CC BY
66УДК 619:612.
МОРФОЛОГИЧЕСКИЙ И БИОХИМИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ КРОВИ КРС
В.В. Степкина, А.М. Дроздова, Е.В. Ноздрачева
Брянский государственный университет имени академика И.Г. Петровского
В живом объекте генетическая продуктивность связана со сложными обменными процессами, протекающими в его организме и отражающихся в морфологических и биохимических показателях крови. Эти процессы могут быть использованы в качестве тестов для контроля за изменением показателей в обмене веществ и физиологическим состоянием у животных в процессе жизни.
Ключевые слова: эритроциты, гемоглобин, лейкоциты, общий белок, фракции белка, глюкоза.
Введение. Кровь является внутренней средой организма и ее составляющие обладают относительным постоянством состава, одновременно являясь функционально подвижной системой, наиболее полно отражающей физиологические процессы, происходящие в организме. Исследованиями Н. Г. Гамарника (1975), Е. В. Эйдригевича и В. В. Раевской (1978), В. И. Георгиевского (1990), В. А. Бурчина (1998), Р. С. Саетова и др. (1999) установлено, что состав крови зависит от интенсивности окислительно - восстановительных процессов и обмена веществ в организме и изменяется в связи с возрастом, продуктивностью, условиями кормления и содержания животных, сезоном года и т.д. В следствие этого изучение состава крови является важнейшим показателем, характеризующий направленность обмена веществ, состояние здоровья животных и их способность адаптироваться к условиям содержания. Среди заболеваний у КРС молочной направленности, со сбоем обмена веществ, является кетоз.
Методика исследования
1.1. Взятие анализа крови у КРС молочного направления
Биохимический анализ крови исследовали в Дубровской зональной ветеринарной лаборатории (ДЗВЛ). Биохимические исследования состояли из определения в сыворотке крови общего белка (колориметрически), белковых фракций (нефелометрически), мочевины (цветной реакцией с диацетилмоноксимом и тиосемикарбазидом), глюкозу (ферментативно). Кровь для анализа брали утром до кормления из яремной и хвостовой вены от каждого животного. Взятие крови проводили с использованием вакуум-содержащих систем в специальные вакуумные пробирки фирмы Veno safeTerumo (Бельгия), с использованием одноразовых игл. Этот способ имеет ряд преимуществ, основным из которых является то, что кровь попадает непосредственно в закрытую пробирку, предотвращающую любой контакт ветеринарного персонала с кровью животного. Речь идёт не только об упрощении процедуры взятия крови, что само по себе немаловажно, но и о значительном снижении процента аналитических ошибок, увеличении безопасности процедуры, снижении риска заражения скота, сохранения уровня надоев после процедуры и отсутствия осложнений у животных после взятия крови.
Вакуум-содержащая система (рис. 7) представляет собой закрытую двухкомпонентную систему - вакуумный шприц-контейнер и специальную иглу. Выделение сыворотки или соединение крови с антикоагулянтом происходит в том же объёме шприца, в который берётся кровь, то есть после взятия крови сам шприц является транспортной пробиркой с антикоагулянтом или сывороткой.
Под действием вакуума кровь втягивается через иглу вакуумной системы напрямую из вены в пробирку и сразу же смешивается с химическим реактивом. Тщательно дозированный объем вакуума обеспечивает точное соотношение кровь/реагент в пробирке.
Взятие крови у крупного рогатого скота происходит таким образом:
1. Кровь брали из хвостовой вены;
2. Для взятия крови животное не фиксируют.
3. Хвост животного берут рукой в области средней трети и медленно поднимают
вверх.
4. Место взятия крови, область 2-5 хвостовых позвонков, дезинфицируют спиртом или 5% раствором йода.
5. Кровь брали в средней трети тела 2-5 хвостовых позвонков, находящейся на линии, идущей вдоль хвоста и делящей его на 2 симметричные части.
6. Иглу вводят под углом 90° до упора на глубину 5-10 мм.
