CC BY
104
Механизмы повреждения эритроцитов при токсическом действии метгемоглобинобразователей
1 "2 "2 1 Филиппова О.Н. , Шперлинг И.А. , Рогов О.А. , Сапрыкина Э.В. ,
Рязанцева Н.В.Х, Новицкий В.В.1
Mechanisms of erythrocytes' damage after toxic effects of methemoglobin poisons
Filippova O.N., Shperling I.A., Rogov O.A., Saprykina E. V., Ryazantseva N. V., Novitsky V. V.
1 Сибирский государственный медицинский университет, г. Томск
2 Томский военно-медицинский институт, г. Томск
Исследованы структурные свойства липидного компонента эритроцитарной мембраны у крыс линии Wistar при мет-гемоглобинемиях, индуцированных однократным введением нитрита натрия и солянокислого фенилгидразина в дозах DL50. Показано, что при метгемоглобинемиях увеличивается содержание холестерина, лизофосфатидилхолина, сфингомие-лина, фосфатидилсерина, снижается уровень фосфатидилхолина и фосфатидилэтаноламина, в мембране эритроцитов возрастает микровязкость липидного матрикса. Степень выявленных изменений зависит от вида ксенобиотика и продолжительности периода метгемоглобинемии.
Ключевые слова: метгемоглобинемия, эритроцит, мембрана, липиды, микровязкость.
Structural properties of lipid component of erythrocyte membrane of Wistar rats with methemoglobinemia were investigated after one injection of sodium nitrite and phenylhydrazin chloride in DL50 dose. It was shown that in methemoglobinemia cholesterol, lysophosphatidylcholine, sphingomyelin, phosphatidylserine levels are increased and phosphatidylcholine and phosphatidyletanolamine levels are decreased, and an increase of microviscousity of erythrocyte membrane lipid matrix was elevated. The degree of the elucidated changes depends on a xenobiotic and a time of methemoglobinemia period.
Key words: methemoglobiemia, erythrocyte, membrane, lipid, microviscousity.
© Филиппова О.Н., Шперлинг И.А., Рогов О.А. и др.
УДК 616.155.1-099:616.153.663.43
Введение
тельную роль в генезе данных расстройств имеют изменения в системе красной крови [9].
Большая распространенность метгемоглобинобразователей в среде обитания человека определяет высокую частоту отравлений данными веществами и неблагоприятные исходы. Расширяющееся с каждым годом внедрение химических соединений в различные виды промышленности, быта и науки создает условия для повышенного образования метгемоглобина ^ШЪ) в крови при действии окислителей, амидо- и нитропроизводных бензола, анилина, гидразина и его производных, окислов азота, нитритов натрия и калия [10]. Отравления метгемоглобинобразующими ксенобиотиками приводят к развитию в постинтоксикационном периоде полиорганных осложнений. Значи-
Интерес к всестороннему изучению патологических процессов, протекающих в эритроцитах при воздействии на организм метгемоглобинобразователей, остается весьма значимым, поскольку гипоксия является ведущим синдромом данной патологии, а эритроцит представляет собой клетку, во многом определяющую кислородный статус организма [11]. Ранее проведенные исследования позволили установить, что реакция циркулирующих эритроцитарных клеток при токсических метгемоглобинемиях характеризуется нарастанием их полиморфизма, а также нарушением функциональных свойств красных кровяных клеток [9]. Между тем остаются неясными основные патогенетические пути
развития нарушений периферического звена эритрона при остром воздействии метгемоглобинобразователей. Учитывая важную роль липидного компонента мембраны эритроцита в обеспечении метаболической и функциональной полноценности красных кровяных клеток, целью настоящего исследования явилось определение особенностей фракционного состава и микровязкостных свойств липидного матрикса мембраны эритроцитов (МЭ) при токсическом действии метге-моглобинобразователей.
Материал и методы
Эксперименты проведены на 134 крысах-самцах линии Wistar массой 190—250 г. Метгемоглобинемию моделировали однократным внутрибрюшинным введением 0,6%-го раствора нитрита натрия (НН) в дозе 90 мг на 1 кг массы животного (DL5o) (64 крысы) и 2%-го раствора солянокислого фенилгидразина (ФГ) в дозе 150 мг на 1 кг массы животного (DL50) (55 крыс). Контрольную группу составили 15 интактных животных. Количество животных в каждой группе — не менее 6.
