CC BY
43
СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ БИОЛОГИЯ, 2018, том 53, № 3, с. 624-633
УДК 633.811:582.71:581.3 doi: 10.15389/agrobiology.2018.3.624rus
НЕКОТОРЫЕ ОСОБЕННОСТИ ЭМБРИОЛОГИИ ПРЕДСТАВИТЕЛЕЙ ВИДОВ Rosa spinosissima L., R. canina L. И СОРТОВ R. x damascena Mill. В НОРМЕ И ПРИ ВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ*
С.В. ШЕВЧЕНКО, Т.Н. КУЗЬМИНА
Виды рода Rosa L., 1753, обладают высокими декоративными и хозяйственно ценными признаками, поэтому издавна используются в садово-парковом строительстве, а также в качестве лекарственного и ароматического сырья. Многие годы с розами ведется селекционная работа, результатом которой стало получение более 30 тыс. сортов. Для создания новых форм и сортов необходимы сведения об особенностях формирования генеративных элементов. Нашей целью было выявление особенностей развития и строения мужских и женских генеративных структур у видов R. spinosissima L. и R. canina L., а также Rosa x damascena Mill. (сорта Джалита и Фестивальная) как перспективных исходных форм, а также сравнительный анализ зрелой пыльцы визуально здоровых и пораженных вирусами растений. Сбор растительного материала R. spinosis-sima и R. canina для приготовления постоянных препаратов и наблюдения за цветением проводили в горном Крыму в 2016 году на северо-восточном склоне горы Чатыр-Даг. Сорта R. damascena Джалита и Фестивальная отбирали в коллекции Никитского ботанического сада (Крым). Изучаемые виды рода Rosa — энтомофильные растения, пыльца которых переносится насекомыми. Их пыльники 4-гнездные, 2-тековые, стенка микроспорангия формировалась центростремительно и состояла из эпидермиса, эндотеция, 2-3 средних слоев и тапетума — производного вторичной париетальной ткани. Тетрада микроспор образовывалась симультанно. Дифференцирующий митоз в микроспорах приводил к образованию 2-клеточных пыльцевых зерен. Зрелые пыльцевые зерна 2-клеточные, трехпоровые. Стенка микроспорангия зрелого пыльника представлена эпидермисом, покрытым кутикулой, фиброзным эндотецием и остатками среднего слоя. Гинецей розы состоял из множества свободных плодолистиков, содержащих по 1-2 семязачатка. Семязачаток анатропный, битегмальный, крассинуцеллятный. В халазальной зоне формировалась многоклеточная гипостаза с толстостенными клетками. Микропиле было образовано внутренним интегументом, который в своем развитии опережает наружный. Археспорий многоклеточный, дифференцировался в субэпидермальном слое семязачатка. В результате мейоза образовывались в основном линейные тетрады мегаспор, функционирующими были халазальные или эпихала-зальные мегаспоры, из которых формировались зародышевые мешки Polygonum-типа. Зрелые зародышевые мешки 8-ядерные, 7-клеточные. Яйцевой аппарат состоял из яйцеклетки и 2 синер-гид, антиподы представлены тремя клетками. Большинство зародышевых мешков постепенно облитерировало и дозревал только один. Установлена морфогенность зрелой пыльцы указанных видов и ее жизнеспособность (аномальных пыльцевых зерен может быть до 30 %). Диаметр пыльцевых зерен варьировал от 19 до 30 мкм. Инфицированность растений вирусными патогенами приводила к увеличению количества аномалий пыльцы, изменению размеров пыльцевых зерен и в конечном итоге к их дегенерации. Доля дефектных пыльцевых зерен могла достигать 50 %. В результате эффективных процессов опыления и оплодотворения развивались плоды — многоко-стянки, образованные костянками, заключенными в мясистые гипантии. Таким образом, по основным эмбриологическим признакам R. spinosissima и R. canina, а также изученные сорта R. damas-cena сходны с другими представителями семейства Rosaceae и особенно подсемейства Rosoideae. В процессе селекционной работы при выборе родительских форм для гибридизации следует обращать внимание не только на жизнеспособность генеративных структур, но и определять степень инфицированности растений, поскольку наличие патогенов приводит к значительному снижению репродуктивной способности.
Ключевые слова: Rosa sp., мужские и женские генеративные структуры, вирусная инфекция, репродуктивная способность.
