CC BY
23
БИОЛОГИЯ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ
МЕДИЦИНА
УДК 616-092.19
DOI: 10.178l6/pmj391124-132
МОДИФИКАЦИЯ РЕПАРАТИВНОЙ РЕГЕНЕРАЦИИ ПЕЧЕНИ ЛАБОРАТОРНЫХ ЖИВОТНЫХ ПОСЛЕ ЧАСТИЧНОЙ ГЕПАТЭКТОМИИ
А.Ю. Максимова, И.Е. Валамина, Л.Г. Полушина, С.В. Цвиренко, В.В. Базарный*
Уральский государственный медицинский университет, г. Екатеринбург, Россия
MODIFICATION OF LIVER REPARATIVE REGENERATION IN LABORATORY ANIMALS AFTER PARTIAL HEPATECTOMY
A.Yu. Maksimova, I.E. Valamina, L.G. Polushina, 5.V. Tsvirenko, V.V. Bazarnyi*
Ural State Medical University, Ekaterinburg, Russian Federation
Цель. Изучение влияния цитофлавина на адаптивный рост печени после частичной гепатэктомии. Материалы и методы. Экспериментальное исследование было проведено на 60 самцах белых мышей в возрасте 7-8 месяцев и массой 24-31 г. Все животные были разделены на три группы: 1-я - интактные мыши; 2-я - контрольные мыши, оперированные, вместо препарата получали физиологический раствор №С1; 3-я - основная группа животных, которым была выполнена частичная гепатэктомия, после чего
© Максимова А.Ю., Валамина И.Е., Полушина Л.Г., Цвиренко С.В., Базарный В.В., 2022
тел. +7 912 288 85 90
e-mail: vlad-bazarny@yandex.ru
[Максимова А.Ю. - младший научный сотрудник центральной научно-исследовательской лаборатории; Валамина И.Е. - кандидат медицинских наук, доцент кафедры патологической анатомии и судебной медицины; Полушина Л.Г. - кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник центральной научно-исследовательской лаборатории; Цвиренко С.В. - доктор медицинских наук, профессор, заведующий кафедрой клинической лабораторной диагностики и бактериологии; Базарный В.В. (*контактное лицо) - доктор медицинских наук, профессор, главный научный сотрудник центральной научно-исследовательской лаборатории].
© Maksimova A.Yu., Valamina I.E., Polushina L.G., Tsvirenko S.V., Bazarnyi V.V., 2022
tel.: +7 912 288 85 90
e-mail: vlad-bazarny@yandex.ru
[Maksimova A.Yu. - junior researcher, Central Scientific Research Laboratory; Valamina I.E. - Candidate of Medical Sciences, Associate Professor, Department of Pathological Anatomy and Forensic Medicine; Polushina L.G. - Candidate of Medical Sciences, senior researcher, Central Scientific Research Laboratory; Tsvirenko S.V. - MD, PhD, Professor, Head of Department of Clinical Laboratory Diagnostics and Bacteriology; Bazarnyi V.V. (*contact person) - MD, PhD, Professor, head researcher, Central Scientific Research Laboratory].
они получали препарат цитофлавин. Частичную гепатэктомию выполняли по методике C. Mitchell, H. Willenbring (2008). Препарат цитофлавин (Россия) вводили внутрибрюшинно в дозе 0,014 мл на 10 г массы тела в течение семи суток ежедневно. Проводили морфологическое и морфометрическое исследование гепатобиоптатов. Статистический анализ осуществлялся методами непараметрической статистики. Результаты. Выявлено, что через трое суток после частичной гепатэктомии в печени животных основной группы в 25 раз уменьшалось количество дистрофически измененных гепатоцитов, увеличивался митотический индекс на фоне сохраненного радиарно-балочного строения. Отмечалось увеличение размера цитоплазмы и ядра в 1,5 раза относительно интактной группы (р < 0,05), что связано с адаптивной гипертрофией. При этом на 3-и сутки в контрольной группе количество дистрофически измененных клеток было в несколько раз больше относительно интактных животных и сопровождалось увеличением цитоплазмы гепатоцитов в результате вакуольной дистрофии после частичной гепатэктомии. Выводы. Использование цитофлавина приводит к повышению митотической активности частично резецированной печени, при этом уровень двуядерных клеток снижается. Уменьшаются и проявления дистрофии гепатоцитов. Сопоставление в динамике морфометрических показателей гепатоцитов у животных контрольной группы и получавших цитофлавин после частичной гепатэктомии позволяет считать, что изучаемый препарат стимулирует восстановительные процессы в печени при индуцированной регенерации.