Забор крови у экспериментальных животных осуществляли под эфирным наркозом из хвостовой вены через 1,5 ч, 1, 3, 5, 7, 13 и 21 сут после введения НН и ФГ. Кровь стабилизировали гепарином (50 ЕД/мл). Все вмешательства проводили с соблюдением принципов Хельсинской декларации Всемирной медицинской ассоциации о гуманном обращении с животными.
Уровень MtHb в крови определяли по методу М.С. Кушаковского [7]. МЭ выделяли методом, основанным на феномене гипоосмотического гемолиза клеток. Для этого эритроцитарную взвесь трижды отмывали 10 ммоль раствором трис-ИО-буфера (рИ = 7,4) и 145 ммоль №0, центрифугируя в течение 10 мин при 3 000 об./мин. Клеточную взвесь гемолизировали в течение 30 мин при 0—4 °С, добавляя 20-кратный объем гемолизирующей среды (10 ммоль трис-ИС1-буфера (рИ = 7,4) и 40 ммоль ЭДТА). Гемолизат центрифугировали при 15 000 об./мин в течение 20 мин, надосадок удаляли. Затем мембранную взвесь трижды отмывали 10 ммоль раствором трис-ИС1-буфера (рИ = 7,4) путем центрифугирования при 15 000 об./мин в течение 20 мин. В мембранной суспензии микробиуретовым методом определяли содержание белка.
Получали липидный экстракт, определяли содержание общих липидов и фосфолипидов. Препаративное
разделение нейтральных липидов и фосфолипидов МЭ проводили методом тонкослойной хроматографии [2] в системах гептан — диэтиловый эфир — этилацетат (80 : 20 : 1,5 соответственно) и хлороформ — метанол — вода (32 : 12,5 : 2 соответственно) соответственно на пластинах «Sorbfil». Идентификацию фракций липидов осуществляли с использованием стандартов «Sigma».
Измерение собственной флуоресценции теней эритроцитов, а также определение спектральных характеристик взаимодействия МЭ с флуорофором пиреном проводили на спектрофлуориметре MPF-4 («Hitachi», Япония). Измерения проводили в среде следующего состава: NaCl — 145 ммоль, трис-НС1-буфер — 10 ммоль (pH =
= 7,4). Раствор пирена (растворитель — этанол) добавляли в кювету с тенями эритроцитов (содержание белка — 0,3 мг/мл) до конечной концентрации 10 мкмоль, инкубировали в течение 10 мин при постоянном помешивании. Для оценки микровязкостных свойств липидной фазы и гидрофобного объема МЭ рассчитывали коэффициент эксимеризации пирена I470/I370, равный отношению максимумов интенсивностей флуоресценции эксимерной формы зонда к мономерной при длине волны возбуждающего света Хв = 340 нм [5].
Анализ данных проводили методом вариационной статистики с использованием /-критерия Стьюдента и ^-критерия Манна—Уитни. Числовые значения полученных результатов представлены в виде X + m, где X— среднее значение, m - ошибка среднего.
Результаты и обсуждение
После введения НН у экспериментальных животных уровень MtHb в крови был повышен в течение первых суток. При этом максимальные его значения были зарегистрированы через 1,5 ч наблюдения — (51,95 + + 1,59)% при (1,19 + 0,24)% в контроле (p < 0,001). В последующие сроки исследования (с 1-х по 21-е сут) уровень MtHb в крови у крыс соответствовал норме. Однократное введение крысам ФГ в дозе 150 мг на 1 кг массы тела приводило через 30 мин к резкому возрастанию концентрации MtHb в крови (до (22,31 + 1,10)%, p < 0,001). Через 24 ч после введения ксенобиотика уровень MtHb сохранялся достоверно повышенным (p < 0,001), составляя в среднем (7,50 + 0,19)%. В последующем величина данного показателя постепенно снижалась и с 3-х по 21-е сут эксперимента уже достоверно не отличалась от нормы (p > 0,05).