Благодаря разнообразию форм, обильному и длительному цветению роза издавна используется в садово-парковом строительстве. Первые сведения о выращивании роз появились за 4 тыс. лет до н.э., впоследствии было создано более 30 000 сортов, обладающих декоративностью (1-3) и ценными лекарственными признаками (4-7). В настоящее время расширяется сортимент роз, устойчивых к стрессовым факторам среды, болезням и вредителям (8-10). Цитологические и генетические исследования показали
* Работа выполнена при поддержке РНФ (грант № 14-50-00079).
624
возможность получения полиплоидных форм (11-13), в последние десятилетия для выведения и размножения ценных генотипов розы широко применяется метод культуры in vitro (14-17). Важно отметить, что в качестве лекарственных растений могут быть использованы разные виды рода Rosa (18-20).
Род Rosa имеет широкий ареал, разносторонне изучен и активно используется в гибридизации (21-24). Род включает 10 секций, в их число входят Pimpinellifoliae и Caninae, представители которых, наряду с другими, служат исходными формами садовых сортов (6, 25-28).
Активное развитие промышленности и сельского хозяйства, повышение загрязненности воздуха и почвы часто приводят к аномальному развитию генеративной сферы растений, в связи с чем при проведении селекционных работ необходим тщательный подбор родительских форм. В настоящем сообщении мы представили результаты изучения процессов формирования мужского и женского гаметофита у двух перспективных исходных форм, используемых в селекции розы, — Rosa spinosissima L. и R. сanina L., и у двух высокопродуктивных сортов эфиромасличной розы (R. х dama-scena Mill.) — Джалита и Фестивальная. Кроме того, оценивали качество пыльцы у визуально здоровых и пораженных вирусами растений.
Нашей целью было выявление особенностей развития и строения генеративных структур у представителей трех видов рода Rosa в норме и при вирусной инфекции.
Методика. Наблюдение за цветением и сбор растительного материала Rosa spinosissim и R. canina для приготовления постоянных препаратов проводили в горном Крыму в 2016 году в условиях естественного произрастания изучаемых видов в различных популяциях на северо-восточном склоне горы Чатыр-Даг на высоте 750-868 м над уровнем моря. Биоматериал сортов Джалита и Фестивальная (R. х damascena) отбирали в коллекции Никитского ботанического сада.
Для приготовления постоянных цитоэмбриологических препаратов бутоны на разных стадиях развития фиксировали в смеси Карнуа, содержащей 96 % водный раствор этилового спирта, хлороформ и ледяную уксусную кислоту в соотношении 6:3:1. Материал обезвоживали бутиловым спиртом и ксилолом, после чего заключали в парафин (34, 35). Готовили парафиновые серийные срезы толщиной 10-12 мкм при помощи ротационного микротома МРТУ (Россия). Препараты окрашивали метилгрюнпи-ронином с подкраской алциановым синим (38) и анализировали с помощью световых микроскопов Jenaval и AxioScope A.1 («Carl Zeiss Microscopy GmbH», Германия). Для документирования использовали цифровой фотоаппарат PowerShot A550 («Canon, Inc.», Малайзия) и систему анализа изображения AxioCamERc5s («Carl Zeiss Microscopy GmbH», Германия).
Для цитоморфологической характеристики пыльцевых зерен R. canina, R. spinosissima и R. х damascena готовили временные препараты средних образцов пыльцы, окрашивая ее 1 % ацетоорсеином. Учитывали число морфологически нормальных и дефектных пыльцевых зерен. К первым были отнесены зерна с однородной окраской, четко выраженными ядром вегетативной клетки и генеративной клеткой. Пыльцевые зерна с визуальными признаками деструкции цитоплазмы и ядер вегетативной и генеративной клеток считались дефектными. Их долю определяли как процентное отношение числа пыльцевых зерен с аномалиями к общему числу учтенных пыльцевых зерен для каждого вида или сорта. Диаметр пыльцевых зерен измеряли на постоянных препаратах средних образцов пыльцы (37) при помощи программного приложения AxioVision Rel.4.8. («Carl Zeiss
Microscopy GmbH», Германия).
Статистически значимые различия по доле дефектных пыльцевых зерен, взятых из пыльников растений R. x damascena с визуальными признаками заражения и бессимптомных, определяли методом преобразования долей в углы по критерию Фишера (F9) при p < 0,05 (36). Обработку данных, которая учитывала дескриптивную статистику и сравнение выборок по диаметру пыльцевых зерен у растений при вирусной инфекции и без ее симптомов, проводили с помощью модуля основных статистик и таблиц программного приложения Statistica 6.0. («StatSoft. 1пс.», США), используя t-критерий Стьюдента. В статье представлены средние арифметические значения (М) и стандартные ошибки средних (±SEM).