Ключевые слова. Частичная гепатэктомия, регенерация печени, цитофлавин.
Objective. To investigate the effect of cytoflavin on the adaptive liver growth after partial hepatectomy (PH). Materials and methods. An experimental study was conducted on 60 male white mice aged 7-8 months, weighing 24-31 g. All animals were divided into three groups: group 1 - intact mice; group 2 - operated control mice, who received saline NaCl instead of the drug; group 3 - the main group of animals, who underwent partial hepatectomy, after which they received суШ1^п. Partial hepatectomy was performed by Claudia Mitchell and Holger Willenbring technique (2008). The preparation cytoflavin (Russia) was injected intraperi-toneally at a dose of 0.014 ml /10 g of body weight for 7 days once daily. Morphological and morphometric studies of hepatobiopsy specimens were conducted. Statistical analysis was carried out using the methods of nonparametric statistics.
Results. It was found that 3 days after PH, in the liver of animals of the main group, the number of dystrophically altered hepatocytes decreased by 25 times, the mitotic index increased against the background of the preserved radial-beam structure. There was an increase in the size of the cytoplasm and nucleus by 1.5 times relative to the intact group (p <0.05), that is associated with adaptive hypertrophy. At the same time, on the 3rd day, in the control group the number of dystrophically altered cells was several times higher than in the intact animals and was accompanied by an increase in the cytoplasm of hepatocytes as a result of vacuolar degeneration after PH. Conclusions: The use of cytoflavin leads to an increase in the mitotic activity of the partially resected liver, while the level of binuclear cells decreases. The manifestations of hepatocyte dystrophy also decrease. Comparison of the dynamics of the morphometric parameters of hepatocytes in animals of the control group and those who received cytoflavin after PH suggests that the studied drug stimulates the recovery processes in the liver during induced regeneration.
Keywords. Partial hepatectomy, liver regeneration, cytoflavin.
Введение
Стимуляция восстановительных процессов в печени после повреждения по-прежнему остается актуальной и трудно решаемой задачей современной гепатологии [1-3]. Ранее коллективом кафедры патологической физиологии Уральского государственного ме-
дицинского университета были изучены морфофункциональные аспекты регенерации печени после частичной гепатэктомии (ЧГ). В частности, было установлено, что адаптивный рост печени после ЧГ, осуществляемый только за счет имеющихся ресурсов в системе, имеет две пролиферативные волны, которые заканчиваются к первым 72 ч
после операции. Однако иногда метаболического потенциала бывает недостаточно для (спонтанной) адаптации и полного восстановления структуры, функций органа по причине обширного и/или длительного повреждения печени [4-6]. В связи с этим большую популярность набирают исследования, связанные с поиском способов коррекции, стимуляции адаптивного роста печени после повреждения на модели регенерирующей печени с использованием различных фармакологических препаратов [7]. Ранее такие препараты были объединены в группу гепа-топротекторных средств, призванных повышать устойчивость печени к патологическим воздействиям. Более точное описание предложил академик РАМН, профессор В.Т. Ивашкин: «Гепатопротекторы - это фар-макотерапевтическая группа разнородных лекарственных средств, которые препятствуют разрушению клеточных мембран и стимулируют регенерацию гепатоцитов» [8]. Из-за разнообразия данной группы, которое обусловлено отсутствием однонаправленного механизма действия, общего сырья и/или активного компонента, не существует единой классификации. По типу сырья и/или активного компонента гепатопротекторы были подразделены: на препараты растительного происхождения, животного происхождения, содержащие эссенциальные фосфоли-пиды, аминокислоты или их производные, витамины-антиоксиданты и витаминоподоб-ные соединения, препараты разных групп. Наиболее часто используемой является классификация, основанная на механизме действия на печень: антиоксиданты, средства, осуществляющие репарацию мембран гепатоцитов, и стимуляторы регенерации паренхимы печени [9].
