CC BY
23
форм ЯБ, роль хирургии в решении проблемы объективно возрастает. Будет гораздо лучше, если основную нагрузку в этом неизбежном перераспределении ролей возьмет на себя хирургия плановая, а не экстренная.
ЛИТЕРАТУРА
1. Кузин М.И. Актуальные вопросы хирургии язвенной болезни желудка и двенадцатиперстной кишки // Хирургия. — 2001. — № 1. — С. 27-32.
2. Панцырев Ю.М., Михайлов А.И., Федоров Е.Д. Хирургическое лечение прободных и кровоточащих гастродуоденальных язв // Хирургия. — 2003. — № 3. — С. 43-49.
3. ШалимовАА., Картиш А.П., Братусь В.Д. и др. Хирургическое лечение язвенной болезни (19962001 гг.) / Материалы на XX съезд хирургов Украины. — Киев, 2002. — 67 с.
4. Шапошников А.В. Принятие решения в хирургии. Теоретические и прикладные аспекты. — Ростов н/Д, 2003. - 190 с.
5. Циммерман Я.С., Ведерников Б.Е., Новиков В.Н., Касьянова Н.Л. Микрофлора слизистой оболочки луковицы двенадцатиперстной кишки и ее роль в патогенезе рецидива язвенной болезни // Сибир. журн. га-строэнт. гепатол. — 2001. — № 12. — С. 61-63.
6. Эльштейн Н.В. Ошибки в гастроэнтерологической практике. - М.: МИА, 1998. — 224 с.
7. Blaser M.J. Helicobacter pylori: Balance and imbalance // Eur. J. Gastroenterol Hepatol. — 1998. — № 10. — P. 15-18.
8. Canoy D.S., HartA.R., Todd C.J. Epidemiology of duodenal ulcer perforation: a study on hospital admissions in Norfolk, United Kingdom // Dig Liver Dis. — 2002. — Р. 322-327.
9. Hudson N., Brydon W.G., EastwoodM.A. et al Successful Helicobacter pylori eradication incorporating a one-week antibiotic regimen // Aliment. Pharmacol. Ther. — 1995. — № 9. — P. 47-50.
10. Fletcher D. Peptic disease: can we afford current management? Aust. N. Z. J. Surg. — 1997. — Vol. 67. — № 2-3. — P. 75-80.
11. Paimela H., Pamela R., Myllykangas et al. Current features of peptic ulcer disease in Finland: incidence of surgery, hospital admission and mortality for the disease during the past twenty five years // Scand. J. Gastroenterol. — 2002. — Р. 399-403.
12. Rubin E., Farber J.L. Peptic ulcer disease. Pathology. 2-nd ed. Philadelphia Lippincott Company. — 1994. — Р. 637-643.
Поступила 31.05.2005
НОВЫЕ ТЕХНОЛОГИИ
УДК 575+579:614.4]:616.981.47-036.22-084 МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ В ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКОМ НАДЗОРЕ ЗА САЛЬМОНЕЛЛЕЗНОЙ ИНФЕКЦИЕЙ
Д.В. Тапальский, С.В. Жаворонок
Гомельский государственный медицинский университет Гомельский областной центр гигиены, эпидемиологии и общественного здоровья
Представлены результаты эпидемиологического маркирования полирезистентных штаммов S.Typhimurium. Отмечено клональное происхождение цефотаксим-резистентных штаммов.
Ключевые слова: сальмонеллы, антибиотикорезистентность, типирование, пульс-электрофорез.
MOLECULAR GENETICAL METHODS IN EPIDEMIOLOGICAL SUPERVISION FOR SALMONELLOSES
D.V. Tapalski, S.V. Zhavoronok
Gomel State Medical University Gomel Regional Centre of Hygiene, Epidemiology and Public Health
Results of epidemiological marking of multiresistant S.Typhimurium strains are submitted. The clonal parentage of cefotaxime-resistant strains is marked.