Результаты. Rosa spinosissima L. (син. Rosa pimpinellifolia L.) — кустарник высотой до 2 м с сильно колючими побегами. Шипы разных размеров, тонкие, прямые, обычно расширенные у основания. Листья с
5-11 листочками и голыми прилистниками. Цветки одиночные, на длинных цветоножках, чашелистики простые, до 15 мм длиной, остающиеся при плодах. Венчики белые, до 5 см в диаметре, лепестки выемчатые, ги-пантии шаровидные, столбики образуют большую головку рылец. Плоды до 15 мм длиной, шаровидные или сплюснуто-шаровидные, зрелые темного цвета (до черного). Несмотря на довольно обширный ареал, численность популяций R. spinosissima сокращается, поэтому вид внесен в Красные книги ряда регионов, например Курской области, Республики Хакасия (29, 30). R. spinosissima — предок многих сортов, в частности обширной группы шотландских роз (Scots Roses), которые известны с 1600 года и, согласно современным представлениям, относятся к классу Hybrid Spinosissima (31). В прошлом многие авторы рассматривали R. spinosissima и R. pimpinellifolia как разные виды, но молекулярные исследования образцов из природных популяций Великобритании доказали, что это один вид (10). Сорта роз, созданные на основе R. spinosissima, морозостойки и устойчивы к болезням (32). Rosa canina L. — листопадный кустарник, достигающий в высоту 2,0-2,5 м. Побеги толстые, дуговидно изогнутые. Шипы редкие, серповидные, с очень коротким основанием. Цветки одиночные или собраны по 3-5 в верхушечное щитковидное соцветие. Венчик белой или ярко-розовой окраски, диаметром 5-8 см, чашелистики широколанцетные, с обильными перистыми придатками, после цветения отгибаются и задолго до созревания плодов опадают (33). Плоды гладкие, лоснящиеся, оранжево-красного цвета с множеством волосистых семян. Rosa x damascena — гибридная форма R. gallica и R. moschata. ДНК-анализ показал также присутствие в родословной этого гибрида третьего вида — R. fedtschenkoana. Сорт Джалита — кустарник, достигающий высоты 2 м, цветки розовые с сиреневым оттенком,
6-7 см в диаметре с мягким оранжево-желтым цветом лепестков, имеют нежный аромат. Сорт Фестивальная — кустарник высотой до 170 см, цветки розовые или бледно-розовые, 5-6 см в диаметре, с сильным ароматом.
Все изученные дикорастущие виды и сорта — энтомофильные растения, пыльца которых переносится насекомыми. В результате эффективных процессов опыления и оплодотворения развиваются плоды — многоко-стянки, образованные костянками, заключенными в мясистые гипантии, яркая окраска которых привлекает птиц. В Крыму роза цветет в мае-июне. Цветки актиноморфные, обоеполые, 5-членные, у R. spinosissima и сортов Джалита и Фестивальная они ароматные, у R. canina без запаха. Андроцей представлен множеством тычинок, расположенных кругами. Сначала раскрывались наружные тычинки, затем внутренние. Пыльники 4-гнездные, 2-тековые. Плацентоид вдается внутрь микроспорангия. Стенка микро-
спорангия формируется центростремительно. Сначала в субэпидермальном слое дифференцировалась археспориальная клетка, которая, делясь, образовывала первичную париетальную и спорогенную клетки. Последняя, развиваясь, формирует многослойную спорогенную ткань. Париетальная клетка, разделившись, образует вторичные париетальные клетки, одна из которых производит тапетум, а вторая, продолжая делиться, — эндотеций и средние слои. Сформированная стенка микроспорангия состояла из эпидермиса, эндотеция, 2-3 средних слоев и тапетума (рис. 1, Б). После завершения делений в спорогенной ткани ее клетки обособлялись, вокруг них откладывалась каллоза, образовывались микроспороциты, в которых проходил мейоз и симультанное образование тетрады микроспор. Расположение микроспор в тетраде, как и у видов рода Malus (35), было тетраэдральным и изобилатеральным (см. рис. 1, В, Г).
A Б
Рис. 1. Фрагменты микроспорангиев Rosa spinosissima L. на разных стадиях развития: А —
деление археспориальных клеток, Б — сформированная стенка микроспорангия, В, Г — тетрады микроспор, Д — дифференцирующий митоз (окрашивание метилгрюнпиро-нином с подкраской алциановым синим, микроскоп AxioScope A.1, «Carl Zeiss Microscopy GmbH», Германия).