1.2. Взятие анализа мочи у КРС молочного направления
Для клинического анализа мочи использовали однократную порцию (около 200 мл), которую брали утром до кормления животных в чистый широко сосуд с широким горлом. Пробы можно получить при естественном мочеиспускании (отделение мочи можно вызвать рефлекторно — поглаживая участок кожи или путем массажа мочевого пузыря через стенку прямой кишки) или катетеризируя мочевой пузырь. Следует отметить то, что метод катетеризации рекомендован только в исключительных случаях, когда невозможно воспользоваться другими приемами, так как образец мочи, полученный таким образом, часто содержит примесь эритроцитов, попадающих в пробу в результате травмирования капилляров уретры во время продвижения по ней катетера. Мочу доставили в лабораторию вместе с направлением, в котором указывают регистрационные данные о больном животном, клинические признаки болезни, адрес владельца. Лучше всего исследовать образец мочи не позднее 1,5 ч с момента взятия пробы.
В полученных образцах определяли наличие кетоновых тел. Кетоновые тела, как один из признаков кетоза, в моче определяли с помощью тест-полосок keto-PHAN (рис. 8) (PLIVA-Lachema Diagnostik as.r.o., Brno, CZ). Для этого в образцы с мочой опускали тест-полоску и через 1 -2 минуты анализировали, ориентируясь на степень окрашивания. Проба значительно чувствительнее к ацетоуксусной кислоте, чем к ацетону. Цветовая шкала сравнения на этикетке тубуса отражает концентрацию ацетоуксусной кислоты в моче. Окрашивание полоски в розовый или малиновый цвет указывало на факт кетоза.
1.3. Определение жирности молока и количество белка у КРС молочного направления
Молоко для анализа брали в последний день доения. Кроме того, проводили оценку состояния здоровья путем определения температуры, процесс жевания, количества рубцовых сокращений, частоты пульса и дыхания, аппетита, заболеваний ног, послеродового состояния половых органов (задержание последа, эндометриты). Анализ осуществлялся с помощью анализатора качества молока «Клевер - 2» Анализатор молока "Клевер-2" обеспечивает экспресс-оценку процентного содержания жира, белка, сухого обезжиренного молочного остатка (СОМО) и плотности в одной пробе свежего цельного, консервированного молока или сливок. Процесс измерения качественных показателей молока занимает 2,5 - 3,5 мин. Молоко комнатной температуры измеряется за 2,5 мин, а охлажденное - за 3,5 мин. Отбор и подготовку проб проводят с соблюдением свода правил отбора и подготовки подробно описанных в гост 26809— во и гост 1392884.
1.4. Метод искусственного осеменения коров молочного направления
Осеменение коровы проводили искусственным визо - цервикальным способом или
цервикальный метод осеменения с визуальным контролем. Суть этого метода заключается во введении семенной жидкости в канал шейки матки с использованием шприца — катетера или другим инструментом. После подготовки инструментов для осеменения животного, самку фиксируют в станке, во влагалище вводится влагалищное зеркало и при визуальном контроле в канал шейки матки вводится определенная доза спермы - корове на глубину 45см.
Результаты и обсуждения
2.1. Биохимический анализ крови
2.1.1. Содержание кальция и фосфора в крови животных в различные периоды у исследуемых коров. Содержимое кальция в крови в период анализа имеет стремление к уменьшению, с большей степенью точности на двадцатый день после отела подлинность отличия Р <0,01, на сотый день после отела доходит минимума 1,94 ммоль/л (Р <0,001). В сухостойный период уровень кальция в крови почти не меняется (табл. 1).
Таблица 1
Содержание кальция в крови животных в различные периоды у исследуемых коров (моль/л)
№ группы
Сухостойные За 14 дней до отела
Сухостойные за 7 дней до отела
На 20 день лактации
На 100 день лактации
Норма
2,6 - 2,9
2,7 - 2,9
2,0 - 2,5
1,8 - 1,9
2,5 - 3,
3,0 - 3,1
3,6 - 3,
2,0 - 2,5
1,8 - 2,0
2,5 - 3,
2,6 - 2,9
2,7 - 2,9
2,0 - 2,5
1,8 - 2,1
2,5 - 3,
3,0 - 3,1
3,6 - 3,
2,0 - 2,5
1,8 - 2,2
2,5 - 3,
М
2,88
2,83
2,21
2,01
±т
0,09
0,12
0,14
0,15
Р
>0,5
<0,01
<0,001
1
2
3
4
В момент лактации после отела появляется уменьшение содержания кальция и нарушение минерального обмена, а именно, обмена кальция в крови у всех исследованных животных.