При выборе препарата для стимуляции регенерации печени полагали, что он должен обеспечить оптимизацию пластических и энергетических процессов, кровоснабже-
ние органа. Одним из средств с известными антигипоксантными и антиоксидантными свойствами является янтарная кислота. Поэтому гепатопротекторные свойства сукци-ната в последние годы активно изучаются [10, 11]. Известным отечественным препаратом, содержащим янтарную кислоту, является цитофлавин. В его состав также входят инозин, никотинамид и рибофлавин, участвующие в цикле трикарбоновых кислот, что может обеспечить применение препарата как средства метаболической терапии в условиях индуцированной регенерации органа.
Цель исследования - оценка влияния цитофлавина на адаптивный рост печени после частичной гепатэктомии.
Материалы и методы
исследования
Экспериментальное исследование было проведено на 60 самцах белых мышей в возрасте 7-8 месяцев и массой 24-31 г. Выполнение исследований было одобрено локальным этическим комитетом ФГБОУ ВО «Уральский государственный медицинский университет» Минздрава России, протокол № 4 от 19.04.2019. Все животные с помощью метода рандомизации были разделены на три группы наблюдения: 1-я - интактные мыши (n = 20); 2-я - контрольные мыши, оперированные, вместо препарата получали физиологический раствор NaCl (n = 20); 3-я - основная группа животных, которым была выполнена частичная гепатэктомия, после чего они получали препарат цитофлавин (n = 20).
Частичную гепатэктомию выполняли по методике Claudia Mitchell и Holger Willenbring (2014) [12]. Препарат цитофла-вин (Россия) вводили внутрибрюшинно в дозе 0,014 мл на 10 г массы тела в течение 7 сут ежедневно однократно. Первое введение производили в конце операции до
послойного ушивания брюшины. При выборе режима дозирования руководствовались общепринятыми экспериментальными подходами, изложенными в литературе [13]. Животных выводили из опыта путем передозировки эфирным наркозом на 3-и и 7-е сут.
Для оценки восстановительных процессов в печени проводили морфологическое исследование гепатобиоптатов, полученных на 3-и и 7-е сут. Биоптаты печени 4x4x5 мм и фиксировали 10%-ным раствором формалина в течение 24 ч. Обработка материала и приготовление парафиновых блоков осуществлялись на гистопроцессоре MICROM EC 350-2 (Thermo Fisher Scientific, USA) по методике, рекомендованной производителем.
Приготовление срезов осуществлялось путем резки блока при помощи специального устройства ротационного микротома LEICA RM 2245 (Leica Biosystems Nussloch GmbH, Germany), который позволил получить серийные срезы толщиной 4 мкм, пригодные для окрашивания и микроскопии. Окрашивание срезов происходило в два этапа: предварительная обработка и собственно окраска. На первом этапе проводили депа-рафинирование срезов, помещенных на предметное стекло, с помощью ксилола и спирта, далее следовала промывка проточной водой. После срезы окрашивали гематоксилином и эозином, просветляли, заключая в прозрачную среду, накрывали покровным стеклом и высушивали в термостате 48 ч. Далее готовые гистологические микропрепараты изучали при увеличении 100, 200 и 400 раз. Для морфометрического исследования использовали компьютерную программу анализа изображений (Phenix Phmias 3.0). При морфометрии оценивали следующие показатели: митотический индекс (%о) (МИ), количество двуядерных клеток на 1000 гепатоцитов (%0), количество дистрофически измененных клеток на 1000 гепатоцитов
(%о), площадь ядра (мкм2), площадь цитоплазмы (мкм2) и ядерно-цитоплазматическое соотношение (ЯИЦ).