Тапетум однослойный, его клетки крупные, двуядерные. Первые признаки деструкции клеток тапетума наблюдались в период мейоза и образования тетрады микроспор, а их полный лизис наступал во время формирования пыльцевых зерен. Клетки среднего слоя, примыкающего к тапетуму, дегенерировали, клетки вто-
рого — сплющивались (см. рис. 1, Д). Наружные тычинки в развитии опе-
Рис. 2. Фрагменты микроспорангиев и мегаспорангиев Rosa canina: А, Б —
фрагменты микроспорангиев зрелых пыльников с пыльцой (микроскоп AxioScope A.1, «Carl Zeiss Microscopy GmbH», Германия), В — археспори-альные клетки в семязачатках, Г — деление археспориальных клеток, Д, Е — мейоз в мегаспороцитах, Ж — функционирующая эпихалазальная мегаспора (микроскоп Jenaval, «Carl Zeiss Microscopy GmbH», Германия). Окрашивание метилгрюнпиронином с подкраской алциановым синим. Увеличение х400.
Ж
А
Б
режали внутренние. Когда наружные пыльники содержали 2-клеточные пыльцевые зерна, во внутренних наблюдался распад тетрад. На стадии дифференцирующего митоза стенка микроспорангия состояла из эпидермиса, покрытого кутикулой, эндотеция, на стенках клеток которого образовывались фиброзные утолщения, и сплющенных клеток среднего слоя (см. рис. 1, Д).
Стенка микроспорангия зрелого пыльника была представлена эпидермисом, покрытым кутикулой, фиброзным эндотецием и остатками среднего слоя (рис. 2, А, Б). Зрелые пыльцевые зерна 2-клеточные, их основная масса была морфологически нормальной, однако часть оказалась дефектной. У R сanina количество дефектных пыльцевых зерен могло насчитывать до 30 %, у R. spinosissima — примерно 15 % (табл. 1). Спермии образовывались в пыльцевых трубках при их прорастании по тканям столбика.
1. Формирование пыльцы у розы разных видов и сортов при вирусном заражении и без его симптомов (Республика Крым, июнь 2016 год)
Вид, сорт
Общее число ПЗ, шт._
Морфологически нормальные ПЗ, шт.
Дефектные ПЗ
всего, шт.
%
Fm
Rosa canina R. spinosissima R. x damascenfr Джалита
без симптомов заражение Фестивальная без симптомов заражение_
3195 2390
1030 3260
2230 1050
730 1880
1065 340
300 1380
31,4 14,3
29,0 42,3*
13,64
204,39
1240 870 370 29,8
2400 1100 1300 54,1*
Примечание. ПЗ — пыльцевые зерна, F — значение критерия Фишера, полученное с использованием метода ф (36). Пропуски означают, что показатель не определяли.
* Различия между количеством морфологически нормальных пыльцевых зерен при заражении растения вирусами и без симптомов заражения статистически значимы при p < 0,05.
Гинецей розы состоял из множества свободных плодолистиков, содержащих по 1-2 семязачатка. Пестик прямой, столбик с головчатым рыльцем. Семязачаток довольно крупный, анатропный, битегмальный, красси-нуцеллятный. В халазальной зоне семязачатка формировалась многоклеточная гипостаза с толстостенными клетками. Микропиле было образовано внутренним интегументом, который в своем развитии опережал наружный.
Археспорий у Rosa sp. многоклеточный, как и у многих других видов Rosaceae (40). B результате деления археспория образовывались париетальная и спорогенная клетки (см. рис. 2, В, Г), последняя преобразовывалась в мегаспороцит, а из париетальной клетки развивался нуцеллус. В результате мейоза (см. рис. 2, Д, Е) формировались линейные тетрады мегаспор. Функционирующей обычно были халазальная или эпихалазальная мегаспоры (см. рис. 2, Ж), из которых развивался 7-клеточный 8-ядерный зародышевый мешок Polygonum-типа. В семязачатке могло быть несколько зародышевых мешков, но до зрелого состояния обычно развивается один.