Содержимое фосфора в крови у коров было ниже после отела и выше до отела. Уменьшение неорганического фосфора ниже нормы происходит, начиная с 7 дня до отела. Фосфор уменьшается в исследуемых группах коров до отела и после отела у коров с субклиническим кетозом (табл. 2).
Таблица 2
Содержание фосфора в крови животных в различные периоды у исследуемых коров (моль/л)
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 день На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до лактации лактации
отела отела
1 1,3 - 1,5 1,0 - 1,1 1,0- 1,2 1,6 - 1,7 1,4 - 2,3
2 1,4 - 1,6 1,0 - 1,1 1,2 - 1,3 1,2 - 1,8 1,4 - 2,3
3 1,6 - 1,8 1,1 - 1,2 1,2 - 1,3 1,2 - 1,3 1,4 - 2,3
4 1,5 - 1,8 1,1 - 1,2 1,3 - 1,4 1,2 - 1,4 1,4 - 2,3
М 1,54 1,36 1,32 1,17 -
±т 0,06 0,05 0,05 0,05 -
Р <0,05 <0,05 <0,001 -
Обеспеченность этими веществами имеет особое значение в минеральном обмене высокопродуктивных коров. Их концентрация к отелу резко снижается и должна восстанавливается в норме после отела.
В минеральном обмене веществ высокопроизводительных коров достаточность этими веществами имеет особое значение. Оба этих элемента содержат костную ткань. Обилие фосфора отрицательно влияет действие на усвоении кальция в ЖКТ. При нехватке кальция и изобилии в рационе фосфора образуется гипокальцемия, которая ведет к тяжелому нервнопаралитическому заболеванию - родильному парезу. Концентрация кальция и фосфора быстро уменьшается к отелу и возобновляется до физиологического уровня
(кальций - на 17-37 день и фосфору на 13 день после родов). В 1 кг молозива и молока содержится 2,5 и 1,5 г Са. Фосфор принимает участие в энергетическом обмене как компонент АТФ, а кальций представляет важнейшую роль в регуляции деятельности нервной и мышечной систем. Норма кальция - 2,5-3,8 ммоль/л сыворотки, а норма фосфора -1,4-2,3 ммоль/л. Концентрация кальция до 13 дня была ниже нормы, но с 22 дня достигла нижнего предела нормы - 2,5 ммоль/л и в последующие дни не превышала уровень 2,7 ммоль/л. Но нельзя тоже самое сказать о фосфоре. Его концентрация всегда превышала нижний предел, хотя в рационы не включали фосфорсодержащие минеральные добавки, а за счет добавления мела на уровне 1,5 и более балансировали количество кальция. Следовательно, проблема баланс рациона с добавлением кальция и фосфора оказывается важной.
2.1.2. Глюкоза. Содержимое ниже нормы глюкозы в крови коров после отела на двадцатый и сотый дни снижается с высокой степенью достоверности (степень достоверности отличия Р<0,001). Понижение содержания сахара в крови у лакирующих коров после отела составляет 39% и 40% по сравнению с периодом до отела. В период за 7 -14 дней до отела у коров содержание глюкозы выше, чем у коров после отела, но находится в пределах нормы (табл. 3).
Таблица 3
Содержание глюкозы в крови животных в различные периоды у исследуемых коров (моль/л)
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до день лактации
отела отела лактации
1 2,9 - 3,1 2,5 - 2,9 1,5 - 2,0 1,5 - 2,2 2,2 - 3,9
2 2,8 - 3,2 2,7 - 3,0 1,5 - 2,0 1,6 - 2,2 2,2 - 3,9
3 2,9 - 3,5 2,7 - 3,1 1,6 - 2,0 1,5 - 2,3 2,2 - 3,9
4 2,8 - 3,1 2,6 - 3,2 1,5 - 2,0 1,6 - 2,3 2,2 - 3,9
М 2,86 2,62 1,60 1,58 -
±т 0,05 0,07 0,05 0,04 -
Р <0,02 <0,001 <0,001 -
У коров из второй группы отмечается весомое понижение содержания глюкозы в крови. После отела происходит снижение глюкозы много ниже нормы.
