Научная статья на тему 'Микробиота зерна карамельного и жженого солода'

Микробиота зерна карамельного и жженого солода Текст научной статьи по специальности «Промышленные биотехнологии»

CC BY
222
55
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Журнал
Пиво и напитки
ВАК
Ключевые слова
СОЛОД / MALT / МИКРОБИОТА ЗЕРНА / МИКРОБИОТА СОЛОЖЕНИЯ / GRAIN MICROBIOTA / ПОЛЕВЫЕ ГРИБЫ / WILD MUSHROOMS / MALTAGE MICROBIOTA / МИКОТОКСИНЫ / MYCOTOXIN

Аннотация научной статьи по промышленным биотехнологиям, автор научной работы — Волкова Т. Н., Селина И. В., Созинова М. С.

Микологический анализ зерна нескольких образцов карамельного и жженого солода показал наличие в них разной степени заражения грибами хранения пенициллами и аспергиллами.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Microbiot of grains of caramel and burnt malt

Mycological analysis of some caramel and roasted (black) malt samples showed different grade of contamination by storage fungi Penicillium and Aspergillus species.

Текст научной работы на тему «Микробиота зерна карамельного и жженого солода»

УДК 663.478.2

Микробиота зерна карамельного и жженого солода

|Т. Н. Волкова, канд. биол. наук; И. В. Селина; М. С. Созинова

ВНИИ пивоваренной, безалкогольной и винодельческой промышленности

Ключевые слова: солод; микробиота зерна; полевые грибы; микробиота соложения; микотоксины. Keywords: malt; grain microbiota; wild mushrooms; maltage microbiota; mycotoxin.

Карамельный солод используют для формирования различной интенсивности цвета пива, придания ему большей полноты во вкусе, а также подчеркнутого «солодового» характера. Жженый солод служит для придания темного цвета темным или специальным сортам пива. В зависимости от рецептуры пива к загружаемому солоду добавляют эти специальные типы солода в количествах от 0,5-2 % (жженый) до

3-10% (светлый карамельный или темный карамельный) на засыпь [1].

Зерно ячменя содержит на своей поверхности и под оболочками определенное количество микроорганизмов — бактерий, дрожжей, микроскопических мицелиальных грибов, образующих сообщество — микробиоту [2, 3].

Процесс солодоращения — стадии замачивания, проращивания, начальный период подсушивания

(физиологическая фаза, см. сноску к табл. 1) — чрезвычайно благоприятны для роста и развития микробиоты, которая численно значительно возрастает и не всегда бывает безопасна как в технологическом, так и в санитарно-гигиеническом отношении (перерастворение эндосперма, накопление ми-котоксинов, гашинг) [2, 3]. Следующая далее стадия сушки в случае производства светлого солода происходит при температуре 70...85 °С (табл. 1), недостаточной для гибели всей микробио-ты [1, 4]. Большая часть грибов сохраняется в виде жизнеспособных спор, жизнедеятельность которых прекращается, но может легко возобновиться при увеличении влажности зерна. То же справедливо для бактериальной и дрожжевой компоненты микробиоты. В результате свежеотсушенный светлый солод бывает обсеменен большим количеством микроорганизмов, т. е. имеет высокую инфекционную нагрузку, выражаемую величинами от 3 до 5 баллов (при шкале 1-5 баллов).

Микробиота зерна светлого солода состоит из так называемой «микробио-ты соложения» (бактерии, дрожжи, дрожжеподобные грибы Geotrichum candidum, Aureobasidium ри11и1ат

Таблица 1

Тип солода Влажность зерна, % Операция (фаза процесса) Температура, °С Продолжительность операции

Светлый Исходный ячмень — 43% Подсушивание 50 4 ч

стандартный солод, (физиологическая фаза* — до 20% 55 4 ч

цвет до 3 ед. ЕВС влажности зерна; 60 10 ч

ферментативная фаза —до 10-12% 65 Х ч (до достижения температуры

влажности зерна) отводимого воздуха 32°С)

Нагревание От 65 до 80 4 ч

Сушка (химическая фаза) 80...85 ** 4-5 ч

Конечная влажность:

3,5-4% — светлый солод; Общая продолжительность 31-33 ч

1,5-2% — темный солод

Не менее 4 нед

Отлежавшийся солод — 4-6% Отлежка

Карамельный солод, Исходный светлый солод, Подвяливание 40...45 12-18 ч

светлые сорта — повторно замоченный (растворение Далее в обжарочном

цвет 20-40 ед. ЕВС; до влажности 48-53% и осахаривание крахмала) барабане при 70.75 60-90 мин

темные сорта — цвет:

I — 80-100 ед. ЕВС; Конечная влажность 1-2% Нагревание От 75 до 150 90-120 мин

II — 110-130 ед. ЕВС;

III — 140-160 ед. ЕВС Обжарка 150-160*** 1-2 ч

Жженый солод, цвет: Исходный светлый солод, Пауза осахаривания 70.80 30-45 мин

I — 800-900 ед. ЕВС; повторно замоченный

II — 1000-1300 ед. ЕВС; до влажности 48-53% Нагревание От 80 до 220*** 90-120 мин

III — 1300-1600 ед. ЕВС

Обжарка 220, не выше 230**** 60-90 мин (до появления

«кофейного цвета» на срезе зерна)

Конечная влажность 1-2%

* Физиологическая фаза в процессе подсушивания длится до тех пор, пока влажность зерна остается выше 20%, а температура — ниже 40 °С. В это время в зерне еще продолжают идти процессы роста, длина зародышевого листка увеличивается вплоть до конца процесса подсушивания. Диапазон физиологического оптимума развития проростков зерна совпадает с таковым мицелиальных грибов, развивающихся на зерне.

** Окрашенные и ароматические соединения образуются в различных реакциях, главная из которых — реакция Майяра, при температурах выше 70...80 °С. *** Ниже 160 °С крахмал солода не меняется, и лишь по достижении 200 °С происходит сначала сильное образование меланоидинов, а затем горьких и ароматических соединений пироллов и пиразинов.

**** 248,8 °С — температура обугливания/самовоспламенения зерна.

5^2010

42

и др.), частично сохранившихся полевых грибов (альтернария, биполярис, эпикоккум, фузариум и др.), а также некоторого количества грибов хранения (пенициллы, аспергиллы, мукор, ризопус) [2, 3].

При производстве карамельного солода применяется температура обжаривания 150.. .160 °С, при производстве жженого солода температура обжаривания достигает 220 °С (см. табл. 1). Теоретически при таких температурах погибает вся бактериальная, грибная и дрожжевая микробиота.

При обработке влажным жаром вегетативные клетки большинства бактерий, дрожжей и грибов гибнут при температуре около 60 °С через 5-10 мин, споры дрожжей и мицелиальных грибов — при температуре выше 80 °С, а споры бактерий — выше 120 °С через 15 мин. При воздействии сухим жаром 30-минутный нагрев при 180 °С гарантирует гибель любых спор [5].

Аскоспоры (споры полового размножения) пенициллов и аспергиллов гораздо более термоустойчивы, чем конидии (споры бесполого размножения). Некоторые аскоспоры грибов могут сохранять жизнеспособность при 90 °С и более высоких температурах [6], что достаточно для выживания в стандартных условиях сушки светлых типов солода.

Таблица 2

Микотоксины Температура плавления, °С Примечания

Афлатоксины: В, 2б8...2б9 оой ООП Слаборастворимы в воде Нерастворимы в неполярных растворителях,

В2 G. G2 286.289 244.246 237.240 легко растворимы в растворителях средней полярности (хлороформ, метанол, диметил-сульфоксид)

Стеригматоцистины 246 Хорошо растворяются в хлороформе,

ацетонитриле, ацетоне, этилацетате

Охратоксин: Слаборастворим в воде, умеренно растворим в

А 169

полярных органических растворителях

В 221 (метанол, хлороформ), а также в водном

С — растворе гидрокарбоната натрия

Трихотеценовые микотоксины (ТТМТ): Плохо растворимы в воде, кроме ДОН

Тип А:

Тип А — растворимы в умеренно полярных

Т-2-токсин 150.151 растворителях (ацетон, этилацетат, хлороформ);

НТ-2-токсин — тип В — в более полярных растворителях (этанол, метанол) ТТМТ не инактивируются автоклавированием, разлагаются в течение 10 мин при 480 °С

Диацетоксисцирпенол (ДАС) 162.164

Тип В:

Ниваленол 222.223 или за 30 мин при 260 °С

Дезоксиниваленол(ДОН) 131.135 ДОН хорошо растворим в воде

Плохо растворим в воде и п-гексане, хорошо

Зеараленон 164.165 растворим в этаноле, метаноле, ацетонитриле, ацетоне, бензоле, в щелочной среде при 100 °С за 60 мин разрушается около 50% токсина

Лютеоскирин 287

Цитреовиридин 107.111

Цитринин 170.171

Микотоксины, большинство из которых обладают высокой термостабильностью (табл. 2), при таких температурах не разрушаются [7].

