CC BY
7
¿ались недостоверными (х2=1,46—2,21; Я>0,1). Порядок величин индексов бактери-цидности кожи живота среди групп затравленных животных во втором интервале оказался достоверным х2 = 3,85—19,06; Р<0,05); недостоверным в этом интервале было превышение контрольного значения индекса бактерицидности кожи живота над таковым в группе кроликов, затравленных севином в малой дозе х2= 1»26; Р>0,2).
Итак, ститистической обработкой доказана достоверность выявленного угнетающего действия севина н метахлорфеннлизоцианата на бактерицидную функцию кожи; повышение вводимой дозы этих веществ вызывает более заметное снижение бактерицидности кожи. Севин оказывает более слабое угнетающее действие на бактерицидную функцию кожи, чем метахлорфенилизоцианат.
Выводы
1. Введение химических веществ в организм теплокровных животных может оказать влияние на бактерицидные свойства кожи. Степень снижения бактерицидности последней зависит от токсических свойств химических веществ.
2. Наиболее заметное снижение бактерицидности кожи под влиянием севина и метахлорфенилизоцианата определяется в первые 5 мин. экспозиции. Степень угнетающего действия севина и метахлорфенилизоцианата на бактерицидные свойства кожи в зависимости от вида вещества и его дозы отчетливо определяется в интервале 10 мин.
3. Определение бактерицидного индекса кожи может быть рекомендовано для выявления иммунобиологического состояния животных в санитарно-токсикологических исследованиях.
ф
ЛИТЕРАТУРА
*
Каплан А. Е. В кн.: Сборник научных трудов Донецк, научно-исслед. ин-та травматологии и ортопедии. Донецк, 1962, в. 5, стр. 159.—Клемпарская Н. Н. и др. (ред.) Вопросы инфекции иммунитета и аллергии при острой лучевой болезни. М., 1958.—Лебедева К. М. В кн.: Сборник трудов Челябинск, мед. ин-та. Челябинск, 1957 стр. 145.—Лизгунова А. В. Вестн. дерматол., 1958, № 4, стр. 20.— Черкинский С. Н. В кн.: Санитарная охрана водоемов от загрязнения промышленными сточными водами. М., 1949, в. 1, стр. 52.—Первушина Л. А. Ж. микро-биол., 1955, № 8, стр. .70.
Поступила 13/1 1965 г.
УДК 614.72-074.543.9
ОБ ИСПОЛЬЗОВАНИИ МЕТОДА ВИТАЛЬНОГО ОКРАШИВАНИЯ ТКАНЕЙ ПРИ НОРМИРОВАНИИ АТМОСФЕРНЫХ ЗАГРЯЗНЕНИИ
А. И. Копанев
Уфимский научно-исследовательский институт гигиены
и профессиональных заболеваний
Метод витального окрашивания тканей разработан Д. Н. Насоновым и В. Я. Александровым. В многочисленных работах с применением этого метода показано, что практически любой раздражитель при определенной силе и продолжительности воздействия ведет к определенному комплексу изменений физико-химического состояния тканей, в основе которого лежат денатурационные изменения клеточных белков. Внешне эта реакция клетки проявляется рядом признаков, не зависящих от природы воздействующего агента: уменьшением степени дисперсности коллоидов, протоплазмы, увеличением ее вязкости, сдвигом реакции кле-
точного содержимого в кислую сторону и изменением сорбционных
свойств цитоплазмы и ядра по отношению к витальным красителям. Изменения, происходящие в тканях, проще всего можно обнаружить по
изменению способности к связыванию витальных красителей: поврежденная ткань обладает большей поглотительной способностью.
Я. И. Ажипа и О. Я. Острый отметили, что определение только показателя накопления тканями витального красителя не дает возможности судит^ об изменениях, происходящих в них. В частности, один этот показатель не позволяет оценить способность ткани освобождаться от витальной краски, являющейся для нее балластом, т. е. получить данные о включении компенсаторных механизмов, направленных на нормализацию функционального состояния тканей.
Отношения между величинами накопления и выведения витального красителя наиболее полно определяют биофизическое и биохимическое состояние тканей. Для количественной характеристики трофических взаимоотношений Я. И. Ажипа и О. Я. Острый предложили интегральный показатель — трофический потенциал тканей: отношение величины сорбированной краски к величине ее остатка в тканях. Этот показатель характеризует не только сдвиги исходной резистентности тканей по отношению к раздражителю, но и их способность восстанавливать и удерживать свое биофизическое и биохимическое состояние в соответствии с условиями среды.