Установлено, что выборки не подчиняются закону нормального распределения, поэтому для статистического анализа использовали непараметрические критерии: медиана (Ме) и 25-й, 75-й квартили (Q1; Q3). Для выявления различий количественных признаков на двух независимых выборках использовали непараметрический двусторонний критерий Манна - Уитни. Для выявления различий в двух зависимых выборках применяли критерий Уилкоксона. Обработку результатов проводили с использованием компьютерной статистической программы Statistica, версия 10.0 (Dell (StatSoft), USA).
Результаты и их обсуждение
Морфология регенерации печени после ЧГ ранее уже была описана другими авторами [2-5], и полученные нами данные им не противоречили. Гистологическое исследование срезов ткани печени животных интакт-ной группы позволило выявить следующее: выраженное балочно-радиальное строение долек печени, гепатоциты полигональной формы, с эозинофильной цитоплазмой, ядра округлые, средних размеров, хроматин нежно-зернистый. Портальные тракты не расширены, встречались единичные лимфоциты. Кроме того, в некоторых портальных трактах обнаруживались небольшие группы скопления эозинофилов (рисунок, а). В то же время в контрольной группе (оперированных и нелеченых животных) на 3-и сутки после ЧГ в ткани печени отмечались выраженные дисциркуляторные нарушения. В частности, в портальных трактах был резко увеличен просвет печеночной вены, в центральной вене также обнаруживалось расширение просветов и полнокровие. Кроме того, отмечалось расширение синусоидов, в них
Рис. Печень: а - интактная группа. Балочное строение сохранено, гепатоциты полигональной формы. Печеночная вена в портальном тракте (стрелка). Окраска гематоксилином и эозином. Ув.х200; б - частичная гепатэктомия - 3-и сут. Резкое полнокровие печеночной вены в портальном тракте и центральной вене (стрелка). Окраска гематоксилином и эозином. Ув.х400; в - частичная гепатэктомия - 7-е сут. Гепатоциты с крупными гиперхромными ядрами, встречаются фигуры митозов (стрелка). В синусоидах мононуклеарная инфильтрация. Окраска гематоксилином и эозином. Ув.х200; г - частичная гепатэктомия и цитофлавин -3-и сут. Просветы сосудов расширены, без выраженного полнокровия. Балочно-радиарное строение сохранено. Окраска гематоксилином и эозином. Ув х200
встречались единичные лимфоциты (рисунок, б). Имела место дискомплексация печеночных балок. Во всех отделах печеночных долек гепатоциты были в состоянии вакуольной дистрофии, встречались очаговые некрозы.
Морфологическое исследование печени на 7-е сут после ЧГ показало, что в синусоидах в большом количестве определялись мо-нонуклеары и в небольшом количестве присутствовали сегментоядерные нейтрофилы. Гепатоциты были часто увеличены в размерах, с крупными гиперхромными ядрами, определялись фигуры митозов, двуядерные гепатоциты (рисунок, в). Вместе с тем при
гистологическом исследовании ткани печени животных основной группы была отмечена большая сохранность архитектоники органа. На 3-и сут сохранялось балочно-радиарное строение, при этом просветы сосудов были расширены, без выраженного полнокровия. Дистрофические изменения обнаружены только в гепатоцитах центральных зон. В большом количестве определялись митозы (рисунок, г). К 7-м сут дистрофических изменений практически нет, морфологическое состояние печени близко к таковой в контрольной группе.
Для объективной оценки адаптивного роста использовали количественные показа-
тели: МИ, количество двуядерных и дистрофически измененных клеток на 1000 гепа-тоцитов на 3-и и 7-е сут, площадь ядра, цитоплазмы и ядерно-цитоплазматическое соотношение (ядерно-цитоплазматический индекс - ЯЦИ) (таблица).