Глюкоза становится основой синтеза молочного жира и осуществляет участие в понижение организма энергией. Оптимальная концентрация глюкозы колеблется в пределах 2,2-3,9 ммоля/л (40-70 мг/л).
У жвачных животных в следствие пищеварения глюкозы в кровь пребывает мало из-за образования в рубце до летучих жирных кислот (уксусной, пропионовой, масляной). Глюкоза в огромном количестве (до 3-4 кг) синтезируется у коров в печени из пропионовой кислоты, аминокислот, глицерина. У коров первой группы содержание глюкозы в крови на много выше, чем у коров второй группы
У коров глюкоза получается в молочной железе из пропионовой кислоты, аминокислот, глицерина, и довольно в большом количестве образуется у коров в печени. С преобладанием большого количества зерновых кормов, которые богаты крахмалом, количество пропионовой кислоты увеличивается.
2.1.3. Содержание общего белка в крови животных. Содержание общего белка в крови изучаемых коров в период до отела значительно не отличается и состоит в переделах нормы. На двадцатый день после отела у коров содержимое общего белка меньше нормы и в сравнении с группой коров в момент запуска достоверно меньше (степень достоверности отличия Р <0,01). На сотый день после отела количество общего белка в сравнении с
периодом запуска еще меньше и составляет разницу приблизительно в 2,0 г/л за период запуска опыта (табл. 4).
Таблица 4
Содержание общего белка в крови животных в различные периоды у _исследуемых коров (г/л)_
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 день На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до лактации лактации
отела отела
1 77,0 - 80,0 76,3 - 81,4 71,1 - 72,0 69,8 - 70,4 72-86
2 78,4 - 79,4 75,6 - 79,4 70,0 - 72,0 68,6 - 70,4 72-86
3 77,1 - 80,6 75,1 - 78,4 71,8 - 72,0 68,6 - 70,7 72-86
4 76,8 - 81,5 73,9 - 77,1 69,8 - 71,9 67,0 - 71,0 72-86
М 77,84 74,89 71,75 71,15 -
±т 1,31 1,11 1,28 1,20 -
Р >0,25 <0,01 <0,01 -
К родам концентрация в сыворотке крови белка внезапно снижается, но после родов быстро приходила в норму ко 20 дню. У животных второй группы выше, чем у коров первой группы, а у третьей группы выше, чем у четвертой, но незначительно. Норма общего белка в сыворотке крови коров - 7,8-8,4%, новотельных - 8,4-9,1%, на 5-6 месяцах лактации - 8,48,6% (По данным ВИЖ (2003)). Это легко объясняется существованием сырого белка в рационе коров. Вытекая из достижений, концентрация белка у животных была меньше нормы, хотя в рационе питания была больше нормы.
После родов количество у-глобулинов носило направление к увеличению, по сравнению чем перед отелом, а потом возвращалось к значению первоначальному. (рис.). Их повышение, скорее всего связано с тем, что они участвуют в формировании молозива (синтез осуществляется за 3 - 5 дней, а иногда и за неделю после отела). В молозиве имеются иммуноглобулины, прибывающие в молочную железу из крови (достигает 6%). Молозиво в первый месяц снабжает теленка иммунитетом за счет у-глобулинов, поступающих из крови, так как теленок появляется на свет без собственного иммунитета.
2.1.4. Гемоглобин. Гемоглобин значительно меньше в группе коров за 7 дней до отела при уровне точности отличия Р <0,05. У коров в группе через двадцать дней после отела это же показатель меньше нормы, и меньше чем в группе сухостойных коров на 18%, при степени точности Р <0,002. На пятидесятый день после отела признак содержания гемоглобина в крови существенно меньше нормы и ниже чем в группе сухостойных коров на 26 % со степенью точности отличия Р <0,001 (табл. 5).
