CC BY
45
На рисунке 5 представлены кривые зависимости результирующей динамической силы действующей на остов много роторной системы от количества работающих роторов с учётом жесткости тензометрических датчиков, воспринимающих эти силы (Сg =6,65 кн/мм). Частота вращения роторов составляет 12000 об/мин.
Полученные зависимости легко аппроксимировать известными кривыми, уравнения которых могут быть использованы в расчётах многороторных систем аналогичной конструкции. Все параметры измерительной системы указаны в работе [1].
Балансировка роторов проводилась на балансировочном станке фирмы «Шенк», который позволяет достаточно точно фиксировать вектор остаточного дисбаланса каждого ротора системы. В случае использования многороторных систем с жесткой кинематической связью (например, цепные передачи), при известных векторах дисбалансов, установка роторов соответственно первой ситуации, позволяет снизить вибрации в системе и повысить эксплуатационные характеристики оборудования.
Библиографический список
1. Воробьёв Б. Т., Кузнецов ГК., Маянский С.Е. Экспериментальное исследование динамических нагрузок, создаваемых рабочими органами пневмомеханических машин // Технология текстильной промышленности. - 1987. - .№5.
2. Мэнли Р. Анализ и обработка записей колебаний / Пер. с англ. - М.: Машиностроение, 1972.
3. Тимошенко С.П., Янг Д.Х., Уивср У. Колебания в инженерном деле / Пер. с англ. - М.: Машиностроение, 1985.
А.П. Откидач, А.А. Барышев
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ ПРИ ВЫРАЩИВАНИИ МОЛОДИ ОСЕТРОВЫХ В ТЕПЛОВОДНЫХ УСЛОВИЯХ
Конечным звеном в изучении трансформации токсикантов в процессе выращивания осетровых является их молодь. Оценку физиологического состояния молоди бестера и белуги проводили по гематологическим показателям в период повышенных значений температуры воды на рыбоводном участке Волгореченского рыбхоза (28 °С). При видимом благополучном состоянии здоровья молоди отмечались некоторые изменения показателей крови. Так содержание гемоглобина у молоди в опыте по сравнению с контролем, увеличилось на 20%. Отмечено снижение интенсивности эрит-ропоэза, судя по малому количеству молодых незрелых форм, снижение концентрации сывороточного белка до 6,0 г/л (контроль - 11,2 г/л). Лей-копоэз усиливался за счет моноцитов и грануло-цитов. Выявленные изменения соответствуют признакам развития у молоди стресс-реакции,
явившейся впоследствии одной из причин возникновения жаберного заболевания молоди. На основании анализа показателей, характеризующих качество водной среды, кормов и физиологическое состояние молоди при воздействии на нее неблагоприятных факторов, можно заключить, что в процессе выращивания молоди осетровых складываются условия, способствующие развитию заболевания рыб с поражением жаберного аппарата. Для выяснения этиологии заболевания и причастности бактерий к патологии выращиваемой рыбы проводили качественный учет микрофлоры, обсеменяющей рыбу и воду. Анализ полученных результатов показал отсутствие закономерности доминирования условно-патогенной микрофлоры у больной и здоровой рыбы. В обоих случаях зарегистрировано преобладание бактерий группы протея примерно на одном уровне, что дает возможность предположить от-
© А.П. Откидач, А.А. Барышев, 2009
Вестник КГУ им. Н.А. Некрасова ♦ № 1, 2009І
Таблица
Микробная фауна молоди осетровых и воды, % (Х±ш)
Выделенная микрофлора Обсемененность рыбы Обсемененность воды n=64
больной n=58 здоровой n=55
Протеи 15,4±0,96 11,3±0,53 12,6±0,93
Морганеллы 4,3±0,46 4,7±0,43 12,4±0,56
Бациллы 19,2±1,16 21,6±1,24 19,5±0,65
Грамнегативные кокки 15,9±0,66 15,6±0,26 7,8±0,49
Другие энтеробактерии 19,2±0,37 4,5±0,29 12,4±0,46
Грибы, актиномицеты 7,5±0,26 6,7±0,13 12,9±0,53
сутствие специфического этиологического агента. При этом наблюдается вторичная бактериальная септицемия, отягощающая патологические процессы (табл.).
В последние годы в практике аквакультуры успешно применяется субалин, приготовленный на основе споровой палочки Bacillus subtilis. Он характеризуется широким спектром антагонистической активности в отношении патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, антивирусной активностью, а также способен повышать неспецифическую резистентность организма и стимулировать пищеварение.
Полученные нами результаты микробиологических исследований показали лечебно-профилактическое действие субалина (в дозе 100 млн. спор на 1 кг рыбы) на организм молоди белуги, русского и ленского осетров, шипа, стерляди и их гибридов различных генотипов. Установлено бак-териостатическое действие этого препарата. Выявлено снижение уровня условно-патогенной микрофлоры с максимальными значениями через трое-четверо суток при введении биопрепарата в корма молоди. Исследования по определению чувствительности доминирующей микрофлоры к антибиотикам показали, что максимальным терапевтическим эффектом по отношению к выделенной у молоди микрофлоре обладают тетрациклин, левомицетин и стрептомицин, которые могут быть использованы для профилактики и лечения молоди осетровых рыб при их чередовании.
В целях повышения иммунитета молоди осетровых в условиях тепловодной аквакультуры необходимо вводить в их рацион комплекс жирорастворимых витаминов А, Д, Е (в дозе - 15 тыс. МЕ-А). Следует учитывать, что при развитии мо-
лоди осетровых рыб может развиваться анемия. Клинические проявления анемии в тепловодных условиях следующие: жабры серого или бледнорозового цвета, печень бледная, увеличенная селезенка. Содержание гемоглобина изменяется от 35 до 10 мг/л, а число эритроцитов - от 270 до 140 тыс/ мкл, число лейкоцитов возрастает, в основном, за счет лимфоцитов. В целях повышения содержания гемоглобина и числа эритроцитов в крови молоди осетровых следует вводить в рацион препарат ультрадисперсного железа до 0,30,5 мг на кг ихтиомассы. Следует заключить, что жаберный некроз возникает у молоди исследуемых осетровых рыб и их гибридов при выращивании на теплых водах в летний период при повышении температуры воды на 10-12 °С по сравнению с температурой воды в Горьковском водохранилище. Профилактические мероприятия при жаберном некрозе молоди осетровых могут быть следующих направлений: контроль температурного режима воды во все периоды выращивания личинок и молоди; очистка донных отложений ила в подводящем канале теплой воды на тепловодный рыбоводный участок и бассейнах в процессе их эксплуатации. А также использование систем очистки воды, обогащение ее кислородом; использование в кормлении рыб полнорационных кормов.
Следует применять биопрепараты способствующие повышению естественной резистентности молоди осетровых рыб, таких как субалин, жирорастворимые витамины, ультрадисперсное железо в целях профилактики анемии. Для снижения бактериальной активности микрофлоры необходимо применение антибиотиков, что способствует повышению сохранности, выживаемости, интенсивности роста молоди.
22
Вестник КГУ им. Н.А. Некрасова ♦ № 1, 2009
