CC BY
49
тшекш штшшгткни жтЬ
ЭПИЗООТОЛОГИЯ, ЭПИДЕМИОЛОГИЯ И МОНИТОРИНГ
ПАРАЗИТАРНЫХ БОЛЕЗНЕЙ
Поступила в редакцию 15.11.2015 УДК 576.895.122
Принята в печать 05.03.2016 DOI: 10.12737/20061
Для цитирования:
Шакарбаев У.А., Акрамова Ф.Д., Азимов Д.А. Melanoides kainarensis — новый промежуточный хозяин трематоды Philophthalmus lucipetus (Trematoda, Philophthalmidae) //Российский паразитологический журнал. — М. — 2016. — Т. 36. — Вып. 2. — С. 183-191.
For citation:
Shakarbayev U.A., Akramova F.D., Azimov D.A. Melanoides kainarensis — new intermediate host of trematodes Philophthalmus lucipetus (Trematoda, Philophthalmidae), Russian Journal of Parasitology. M., 2016. Vol. 36. Iss. 2. pp. 183-191.
Melanoides kainarensis — НОВЫЙ ПРОМЕЖУТОЧНЫЙ ХОЗЯИН ТРЕМАТОДЫ Philophthalmus lucipetus (TREMATODA, PHILOPHTHALMIDAE)
Шакарбаев У.А., Акрамова Ф.Д., Азимов Д.А.
Институт генофонда растительного и животного мира АН РУз, ул. Богишамол 232, Ташкент, 100053, Узбекистан, e-mail: [email protected]
Реферат
Цель исследования — изучение зараженности моллюсков Melanoides kainarensis Starobogatov et Izzatullaev, 1980 церкариями трематоды Philophthalmus lucipetus (Rudolphi, 1819) в условиях Узбекистана.
Материалы и методы. Исследованы церкарии и партениты Ph. lucipetus, из моллюсков M. kainarensis из теплого источника Бошховуз Самаркандской области Узбекистана. Морфологические и биологические исследования осуществлены известными паразито-логическими методами.
Результаты и обсуждение. При исследовании 2801 экз. M. kainarensis оказались зараженными церкариями и партенитами рода Philophthalmus Looss, 1899, которые были идентифицированы и отнесены к виду Ph. lucipetus. Собранные церкарии и адолескарии использованы для экспериментального заражения Anser anserdom., Anas platyrhynchоs dom. и Gallus gallus dom. Взрослые паразиты, выделенные из конъюнктивального мешка зараженных птиц были определены как Philophthalmus lucipetus. Это первый случай, подтверждающий участие M. kainarensis в качестве промежуточного хозяина указанной трематоды.
Ключевые слова: Melanoides kainarensis, Philophthalmus lucipetus, партениты, церкарии, адолескарии, трематоды, птицы, моллюски.
Введение
Диапазон географического распространения Philophthalmus lucipetus (Rudolphi, 1819) достаточно широк. Популяции этой трематоды зарегистрированы во многих странах Европы, Азии, Африки и Америки у различных экологических групп птиц. Взрослые трематоды паразитируют в конъюнктивальном мешке и вызывают серьезное заболевание у сельскохозяйственных и охотничье-промысловых птиц. В странах СНГ данный вид зарегистрирован у Anser anser на территории Украины (Смогоржевская, 1976). Популяции Ph. lucipetus отмечены во многих странах у гусей, уток, кур, павлинов, индюков, страусов и нанду (Greve and Harrison, 1980; Mukaratirwa et al., 2005; Pinto, 2009). В качестве промежуточных хозяев этой
трематоды указанными авторами были установлены моллюски Melanoides tuberculatus, ________
. Skryabin
И^Г^Ж^^^Ж.^ Ш^ШЙ Том 36
ЗЗП"™;;".:] ¿ЧгаГЗЖГ. ^Т.ТЛ^ТГТЦ:^" Выпуск 2/2016
Fagotia acicularis, Amphimelaniaholandri, Melanopsispraemorsa, Pleurocerca acuta и Tarebia granifera (Alicata, 1962; Literaketal., 2013).
Взрослые формы Ph. lucipetus у птиц в естественных условиях Узбекистана пока не отмечены. Однако, нахождение церкарий у M. kainarensis, как нового промежуточного хозяина в Узбекистане и формирование очага инвазии только на одной территории настоятельно потребовали проведения настоящих исследований.