Таблица 5
Количество гемоглобина крови животных в различные периоды у исследуемых коров (г/л)
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 день На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до лактации лактации
отела отела
1 113,2 - 115,6 86,8 - 90,7 89,7 - 93,7 82,0 - 85,1 99-129
2 104,2 - 108,4 96,2 - 99,3 81,6 - 86,2 88,4 - 90,6 99-129
3 100,78 94,57 - 95,8 80,7 - 82,7 76,5 - 77,4 99-129
4 107,16 91,0 - 92,6 80,59 - 82,1 78,6 - 79,6 99-129
М 104,40 91,61 85,47 77,23 -
±т 2,79 3,69 3,37 3,50 -
Р <0,05 <0,002 <0,001 -
Гемоглобин значительно понижается у коров с явными признаками кетоза. Отмечается нарушение функции артериальной крови.
2.1.5. Мочевина. Содержание мочевины в крови исследуемых групп коров во все этапы опыта значительно выше со степенью достоверности отличия Р<0,002 и Р<0,001. Уровень мочевины в крови наиболее высокий у коров на двадцатый день после отела (табл. 6).
Таблица 6
Содержание мочевины в крови животных в различные периоды у исследуемых коров
№ группы
Сухостойные За 14 дней до отела
Сухостойные за 7 дней до отела
На 20 день лактации
На 100 день лактации
Норма
5,7 - 6,0
7,4 - 7,9
8,0 - 8,2
7,3 - 7,7
5,0 - 6,3
6,2 - 6,3
,1 - 8,3
,3 - 8,5
7,6 - 8,0
5,6 - 6,0
6,2 - 6,5
7,4 - 7,9
,2 - 8,4
,1 - 8,4
5,0 - 6,3
5,6 - 5,9
8,0 - 8,4
9,0 - 9,1
7,6 - 7,
5,6 - 6,0
М
5,8 - 5,9
7,5 - 7,
,2 - 8,5
7,6 -,7,9
±т
0,21
0,33
0,35
0,23
Р
<0,002
<0,001
<0,001
1
2
3
4
Увеличение содержания мочевины в крови является нарушением функций микрофлоры рубца и нарушением белкового обмена в организме.
2.1.6. Холестерин. Холестерин играет большую роль как составной компонент клеточных мембран и является предшественником гормонов надпочечников -глюкокортикоидов и минералокортикоидов, участвующих в процессах утилизации жирных кислот, образовании кетоновых тел, развитии секреторного эпителия молочной железы. В переходный период эти процессы интенсифицируются, поэтому резкое повышение холестерина вполне объяснимо, косвенно отражая напряжённость обмена веществ (табл. 7).
Таблица 7
Показатели холестерина в разные периоды физиологического состояния_
№ Сухостойные Сухостойные за 7 На 20 день На 100 Норма
группы За 14 дней до дней до отела лактации день
отела лактации
1 4,5 - 4,9 5,7 - 6,1 5,5 - 5,9 5,2 - 5,5 4,7 - 6,2
2 4,6 - 5,0 5,5 - 6,0 5,5 - 6,1 5,5 - 5,7 4,7 - 6,2
3 4,5 - 5,1 4,2 - 5,3 5,3 - 6,2 5,7 - 6,1 4,7 - 6,2
4 4,6 - 5,2 4,6 - 5,7 5,2 - 6,2 5,7 - 6,0 4,7 - 6,2
Наблюдается резкое увеличение концентрации холестерина с предотельного периода (выше нормы), которое сохраняется до 27 дня после отела, при этом у коров второй группы на более высоком уровне, чем у коров первой группы, а у третьей и четвертой групп, где наблюдаются признаки субклинического кетоза, между собой отличаются незначительно, но находятся в пределах нормы.
2.1.7 Каротин. Концентрация каротина снижалась до 14 дня после отела и постепенно восстанавливалась к 100 дню (табл. 8). Такая динамика объясняется, прежде всего, его интенсивным расходом на продукцию молока и недостаточным поступлением в переходный период из-за пониженного потребления коровами кормов.
Подводя итог по разделу «Обмен веществ» становится абсолютно очевидной актуальность изучения процессов, происходящих в организме коров в переходный период, и
разработки вопросов кормления, направленных на снижение стрессов в обмене веществ и сохранение высокой продуктивности и жизнеспособности коров.