В контрольной группе животных, не получавших препарат, была выявлена тенденция к увеличению митотической активности на 3-и сут, которая сохранялась до 7-го дня. Вместе с тем наблюдалось достоверное уменьшение двуядерных клеток в 2,7 раза относительно такового у интакт-ных животных. Количество дистрофически измененных клеток составило 77 %, что в разы больше, чем в группе неоперированных и нелеченых животных. При этом площадь
цитоплазмы гепатоцитов была в 1,5 раза больше относительно интактной группы. Изменение размера, вероятно, обусловлено адаптивной реакцией клеток, а именно дистрофическими изменениями (гидропиче-ская-вакуольная дистрофия), которые возникают в результате прогрессирующего энергодефицита после ЧГ. Однако более корректной характеристикой изменения размеров клетки является ЯЦИ, который был в три раза меньше относительно соответствующих данных животных интактной группы. К 7-м сут в контрольной группе наблюдали тенденцию к повышению количества двуядерных гепатоцитов, сопровождавшуюся снижением дистрофически измененных клеток в 15,4 раза относительно 3-х сут.
Морфометрические показатели печени лабораторных животных контрольной и основной групп после частичной гепатэктомии на 3-и и 7-е сут
Показатель Интактная группа Контрольная группа Основная группа
ЧГ, 3-и сут ЧГ, 7-е сут ЧГ+Ц, 3-и сут ЧГ+Ц, 7-е сут
Митотический индекс, %о 0,01 (0; 0,1) 0,15 (0; 0,16); р1 = 0,12 0,13 (0; 0,14); р3 = 0,21 2,92* (0; 5,0); р2 = 0,01 0,21 (0; 1,0); р4 = 0,34
Двуядерные клетки на 1000 гепатоцитов, %> 15,0 (11,7; 16,2) 5,5 (4,0; 12,0); р1 = 0,01 10,0 (7,7; 10,5); р3 = 0,1 11,0 (7,7; 12,5); р2 = 0,01 5,0 (3,7; 7,0); р4 = 0,02
Дистрофически измененные клетки на 1000 гепатоцитов, %> 0,2 (0; 0,4) 77,0 (65,0; 91,3); р1 = 0,02 5,0 (0,3; 6,2); р3 = 0,06 3,0* (1,3; 3,2); р2 = 0,13 2,0 (0,5; 5,9); р4 = 0,13
Площадь цитоплазмы гепатоцита, мкм2 8,2 (8,1; 9,8) 13,6 (12,2; 16,1); р1 = 0,01 12,8 (10,5; 17,8); р3 = 0,01 12,5 (9,8; 15,9); р2 = 0,01 11,9 (7,8; 16,9); р4 = 0,01
Площадь ядра гепато-цита, мкм2 7,3 (6,6; 8,2) 6,7 (6,2; 7,5); р1 = 0,3 9,0 (8,2; 10,3); р3 = 0,01 11,2* (9,8; 11,8); р2 = 0,01 10,9** (9,6; 11,3); р4 = 0,01
Ядерно-цитоплазмати-ческое отношение 0,9 (0,6; 1,1) 0,3 (0,2; 0,3); р1 = 0,01 1,2 (0,8; 1,5); р3 = 0,07 0,8 * (0,6; 1,2); р2 = 0,06 0,9 (0,5; 1,3); р4 = 0,2
Примечание:
р1 - достоверность различий между интактной и контрольной группами на 3-и сут; р2 - достоверность различий между интактной и основной группами на 3-и сут; р3 - достоверность различий между интактной и контрольной группами на 7-е сут; р4 - достоверность различий между интактной и основной группами на 7-е сут; * достоверность различий между контрольной и основной группами на 3-и сут; ** достоверность различий между контрольной и основной группами на 7-е сут.
В основной группе животных (ЧГ + ци-тофлавин) при анализе морфометрической характеристики было установлено, что активация процессов восстановления ткани печени отмечается уже на 3-и сут после операции. Достоверные различия между контрольной и основной группами были выявлены по показателям: митотический индекс, дистрофически измененные клетки, ЯЦИ. Значение МИ было больше у мышей, получавших ци-тофлавин после операции, по сравнению с показателями мышей после ЧГ и данных ин-тактной группы ф < 0,05), что свидетельствует об активации клеточного деления. Количество дистрофически измененных гепа-тоцитов было меньше в 25 раз относительно данных контрольной группы. Установлено увеличение размера цитоплазмы и ядра в 1,5 раза относительно соответствующих данных интактной группы, что связано с адаптивной гипертрофией. Вместе с тем ЯЦИ был близок к значению неоперирован-ных и нелеченых животных и в 2,6 раза превышал ЯЦИ контрольной группы. На 7-е сут в основной группе прослеживалась положительная динамика к уменьшению количества двуядерных клеток в три раза и к снижению митотической активности относительно данных интактной группы.