Целью данной работы является установление естественной инвазированности популяции M. kainarensis церкариями Ph. lucipetus в Узбекистане и воспроизведение жизненного цикла этой трематоды в условиях эксперимента.
Материалы и методы
Материалом для настоящей работы послужили результаты фаунистических и экспериментальных исследований, выполненных в 2010 — 2015 гг. с целью изучения фауны и мор-фо-биологических особенностей церкарий, развивающихся в пресноводных моллюсках. Сбор моллюсков проводили по общепринятой методике (Жадин, 1952) из теплого родникового источника (Бошховуз в степи Карнабчуль Нурабадского района Самаркандской области). Этот теплый водоем интенсивно посещают водно-болотные птицы. Наблюдение проводилось стационарно. С 2014-2015 г. исследовано 2801 экз. указанных моллюсков Melanoides kainarensis. Видовая диагностика проводилась по работам (Лихарев и Старо-богатов, 1967; Старобогатов, Иззатуллаев, 1980). Собранные моллюски были доставлены в лабораторию, где их рассаживали индивидуально в стаканчики, содержащих по 50 мл водопроводной воды при температуре 20-25 °С. Наблюдения эмиссии церкарий проводилось визуально и с использованием бинокуляра МБС — 10.
Морфологию вышедших в воду церкарий изучали с использованием витальных красок — 0.05 % нейтрального красного и 0.05 % сульфата нильского (Гинецинская, 1968). Для окрашивания тотальных препаратов использовали уксуснокислый кармин.
Для воспроизведения жизненного цикла Ph. lucipetus были использованы 15 домашних птиц (утки, гуси и куриы). Первая группа (утки) заражались адолескариями перорально; вторая (гуси) — введением адолескарий в конъюнктиву с помощью глазной пипетки; третья — цыплята — введением церкарий в конъюнктиву глаз.
Птицы в течение опыта содержались в условиях, препятствующих её заражению указанной трематодой. Спустя 25-30 дней после заражения в полости конъюнктивы у исследованных птиц опытных групп обнаружено 47 экз. трематод. Они были идентифицированы как Ph. lucipetus.
Статистическая обработка данных проводилась с применением методов компьютерной программы Biostat 2007 и Microsoft Office Ecxel 2007.
Результаты и обсуждение
Популяции моллюсков M. kainarensis обитают в теплых родниках и образуемых ими ручьях и прудах на глубине до 15-20 см на каменных и заиленных грунтах с численностью 120-150 особей на кв. м.
Продолжительность жизни 5-8 лет. Питается бактериальными обрастаниями, микроводорослями (Старобогатов, Иззатуллаев, 1980; Красная книга Узбекистана, 2009).
При исследовании 2801 экз. M. kainarensis в 2014 — 2015 гг. у 308 экз. (10.8%) обнаружены церкарии трематоды Ph. lucipetus (табл. 1, рис. 1), которые локализовались в гепато-панкреасе.
Церкарии обладают довольно крупными размерами. Тело удлинено, овальное, 0.53 — 0.65 мм длины и 0.11 — 0.14 мм ширины. Максимальная ширина отмечена впереди брюшной присоски. Хвост 0.46 — 0.52 мм длины и 0.03 — 0.06 мм ширины. Хвостовой конец тупой, как бы обрубленный, где имеется присоскоподобное образование, снабженное железистыми клетками, протоки которых открываются на вершине хвоста. Субтерминальная ротовая присоска округлой формы, 0.04 — 0.06 мм длины и 0.04 — 0.05 мм ширины. Брюшная присоска 0.06 — 0.07 мм длины и 0.08 мм ширины. Ротовое отверстие субтерминальное. Префаринкс хорошо развит, глотка овальная, 0.03 — 0.04 мм длины и 0.01 — 0.02 мм ширины; пищевод достаточно длинный — 0.10 — 0.12 мм, бифурцирует впереди
рвеемйе&мм ттшшя^яи ЖУ вззггздя я: рдзуютттот
брюшной присоски; кишечные ветви длинные, которые заканчиваются слепо и доходят до заднего конца тела. Железистые клетки многочисленные, протоки которых открываются в передней части тела. Выделительная система построена по общему для филофтальмид типу, представлена большим числом циртоцитов, системой канальцев и мочевым пузырем. Экскреторная система выражается формулой 2[(3+3+3)+(2+2+2)]=30. Половые зачатки образованы скоплением клеточных масс, продольно расположенных в пространстве между бифуркацией пищевода и передней части мочевого пузыря.