Таблица 8
Концентрация каротина в крови коров в предотельный и послеотельный периоды
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 день На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до лактации лактации
отела отела
1 0,31 - 0,37 0,38 - 0,55 0,44 - 0,47 0,46- 0,48 0,48±0,037
2 0,33 - 0,34 0,41 - 0,61 0,43 - 0,98 0,45 - 0,48 0,48±0,037
3 0,44 - 0,45 0,39 - 0,42 0,40 - 0,43 0,44 - 0,45 0,48±0,037
4 0,42 - 0,43 0,38 - 0,41 0,41 - 0,42 0,41 - 0,45 0,48±0,037
М 0,451 0,396 0,350 0,319 -
±т 0,018 0,014 0,015 0,020 -
Р <0,05 <0,002 <0,001 -
Содержание каротина в крови коров в во всех группах за 21 дней до отела ниже нормы, причем уровень каротина востанавливается у лактирующих коров на сотый день после отела. В 14 - 7 дней до отела и двадцать дней после отела соответственно, у животных наблюдается небольшой скачок, но незначительного характера. Степень достоверности отличия н самый высокий также на пятилдесятый день (Р< 0,001).
Уровень каротина снижается в крови коров с явными клиническими признаками кетоза. Наблюдается нарушение витаминного обмена.
Такая динамика объясняется, прежде всего, его интенсивным расходом на продукцию молока и недостаточным поступлениям в переходный период из-за пониженного потребления коровами кормов.
2.1.8. Резервная щелочность крови животных. Щелочной резерв плазмы крови -показатель, отвечающий за кислотно-щелочное равновесие в организме коров. Согласно полученным данным в таблице 18, в группе сухостойных коров за 14 - 7 дней до отела достоверно ниже, но находится в норме. В группе через двадцать дней после отела щелочной резерв также низкий. Еще более низкий показатель щелочного резерва в группе через сто дней после отела, где степень достоверности отличия составил Р <0,01 и уровень щелочного резерва - 38,5 об% СО2.
Таблица 9
Резервная щелочность крови животных в различные периоды у _исследуемых коров (об% СО2)_
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до день лактации
отела отела лактации
1 55,09 64,44 53,27 53,71 46,0 - 66,0
2 61,97 50,74 51,42 51,53 46,0 - 66,0
3 38,99 42,46 45,44 42,77 46,0 - 66,0
4 37,90 36,45 42,10 39,89 46,0 - 66,0
М 58,83 45,52 48,81 38,45 -
±т 2,12 2,62 2,96 4,29 -
Р <0,01 <0,05 <0,01 -
В третьей и четвертой группе показатель резервной щелочности гораздо ниже нормы, что за 7 - 14 дней до отела, что дни после отела. При развитии кетоза происходит снижение резервной щелочности плазмы крови при кетозе с явными клиническими признаками и скрытым течением кетоза.
2.1.9. Содержание кетоновых тел. Содержание кетоновых тел в крови изучаемых животных наблюдалось достаточно высокое за 2 недели до отела по сравнению с нормой с группой клинически здоровых животных. В группе коров за 14 дней до отела содержание кетоновых тел превосходит показатель уровня кетоновых тел после отела, что говорит о благоприятном влиянии энергетической кормовой добавки «Ковелос - Энергия» на обмен кетоновых тел и веществ в целом (табл. 10).
Таблица 10
Содержание кетоновых тел в крови животных в различные периоды у исследуемых коров с
субклиническим кетозом
№ группы Сухостойные Сухостойные На 20 день На 100 день Норма
За 14 дней до за 7 дней до лактации лактации
отела отела
1 0,031 - 0,037 0,349 - 0,355 0,427 - 0,521 0,634 - 0,723 0,3-1,1
2 0,330 - 0,340 0,511 - 0,712 0,837 - 0,987 0,784 - 0,987 0,3-1,1
3 1,5322 1,3349 0,3772 0,6053 0,044
4 1,7301 1,3201 0,3998 0,6367 0,046
М 0,0314 0,3439 0,4026 0,6523 0,044
±т 0,00075 0,02498 0,02031 0,02218 0,001
Р <0,001 <0,001 <0,001 <0,001
Вывод из изученных биохимических анализов: наблюдение незначительного понижения концентрации глюкозы, общего белка, Са, Р, начиная с периода перед отелом и послеотельный период. Такие изменения могут быть связаны, во - первых, с небольшим поступлением питательных веществ с кормом и из-за неважного аппетита у коров в переходный период и, у больных кетозом особенно, во - вторых - мало активированной системой организма по привлечению питательных веществ из запасов собственного тела.