Key words: salmonellas, resistance to antibiotics, typing, pulsed-field gel electrophoresis.
Введение
Гомельская область на протяжении ряда лет занимает лидирующее положение в республике по заболеваемости сальмонел-лезом. В 2004 году показатель заболеваемости в регионе превысил общереспубликанский почти в 2 раза. Наиболее неблагополучной территорией является город Гомель, на долю которого приходилось 70% всех случаев заболеваний сальмонеллезной инфекцией в регионе. Заболеваемость саль-монеллезами в г. Гомеле в 2004 г. составила 160,6 случаев на 100 тыс. населения, заболеваемость в целом по республике — 37,58 случаев на 100 тыс. [1]. Актуальной проблемой для Гомельской области является циркуляция полиантибиотикорезистент-ных штаммов Б.ТурЫтипит, имеющих устойчивость к 5-7 антибактериальным препаратам, в том числе устойчивость к цефо-таксиму/цефалоспоринам III поколения и устойчивость низкого уровня к фторированным хинолонам [2]. В конце XX века во многих странах и регионах мира стал активно распространяться полирезистентный фа-готип Б. ТурЫтигшт БТ104 с устойчивостью к пяти антибактериальным препаратам — ампициллину, хлорамфениколу, стрептомицину, сульфонамидам и тетрациклину (Я-тип ЛСББиТ). Штаммы БТурЫтипит БТ104 стали главной причиной сальмонеллезов у людей в Великобритании в конце 1980-х и затем появились во многих европейских странах, США, Канаде, Израиле, Турции и Японии в течение 1990-х [0]. В США Б. ТурЫтипит с Я-типом ЛСББиТ составил 31% всех штаммов ТурЫтипит, выделенных в 1999 году, и, как оценивалось, им было вызвано около 7% сальмонеллезов [4]. Отсутствие системы фаготипирования клинических изолятов сальмонелл на постсоветском пространстве не позволяет оценить масштаб этой проблемы для Беларуси.
Большая роль в контроле за вспышками сальмонеллезов принадлежит их раннему выявлению с использованием адекватной системы наблюдения, основанной на внутривидовом субтипировании изоля-тов. В прошлом эпидемиологические расследования сальмонеллезной инфекции основывались, прежде всего, на фенотипиче-ских методах внутривидового типирование сальмонелл (серотипирование, биотипиро-вание, фаготипирование), которые широко
использовались для установления соответствия изолятов, выделенных от больных и из предполагаемого источника [7].
В 1984 году была разработана техника пульс-электрофореза (pulsed-field gel electrophoresis, PFGE). PFGE облегчает раздельное перемещение крупных фрагментов ДНК в агарозном геле путем постоянного изменения направления электрического поля в ходе электрофореза. Небольшое количество фрагментов ДНК (обычно 10-20) облегчает интерпретацию результатов. PFGE в своем основном формате (лизис бактериальных клеток для выделения неповрежденной хромосомной ДНК, удаление примесей, нарезание хромосомной ДНК соответствующими рестриктазами, пульс-электрофорез фрагментов ДНК и их визуализация) может быть применен как универсальный метод субти-пирования многих бактерий. Было неоднократно показано, что PFGE превосходит другие методы субтипирования сальмонелл по точности и дифференцирующей силе. Полученные в пульс-электрофорезе профили рестрицированной ДНК стабильны и хорошо воспроизводимы на внутри- и межлабораторном уровне. Таким образом, PFGE является методом выбора для эпидемиологического типирования сальмонелл в настоящее время [3, 5].
Цель исследования — установить степень генетического родства циркулирующих в Гомельской области цефотаксим-резистентных клонов S.Typhimurium и провести сопоставление PFGE-профилей штаммов S.Typhimurium из Гомельского региона и штаммов S.Typhimurium DT104, выделенных в различных регионах мира.