Таблица 1
Естественная зараженность моллюсков Melanoides kainarensis церкариями
Philophthalmus lucipetus
Время года Исследовано, экз. Зараженность, (%)
2014 Июнь 415 32 (7.7)
Июль 581 64 (11.0)
Август 420 51 (12.1)
2015 Январь 64 7 (10.9)
Июнь 326 28 (8.6)
Июль 483 56 (11.6)
Август 512 70 (13.7)
Итого: 2801 308 (10.8)
Рис. 1. Philophthalmus 1иаре^ (Rudolphi, 1819): А — Общий вид церкария; Б — хвостовой конец церкария; В — процесс отторжения хвоста; Г — адолескария; Е — эксцистированная метацеркария в печени моллюска. рп — ротовая присоска; бп — брюшная присоска; мп — мочевой пузырь; хв — хвост; хп — хвостовая присоска
_
Том 36
^ТН™!?^] „"тагж;. ^Т.ТЛ^ТГТЦ:^" Выпуск 2/2016
Адолескарии, как правило, грушевидной формы, 0.48 — 0.52 мм длины и 0.20 — 0.24 мм ширины (табл. 2).
Таблица 2
Характеристика размеров церкарий и адолескарий Philophthalmus 1ис1ре^в, мм
Промежуточный хозяин
Показатели Melanoides kainarensis
Церкарии: Limit M±m
Тело: длина 0.53-0.65 0.59±0.014
ширина 0.11-0.14 0.12±0.003
Ротовая присоска: длина 0.04-0.06 0.046±0.0021
ширина 0.04-0.05 0.041±0.001
Брюшная присоска: длина 0.06-0.07 0.06±0.001
ширина 0.07-0.08 0.071±0.001
Глотка: длина 0.03-0.04 0.03±0.001
ширина 0.01-0.02 0.01±0.001
Пищевод: длина 0.10-0.12 0.10±0.002
Головные железы 20 пар
Экскреторная система 2[(3+3+3)+(2+2+2)]=30
Хвост: длина 0.46-0.52 0.49±0.006
ширина 0.03-0.06 0.042±0.003
Адолескарии: длина 0.48-0.52 0.49±0.004
ширина 0.20-0.24 0.22±0.004
Литературных сведений по вопросу развития Ph. lucipetus в дефинитивном хозяине немного (West, 1961; Alicata, 1962; Mukaratirwaetal., 2005; Pinto, 2009). Авторами изучалось развитие марит у птиц, экспериментально зараженных адолескариями, сформированных из церкарий, полученных от моллюсков (Melanoides tuberculatus, Tarebia granifera, Pleurocerca acuta).
Наши наблюдения за развитием Ph. lucipetus в окончательном хозяине, проводились с использованием личинок, выделенных из спонтанно зараженных моллюсков M. kainarensis в условиях Узбекистана.
Все подопытные птицы вскрывались через 25-30 дней после заражения. Такая схема эксперимента дала возможность определить влияние различных способов заражения птиц личинками (адолескариями и церкариями) этой трематоды.
Нами выяснилось (табл. 3), что в условиях эксперимента птицы всех групп, независимо от способа введения личинок, оказались зараженными, паразиты достигали половой зрелости и локализовались в инфраорбитальной области глаз. Интенсивность инвазии колебалась от 3 до 15 экз. Морфометрические данные (n-15) зрелых червей, представлены в табл. 4.
Таблица 3
Результаты экспериментального заражения домашних птиц личинками Philophthalmus lucipetus
Группы Число заданных личинок одной птице, экз. Число заразившихся птиц, экз. Интенсивность инвазии
Группапервая: Gallus gallus dom. (5 ос.) 25-30 5 9-15
Группавторая: Anser anser dom. (5 ос.) 25-30 5 5-13
Группа третья: Anas platyrhyn^s dom. (5 ос.) 25-30 5 5-13
рвеемйе&мм ттшшя^яи ЖУ вигзня эт рдзуютттот
Тело мариты Ph. lucipetus удлиненное, оба конца равномерно округлые небольшого размера. Ротовая присоска терминальная, хорошо развита. Имеется префаринкс. Фаринкс расположен позади ротовой присоски. Пищевод небольшой, бифурцирует спереди брюшной присоски. Кишечные стволы тупо заканчиваются в задней части тела. Яичник округлой формы, лежит впереди семенников. Бурса цирруса расположена в пространстве между бифуркацией кишечника до задней части брюшной присоски. Половое отверстие находится вентрально от бифуркации кишечника и позади фаринкса. Желточники расположены аркой на каждой стороне тела и состоят из сплошных фолликулов. Матка мощно развита и ее петли занимают пространство от брюшной присоски до семенников. В матке многочисленные яйца со сформированными мирацидиями (табл. 4, рис. 2).