Биогенные и абиогенные стрессовые факторы, в том числе поражение вирусами, влияют на физиолого-биохимические параметры растений, что нарушает метаболическое равновесие и отражается на анатомо-морфологических характеристиках. Изменения признаков листовых пластинок, такие как пятнистость, морщинистость и карликовость, используются для визуальной оценки зараженности растения и его жизнеспособности в целом (41-44). Состояние мужского гаметофита, характеризующееся морфологической зрелостью пыльцевых зерен, — один из наиболее доступных и результативных признаков, дающих представление о степени стрессовых воздействий различных факторов на растение и его жизнеспособность (43, 44). Ранее при диагностике вирусных патогенов в раститель-
ном материале эфиромасличной розы (Я. х damascena) было выявлено, что большая часть отобранного материала (до 70 %) поражена вирусными патогенами разного происхождения (45). Внешнее проявление вирусного заражения особенно заметно на листьях и цветках в виде морщинистости, мезжилкового хлороза и пятнистости различного характера (рис. 3), что становилось результатом изменений состояния их внутренних структур.
А Б
ы
ш
Рис. 3. Листья растений эфиромасличной розы (Rosa damascena) сортов Джалита (А) и Фестивальная (Б) с симптомами вирусной инфекции (изменение окраски и морщинистость) (Республика Крым, Никитский ботанический сад, 2016 год).
2. Морфометрические параметры пыльцевых зерен у растений Rosa canina и сортов R. х damascena при вирусном заражении и без его симптомов (Республика Крым, 2016 год)
Вид, сорт | Состояние растения iMtSEM, мкм | min-max, мкм | а Cv, % t
R. canina Без симптомов 30,88±0,18 24,18-38,45 2,41 7,80 26,140
Заражение 22,91±0,25 19,16-39,92 2,37 10,34*
R. х damascena:
Джалита Без симптомов 24,69±0,11 20,18-30,62 1,70 6,89 6,430
Заражение 25,76±0,13 21,21-35,12 2,01 7,08*
Фестивальная Без симптомов 24,56±0,11 20,40-31,65 1,76 7,17 0,096
Заражение 24,55±0,10 19,91-30,25 1,62 6,60
Примечание. М — среднее арифметическое, SEM — стандартная ошибка среднего, min-max — минимальное и максимальное значения выборки, а — среднее квадратическое отклонение, Cv — коэффициент вариации, t — критерий Стьюдента при n = 130.
* Различия по диаметру пыльцевых зерен средних образцов при заражении растения вирусами и без симптомов заражения статистически значимы при p < 0,05.
Морфометрический анализ мужских генеративных структур зараженных вирусами и визуально чистых растений сортов эфиромасличной розы и R. canina показал, что инфицированность приводит к увеличению количества аномальных пыльцевых зерен и изменению их размеров (см. табл. 1, 2). У растений без симптомов заражения формировалось больше морфологически нормальных пыльцевых зерен, а у растений с признаками заражения повышалась доля аномальных и дефектных пыльцевых зерен, что может свидетельствовать о возможных нарушениях в генезисе тех или иных элементов цветка.
Таким образом, по основным эмбриологическим признакам Rosa spinosissima и R. canina, а также изученные сорта R.. х damascena сходны с другими представителями семейства Rosaceae и особенно подсемейства Rosoideae. Они характеризуются центростремительным развитием стенки микроспорангия, симультанным типом формирования тетрады микроспор,
2-клеточными пыльцевыми зернами, многоклеточным археспорием и образованием в семязачатке нескольких зародышевых мешков, большинство из которых на разных стадиях развития облитерируют. Жизнеспособность генеративных структур представленных в настоящей работе видов может обеспечить нормальный репродуктивный процесс, что очень важно для их использования в селекции с целью получения устойчивых к стрессовым факторам сортов. При отборе исходных форм для гибридизации следует обращать внимание не только на жизнеспособность генеративной сферы растений, но и учитывать их инфицированность, поскольку наличие патогенов в растении приводит к снижению его репродуктивной способности.
ЛИТЕРАТУРА
1. Сааков С.Г. Происхождение садовых роз и направление работ в селекции их. М.-Л., 1965.
2. Клименко В.Н. Розы. Симферополь, 1966.
3. Клименко З.К. Биологические основы селекции садовых роз на юге Украины. Докт. дис. Ялта, 1996.
4. Al-Yafeai A., Malarski A., Böhm Y. Characterization of carotenoids and vitamin E in R. rugosa and R. canina: comparative analysis. Food Chem., 2018, 1, 242: 435-442 (doi: 10.1016/j.foodchem.2017.09.070).
5. Cheng B.C., Fu X.Q., Guo H., Li T., Wu Z.Z., Chan K., Yu Z.L. The genus Rosa and arthritis: overview on pharmacological perspectives. Pharmacol. Res., 2016, 114: 219-234 (doi: 10.1016/j.phrs.2016.10.029).
6. Chrubasik C., Roufogalis B.D., Muller-Laduer U., Chrubasik S. A systematic review on the Rosa canina effect and efficacy profiles. Phytother. Res., 2008, 22(6): 725-733 (doi: 10.1002/ptr.2400).