Рис. 1. Образцы солода: 1 — карамельный солод № 1; 2 — карамельный солод № 2; 3 — жженый солод «black»; 4 — светлый солод отечественного производства

Зерно свежеотсушенного карамельного и жженого солода в отличие от светлого солода, по-видимому, бывает практически стерильным. Однако в дальнейшем солод неизбежно в той или иной степени инфицируется, несмотря на низкую влажность готового продукта. Сохранность его зависит от соблюдения температурно-влажностного режима хранения и отсутствия источников заражения. Инфицированию солода способствуют: высокая гигроскопичность зерна; наличие низкомолекулярных соединений — сахаров, пептидов, аминокислот и т. п., являющихся легкодоступными источниками питания для микроорганизмов; отсутствие конкуренции со стороны собственной (ин-дигенной) микробиоты зерна.

В случаях сильного развития инфекции возможно и накопление ми-котоксинов, которые могут не только снижать качество готового продукта, представляя опасность для здоровья потребителя, но и нарушать технологический процесс брожения, оказывая токсическое действие на пивные дрожжи [2].

Определяли состав микробиоты трех образцов карамельного солода: № 1, № 2, № 3 и одного образца жженого солода «black» (№ 4) — все импортного производства (рис. 1). Для

5^2010

43

Таблица 3

Видовой состав микробиоты (% зерен, зараженных данным видом)

Образец солода Грибы полевые Грибы хранения Микробиота соложения Стерильность Инфекциионная нагрузка в баллах, 1-5

сумма пеницилов и аспергиллов сумма мукоровых грибов геотрихум дрожжи бактерии зерна, %

Карамельный солод № 1 0 66 4 2 18 8 28 0,01

Карамельный солод № 2 0 8 0 1 40 60 74 0,01

Карамельный солод № 3 0 114 0 0 30 70 0 2

Жженый солод» black» № 4 0 41 2 0 2 6 46 0,01

Светлый солод, среднее из четырех образцов 70 28 28 40 100 100 0 4-5

сравнения проанализировали четыре образца светлого солода от разных отечественных производителей.

Образцы солода № 1, 2 и 4 имели срок хранения около 6 мес, образец № 3 — около 8 мес, включая длительную транспортировку в плохо контролируемых температурно-влажностных условиях. Образцы

светлого солода имели сроки хранения от 1 до 3 мес.

Показатели цветности образцов солода (ед. ЕВС) были следующими: № 1 — 184; № 2 — 196; № 3 — 160; № 4 солод жженый «black» — 1450 (для сравнения: светлый солод I класса имеет цветность до 3,4 ед. ЕВС, II класса — до 6,6 ед. ЕВС).

Результаты микологического анализа приведены в табл. 3 и на рис. 2-5.

Действительно, в трех образцах карамельного и жженого солода, хранившихся в хороших условиях, от 28 до 74% зерен оказались стерильными. Остальные зерна были инфицированы пенициллами (максимально — 50% в № 1) и аспергил-

Рис. 2. Светлый солод свежеотсушенный:

А — сусло-агар (СА), 7 сут; слева — внутренняя микробиота (наружная удалена с зерен слабой поверхностной дезинфекцией), представлена, главным образом, микробиотой соложения (вокруг каждого зерна — белая колония Geotrichum candidum), красный пигмент образует Epicoccum purpurascens;

справа — наружная микробиота (зерна без обработки дезинфектантом), состоящая преимущественно из полевых грибов и грибов хранения, вокруг зерен — колонии полевых грибов альтернарии и эпикоккума, на одном зерне виден Geotrichum candidum, одно зерно заражено пенициллом, треть чашки занимает газон Rhizopus nigricans; Б — светлый солод свежеотсушенный, влажный фильтр, 7 сут, наружная микробиота, обе чашки покрыты газоном Rhizopus nigricans, некоторые зерна дали ростки

Рис. 3. Солод карамельный № 1:

А — СА, 7 сут, наружная микробиота, видны одна большая белая колония Geotrichum candidum, серо-голубые колонии пенициллов, слизистые бактериально-дрожжевые колонии;

Б — солод карамельный № 1, влажный фильтр, 7 сут, наружная микробиота, на части зерен виден голубоватый рост пенициллов

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.