Таблица 4
Характеристика размеров (мм) марит Philophthalmus Ша'реи от экспериментально зараженных птиц
Признаки Окончательные хозяева
Gallus gallus dom., Anser anser dom., Anas platyrhynchos dom.
Limit M±m
Тело 1.90-2.46x0.68-1.46 2.206±0.055х1.087±0.075
Ротовая присоска 0.24-0.32x0.28-0.38 0.278±0.007х0.317±0.009
Брюшная присоска 0.36-0.48x0.36-0.48 0.421±0.009х0.421±0.009
Фаринкс 0.23-0.36x0.20-0.32 0.306±0.009х0.266±0.009
Пищевод Короткий Короткий
Передний семенник 0.17-0.36x0.28-0.44 0.268±0.012х0.351±0.012
Задний семенник 0.12-0.18x0.10-0.24 0.148±0.005х0.17±0.016
Яичник 0.12-0.22x0.15-0.26 0.168±0.008х0.203±0.008
Яйцо 0.08-0.09x0.03-0.04 0.083±0.001х0.033±0.001
Рис. 2. Philophthalmus lucipetus (Rudolphi, 1819): А — Общий вид мариты; Б — мужские половые органы.
кееяйскзШ ЖУПКП
лзэямы ST PÄsasirsaiTOV
Том 36 Выпуск 2/2016
Разными авторами описано около 36 видов трематод, относящихся к роду Philophthal-mus (Kanev et al., 1993; Abdul-Salam et al., 2004; Radev et al., 2006). Структура рода, видовое разнообразие, особенности биологии подвергаются в настоящее время интенсивному изучению и ревизии (Pinto, 2009; Literak et al., 2013). Результаты исследований (Literak et al., 2013) показали идентичность Ph. gralli и Ph. lucipetus. Эти авторы перевели Ph. gralli в качестве синонима, Ph. lucipetus, что соответствует принципам приоритета. Мы, придерживаемся этой точки зрения.
Тем не менее, зрелые трематоды у птиц Узбекистана, пока не обнаружены. Выявление церкарий в моллюсках M. kainarensis, в локальном водоеме Узбекистана, вероятно, связано с заносом инвазии сезонной миграцией водно-болотных птиц из других регионов. Наличие биологических предпосылок способствовало формированию нового очага инвазии на этой территории. Популяции моллюсков M. kainarensis — стали выполнять роль нового промежуточного хозяина, рассматриваемой трематоды.
Следующий этап в жизни церкарий — эмиссия во внешнюю среду. Выход личинок Ph. lucipetus как правило, происходит в сумерках и ночью и в небольшом количестве в утренние часы. После непродолжительного плавания церкарии, как правило, прикрепляются хвостовым концом к субстратам водоема. В лабораторных условиях, как показали наблюдения, они прикрепляются к стенкам стакана или чашки Петри настолько крепко, что полностью нарушается поступательное движение личинок. При «иммобилизации» хвостового конца церкарии принимают вертикальное положение и совершают интенсивные маятникообразные и круговые движения, способствующие отторжению тела от хвостового ствола и инцистируются и превращается в адолескарий. При этом, на стенках сосуда (стакан, чашки Петри) концентрируется несколько групп адолескарий, состоящих из 5-10 экз., формируя при этом отдельные микроконгломераты.
Морфо-биологические особенности церкарий-представителей филофтальмид ранее были замечены рядом исследователей, которые сводятся к тому, что общей чертой организации личинок этих трематод является изменение хвоста, в связи с утратой им локомоторной функции, и превращением в орган прикрепления (Тихомиров, 1980; Галактионов, Добровольский, 1987, 1998; Атаев, 1991).
Дело в том, что в течение свободной жизни церкарий, ротовая и брюшная присоски выполняют функции органов прикрепления, в которых располагаются секретирующие железистые клетки, протоки которых достигают поверхности присосок. Хвостовой ствол, при этом, выполняет локомоторную функцию (Гинецинская, 1968). Это характерная черта церкарий большинства трематод. В отличие от церкарий других трематод, на дистальном конце хвоста церкарий Philophthalmidae, имеется присоскоподобное образование, снабженное железистыми клетками, секретирующих клейкие массы, с помощью которых прикрепляются к субстрату (West, 1961; Pinto, 2009).