7. Zhamanbayeva G.T., Aralbayeva A.N., Murzakhmetova M.K., Tulekhanov S.T., Danilen-ko A. Cooperative antiproliferative and differentiation-enhancing activity of medicinal plant extracts in acute myeloid leukemia cells. Biomed. Pharmacother., 2016, 82: 80-89 (doi: 10.1016/j.biopha.2016.04.062).
8. Debener T., Hattendorf A., Kaufmann H., Mattiesch L. Progress in positional cloning of diseases resistance gene in roses. Proc. 4th Intern. Symp. «Rose Research and Cultivation». Santa Barbara, California, 2005: 18-22.
9. Valliyodan B., Nguyen H.T. Understanding regulatory networks and engineering for enhanced drought tolerance in plants. Curr. Opin. Plant Biol., 2006, 9: 189-195 (doi: 10.1016/j.pbi.2006.01.019).
10. Boyd P.D.A. Scots Roses: a new look at an exuberant group. Historic Rose Journal, 2004, 28: 2-11.
11. Täckholm G. Zytologische studien über die gattung Rosa. Acta Horti Bergiani, 1922, 7: 97-381.
12. Lim K.Y., Werlemark G., Matyasek R., Bringloe J.B., Sieber V., El Mokadem H., Meynet J., Hemming J., Leitch A.R., Roberts A.V. Evolutionary implications of permanent odd polyploidy in the stable sexual, pentaploid of Rosa canina L. Heredity, 2005, 94(5): 501-506 (doi: 10.1038/sj.hdy.6800648).
13. Dubois A., Remay A., Raymond O., Balzergue S., Chauvet A., Maene M., Pecrix Y., Yang S.-H., Jeauffre J., Thouroude T., Boltz V., Martin-Magniette M.-L., Janczarski S., Legeai F., Renou J.-P., Vergne P., Le Bris M., Foucher F., Bendahmane M. Genomic approach to study floral development genes in Rosa sp. PLoS ONE, 2011, 6(12): e28455 (doi: 10.1371/Journal.pone.0028455).
14. Encyclopedia of rose science. V. 1. Chapter: Cell, tissue and organ culture /A. Roberts, T. Debener, S. Gudin (eds.). Elsevier Academic Press, Amsterdam, 2003: 57-111.
15. Ozel C.A., Arslan O. Efficient micropropagation of English shrub rose "heritage" under in vitro conditions. Int. J. А$пс. Biol., 2006, 8(5): 626-629.
16. Mitrofanova I.V., Brailko, V.A., Lesnikova-Sedoshenko N.P., Mitrofanova O.V. Clonal micropropagation and some physiology aspects of essential oil roses valuable cultivars regeneration in vitro. Agriculture and Forestry, 2016, 62(4): 73-81 (doi: 10.17707/AgricultForest.62.4.09).
17. Mitrofanova I., Grebennikova O., Brailko V., Paliy A., Marko N., Lesnikova-Sedoshenko N., Mitrofanova O. Physiological and biochemical features of some cultivars in essential oil rose (Rosa x damascena Mill.) growing in situ and in vitro. International Journal of PharmTech Research, 2016, 9(7): 226-232.
18. Вдовенко-Мартынова Н.Н., Кобыльченко Н.В., Блинова Т.И. Содержание биологически активных соединений в корнях шиповника (Rosa canina L.) флоры Северного Кавказа. Медицинский вестник Северного Кавказа, 2011, 2: 51-52.
19. Макаревич С.Л., Чулков А.Н., Дейнека В.И., Третьяков М.Ю., Дейнека Л.А., Шатров-
ская В.И. Плоды Rosa spinosissima — ценный материал для получения напитков с высоким антиоксидатным потенциалом. Научные ведомости Белгородского государственного аграрного университета. Серия: Медицина. Фармация, 2011, 22-2: 188-192.
20. Babis A., Kucharska A.Z. PrzydatnosC owocYw Rosa spinosissima i Rosa hibrida do produkcji wysokowitaminowych soków mçtnych. Biul. Wydz. Farm. AMW, 2004, 3: 18-24.
21. Васильева О.Ю. ^стемы размножения представителей рода Rosa L. при адаптации к условиям континентального климата. Сибирский экологический журнал, 2009, 17(4): 591-б00.
