айрапетов Г.А., Воротников Г.А., Коновалов Е.А. Методы хирургического лечения локаль-
ных дефектов гиалинового хряща крупных суставов (обзор литературы) // Гений ортопедии. 2017. Т. 23, №4. С. 485-491. doi:10.18019/1028-4427-2017-23-4-485-491
7. Kuyinu E.L., Narayanan G., Nair L.S., et al. Animal models of osteoarthritis: classification, update, and measurement of outcomes // Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 2016. Vol. 11. P. 19. doi:10.1186/s13018-016-0346-5
8. Swami A., Reagan M.R., Basto P., et al. Engineered nanomedicine for myeloma and bone microenvironment targeting // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2014. Vol. 111, №28. P. 10287-10292. doi:10.1073/pnas.1401337111
9. Yuan T., Zhang J., Zhao G., et al. Creating an Animal Model of Tendinopathy by Inducing Chondrogenic Differentiation with Kartogenin // PLoS One. 2016. Vol 11, №2. P. e0148557. doi:10.1371 /journal.pone.0148557
10. Decker R.S., Koyama E., Enomoto-Iwamoto M., et al. Mouse limb skeletal growth and synovial joint development are coordinately enhanced by Kartoge-nin // Developmental Biology. 2014. Vol. 395, №2. P. 255-267. doi:10.1016/j.ydbio.2014.09.011
11. Waller K.A., Zhang L.X., Elsaid K.A., et al. Role of lubricin and boundary lubrication in the prevention of chondrocyte apoptosis // Proceedings of the National Academy of Sciences. 2013. Vol. 110, №15. P. 5852-5857. doi:10.1073/pnas.1219289110
12. Frost-Christensen L.N., Mastbergen S.C., Vianen N.E., et al. Degeneration, inflammation, regeneration, and pain/disability in dogs following destabi-lization or articular cartilage grooving of the stifle joint // Osteoarthritis Cartilage. 2008. Vol. 16, №11. P. 1327-1335 doi:10.1016/j.joca.2008.03.013
13. Da Rosa A.S., Dos Santos A.F., Da Silva M.M., et al: Effects of Low-level Laser Therapy at Wavelenghts of 660 and 808 nm in Experimental Model of Osteoarthritis // Photochemistry and Photobio-logy. 2012. Vol. 88, №1. P. 161-166. doi: 10.1111/j.1751-1097.2011.01032.x
14. American Society for Testing and Materials. ASTM F2451 05(2010) Standard Guide for in vivo Assessment of Implantable Devices Intended to Repair or Regenerate Articular Cartilage. Available at: http://www.astm.org/Standards/F2451.htm Accessed: 2019 May 27.
15. Smink J.J., Koedam J.A., Koster J.G. Dexame-thasone-induced growth inhibition of porcine growth plate chondrocytes is accompanied by changes in levels of IGF axis components // Journal of Endocrinology. 2002. Vol. 174, №2. P. 343-352.
16. DeRousseau C.J. Aging in the musculoskeletal system of rhesus monkeys. II. Degenerative joint disease // American Journal of Physical Anthropology. 1985. Vol. 67, №3. P. 177-184. doi:10.1002/ ajpa.1330670303
17. Fazal-Ur-Rehman Bhatti, Karen A Hasty, Hongsik Cho. Kartogenin Induced Chondrogenesis of Stem
Cells and CartilageRepair // International Journal of Stem Cell Research & Therapy. 2016. Vol. 3, №2. P. 192-195. doi:10.23937/2469-570X/1410036
18. Vukasovic A., Pusic M., Kostesic P., et al. Preclinical animal model - novel technology for articular cartilage repair. In: 3rd International Conference on Regenerative Orthopaedics. Zagreb; 2015. P. 53-73.
19. De Almeida P., Lopes-Martins R.A., De Marchi T., et al. Red (660 nm) and infrared (830 nm) low-level laser therapy in skeletal muscle fatigue in humans: what is better? // Lasers in Medical Science. 2012. Vol. 27, №2. P. 453-458. doi:10.1007/ s10103-011-0957-3
20. Кончугова Т. В., Кульчицкая Д.Б. Влияние высокоинтенсивного лазерного излучения на состояние микроциркуляции у больных гонартро-зом // Доктор.Ру. 2014. №13. С. 59-61.