Филиппова О.Н., Шперлинг И.А., Рогов О.А. и др.
Исследование абсолютного содержания липидов, их фракционного состава в эритроцитарной мембране у экспериментальных животных после однократного введения НН и ФГ выявило признаки существенной модификации липидной фазы в мембране красных кровяных клеток.
Так, после токсического действия НН в острый период метгемоглобинемии (через 1,5 ч после введения ксенобиотика) уровень общих липидов составлял лишь 70% от соответствующего показателя в контрольной группе, содержание общих фосфолипидов в МЭ у подопытных крыс было снижено на 34% от контрольного уровня (табл. 1). Изменение количественного содержания липидов в этот период эксперимента сопровождалось перераспределением фракционного состава липидного компонента мембраны красных клеток крови. В эритроцитарной мембране у животных опытной группы регистрировалось снижение уровня общих фосфолипидов на 24% по сравнению с их содержанием в норме на фоне достоверного (р < 0,001) увеличения (в 1,6 раза) содержания фракции эфиров холестерина (рис. 1,а). При оценке фракционного состава фосфолипидов в мембране красных кровяных клеток обращало на себя внимание достоверное (р < 0,001) увеличение содержания лизофосфа-тидилхолина — в 3,2 раза, сфингомиелина — на 43%
Механизмы повреждения эритроцитов...
(р < 0,01) и фосфатидилсерина — на 11% (р < 0,05), тогда как уровень фосфатидилэтаноламина и фосфа-тидилхолина, напротив, был снижен по сравнению с их содержанием в МЭ у интактных животных на 39 и 16% соответственно (р < 0,001) (табл. 1).
Практически аналогичный характер модификации липидного спектра МЭ был выявлен у животных через 1 сут после введения НН. Однако через 3 сут после воздействия ксенобиотика были обнаружены существенные изменения фракционного состава нейтральных липидов мембраны эритроцитов: на долю фракции общих фосфолипидов приходилось (28,91 ± 1,03)%, что оказалось в 1,3 раза ниже их содержания у животных контрольной группы (р < 0,001). Обращало на себя внимание также достоверное увеличение доли фракции холестерина и его эфиров. Указанные изменения приводили к возрастанию (в 1,7 раза) средних значений величины соотношения холестерин: фосфолипиды ((1,48 ± 0,06)% при (0,86 ± 0,05)% в контроле, р < 0,001). Накопление холестерина в МЭ чревато увеличением микровязкости бислоя, нарушением латеральной диффузии рецепторов, ионного транспорта, что делает МЭ менее приспособленной к выполнению своих функций [8].
Таблица 1
Содержание общих липидов, общих фосфолипидов и их фракционный состав в мембране эритроцитов у крыс после однократного внутрибрюшинного введения нитрита натрия в дозе 90 мг на 1 кг массы животного (X ± m)
Группа Общие Общие Фракция фосфолипида, %
липиды, мг/мг белка фосфолипиды, мг/мг белка Лизофосфатидилхолин Фосфатидил- Сфинго- Фосфатидил- Фосфатидил- Фосфатидил-