22. Оэрокопудов ВЛ., ^требенка H.H., Евтухова M.B., Писарев Д.И. Moрфoлoгo-aнaтo-мические аспекты некоторых представителей рода Rosa L. Вестник Красноярского государственного аграрного университета, 2009, 11: 50-54.
23. Бузунова И.О., Тимухин ИЛ. Род Rosa (Rosaceae) во флоре российского Причерноморья. Ботанический журнал, 2011, 12: 1б43-1б5б.
24. Резанова ТА., Coрoкoпудoв ВЛ., Cвинaрев E.H. Особенности анатомического строения листа у видов рода Rosa L. (Rosaceae Juss.). Научные ведомости Белгородского государственного университета. Серия: Естественные наук, 2011, 9(104/вып. 15/1): 340-350.
25. Хржановский В.Г. Розы. Филогения и систематика. Спонтанные виды европейской части СССР, Крыма и Кавказа. Опыт и перспективы использования. M., 1958.
26. Hummer K.E., Janick J. Rosaceae: taxonomy, economic importance, genomics. In: Genetics and genomics of Rosaceae. Plant genetics and genomics: crops and models, V. 6 /K.M. Folta, S.E. Gardiner (eds.). Springer, New York, NY, 2009: 1-17.
27. International code of nomenclature for cultivated plants. Scripta Horticulturae. V. 151. International Society for Horticultural Science (ISHS), 2009.
28. De Riek J., De Cock K., Smulders M.J.M., Nybom H. AFLP-based population structure analysis as a means to validate the complex taxonomy of dogroses (Rosa section Caninae). Mol. Phylogenet. Evol., 2013, б7(3): 547-559 (doi: 10.1016/j.ympev.2013.02.024).
29. Красная книга Курской области. Т. 2. Редкие и исчезающие виды растений и грибов. Тула, 2001.
30. Красная книга Хакасии: редкие и исчезающие виды растений и грибов. Hoвoсибирск, 2002.
31. Бумбеева Л.И. Садовая классификация. Плетистые розы. M., 2008.
32. Бумбеева Л.И. Старинные садовые (парковые) розы, 2010. Режим доступа: https://www.super-sadovnik.ru/text/starinnye-sadovye-parkovye-rozy-1001254. Дата обращения: 18.0б.2018.
33. Губанов ИА., Киселева К.В., ^виков В.^, Тихомиров ВЛ. Иллюстрированный определитель растений Средней России. M., 2003.
34. Ромейс Б. Микроскопическая техника. M., 1954.
35. Паушева З.П. Практикум по цитологии растений. M., 1990.
36. Плохинский H.A. Биометрия. M., 1970.
37. Шевченко C^., Ругузов ИА., Ефремова Л^. Mетoдикa окраски постоянных препаратов метиловым зеленым и пиронином. Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада, 198б, б0: 9-101.
38. Шевченко C^., Чеботарь A.A. Особенности эмбриологии маслины европейской (Olea europaea). Сб. трудов Государственного Никитского ботанического сада, 1992, т. 113: 52-б1.
39. Крылова В.В. Эмбриология яблони. Кишинев, 1981.
40. Maндрик В.Ю., Петрус Ю.Ю. Семейство Rosaceae. Сравнительная эмбриология цветковых растений. Brunelliaceae — Tremandraceae. Л., 1985: 55-б4.
41. Грин H., Оиут У., Тейлор Д. Биология /Под ред. Р. Оэпера. M., 1990.
42. Хохлова A.A. Moрфoлoгическaя оценка и репродуктивный потенциал при воздействии вирусами BTM на F1 гибриды растений томата, полученьк при отдаленной гибридизации. Политематический сетевой электронный журнал научный журнал КубГАУ, 2011, 70(0б): 471-480.
43. Shattuck V.I. The biology, epidemiology and control of turnip mosaic virus. In: Plant breeding reviews /J. Janick (ed.). John Wiley and Sons, NY, 1992: 199-238 (doi: 10.1002/9780470б50523.А4).
44. Бессонова В. П., Фендюр Л. M., Пересыпкина T.H. Влияние загрязнения окружающей среды на мужскую фертильность декоративных цветочных растений. Ботанический журнал, 1997, 82(5): 38-44.
45. Шевченко C^., Кузьмина ТЛ., Mитрoфaнoвa И.В. Цитоморфологическая характеристика пыльцы пораженных вирусами и бессимптомных растений розы эфиромасличной. Бюллетень Государственного Никитского ботанического сада, 201б, 121: 18-24.