5 • 2010

44

Рис. 4. Солод карамельный № 2:

А — СА, 7 сут, наружная микробиота, видна светло-зеленая колония Aspergillusflavus, большинство зерен — стерильны;

Б — солод карамельный № 2, влажный фильтр, 7 сут, наружная микробиота, на зернах видны светло-зеленый рост Aspergillus flavus и голубоватый рост пенициллов, много зерен стерильных

Рис. 5. Солод жженый «black» № 4:

А — СА, 7 сут, наружная микробиота, светло-желто-зеленые и зеленые колонии Aspergillus flavus, голубые колонии — пенициллы, серый и бежево-серый газон — мукоровые грибы;

Б — солод жженый «black» № 4, влажный фильтр, 7 сут, наружная микробиота, виден рост Aspergillus flavus и пенициллов на отдельных зернах, часть зерен — стерильны

лами Aspergillus flavus и представителями группы Aspergillus glaucus (максимально — до 16%). В образцах карамельного и жженого солода полностью отсутствовали полевые грибы, тогда как в светлых сортах солода до 70% зерен еще содержат такие грибы (см. рис. 2, А). Наблюдаются значительное снижение бактериальной и дрожжевой инфекции и отсутствие геотрихума (в светлых сортах солода он нередко обнаруживается на 100% зерен). В целом инфекционная нагрузка оказалась на несколько порядков ниже таковой у светлых сортов солода и оценивалась в 0,01 балла.

В образце солода № 3, претерпевшего длительную транспортировку в неблагоприятных условиях, была совершенно иная картина: стерильные зерна не встречались; отмечалось 100%-ное заражение аспергил-лом из группы Aspergillus glaucus, обнаруживались также пенициллы (12 %) и Aspergillus flavus (2 %). Инфекционная нагрузка оценивалась в 2 балла.

Мукоровые грибы во всех обследованных образцах карамельного и жженого солода встречались лишь единично.

В светлом же солоде заражение мукоровыми грибами всегда бывает значительным.

То, что заражение солода произошло уже после его обжарки и охлаждения, становится очевидным благодаря отсутствию какой-либо корреляции между температурой обжарки и уровнем зараженности образца. Так, жженый солод «black» № 4 (температура обжарки 220 °С) оказался более зараженным, чем карамельный солод № 2 (температура обжарки 150.160 °С).

Полученные результаты свидетельствуют о том, что специальные сорта солода, прошедшие высокотемпературную обработку, инфицируются при их последующем хранении и транспортировании. Поэтому следует более внимательно относиться к контролю температурно-влажностных условий на этих стадиях.

ЛИТЕРАТУРА

1. Нарцисс, Л. Технология солодоращения: пер. с нем./Л. Нарцисс. — СПб.: Профессия, 2007.

2. Флэнниган, Б. Микробиота ячменя и солода. Микробиология пива: пер. с англ./Б. Флэнниган. — СПб.: Профессия, 2005. — С. 111-170.

3. Волкова, Т. Н. Оценка зараженности зерна ячменя и солода плесневыми грибами/Т. Н. Волкова // Пиво и напитки. — 2010. — № 2. — С. 26-32.

4. O'Rourke T. Barley & malting. Malt specification and speciality malts (part 1, part 2)/T. O'Rourke // Brewers' Guardian. — 1999. — January. — P. 47-49. — 1999. — February. — P. 26-29.

5. Шлегель, Г. Общая микробиология/Г. Шле-гель. — М.: Мир, 1987.

6. Питт, Дж. И. Penicillium и близкородственные роды плесеней. Микробиологическая порча пищевых продуктов: под ред. Клива де Блэкберна/Дж. И. Питт. — СПб.: Профессия, 2008. — С. 497-511.

7. Тутельян, В. А. Микотоксины. Медицинские и биологические аспекты/В. А. Тутельян, Л. В. Кравченко. — М.: Медицина, 1985. &

5 • 2010

45

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.