У Philophthalmus была отмечена и другая особенность, например, для заражения окончательного хозяина оказались инвазионными и церкарии Ph. rhionica (Галактионов, Добровольский, 1987). Это подтвердилось нашими исследованиями и в отношении Ph. lucipetus (настоящая работа).
Литература
1. Атаев Г.Л. Влияние температуры на развитие и биологию редий и церкарий Philophthalmus rhionica (Тгета^а) // Паразитология, 1991.25 (4): — С. 349 — 359.
2. Галактионов К.В., Добровольский А.А. Гермафродитное поколение трематод. Ленинград, Наука, 1987. — 193 с.
3. Галактионов К.В., Добровольский А.А. Происхождение и эволюция жизненных циклов трематод. Санкт — Петербург, Наука, 1998. — 403 с.
4. Гинецинская Т.А. Трематоды, их жизненные циклы, биология и эволюция. Ленинград, Наука, 1968. — 411с.
5. Жадин В.И. Моллюски пресных и солоноватых вод СССР Определители по фауне СССР АН СССР, Москва, Ленинград, 1952. — 374 с.
■ч.
тшшшя^кии ЖУ
SKSKH ST
6. Красная книга республики Узбекистан. Животные. Ташкент, ChinorENK, 2: 2009. — С. 40-41.
7. Лихарев И.М., Старобогатов Я.И. Материалы к фауне моллюсков Афганистана. Сб. «Моллюски и их роль в биоценозах и формировании фаун» // Труды Зоологического института АН СССР, Ленинград, Наука, 42: 1967. — С. 159-198.
8. Смогоржевская А.А. Гельминты водоплавающих и болотных птиц фауны Украины. Киев, Наукова думка, 1976. — 414 с.
9. Старобогатов Я.И., Иззатуллаев З.И. Моллюски семейства Melanoididae (Gastropoda, Pectinibanchia) Средней Азии и сопредельных территорий // Зоологический журнал, Наука^Х (1): 1980. — С. 23-31.
10. Тихомиров И.А. Жизненный цикл Philophthalmus rhionica sp. nov. (Trematoda: Philophthalmidae). Автореф. дис. ... канд. биол. наук. Ленинград, 1980. — 20 с.
11. Alicata J.E. Lifecycle and development stages of Philophthalmus gralli in intermediate and final hosts. Journal of Parasitology. 48: 1962. — P. 47-54.
12. Abdul-Salam J., Sreelatha B.S., Ashkanani H. The eye fluke Philophthalmus hegeneri (Digenea: Philophthalmidae) in Kuwait Bay. Kuwait Journal of Science Eng., 31(1): 2004. — P. 119-133.
13. Greve J.H., Harrison G.J. Conjunctivitis caused by eye flukes in captive-reared ostriches. Journal of the American Veterinary Association, 177: 1980. — P. 909-910.
14. Kanev I., Nollen P.M., Vassilev I., Radev V., Dimitrov V. Redescription of Philophthalmus lucipetus (Rudolphi, 1819) (Trematoda: Philophthalmidae) with a discussion of its identity and characteristics. Annalen des Naturhistorisches Museum Wien 94/95B, 1993. — P. 11-34.
15. LiterakI., HenebergP., SitkoJ., WetzelE.J., CardenasCallirgosJ.M., СapekM., ValleBastoD., PapousekI. Eye trematode infection in small passerines in Peru caused by Philophthalmus lucipetus, an agentwith a zoonotic potential spread by an invasive freshwater snail.Parasitology International, 62: 2013. — P. 390-396.
16. Mukaratirwa S., Hove T., Cindzi Z.M., Maononga D.B., Taruvinga M., Matenga E. First report of a field outbreak of the oriental eye-fluke, Philophthalmus gralli (Mathis & Leger 1910), in commercially reared ostriches (Struthio camelus) in Zimbabwe. OnderstepoortJournal of Veterinary Research, 72: 2005. — P. 203-206.
17. Pinto H.A. Infecao natural de Melanoides tuberculata (Mollusca: Thiaridae) por Centrocestus for-mosanus (Trematoda: Heterophyidae) e por Philophthalmus gralli (Trematoda: Philophthalmidae) no Brasil. Universidade Federal de Minas Gerais Instituto de Ciencias Biologicas Belo Horizonte, 2009. — P. 55-67.