2.1.10. Клинический анализ мочи КРС. Анализы мочи не выявили существенного влияния разного соотношения объемистых кормов к концентратам на среднестатистические показатели рН, они были близкими для обеих групп (табл.11).
Таблица 11
Клинический анализ мочи
Наименование Норма Анализ
Относительная плотность мочи 1,015 1 группа 2 группа
1,025 1,074
Белок в моче, % 0,00 0,15 0,30
Кетоновые тела, моль/л 0,3-1,1 нет 0,6
Осадок нет нет есть
Реакция (рН) Слабощелочная 7,6 - 8,5 Слабощелочная 7,9 - 8,3 Слабокислая 6,9 - 7,2
Цвет светло-желтый светло-желтый Мутновато - желтый
Уробилин отсутствует нет есть
Однако за 6 дней до отела и на 9 день после во второй группе у четырех коров рН в моче был выше, чем в первой и находился в диапазоне 6,9-7,2, что свидетельствует о признаках субклинического кетоза (физиологическая норма рН мочи = 7,6-8,5).
Обследование мочи показало небольшое повышение плотности мочи у обоих групп исследуемых животных, наличие белка у первой группы и уробилина у второй группы животных, смещение рН мочи в слабокислую сторону у второй группы и норма реакции у первой. Количество кетоновых тел значительно понизилось у больных коров.
Таблица 12
Анализ показателей молока
Наименование Норма Анализ
1 группа 2 группа
Белок, % Не менее 3 4,1 3,5
Жир, % Не менее 2,5 3,9 3,0
Кетоновые тела, мг/л. 14-36 20 32
Кислотность, °Т 16-18 15 17
Цвет Белый-кремовый белый белый
Исследование молока показало повышение жирности молока у клинически здоровых коров на 2%. У животных с субклиническим кетозом процент жирности повысился немного. Что касается процента белка у здоровых коров, то имеется огромное увеличение на 0,6 %, у больных животных на 0,3%. Цвет и кислотность молока у обоих групп животных в норме. Кетоновые тела также в норме.
Список литературы
1. Бурчин, В. А. Рост и мясная продуктивность бычков симментальской породы в зависимости от технологии содержания: автореф. дисс... на соиск. учен. степ. кандидата с.х. наук. Оренбург, 1998. 18 с.
2. Валге, Л. А. Характеристика биохимических показателей крови крупного рогатого скота и восстановление кислотно - щелочного баланса: автореф. дисс. на соиск. учен. степ. доктора ветинарных наук. Тарту, 1971. 56 с.
3. Гамарник, Н. Г. Линейный рост, картина крови и воспроизводительные способности телок герефордской породы, выращенных в помещениях облегченного типа в Сибири // Технология производства молока и мяса на промышленной основе:тр. СибНИПТИЖа. Новосибирск, 1975. Вып. 21. 230 с.
4. Георгиевский, В. И. Физиология сельскохозяйственных животных. М.: Агропромиздат, 1990. С. 326-329.
5. Казарцева, В. В. Некоторые биохимические показатели крови откармливаемых бычков красной степной, айрширской пород и их помесей / В. В. Казарцева, В. М. Бондаренко //Производство говядины и молока на Кубани. Краснодар, 1985. С. 44-49.
6. Кушнер, Х. Ф. Состав крови крупного рогатого скота в связи с его продуктивностью // Докл. ВАСХНИЛ. М., 1938. Вып. 10. С. 10-15.
7. Левахин, В. И. Рост и развитие бычков симментальской породы в зависимости от возраста и технологии содержания /В. И. Левахин, Н. М. Клетушкин, Е. А. Ажмулдинов //
Проблемы мясного скотоводства: тр. ВНИИ мясного скотоводства. Оренбург, 1996. Вып. 49. С. 60-64.
8. Саетов, Р. С. Морфологический и биохимический состав крови молодняка крупного рогатого скота в зависимости от физиологического состояния и интенсивности роста / Р. С. Саетов, В. И. Швиндт, В. И. Левахин, В. Д. Баширов // Тез. Докл. науч._практ. конф. Оренбург, 1999. С. 84.