Метод витальной окраски оправдал себя в некоторых токсиколого-гигиенических исследованиях (Н. И. Гребенскаяь, Б. М. Штабский). Однако их авторы изучали изменение показателя поглощения ее при действии высоких концентраций окиси углерода. Мы ставили своей целью изучить методом витального окрашивания функциональное состояние тканей животных, длительно вдыхавших относительно невысокие концентрации паров этиленгликоля, и определить порог действия этого вещества.
Опыт ставили на белых крысах весом по 250—350 г. Три группы животных круглосуточно в течение 60 суток затравливали парами этиленгликоля в концентрациях 75, 15 и 3 мг/м*\ 4-я группа была контрольной. По окончании затравки в опыт из каждой группы было взято по 8 животных. Всем крысам внутрибрюшинно вводили 0,5% раствор нейтрального красного из расчета 0,1 мл на 50 г веса. Половину животных из каждой группы забивали декапитацией через полчаса после введения краски для определения показателя накопления. Другую половину забивали через 2 часа для определения показателя выведения. Для выявления степени витального окрашивания использовали метод элюирования с последующей колориметрией вытяжек. Краситель элюировали 2% раствором серной кислоты в 96% спирту. Элюирование краски из навесок происходило в течение 24 часов. Колориметрию вели на фотоэлектроколо-риметре ФЭК-М. Количество краски рассчитывали в микрограммах на 1 г веса ткани.
Определяли показатель накопления, выведения и трофический потенциал. Все результаты были подвергнуты статистической обработке.
У всех животных исследовали печень, почки, головной мозг, легкие и селезенку.
Сводные данные о накоплении витального красителя представлены
в табл. 1.
В 1-й группе (75 мг/'мг) повышенный показатель накопления был зафиксирован в тканях печени, почек и головного мозга. Во 2-й группе (15 мг/м3), как и можно было ожидать, увеличение поглощения витального красителя оказалось менее выраженным и наблюдалось только в тканях печени. Полученные нами результаты совпадают с литературными данными о преимущественном влиянии этиленгликоля на центральную нервную систему, почки и печень.
Для выявления сдвигов, направленных на компенсацию нарушенных функций, был изучен показатель выведения витального красителя.
Сводные данные о выведении витального красителя представлены в
табл. 2.
' 1 Автореферат диссертации. Л. 1951.
Таблица I
Показатель накопления витального красителя (в мкг на 1 г веса ткани)
Группа животных Величина дозы этиленгликоля (в мг/мя) 4 ^ / Контроль
Органы ^ч. 75 • 15 3
Легкие........ Печень........ Почки ......... Селезенка ....... Головной мозг ..... 341± 16,8 (о) 278±14,5(а) 240±5,6(в) 730±45,4(о) 90±3,4(в) 310±4,6(о) 270±25,0(в) 171±8,7(о) 625±77,0 (о) 60±3,4(о) 279±32,8(о) 205± 18.2(о) 190±24,7(о) 475±48,5(о) 57±7,7(о) • 304±49,0 183±11,0 165±6,7 516±63,0 55±4,5
Примечание. Степень достоверности: а —95%; в — 99%; с — 99,9%; о — не достоверно.
Таблица 2
• ^^ Показатель выведения витального красителя (в мкг на 1 г веса ткани)
• ^^^^ Группа животных Органы Величина дозы этиленгликоля (в мг/м3) Контроль •
75 15 3
Легкие........ Печень........ Почки......... Селезенка ....... Головной мозг ..... 318±14,0(а) 120±2,2(а) 149±4.5(а) 318±22.5(о) 44±5,6(о) 218±7,6(о) 90±9,4(а) 60±9,0(а) 271 ±28,1 (о) 45±3,4(о) 206±20,5(о) 156± 13,4 (о) 100±2,8(о) 447±41,5(о) 55±5,6(о) # 216± 17,9 154±5,6 106±8,0 434 ±52 ,7 51±8,5
Примечание. Степень достоверности: а—95%; о — недостоверно.
Таблица 3
Трофический потенциал тканей
Группа животных
Органы
Величина дозы этиленгликоля (в мг/м%)
75
15
Контроль
Легкие . . .