21. Bayat M., Ansari E., Gholami N., et al. Effect of low-level helium-neon laser therapy on histologi-cal and ultrastructural features of immobilized rabbit articular cartilage // Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology. 2007. Vol. 87, №2. P. 81-87.
22. Sharma S.K., Kharkwal G.B., Sajo M., et al. Dose response effects of 810 nm laser light on mouse primary cortical neurons // Lasers in Surgery and Medicine. 2011. Vol. 43, №8. P. 851-859. doi: 10.1002/lsm.21100
23. Joensen J., Gjerdet N.R., Hummelsund S., et al. An experimental study of low-level laser therapy in rat Achilles tendon injury // Lasers in Medical Science. 2012. Vol. 27, №1. P. 103-107. doi:10. 1007/s10103-011-0925-y
24. Маланин Д.А., Писарев В.Б., Новочадов В.В. Восстановление повреждений хряща в коленном суставе. Экспериментальные и клинические аспекты. Волгоград; 2010.
25. Kuroki K., Cook C.R., Cook J.L. Subchondral bone changes in three different canine models of osteoar-thritis // Osteoarthritis Cartilage. 2011. Vol. 19, №9. P. 1142-1149. doi:10.1016/j.joca.2011.06.007
26. Garner B.C., Stoker A.M., Kuroki K., et al. Using animal models in osteoarthritis biomarker research // Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 2011. Vol. 24, №4. P. 251-264. doi:10.1055/s-
0031-1297361
27. O'Connell G.D., Lima E.G., Liming B., et al. Toward engineering a biological joint replacement // Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 2012. Vol. 25, №3. P. 187-196. doi:10.1055/s-
0032-1319783
28. Hoemann C., Kandel R., Roberts S., et al. International Cartilage Repair Society (ICRS) recommended guidelines for histological endpoints for cartilage repair studies in animal models and clinical trials // Cartilage. 2011. Vol. 2, №2. P. 153172. doi:10.1177/1947603510397535
29. Frisbie D.D., Cross M.W., McIlwraith C.W. A comparative study of articular cartilage thickness
in the stifle of animal species used in human preclinical studies compared to articular cartilage thickness in the human knee // Veterinary and Comparative Orthopaedics and Traumatology. 2006. Vol. 19, №3. P. 142-146.
30. Arens D., Sigrist I., Alini M., et al. Seasonal changes in bone metabolism in sheep // Veterinary Journal. 2007. Vol. 174, №3. P. 585-591. doi: 10.1016/j.tvjl.2006.10.001
References
1. Kim YS, Choi YJ, Lee SW, et al. Assessment of clinical and MRI outcomes after mesenchymal stem cell implantation in patients with knee osteo-arthritis: a prospective study. Osteoarthritis Cartilage. 2016;24:237-45.