Обсуждая полученные результаты, установлено, что при применении цитофлавина уже на 3-и сут наблюдается восстановление ткани печени в ответ на повреждение. Данная картина обусловлена как активной клеточной регенерацией, которая подтверждается значительным увеличением МИ, по сравнению с показателями группы ЧГ, так и гипертрофией клеток, которая находит свое отражение в высоких значениях площади цитоплазмы и ядра на фоне сохранности архитектоники органа. Активная клеточная регенерация, скорее всего, обусловлена как прямым действием сукцината на стимуляцию пролиферации самих гепатоцитов, так и звездчатых кле-
ток, относящихся к их потенциальным предшественникам и продуцирующих целый комплекс ростовых факторов [10, 11].
Выводы
1. Цитофлавин оптимизирует течение восстановительных процессов в печени в условиях индуцированной регенерации за счет гипертрофии и клеточного деления.
2. Вероятным механизмом этого является активация пролиферативной активности гепатоцитов и их энергетического обмена.
Библиографический список
1. Forbes S.J., Newsome P.N. Liver regeneration - mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2016; 13 (8): 473-485.
2. Gilgenkrantz H., Collin de l'Hortet A Understanding Liver Regeneration: From Mechanisms to Regenerative Medicine. Am J Pathol 2018; 188 (6): 1316-1327.
3. Michalopoulos G.K., Bhushan B. Liver regeneration: biological and pathological mechanisms and implications. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2021; 18 (1): 40-55.
4. Базарный В.В., Маклакова И.Ю., Греб-невД.Ю., ЮсуповаВ.Ч., ПетрунинаЕ.М. К вопросу о клеточной регуляции регенерации печени. Вестник Уральской медицинской академической науки 2019; 16 (3): 357-364.
5. Маклакова И.Ю., Цвиренко С.В., Базарный В.В., Гребнев Д.Ю. Влияние сочетанной трансплантации мультипотентных мезенхи-мальных стромальных клеток и звездчатых клеток печени на морфофункциональное состояние печени после введения CCL4. Патологическая физиология и экспериментальная терапия 2021; 65 (3): 48-55.
6. Блинкова Н.Б., Сазонов С.В., Леонтьев С.Л. Полиплоидия гепатоцитов в регенерации печени при хроническом гепатите у
пациентов из разных возрастных групп. Екатеринбург 2017; 115.
7. De la Riva G.A., Lopez Mendoza F.J., Aguero-Chapin G. Known Hepatoprotectors Act as Antioxidants and Immune Stimulators in Stressed Mice: Perspectives in Animal Health Care. Curr Pharm Des 2018; 24 (40): 4825-4837.
8. ИвашкинВ.Т. Рациональная фармакотерапия заболеваний органов пищеварения: руководство для практикующих врачей. М.: Литерра 2003; 552.
9. Оковитый С.В. Комбинированное применение гепатопротекторов. Лечащий врач 2020; 8: 38-43.
10. ChengK.K., Wang G.Y., Zeng J., Zhang J.A Improved succinate production by metabolic engineering. Biomed Res Int 2013; 2013: 538790.
11. Cho E.H. Succinate as a Regulator of Hepatic Stellate Cells in Liver Fibrosis. Front Endocrinol (Lausanne) 2018; 21 (9): 455.
12. Mitchell C., Willenbring H. A reproducible and well-tolerated method for 2/3 partial hepatectomy in mice. Nat Protoc 2008; 3 (7): 1167-1170.
13. Баженова Е.Д., Соколова Д.Л., Теплый Д.Л. Влияние цитофлавина на процессы апоптоза нейронов коры головного мозга у мышей на модели физиологического и патологического старения. Архив патологии 2019; 81 (4): 59-65.