инозитолы миелин холин серин этаноламин
Контрольная 1,89 ± 0,05 0,98 ± 0,06 4,05 ± 0,53 7,80 ± 0,63 11,40 ± 0,89 39,12 ± 0,74 17,40 ± 0,52 19,80 ± 0,91
Опытная
1,5 ч 1,32 ± 0,07 0,65 ± 0,06 12,84 ± 0,98 7,20 ± 0,75 16,34 ± 0,44 32,76 ± 0,84 19,28 ± 0,77 11,98 ± 0,85
p < 0,001 p < 0,05 p < 0,001 p > 0,05 p < 0,01 p < 0,001 p < 0,05 p < 0,001
1 1,42 ± 0,05 0,71 ± 0,06 10,98 ± 0,73 7,15 ± 0,68 16,22 ± 0,89 34,40 ± 0,92 18,56 ± 0,63 12,35 ± 0,77
ту О p < 0,001 p < 0,05 p < 0,001 p > 0,05 p < 0,01 p < 0,01 p > 0,05 p < 0,001
3 1,54 ± 0,08 0,77 ± 0,08 8,80 ± 0,86 6,89 ± 0,51 15,67 ± 1,12 35,08 ± 0,74 17,85 ± 0,51 14,84 ± 0,59
и н p < 0,05 p < 0,05 p < 0,001 p > 0,05 p < 0,01 p < 0,01 p > 0,05 p < 0,01
а и о 5 1,49 ± 0,07 0,72 ± 0,07 6,90 ± 0,37 7,01 ± 0,38 14,85 ± 0,67 36,74 ± 0,94 19,76 ± 0,48 13,89 ± 0,36
п л p < 0,001 p < 0,05 p < 0,01 p > 0,05 p < 0,01 p < 0,05 p < 0,05 p < 0,01
о о и 7 1,59 ± 0,07 0,78 ± 0,06 6,12 ± 0,69 7,16 ± 0,55 15,98 ± 0,74 35,52 ± 0,78 20,11 ± 0,25 15,02 ± 0,63
а о p < 0,05 p < 0,05 p < 0,05 p > 0,05 p < 0,01 p < 0,05 p < 0,01 p < 0,01
р о 13 1,78 ± 0,08 0,86 ± 0,04 4,63 ± 0,48 7,52 ± 0,33 13,99 ± 0,60 37,61 ± 0,82 19,28 ± 0,47 16,98 ± 0,54
p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p < 0,05 p > 0,05 p < 0,05 p < 0,05
21 1,84 ± 0,03 0,92 ± 0,08 4,25 ± 0,39 7,66 ± 0,48 13,42 ± 0,98 38,23 ± 0,93 18,41 ± 0,56 18,82 ± 0,73
p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05 p > 0,05
Примечание . Здесь и в табл. 2: р — достоверность различий величин показателей по сравнению с соответствующими значениями в
Модификация фосфолипидного спектра мембраны красных кровяных клеток имела аналогичный характер по сравнению с предыдущими периодами эксперимента. В последующие сроки наблюдения отмечалась отчетливая тенденция к восстановлению соотношения изучаемых параметров, однако признаки дезорганизации липидного состава мембраны эритроцитов сохранялись вплоть до 13 -х сут после начала эксперимента.
Аналогичный характер изменений липидного би-слоя МЭ был отмечен у животных после введения ФГ, наиболее выраженных в острый период метгемогло-бинемии. Обращало на себя внимание снижение абсолютного количества общих липидов и фосфолипидов, относительного содержания фосфатидилхолина, фос-фатидилэтаноламина и общих фосфолипидов при одновременном увеличении доли холестерина и его эфиров, лизофосфатидилхолина, сфингомиелина и фосфатидилсерина (табл. 2, рис. 1,6). Следует отметить, что нарушения липидной фазы (большей степени выраженности, чем при действии НН) сохранялись в течение всего периода наблюдения (до 21-х сут). По всей видимости, этот факт был связан со спецификой влияния солянокислого ФГ, являющегося более мощным прооксидантом в отличие от НН [1, 12].