Материалы и методы
Молекулярно-генетические исследования 35 штаммов S.Typhimurium, выделенных от детей в Гомельской области, были проведены в лаборатории Референс-центра Всемирной организации здравоохранения по изучению антибиотикорезистентности энтеропатогенов (Копенгаген, Дания, руководитель лаборатории — профессор Frank M. Aarestrup) в рамках программы WHO GSS — Глобальной сети наблюдения за возбудителями сальмонеллезов и другими энтеропатогенами.
Для выделения ДНК бактериальные колонии суспендировали в 1 мл фосфатно-буферного раствора, центрифугировали и по-
вторно ресуспендировали в 100 мкл 10 mM Tris, 1 mM EDTA буферного раствора с pH 8.0, выдерживали 10 мин при температуре 95°С. Для ПЦР-амиплификации использовали 2 мкл бактериального лизата. Для обнаружения генов, детерминирующих синтез БЛРС СТХ-М (blaCTX-M) проводили ПЦР-амплифика-цию с использованием CTX-M-праймеров 5'-TTTGCGATGTGCAGTACCAGTAA-3' и 5'-CGATATCGTTGGTGGTGCCATA-3'.
Реакционная смесь в объеме 50 мкл состояла из ^MgC^-free буфера (Promega, Madison, США), 100 нг каждого из прай-меров, 0,5 мкл Taq-полимеразы, 1 мкл смеси dNTP's и бидистилированной воды. После проведения ПЦР амплифицированная ДНК была очищена с использованием QIAquick PCR Purification Kit (Qiagen, Германия) и выполнено ее секвенирование на автоматическом секвенаторе 373A (Applied Biosystems / Perkin Elmer, США). Для анализа данных использовался программный комплекс DNAsis (Hitachi Software Engineering Co., Ltd).
Анализ генома был выполнен с помощью пульс-электрофореза макрорестрикционных фрагментов, полученных после обработки ДНК ферментами Xbal и BlnI. Пульс-электрофорез проводился с использованием системы Pulsaphor Plus (Pharmacia LKB).
Для выявления возможного клонально-го распространения на территории Беларуси штамма S.Typhimurium DT104 проведено со-
поставление PFGE-типов штаммов сальмонелл, выделенных в различных регионах. В исследование включены Б.ТурЫтигшт БТ 104 штамм 2469 (Копенгаген, Дания), Б.ТурЫтипит БТ 104 штамм 9724913-3 (Германия), референтный штамм Б.ТурЫти-rium БТ 104 7421659-1 (США) и 8 штаммов Б.ТурЫтипит, выделенных от детей в Гомельской области, имеющие БТ104-подоб-ные профили резистентности АСББиТ (устойчивость к ампициллину, хлорамфениколу, стрептомицину, сульфонамидам и тетрациклину). Пульс-электрофорез макрорестрикци-онных фрагментов ДНК отобранных штаммов (макрорестриктаза хЬа1) выполнялся одномоментно в пластине 1% агарозного геля.
Результаты и обсуждение
Всего среди 35 исследованных штаммов выделено 5 PFGE-типов. Цефотаксим-резистентные микроорганизмы относились к 4 из 5 PFGE-типов (PFGE I — PFGE IV), часть представителей каждого из этих PFGE- типов имели Ь1аСТХ-М-гены.
На рис. 1 представлены PFGE-профили пяти выделенных PFGE-типов S.Typhimu-пит и дендрограмма их генетического родства. Цефотаксим-резистентные СТХ-М-5-продуцирующие штаммы имеют различные профили антибиотикорезистентности и относятся к различным PFGE-типам, степень гомологии ДНК которых составляет 85-90%.
Dice (Tol 1.0%-2.5%) (H>0.0% S>0.0%) [0.0%-100.0%]
PFGE Xbal ny PFGE Xbal ny
0
5050 Ф Ф v
S.typhimurium type III S.typhi murium type IV S.typhimurium type I S.typhimurium type II S.typhimurium type V
Рис. 1. PFGE-профили и дендрограмма генетического родства штаммов S.Typhimurium.