References
1. Forbes S.J., Newsome P.N. Liver regeneration - mechanisms and models to clinical application. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2016; 13 (8): 473-485.
2. Gilgenkrantz H., Collin de l'Hortet A Understanding Liver Regeneration: From Mechanisms to Regenerative Medicine. Am J Pathol 2018; 188 (6): 1316-1327.
3. Michalopoulos G.K., Bhushan B. Liver regeneration: biological and pathological mecha-
nisms and implications. Nat Rev Gastroenterol Hepatol 2021; 18 (1): 40-55.
4. Bazarnyi V.V., Maklakova I.Y., Greb-nev D.Y., Uzsupova V.C., Petrunina E.M. On the issue of cellular regulation of liver regeneration. Vestnik Ural'skoj medicinskoj akademicheskoj nauki 2019; 16 (3): 357-364 (in Russian)
5. Maklakova I.Y., Cvirenko S.V., Bazarnyi V.V., Grebnev D.Y. Effect of combined transplantation of multipotent mesenchymal stromal cells and hepatic stellate cells on the morphofunctional state of the liver after administration of CCL4. Patologicheskaya fizio-logiya i eksperimental'naya terapiya 2021; 65 (3): 48-55 (in Russian)
6. Blinkova N.B., Sazonov S.V., Leontev S.L. Poliploidiya gepatocitov v regeneracii pecheni pri hronicheskom gepatite u pacientov iz raznyh vozrastnyh grupp. Ekaterinburg 2017; 115 (in Russian).
7. De la Riva G.A., López Mendoza F.J., Agüero-Chapin G. Known Hepatoprotectors Act as Antioxidants and Immune Stimulators in Stressed Mice: Perspectives in Animal Health Care. Curr Pharm Des 2018; 24 (40): 4825-4837.
8. Ivashkin V.T. Racional'naya farmako-terapiya zabolevanij organov pishchevareniya: rukovodstvo dlya praktikuyushchih vrachej. Moscow: Literra 2003; 552 (in Russian).
9. Okovityj S.V. Kombinirovannoe prime -nenie gepatoprotektorov. Lechashchij vrach 2020; 8: 38-43 (in Russian).
10. Cheng K.K., Wang G.Y., Zeng J., ZhangJ.A. Improved succinate production by metabolic engineering. Biomed Res Int 2013; 2013: 538790.
11. Cho E.H. Succinate as a Regulator of Hepatic Stellate Cells in Liver Fibrosis. Front Endocrinol (Lausanne) 2018; 21 (9): 455.
12. Mitchell C., Willenbring H. A reproducible and well-tolerated method for 2/3 partial hepatectomy in mice. Nat Protoc 2008; 3 (7): 1167-1170.
13. Bazhenova E.D., Sokolova D.L., Teplyj D.L. Vliyanie citoflavina na processy apoptoza nejronov kory golovnogo mozga u myshej na modeli fiziologicheskogo i patologicheskogo stareniya. Arhiv patologii 2019; 81 (4): 59-65 (in Russian).
Финансирование. Исследование осуществлено в рамках государственного задания на НИР «Разработка технологии использования сочетанной трансплантации муль-
типотентных мезенхимальных стромальных клеток и звездчатых клеток печени для активации регенерации печени в условиях ее повреждения».
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Поступила: 06.10.2021
Одобрена: 28.12.2021
Принята к публикации: 01.02.2022
Просьба ссылаться на эту статью в русскоязычных источниках следующим образом: Модификация репаративной регенерации печени лабораторных животных после частичной гепатэктомии / А.Ю. Максимова, И.Е. Валамина, Л.Г. Полушина, С.В. Цвиренко, В.В. Базарный // Пермский медицинский журнал. - 2022. - Т. 39, № 1. - С. 124-132. DOI: 10.17816/pmj391124-132
Please cite this article in English as: Maksimova A.Yu., Valamina I.E., Polushina L.G., Tsvirenko S.V., Bazarnyi V.V. Modification of liver reparative regeneration in laboratory animals after partial hepatectomy. PermMedical Journal, 2022, vol. 39, no. 1, pp. 124-132. DOI: 10.17816/pmj391124-132
