CC BY
80
УДК: 636.7:616-003.93
МОРФОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ ЗА РЕПАРАТИВНЫМИ ПРОЦЕССАМИ В КОСТНОЙ ТКАНИ
Шакирова Ф.В., Тимофеев С.В.*
Казанская государственная академия ветеринарной медицины Московская государственная академия ветеринарной медицины и
биотехнологии *
Ключевые слова: костная ткань, регенерация, кровообращение.
Key words: bone tissue, regeneration, blood supply.
В репаративной регенерации поврежденных тканей опорно-двигательного аппарата определяющей ролью являются условия, при которых они происходят [2]. Костная ткань обладает значительным регенерационным потенциалом [3]. В основе костного вещества лежит соединительная ткань, обладающая высокой пластичностью [4]. Между костными фрагментами при повреждении кости формируется грануляционная ткань, но степень ее развития различна [5].
Целью наших исследований было изучение морфодинамики репаративной регенерации костной ткани в зоне перелома.
Материалы и методики исследования. Объектом исследования служили 50 собак с переломами костей голени. Животные подбирались по принципу аналогов. Масса подопытных животных составляла в среднем 15-30 кг, возраст от 1 года до 3,5 лет. Всем животным была проведена операция - чрескостный остеосинтез аппаратом внеочаговой фиксации.
Клиновидно выпиливали кость (верхний кортикальный слой), в зоне перелома и прилегающей к ране области проводили на 1, 5, 10, 20, 30 сутки после операции. Полученный материал фиксировался в 10% нейтральном формалине. Декальцинацию проводили в растворе Рихмана-Гельфанда-Филла (100 мл муравьиной кислоты, 80 мл концентрированной соляной кислоты, 820 мл дистиллированной воды). После обезвоживания в спиртах возрастающей концентрации и ксилоле, заливался в парафин. На микротоме изготавливались гистологические срезы толщиной 5-7 мкм, которые окрашивались гематоксилином и эозином и по методу Ван Гизона. Морфометрию изучаемых структур осуществляли по методике Г.Г. Автандилова (1990) [1].
Результаты исследований. 1 сутки. Между отломками образуется гематома, в ряде случаев обширная, с отложением фибрина и наличием фрагментов некротизированной кости. Имеется более или менее обильная лейкоцитарная инфильтрация. Жир костного мозга располагается в гематоме в виде крупных капель. Костный мозг отломков пропитан
кровью, так же как и некоторые гаверсовы каналы. Имеет место выраженный травматический отек. Сосуды полнокровны и гиперемированы как в центральном, так и в периферическом отломках.
5 сутки. На границе перелома отмечается пролиферация мезенхимальных клеток и их врастание в кровяной сверток между отломками. Происходит организация гематомы с сохранением лишь узкой щели между отломками компактной пластинки, которая заполнена тканевым детритом. Сохраняется клеточная инфильтрация с преобладанием макрофагальных элементов. Краевая зона обоих отломков кости некротизируется. Находящиеся здесь клетки перестают воспринимать ядерную окраску и распадаются. Вследствие этого полости остеоцитов выглядят пустыми. Начинает формироваться предварительная соединительнотканная мозоль, которая соединяет отломки и охватывает их в виде муфты. На данном этапе она состоит из молодых мезенхимальных клеток, расположенных между сосудистыми петлями, т.е. идентична по своему строению грануляционной ткани.
Наряду с вновь образованными сосудами и мезенхимальными клеточными элементами здесь обнаруживаются и остеобласты, в ряде случаев с тенденцией к образованию трабекулярных структур.
10 сутки. На данном этапе имеется полностью сформированная предварительная соединительнотканная мозоль, которая
трансформируется в предварительную костную мозоль из грубоволокнистой кости. Происходит разрастание коллагеновых волокон и наблюдаются процессы костеобразования. Так, на фоне гомогенизации коллагена образуются остеоидные балки.
При этом обнаруживаются пролиферирующие остеобласты как в зоне повреждения, так и в периосте и эндосте. Параллельно с этим идет процесс рассасывания некротически измененных концов старой кости и избытка вновь образованных остеоидных структур. Данную функцию выполняют остеокласты с образованием так называемых ячеек рассасывания. Коллагеновые волокна, как правило, соединены с костными балками, в некоторых из которых уже обнаруживается обызвествление. Здесь же расположены сосудистые петли. Пространство между балками и сосудами заполнено рыхлой волокнистой соединительной тканью. Вновь образованные костные балки всегда связаны со старой костью (краями отломков). В единичных случаях в периостальной части мозоли костеобразование протекает через образование хряща. По краям отломков кости на данном сроке завершается рассасывание некротических масс, происходит разрастание грануляционной ткани с последующим остеогенезом. В гаверсовы каналы отломков врастают сосуды и мезенхимальные клетки. Между отдельными костными балками появляются поперечные перемычки. Некоторые костные структуры
смыкаются своими периферическими концами, образуя первичные гаверсовы каналы, заполненные волокнистой тканью и капиллярами.