2. Hunter DJ. Pharmacologic therapy for osteoarthritis - the era of disease modification. Nature Reviews Rheumatology. 2011;7(1):13-22. doi:10.1038/ nrrheum.2010.178
3. Jacobi M, Villa V, Magnussen RA, et al. MACI -a new era? Sports Medicine, Arthroscopy, Rehabilitation, Therapy & Technology. 2011;3(1):10. doi: 10.1186/1758-2555-3-10
4. Chang KV, Hung CY, Aliwarga F, et al. Comparative effectiveness of platelet-rich plasma injections for treating knee joint cartilage degenerative pathology: a systematic review and meta-analysis. Archives of Physical Medicine and Rehabilitation. 2014;95(3):562-75. doi:10.1016/j.apmr.2013.11.006
5. Andia I, Abate M. Knee osteoarthritis: hyaluronic acid, platelet-rich plasma or both in association? Expert Opinion on Biological Therapy. 2014; 14(5):635-49. doi:10.1517/14712598.2014.889677
6. Airapetov GA, Vorotnikov AA, Konovalov EA. Surgical methods of focal hyaline cartilage defect management in large joints (literature review). Genij Orthopedii. 2017;23(4)485-91. (In Russ). doi:10.18019/1028-4427-2017-23-4-485-491
7. Kuyinu EL, Narayanan G, Nair LS, et al. Animal models of osteoarthritis: classification, update, and measurement of outcomes. Journal of Orthopaedic Surgery and Research. 2016;11:19. doi:10.1186/ s13018-016-0346-5
8. Swami A, Reagan MR, Basto P, et al. Engineered nanomedicine for myeloma and bone microenvironment targeting. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2014;111(28):10287-92. doi:10.1073/pnas.1401337111
9. Yuan T, Zhang J, Zhao G, et al. Creating an Animal Model of Tendinopathy by Inducing Chond-rogenic Differentiation with Kartogenin. PLoS One. 2016;11(2):e0148557. doi:10.1371/journal. pone.0148557
10. Decker RS, Koyama E, Enomoto-Iwamoto M, et al. Mouse limb skeletal growth and synovial joint development are coordinately enhanced by Karto-genin. Developmental Biology. 2014;395(2):255-67. doi:10.1016/j.ydbio.2014.09.011
11. Waller KA, Zhang LX, Elsaid KA, et al. Role of lubricin and boundary lubrication in the prevention
of chondrocyte apoptosis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2013;110(15):5852-7. doi:10.1073/pnas.1219289110
12. Frost-Christensen LN, Mastbergen SC, Vianen NE, et al. Degeneration, inflammation, regeneration, and pain/disability in dogs following destabiliza-tion or articular cartilage grooving of the stifle joint. Osteoarthritis Cartilage. 2008;16(11):1327-35. doi:10.1016/j.joca.2008.03.013
13. Da Rosa AS, Dos Santos AF, Da Silva MM, et al. Effects of Low-level Laser Therapy at Wavelenghts of 660 and 808 nm in Experimental Model of Osteoarthritis. Photochemistry and Pho-tobiology. 2012;88(1):161-6. doi:10.1111/j.1751-1097. 2011.01032.x
14. American Society for Testing and Materials. ASTM F2451 05(2010) Standard Guide for in vivo Assessment of Implantable Devices Intended to Repair or Regenerate Articular Cartilage Available at: http://www.astm.org/Standards/F2451.htm Accessed: 2019 May 27.
15. Smink JJ, Koedam JA, Koster JG. Dexame-thasone-induced growth inhibition of porcine growth plate chondrocytes is accompanied by changes in levels of IGF axis components. Journal of Endocrinology. 2002;174(2):343-52.
16. DeRousseau CJ. Aging in the musculoskeletal system of rhesus monkeys. II. Degenerative joint disease. American Journal of Physical Anthropology. 1985;67(3):177-84. doi:10.1002/ajpa.1330670303
17. Fazal-Ur-Rehman Bhatti, Karen A Hasty, Hongsik Cho. Kartogenin Induced Chondrogenesis of Stem Cells and CartilageRepair. International Journal of Stem Cell Research & Therapy. 2016;3(2):192-5. doi:10.23937/2469-570X/1410036
18. Vukasovic A, Pusic M, Kostesic P, et al. Preclinical animal model - novel technology for articular cartilage repair. In: 3rd International Conference on Regenerative Orthopaedics. Zagreb; 2015. P. 53-73.
19. De Almeida P, Lopes-Martins RA, De Marchi T, et al. Red (660 nm) and infrared (830 nm) low-level laser therapy in skeletal muscle fatigue in humans: what is better? Lasers in Medical Science. 2012;27(2):453-8. doi:10.1007/s10103-011-0957-3
20. Kulchitskaia DB, Konchugova TV. Effects of High-Intensity Laser Therapy on Microcirculation in Patients with Gonarthrosis. Doctor.ru. 2014; (13):59-61. (In Russ).
21. Bayat M, Ansari E, Gholami N, et al. Effect of low-level helium-neon laser therapy on histologi-cal and ultrastructural features of immobilized rabbit articular cartilage. Journal of Photochemistry andPhotobiology B: Biology. 2007;87(2):81-7.