18. Radev V., Kanev I., Fried B. Comments on eye-flukes (Philophthalmidae Looss, 1819) in the genera Philophthalmus and Natterophthalmus, with a re-designation of the type-species of Natterophthalmus. Zootaxa, 1223:2006. — P. 19-22.
19. West A.F. Studies on the biology of Philophthalmus gralli Mathis and Leger, 1910 (Trematoda: Digenea). AmericanMidlandNaturalist, 66: 1961. — P. 363-383.
References
1. Ataev G.L. The impact of temperature on the development and biology of rediae and cercariae of Philophthalmus rhionica (Trematoda). Parazitologiya [Parasitology], 1991, vol. 25, no. 4, pp. 349-359. (In Russian).
2. Galaktionov K.V., Dobrovolsky A.A. Germafroditnoe pokolenie trematod [Hermaphroditic generation of trematodes]. Leningrad, Nauka, 1987. 193 p. (In Russian).
3. Galaktionov, K.V. & Dobrovolsky, A.A. (1998) Proishozhdenie i evolyutsiya zhiznennyh tsiklov trematod [The origin and evolution of the life cycle of trematodes]. St Petersburg, Nauka, 1998. 403 p. (In Russian).
4. Ginetsinskaya, T.A. Trematody, ihzhiznennyecikly, biologiyai evolyutsiya [Trematodes, their life cycles, biology and evolution]. Leningrad, Nauka, 1968. 411 p. (In Russian).
5. Zhadin, V.I. Mollyuskipresnyh i solonovatyh vod SSSR. Opredelitelipo faune SSSR [The molluscs of the fresh and briny waters of the USSR. USSR Fauna Guide]. Moscow-Leningrad, Academy of Sciences of the USSR, 1952. 374 p. (In Russian).
6. Krasnaya knigarespubliki Uzbekistan. Zhivotnye. [The Red Book of the Republic of Uzbekistan. Animals]. Tashkent, Chinor ENK, 2, 2009, pp. 40 — 41.
7. LikharevI.M., Starobogatov Ya.I. Materials on the mollusk fauna of Afghanistan. Trudy Zoologicheskogo instituta AN SSSR «Mollyuski I ih rol' v biocenozahiformirovanii faun». [Proc. of the Institute of Zoology of the Academy of Sciences of the USSR "Mollusks and their role in biocoenoses and the formation of fauna"]. Leningrad, Nauka, 1967, 42, pp. 159 — 198. (In Russian).
8. Smogorzhevskaya A.A. Gel'minty vodoplavajushchih i bolotnyh ptits fauny Ukrainy [Helminths of the aquatic and semi-aquatic birds of the fauna of Ukraine]. Kiev, Naukova Dumka, 1976. 414 p. (In Russian).
9. Starobogatov Ya.I., Izzatullayev Z.I. Molluscs of the family Melanoididae (Gastropoda, Pectinibanchia) in Central Asia and the adjoining territories. Zoologichesky Zhurnal [Journal of Zoology], 1980, Nauka, LIX (1), pp. 23-31. (In Russian).
__
. Skryabin
"^"ЗдДЯ ЛЗЭЯМЫ ИГ
Том 36 Выпуск 2/2016
10. Tikhomirov I.A. Zhiznennyj tsikl Philophthalmusrhionica sp. nov. (Trematoda: Philophthalmidae). Avtoref. dis. ... kand. biol. nauk. [The life cycle of Philophthalmus rhionica sp. nov. (Trematoda: Philophthalmidae). Abst. PhD. diss. biol. sci.]. Leningrad, 1980. 20 p. (In Russian).
11. Alicata J.E. Life cycle and development stages of Philophthalmus gralli in intermediate and final hosts. Journal of Parasitology, 1962, no. 48, pp. 47-54.
12. Abdul-Salam J., Sreelatha B.S., Ashkanani H. The eye fluke Philophthalmus hegeneri (Digenea: Philophthalmidae) in Kuwait Bay. Kuwait Journal of Science Eng., 2004, vol. 31(1), pp. 119-133.
13. Greve J.H., Harrison G.J. Conjunctivitis caused by eye flukes in captive-reared ostriches. Journal of the American Veterinary Association, 1980, vol.177, pp. 909-910.