20 сутки. Имеется полностью сформированная предварительная костная мозоль, представленная грубоволокнистой костью, которая на большинстве участков соединяет оба отломка. В отдельных случаях можно наблюдать начальные признаки трансформации костной ткани в окончательную костную мозоль.
В костном мозге каждого отломка развиваются новые костные трабекулы. В случаях, когда в процессе заживления перелома образовывалась хрящевая ткань, на данном этапе происходит рассасывание хряща, обызвествление и замещение его костной тканью -энхондральная оссификация.
30 сутки. В большинстве случаев имеет место неосложненное заживление с началом формирования пластинчатых костных структур. В то же время окончательной перестройки костной мозоли не происходит -наружняя ее часть в той или иной степени сохраняется. Из ее внешних слоев формируется периост, сливающийся с периостом отломков. Внутренняя мозоль рассасывается с восстановлением костного мозга.
Выводы. Успех в решении вопроса репаративной регенерации можно достигнуть только при комплексном воздействии на различные звенья процесса, который включает два вопроса: 1.создание оптимальных условий для регенерации; 2. более быстрая нормализация общепатологических сдвигов путем дополнительного введения пластических и энергетических ресурсов, в которых организм остро нуждается в этот период.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Автандилов, Г.Г. Медицинская морфометрия. Руководство. /Г.Г. Автандилов.-М, 1990.-384с., 2. Смольянников, А.В. Патологическая анатомия огнестрельных переломов трубчатых костей в ранние фазы их течения: Автореф. дис. ... д-ра мед. наук / А.В. Смолянников.—М., 1947.—14 с., 3. Соколов, И.И. Костная аутопластика при лечении ложных суставов трубчатых костей / И.И. Соколов, И.Б. Москвин // Ортопедия, травматология и протезирование.—1966.--№ 4.— С.39., 4. Слуцкий Л.И., Домбровская Л.Э. В кн.: «Ортопедия». Науч. труды Рижского Института травматологии и ортопедии. Рига, 1976. Т.14, С. 183193., 5. Попков, А.В., Осипенко А.В. Регенерация тканей при удлинении конечностей. Руководство. /А.В. Попков, А.В. Осипенко.-М., 2008. С. 6-10.
МОРФОЛОГИЧЕСКИЙ КОНТРОЛЬ ЗА РЕПАРАТИВНЫМИ ПРОЦЕССАМИ В
КОСТНОЙ ТКАНИ Шакирова Ф.В., Тимофеев С.В.
Резюме
Полнота регенерации костной ткани связана с восстановлением кровообращения в формирующемся регенерате. Вновь образованные
сосуды непосредственно влияют на расположение клеток в раневом дефекте.
MORPHOLOGICAL CONTROL OF REPERATION PROCCESSES IN BONE TISSUE
Shakirova F.V., Timofeev S.V.
Summary
The completeness of bone tissue regeneration is connected with blood supply restoration in the forming regenerate. Newly formed vessels directly influence on the cell disposition in the wound .
УДК 619:615.3 + 619:615.9
О ЛЕЧЕНИИ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО АФЛАТОКСИКОЗА
БЕЛЫХ КРЫС
Шамилова Т.А., Матросова Л.Е., Тремасова А.М.
ФГУ «Федеральный центр токсикологической и радиационной безопасности животных», г. Казань
Ключевые слова: экспериментальный афлатоксикоз, лечение, пробиотическая культура, Bifidumbacterin bifidum-2010, белые крысы.
Key words: experimental aflatoxicosis, treatment, probiotical culture, Bifidumbacterin bifidum-2010, whit rats.
В Российской Федерации и в целом мире значительная часть производимого зерна загрязнена микотоксинами, которые не только отрицательно влияют на организм животного, существенно снижая продуктивность и качество получаемой продукции, но и представляют серьезную опасность для человека (Л .У. Витлоу, У.М. Хеглер, 2002; В. А. Антипов, 2005; А. Гогин, 2005; И. Рябчик, 2009; С. Гулюшин и др., 2009).
В последние годы в связи с изменениями климата, ухудшением экологической обстановки на территории РТ увеличилась контаминация кормов токсигенными штаммами Aspergillus flavus, продуцирующими афлатоксин. Этим объясняется потенциальная и реальная угроза возникновения афлатоксикоза.
Для лечения и профилактики микотоксикозов в большинстве случаев используют различные сорбенты. В тоже время в литературе имеются сведения об эффективности пробиотических микроорганизмов при некоторых микотоксикозах (А.И. Нигматуллин, 2002; Н.В. Петрова, 2004).