22. Sharma SK, Kharkwal GB, Sajo M, et al. Dose response effects of 810 nm laser light on mouse primary cortical neurons. Lasers in Surgery and Medicine. 2011;43(8):851-9. doi:10.1002/lsm.21100
23. Joensen J, Gjerdet NR, Hummelsund S, et al. An experimental study of low-level laser therapy in rat
Achilles tendon injury. Lasers in Medical Science. 2012;27(l):103-7. doi:10.1007/sl0103-011-0925-y
24. Malanin DA, Pisarev VB, Novochadov VV. Vosstanovlenie povrezhdenij hryashcha v kolennom sustave. Eksperimental'nye i klinicheskie aspekty. Volgograd; 2010.
25. Kuroki K, Cook CR, Cook JL. Subchondral bone changes in three different canine models of osteoarthritis. Osteoarthritis Cartilage. 2011;19(9): 1142-9. doi:10.1016/j.joca.2011.06.007
26. Garner BC, Stoker AM, Kuroki K, et al. Using animal models in osteoarthritis biomarker research. Knee Surgery, Sports Traumatology, Ar-throscopy. 2011;24(4):251-64. doi:10.1055/s-0031 -1297361
27. O'Connell GD, Lima EG, Liming B, et al. Toward engineering a biological joint replacement. Knee
Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 2012; 25(3):187-96. doi: 10.1055/s-0032-1319783
28. Hoemann C, Kandel R, Roberts S, et al. International Cartilage Repair Society (ICRS) recommended guidelines for histological endpoints for cartilage repair studies in animal models and clinical trials. Cartilage. 2011;2(2):153-72. doi:10.1177/ 1947603510397535
29. Frisbie DD, Cross MW, McIlwraith CW. A comparative study of articular cartilage thickness in the stifle of animal species used in human pre-clinical studies compared to articular cartilage thickness in the human knee. Veterinary and Comparative Orthopaedics and Traumatology. 2006;19(3):142-6.
30. Arens D, Sigrist I, Alini M, et al. Seasonal changes in bone metabolism in sheep. Veterinary Journal. 2007; 174(3):584-91. doi:10.1016/j.tvjl.2006.10.001
Информация об авторах [Authors Info]
Айрапетов Георгий Александрович - к.м.н., доцент кафедры травматологии и ортопедии, Ставропольский государственный медицинский университет, Ставрополь, Российская Федерация. E-mail: AirapetovGA@yandex.ru SPIN: 7333-6640, ORCID ID: 0000-0001-7507-7772.
Georgi A. Airapetov - MD, PhD, Associate Professor of the Department of Traumatology and Orthopedics, Stavropol State Medical University, Stavropol, Russian Federation. E-mail: AirapetovGA@yandex.ru SPIN: 7333-6640, ORCID ID: 0000-0001-7507-7772.
Алим Жагафарович Хуртуев - заочный аспирант кафедры патологической анатомии, Ставропольский государственный медицинский университет, Ставрополь, Российская Федерация. ORCID ID: 0000-0003-3041-6157.
Alim Zh. Khurtuev - Correspondence Post-Graduate Student of the Department of Pathological Anatomy, Stavropol State Medical University, Stavropol, Russian Federation. ORCID ID: 0000-0003-3041-6157.
Цитировать: Айрапетов Г.А., Хуртуев А.Ж. Оптимальный выбор животного для экспериментальной работы на крупных суставах в травматологии и ортопедии (обзор литературы) // Наука молодых (Eruditio Juvenium). 2020. Т. 8, №1. С. 98-105. doi:10.23888/HMJ20208198-105
To cite this article: Airapetov GA, Khurtuev AZh. Optimal choice of animal for experimental work on large joints in traumatology and orthopedics (literature survey). Science of the young (Eruditio Juvenium). 2020;8(1):98-105. doi:10.23888/HMJ20208198-105
Поступила / Received: 15.04.2019 Принята в печать / Accepted: 02.03.2020