9. Чижик, И. А. Влияние состава рациона на биохимический состав крови молочных коров//Сб. научных трудов Ленинградского научного института, 1959. Т. 22. С. 30-31.
10. Эйдригевич, Е. В. Интерьер сельскохозяйственных животных / Е. В. Эйдригевич, В. В. Раевская. М.: Колос, 1978.
Сведения об авторах
Степкина В.В. - магистрант направления подготовки «Биология», Брянский государственный университет имени академика И.Г. Петровского, e-mail: [email protected].
Дроздова А.М. - магистрант направления подготовки «Биология», Брянский государственный университет имени академика И.Г. Петровского, e-mail: [email protected].
Ноздрачева Е.В. - кандидат биологических наук, доцент кафедры биологии Брянского государственного университета имени академика И.Г. Петровского, e-mail: nozd-ev@ mail.ru
MORPHOLOGICAL AND BIOCHEMICAL ANALYSIS OF BLOOD CATTLE
V.V. Stepkina, A.M. Drozdova, Е^. Nozdracheva
Bryansk State University named after Academician I. G. Petrovsky
In a living object, genetic productivity is associated with complex metabolic processes that occur in the body and are reflected in the morphological and biochemical parameters of the blood. These processes can be used as tests to control the change in metabolic parameters and the physiological state in animals during life. Keywords: erythrocytes, hemoglobin, leukocytes, total protein, protein fractions, glucose.
References
1. Burchin, V.A. Growth and meat production of bull-calves of Simmental breed, depending on the technology of content: the author's abstract. Diss ... on the soisk. Scientist. step. Candidate of agricultural sciences. Sciences. Orenburg, 1998. 18 p.
2. Valge, L.A. Characteristics of biochemical indicators of blood of cattle and restoration of acid-base balance: Abstract of Cand. Diss. To the soot. Scientist. step. Doctor of Veterinary Sciences. Tartu, 1971. 56 pp.
3. Gamarnik, N.G. Linear growth, blood picture and reproductive abilities of Heifordian heifers grown in light-type rooms in Siberia // Technology of Milk and Meat Production on an Industrial Basis: Tr. SibNIPTIZh. Novosibirsk, 1975. Vol. 21. 230 p.
4. Georgievsky, V.I. Physiology of farm animals. Moscow: Agropromizdat, 1990. P. 326329.
5. Kazartseva, V.V. Some biochemical indicators of the blood of fattened bulls of red steppe, Airshire breeds and their hybrids / V.V. Kazartseva, V.M. Bondarenko // Production of beef and milk in the Kuban. Krasnodar, 1985. P. 44-49.
6. Kushner, Kh. F. The composition of blood of cattle in connection with its productivity, Dokl. VASHNIL. M., 1938. Issue. 10. pp. 10-15.
7. Levakhin, V.I. Growth and development of bull-calves Simmental breed, depending on age and content technology / V. I. Levakhin, N.M. Kletushkin, E.A. Azhmuldinov // Problems of beef cattle breeding: tr. Research Institute of beef cattle. Orenburg, 1996. Issue. 49. P. 60-64.
8. Saetov, R.S. Morphological and biochemical composition of blood of young cattle, depending on the physiological state and growth rate / R.S. Saetov, V.I. Shvindt, V.I. Levakhin, V.D. Bashirov / / Tez. Dokl. Conf. Orenburg, 1999. P. 84.
9. Chizhik, I.A. Effect of the composition of the ration on the biochemical composition of the blood of dairy cows // Sb. Scientific works of the Leningrad Scientific Institute, 1959. T. 22. S. 30-31.
10. Eidrigevich, E.V. Interior of farm animals / E.V. Eidriguevich, V.V. Raevskaya. M.: Kolos, 1978.
About authors
Stepkina V.V. - graduate student, Department of Biology, Bryansk State University named after Academician I. G. Petrovsky, e-mail: [email protected].
Drozdova A.M. - graduate student, Department of Biology, Bryansk State University named after Academician I. G. Petrovsky, e-mail: [email protected].
Nozdracheva E.V. - Candidate of Biology, Associate Professor, Department of Biology, Bryansk State University named after Academician I. G. Petrovsky, e-mail: nozd-ev@ mail.ru.
