Моделирование абсцесса мягких тканей в хирургическом эксперименте Текст научной статьи по специальности «Клиническая медицина»

Bulletin of Medical Internet Conferences (ISSN 2224-6150)

2015. Volume 5. Issue 11

Биофизические методы в диагностике и терапии

Ю: 2015-11-24^-5518 Краткое сообщение

Андреев Д.А., Урусова А.И.

Моделирование абсцесса мягких тканей в хирургическом эксперименте

ГБОУ ВПО Саратовский ГМУ им. В.И. Разумовского Минздрава России, кафедра оперативной хирургии и топографической анатомии

Научный руководитель: д.м.н. Алипов В.В.

Резюме

При моделировании абсцесса мягких тканей 20 кроликам породы Шиншилла произведена пункция межлопаточного подкожного пространства, установлен катетер с баллоном, баллон раздут в объеме 2 мл, на 3-е сутки катетер с баллоном удален и в образовавшуюся полость введена суспензия клинического штамма золотистого стафилококка. На 5-е сутки у кролика был сформирован абсцесс мягких тканей, что подтверждено данными клинико-инструментального исследования.

Ключевые слова: абсцесс мягких тканей, моделирование, хирургический эксперимент

Введение

В экспериментальной хирургии предложено несколько способов формирования абсцесса мягких тканей. Одним из них является введение в подкожную клетчатку воздуха и в сформировавшийся воздушный пузырь инфекционного агента с формированием через 7 суток подкожного абсцесса [3]. Однако при данном методе не создавалась стенка абсцесса, а моделировалась гнойная распространённая рана. Наиболее близким способом моделирования абсцессов является использования катетера с раздувным баллоном (катетер Фогерти) для формирования фиброзной кисты и абсцесса печени [1, 2]. Недостатком данного способа для создания подкожного абсцесса является чрезмерная длина катетера (40 см).

Цель: моделирование и клинико-инструментальное подтверждение формирования классического абсцесса мягких тканей.

Материал и методы

Эксперимент проведен на 20 кроликах-самцах породы Шиншилла в возрасте одного года с массой тела от 4,8 до 5,1 кг в соответствии с положениями Женевской Конвенции (1985). Определен участок кожи в межлопаточной области размерами 5х3 см, область была выбрана не случайно, а как наиболее безопасной зоной моделируемого абсцесса. После чего произведена депиляция и обработка кожи антисептиком (70% этиловый спирт) участка кожи. Анестезиологическое обеспечение с помощью комбинированного специализированного препарата «Zoletil 100» в дозе 50 мг/кг) [4]. Произведена пункция подкожного пространства иглой Дюфо, через которую введен модифицированный катетер Фогерти (длина 4 см) и раздут баллон в объеме 2 мл раствором 0,9% NaCI, конец катетера укрыт с помощью кожной дупликатуры. Через 3-е суток после установления катетера, было произведено опорожнение баллона и удаление катетера и уже в полученную полость, вводили стандартизированную по оптическому стандарту мутности МакФарланда суспензию Staphylococcus aureus с микробной нагрузкой 2 мл *106 КОЕ. Проведено рутинное динамическое клиническое наблюдение за формирующимся абсцессом, ультразвуковое, гистологическое и микробиологическое исследования на 3-5-7-е сутки эксперимента.

Результаты и обсуждение

Абсцесс мягких тканей сформирован к 4-5 суткам эксперимента. Моделированный гнойник отвечал всем клиническим проявлениям отграниченного абсцесса, имеющего фиброзную стенку и перифокальное воспаление кожи в области гнойника. В эти сроки развития абсцесса из полости гнойника высевается моноштамм St. aureus со средним количеством бактериальных клеток 5,2±0,6*109 КОЕ/мл. По данным УЗИ, абсцесс сформированный абсцесс представлял собой полость округлой формы с неоднородным содержимым окруженной капсулой диаметром 15,2±0,4 мм и толщиной стенки 1,9±0,3 мм. При морфологическом исследовании установлено, что стенка сформированного абсцесса представлена дегенеративно-измененными гепатоцитами и очагами некроза. На границе стенки и содержимого - клеточная инфильтрация, грануляционная ткань, затем рыхлая соединительная, переходящая в плотную соединительную ткань.

Заключение

Получены клинические, микробиологические, морфологические и инструментальные методы диагностики, подтверждающие наличие сформированного абсцесса мягких тканей у всех лабораторных животных. Разработанный способ моделирования абсцесса мягких тканей является малотравматичным, обеспечивает гарантированное формирование абсцесса в короткий срок до 4-5 дней, не требует сложных манипуляций и высокого технического оснащения.

Литература

1. Алипов В.В., Лебедев М.С., Цацаев Х.М. Экспериментальное обоснование использования нанотехнологий в хирургии желудка и печени // Известия высших учебных заведений. Поволжский регион. Медицинские науки. - 2010. - № 3. - С. 3-10.

2. Алипов В.В., Лебедев М.С., Цацаев Х.М. Экспериментальные лазерные нанохирургические технологии. Первые результаты и перспективы // Вестник экспериментальной и клинической хирургии. - 2011. - Т. IV, № 2. - С. 330-333.

www.medconfer.com

© Bulletin of Medical Internet Conferences, 2015

Бюллетень медицинских Интернет-конференций (ISSN 2224-6150)

2015. Том 5. № 11_1375

3. Фокин Ю.В., Сахаров Д.С. Сравнительная характеристика и возможность использования наркотизирующих препаратов Золетил 100 и диэтиловый эфир при проведении операций по вживлению ЭЭГ - электродов на крысах // Биомедицина. - 2011. - №2. - С. 84-89.

4. Шахрай С.В. Моделирование экстрасфинктерного свища прямой кишки в эксперименте // Медицинский журнал. - 2012. - № 3. - С. 131-135.

© Бюллетень медицинских Интернет-конференций, 2015

www.medconfer.com