14. Kanev I., Nollen P.M., Vassilev I., Radev V., Dimitrov V. Redescription of Philophthalmus lucipetus (Rudolphi, 1819) (Trematoda: Philophthalmidae) with a discussion of its identity and characteristics. Annalen des Naturhistorischen Museumsin Wien,1993, vol. 94/95B, pp. 11-34.
15. Literak I., Heneberg P., Sitko J., Wetzel E.J., CardenasCallirgos J.M., Capek M., ValleBasto D., Papousek I. Eye trematode infection in small passerines in Peru caused by Philophthalmus lucipetus, an agentwith a zoonotic potential spread by an invasive freshwater snail. Parasitology International, 2013, no. 62, pp. 390-396.
16. Mukaratirwa S., Hove T., Cindzi Z.M., Maononga D.B., Taruvinga M., Matenga E. First report of a field outbreak of the oriental eye-fluke, Philophthalmus gralli (Mathis & Leger 1910), in commercially reared ostriches (Struthio camelus) in Zimbabwe. Onderstepoort Journal of Veterinary Research, 2005. 72, pp. 203206.
17. Pinto H.A. Infecao natural de Melanoides tuberculata (Mollusca: Thiaridae) por Centrocestus for-mosanus (Trematoda: Heterophyidae) e por Philophthalmus gralli (Trematoda: Philophthalmidae) no Brasil. Universidade Federal de Minas Gerais Instituto de Ciencias Biologicas Belo Horizonte, 2009, pp. 55-67.
18. Radev V., Kanev I., Fried B. Comments on eye-flukes (Philophthalmidae Looss, 1819) in the genera Philophthalmus and Natterophthalmus, with a re-designation of the type-species of Natterophthalmus. Zootaxa, 2006, no. 1223, pp. 19 — 22.
19. West A.F. Studies on the biology of Philophthalmus gralli Mathis and Leger, 1910 (Trematoda: Digenea). American Midland Naturalist, 1961, 66, pp. 363-383.
Russian Journal of Parasitology, 2016, V. 36, Iss. 2
DOI: 10.12737/20061 Received: 15.11.2015 Accepted: 05.03.2016
Melanoides kainarensis — NEW INTERMEDIATE HOST OF TREMATODES Philophthalmus lucipetus (TREMATODA, PHILOPHTHALMIDAE)
Shakarbaev U.A., Akramova F.D., Azimov D.A.
Institute of Gene Pool of Plants and Animals, Academy of Sciences of the Republic of Uzbekistan, 232 Bogishamol Str., Tashkent 100053, Uzbekistan, e-mail: [email protected]
Objective of research: to study the infection level of molluscs Melanoides kainarensis Starobogatov et Izzatullaev, 1980 with cercariae of trematode Philophthalmus lucipetus (Rudolphi, 1819) under conditions of Uzbekistan.
Materials and methods: Cercariae and parthenitae of Ph. lucipetus of molluscs M. kainarensis from the warm spring Boshkhovuz of Samarkand region, Uzbekistan were investigated. Morphological and biological studies were carried out by well-known standard parasitological methods.
Abstract
\
üimSfQflirn^KffiM MT. SKSKa JSÜE^I a? PÄ:sssjtiiise7
Results and discussion: The research revealed that 2801 specimens of M. kainarensis were infected with cercariae and parthenitae of Philophthalmus Looss, 1899, which were identified as Ph. lucipetus. The collected cercariae and adolescariae were used for the experimental infestation with Anser anser dom., Anas platyrhynchos dom. and Gallus gallus dom. Adult parasites isolated from conjunctival sacs of infected birds were identified as Philophthalmus lucipetus. That was the first evidence for the role of M. kainarensis as the intermediate host for these trematodes.
Keywords: Melanoides kainarensis, Philophthalmus lucipetus, parthenitae, cercariae, adolescariae, trematode, birds, mollusks.
© 2016 The Author(s). Published by All-Russian Scientific Research Institute of Fundamental and Applied Parasitology of Animals and Plants named after K.I. Skryabin. This is an open access article under the Agreement of 02.07.2014 (Russian Science Citation Index (RSCI)http://elibrary.ru/projects/citation/cit_index. asp) and the Agreement of 12.06.2014 (CA-BI.org/Human Sciences section: http://www.cabi.org/Uploads/ CABI/publishing/fulltext-products/cabi-fulltext-material-from-journals-by-subject-area.pdf)