Печень . . .
Почки .... Селезенка . . Головной мозг
1,07±0,07(а) 2,31 ±0,14 (в) 1,61 ±0,07 (о) 2,32±0,10(в) 2,11±0,29(а)
1,42±0
3,05±0 3,00±0 2,31 ¿0 1,33±0
,23(о) ,36(а) ,27(а)
,21 (а) ,04(о)
1,36±0,18(о) 1,37±0,09(о) 1,88±0,23(о) 1,05±0,06(о) 1,03±0,10(о)
1,47±0,07 1,19±0,08 1,59±0,16 1,18±0,08 1,13±0,07
Примечание. Степень достоверности: а — 95%; в — 99%; о — недостоверно
Показатель выведения красителя, как и накопления его, отличался от контроля в 2 первых группах подопытных животных.
В группе животных, на которых воздействовали наименьшей из изучавшихся нами концентраций (3 мг/м3), не выявлено разницы с контрольной группой по показателям накопления и выведения витального красителя.
На основе этих показателей мы вычисляли трофический потенциал тканей. Сводные данные о нем представлены в табл. 3.
Трофический потенциал как интегральный показатель выявил большие изменения функционального состояния тканей у подопытных животных по сравнению с показателями накопления и выведения в отдельности. У животных, на которых воздействовали этиленгликолем в концентрации 75 мг/м3 (1-я группа), снижение трофического потенциала наблюдалось в легких. Это можно объяснить тем, что сила воздействия при такой концентрации вещества превысила компенсаторные возможности органа. Трофический потенциал тканей почек оказался на одном уровне с контрольной группой, т. е. альтерирующее действие в момент исследования было уравновешено за счет мобилизации компенсаторных механизмов. В печени, головном мозгу и селезенке наблюдалось достоверное повышение трофического потенциала, указывающее на усиление функции клеток этих органов. У животных, подвергавшихся воздействию паров этиленгликоля в концентрации 15 мг/м3 (2-я группа), повышение трофического потенциала найдено в нечени, почках и селезенке. Эти-ленгликоль в концентрации 3 мг/м3 (3-я группа) ни в одном исследовании органов животных не вызвал изменений трофического потенциала, как и других показателей витального окрашивания по сравнению с контрольной группой. Эта концентрация вещества оказалась подпоро-говой и по действию на хронаксию мышц-антагонистов, ацетилхолин-
эстеразную активность крови и некоторые другие тесты.
Таким образом, метод витального окрашивания тканей чувствителен и заслуживает использования в практике нормирования атмосферных загрязнений.
ЛИТЕРАТУРА
Ажипа Я. И., Острый О. Я. Пат. физиол., 1960, № 5, Стр. 39.—О н и же. Бюлл. экспер. биол., 1960, № 11, стр. 46— Н а с о н о в Д. Н., Александров В. Я. Реакция живого вещества на внешние воздействия. М.—Л., 1940.—Штабский Б. М. Гиг. труда, 1963, № 12, стр. 54.
Поступила 11/1 1965 г.
УДК 613.63 : 613.15]-074 : 547.821
К ВОПРОСУ ОБ ОПРЕДЕЛЕНИИ ПИРИДИНА В ВОЗДУХЕ
Р. В. Горская
Научно-исследовательский институт физиологии труда, Донецк
Пиридин и его гомологи широко применяются в ряде отраслей промышленности, в связи с чем производство их значительно возросло. Эти вещества обладают высокой токсичностью (предельно допустимая концентрация 5 мг/м3), поэтому необходимо определение их содержания в воздухе производственных помещений.
Концентрации пиридина исследуют несколькими методами (М. И. Таренко; В. 3. Долгополова и Р. И. Оглоблина; Т. А. Лебедева и М. А. Троценко). Все они основаны на реакции расщепления пиридинового цикла с помощью бромциана и образования окрашенного комплекса при конденсации продуктов расщепления с некоторыми ароматическими аминами. Определяя концентрации пиридина в воздушной среде цехов, перерабатывающих пиридиновые основания, мы установили, что эти методы не лишены недостатков. К ним относится прежде всего узкий интервал рН, в котором реакция проходит количественно. Так, реакция с бромциэном и анилином (М. И. Таренко) или сульфани-латом аммония (Т. А. Лебедева и М. А. Троценко), как указывают сами