ФГБУН Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический сад — Национальный научный центр РАН,
298648 Россия, Республика Крым, г. Ялта, пгт Никита, ул. Никитский спуск, 52,
е-таЛ: [email protected] Н, [email protected]
Поступила в редакцию 5 апреля 2017 года
Sel'skokhozyaistvennaya biologiya [Agricultural Biology], 2018, V. 53, № 3, pp. 624-633
SOME FEATURES OF EMBRYOLOGY OF Rosa spinosissima L., R. canina L. AND R. x damascena Mill. INTACT AND VIRUS-INFECTED PLANTS
S.V. Shevchenko, T.N. Kuzmina
Nikita Botanical Gardens — National Scientific Center RAS, Federal Agency for Scientific Organizations, 52, ul. Ni-kitskii spusk, pgt Nikita, Yalta, Republic of Crimea, 298648 Russia, e-mail [email protected] (H corresponding author), [email protected] ORCID:
Shevchenko S.V. orcid.org/0000-0002-0534-5548 Kuzmina T.N. orcid.org/0000-0002-4218-6080
The authors declare no conflict of interests
Acknowledgements:
Supported financially by Russian Science Foundation (grant № 14-50-00079)
Received April 5, 2017 doi: 10.15389/agrobiology.2018.3.624eng
Abstract
Due to high decorative and economically valuable traits, roses have long been used in garden and park construction, and as medicinal and aromatic raw materials. Selection carried out with roses for many years, has resulted in more than 30 thousand cultivars. To create new forms and varieties, it is necessary to in-depth know species biology, including developments of generative elements. This paper shows the study of male and female generative structure formation in two wild species of Rosa genus, Rosa spinosissima L. and R. canina L., naturally grown on the north-eastern slope of Mount Chatyr-Dag, and in two R. x damascena Mill. cultivars, which may be involved in breeding as parental plants. As a result, we have determined the main embryological types of generative sphere formation in these species. It has been shown that the anthers are four-nested with two thecas, the wall of microsporangium is formed centripetal. A formed wall of microsporangium consists of epidermis, endothecium, 2-3 middle layers and tapetum, which is a derivative of a secondary parietal tissue. A tetrad of microspores is formed simultaneously. Differentiation mitosis in microspores leads to the formation of 2 celled pollen grains. Mature pollen grains are 2 celled with 3 pores. Micro-sporangium wall of the mature anther is represented by the epidermis covered with cuticle, fibrous endothecium and remnants of a middle layer. Morphogenicity and viability of mature pollen of these species and varieties have been established (abnormal pollen grains can be up to 30 %). Pollen sizes were measured. The diameter of pollen grains varies from 19 to 30 microns. The influence of viral infection on the formation of pollen grains has been shown, which causes an increase in the number of pollen abnormalities, changes the pollen grain size and ultimately leads to pollen grain degeneration. Defective pollen grains can be up to 50 %. Gynoecium of rose consists of many free carpels, each contains 1-2 ovules. Rosa ovule is anatropous, bitegmal, crassinucellate. Multicellular hypostase with thick-walled cells is formed in chalasa area. Micropyle is formed by an internal integument, which in its development is ahead of the outer one. Archesporium is polycelled and differentiated in the subepidermal layer of ovule. As a result of meiosis, linear tetrads of megaspores are mostly formed, of which chalasal or epichalasal megaspores were functionally active to derive embryo sacs of Polygonum-type. Mature embryo sacs are 8 nucleate and 7 celled. Egg apparatus consists of egg and 2 synergids, antipods are represented by three cells. Majority of embryo sacs gradually are obliterated, and only one of them matures. The studied species of genus Rosa are entomophilous plants pollinated by insects. It has been concluded that in selection, while choosing parental forms for hybridization, attention should be paid not only to the viability of their generative structures, but also to plant viral infection, since the presence of pathogens has led to a significant decrease in reproductive ability.
Keywords: Rosa sp., male and female generative structures, viral infection, reproductive ability.
Научные собрания EMBL COURSE: GENOME ENGINEERING: CRISPR/Cas (17-21 September 2018, Heidelberg, Germany)
Subdisciplines: biology, molecular biology, biotechnology
This course will provide hands-on training in genome editing and cell engineering in mammalian cells using the highly efficient CRISPR/Cas9 system. Participants will learn design of CRISPR targets using bioinformatics tools, generation of gene knockouts/knock-ins, and target validation using the most current technologies. This course is aimed at researchers who are familiar with basic molecular and cell biology techniques and want to learn how to create an engineered mammalian cell line using the most recent and advanced CRISPR/Cas9 system. No previous experience in genome editing is required.
Information: http://www.globaleventslist.elsevier. com/events/2018