Результаты PFGE-типирования штаммов S.Typhimurium, выделенных в различных регионах, представлены на рис. 2. Все отобранные штаммы из Гомельского региона относились к типу PFGE I, продуцировали БЛРС (БЛРС СТХ М5 и СТХ М15) и имели дополнительную устойчивость к гентамицину, нетилмицину, цефотаксиму, налидиксовой
кислоте, триметоприм/сульфаметоксозолу. Отмечены однотипные PFGE-профили всех штаммов из Гомельского региона, что свидетельствует об их клональном происхождении. PFGE-профили этих штаммов отличались от профилей контрольных штаммов S.Typhimurium БТ104 (уровень гомологии ДНК 90%).
M В R 1 23456789 10 RBM
Рис. 2. PFGE-профили S.Typhimurium, выделенных в различных регионах:
М — Х-маркер; В - S.Branderup; R — S.Typhimurium DT 104 референтный штамм 7421659-1; 1-8 — штаммы S.Typhimurium, выделенные от детей раннего возраста в Гомельской области; 9 — S.Typhimurium DT 104 штамм 2469 (Дания); 10 — S.Typhimurium DT 104 штамм
9724913-3 (Германия).
Заключение
Пульс-электрофорез макрорестрикци-онных фрагментов ДНК S.Typhimurium позволил выявить 5 PFGE-типов. Цефотак-сим-резистентные микроорганизмы относились к 4 из 5 PFGE-типов (PFGE I — PFGE IV). Обнаружена высокая степень гомологии ДНК цефотаксим-резистентных клонов S.Typhimurium (85-90%).
Выделенные в Гомельской области полирезистентные штаммы S.Typhimurium с R-типом ACSSuT и дополнительной устойчивостью к гентамицину, нетилмицину, цефотаксиму, налидиксовой кислоте, три-метоприм/сульфаметоксозолу, продуцирующие БЛРС, представляют собой единый клон, отличающийся от получившего международное распространение фаготипа S.Typhimurium DT104.
ЛИТЕРАТУРА
1. О санитарно-эпидемической обстановке в Республике Беларусь в 2004 году. Государственный доклад / Министерство здравоохранения Республики Беларусь — Мн., 2005. — С. 6-8.
2. Тапальский Д.В., Осипов В А, Жаворонок С.В. и др. Проблемы устойчивости сальмонелл к клинически значимым антибактериальным препаратам // Проблемы здоровья и экологии. — 2005. — № 1. — С. 103-110.
3. Peters T.M., Maguire C., Threlfall E.J., et al. The Salm-gene project - a European collaboration for DNA fingerprinting for food-related salmonellosis // Eurosurveillance. — 2003. — № 8. — С. 46-50.
4. Ribot E.M., Wierzba R.K., Angulo F.J. Salmonella enterica serotype Typhimurium DT104 isolated from humans, United States, 1985, 1990, and 1995 // Emerging Infectious Diseases. — 2002. — Vol. 8. — P. 387-391.
5. Swaminathan B., Barrett T.J., Hunter S.B., et al. PulseNet: The molecular subtyping network for food-borne bacterial disease surveillance, United States // Emerg. Infect. Dis. — 2001. — Vol. 7. — P. 382-389.
6. Threlfall E.J. Antimicrobial drug resistance in Salmonella: problems and perspectives in food- and water-borne infections // FEMS Microbiology Reviews. — 2002. — Vol. 26. — P. 141-148.
7. Threlfall E.J., Frost J.A. The identification, typing, and fingerprinting of Salmonella: laboratory aspects and epidemiological applications // J. Appl. Bac-teriol. — 1990. — Vol. 68. — P. 5-16.
Поступила 18.10.2005