Таблица 2
Содержание общих липидов, общих фосфолипидов и их фракционный состав в мембране эритроцитов у крыс после однократного внутрибрюшинного введения солянокислого фенилгидразина в дозе 150 мг на 1 кг массы животного (X ± т)
Группа животных Общие Общие фосфолипиды, мг/мг белка Фракция фосс юлипида, %
липиды, мг/мг белка Лизофосфа-тидилхолин Фосфатидил-инозитолы Сфинго-миелин Фосфатидил-холин Фосфатидил-серин Фосфатидил-этаноламин
Контрольная 1,89 ± 0,05 0,98 ± 0,06 4,05 ± 0,53 7,80 ± 0,63 11,40 ± 0,89 39,12 ± 0,74 17,40 ± 0,52 19,80 ± 0,91
Опытная
1 1,18 ± 0,06 0,57 ± 0,09 12,52 ± 0,84 6,72 ± 0,61 17,52 ± 0,51 31,24 ± 0,58 22,34 ± 0,48 10,42 ± 0,59
т р < 0,001 р < 0,001 р < 0,001 р > 0,05 р < 0,01 р < 0,001 р < 0,05 р < 0,001
ту с 3 1,28 ± 0,07 0,61 ± 0,06 11,73 ± 0,91 7,05 ± 0,48 16,54 ± 0,66 32,01 ± 0,43 19,13 ± 0,65 11,23 ± 0,41
ни р < 0,001 р < 0,01 р < 0,001 р > 0,05 р < 0,01 р < 0,01 р < 0,05 р < 0,001
а в о 5 1,41 ± 0,09 0,69 ± 0,06 9,34 ± 0,72 7,21 ± 0,54 15,23 ± 0,35 34,62 ± 0,35 19,45 ± 0,4 3 13,86 ± 0,66
д е л р < 0,01 р < 0,05 р < 0,001 р > 0,05 р < 0,01 р < 0,01 р < 0,05 р < 0,01
с с и 7 1,58 ± 0,09 0,75 ± 0,07 7,28 ± 0,69 7,45 ± 0,63 14,56 ± 0,46 35,88 ± 0,67 19,67 ± 0,74 15,53 ± 0,58
к о р р < 0,01 р < 0,05 р < 0,01 р > 0,05 р < 0,05 р < 0,05 р < 0,05 р < 0,01
О 13 1,69 ± 0,05 0,84 ± 0,04 6,37 ± 0,59 7,63 ± 0,74 12,65 ± 0,52 37,15 ± 0,63 18,79 ± 0,81 17,38 ± 0,47
р < 0,05 р > 0,05 р < 0,05 р > 0,05 р > 0,05 р < 0,05 р > 0,05 р < 0,05
контрольной группе.
Рис. 1. Фракционный состав общих липидов эритроцитарной мембраны у крыс после однократного введения нитрита натрия в дозе 90 мг на 1 кг массы животного (а) и солянокислого фенилгидразина в дозе 150 мг на 1 кг массы животного (6): * — достоверность различий величин показателей по сравнению с соответствующими значениями в контрольной группе
Филиппова О.Н., Шперлинг И.А., Рогов О.А. и др.
Механизмы повреждения эритроцитов..,
21
1,85 ± 0,05 р > 0,05
0,91 ± 0,05 р > 0,05
5,18 ± 0,42 р > 0,05
7,54 ± 0,82 р > 0,05
11,25 ± 0,47 р > 0,05
38,89 ± 0,81 р > 0,05
18,11 ± 0,72 р > 0,05
18,93 ± 0,63 р > 0,05
Выявленные изменения липидного компонента МЭ после токсического действия метгемоглобинобра-зователей явились следствием, по всей видимости, многофакторного воздействия на клетки красной крови и эритроцитарную мембрану в условиях интоксикации метгемоглобинобразователями. Считается, что важным механизмом модификации липидного ком-партмента МЭ является усиление процессов перекис-ного окисления липидов (ПОЛ) и ферментативного гидролиза [3]. Наряду с активацией ПОЛ накопление в эритроцитах ионов Са2+ — вторичного мессенджера — запускает совокупность процессов, к которым относятся активация Са2-зависимых фосфолипаз, ами-нофосфолипидной транслоказы, протеаз, приводящих к нарушению структуры МЭ. Увеличение содержания фракции лизофосфатидилхолина и встраивание лизо-фосфолипидов в мембрану приводит к изменению упаковки липидных молекул мембраны, способствуя переходу липидного бислоя в монослой, активации проницаемости мембраны для ионов и К+, образованию гидрофильных каналов и солюбилизации ферментов с последующей везикуляцией мембраны эритроцита, образованием эхиноцитов [8]. Поскольку фосфатидилэтаноламин играет важную роль в регуляции активности Са2+, Ы§2+-АТФазы [13], уменьшение его содержания в мембране может приводить к нарушению внутриэритроцитарного ионного гомеостаза. Кроме того, закономерным результатом уменьшения уровня фосфатидилэтаноламина и фосфатидилхолина, богатых полиненасыщенными жирными кислотами, является снижение антиокислительной активности липидов мембраны эритроцитов, что усугубляет дисбаланс свободнорадикального окисления [6].
Структурная модификация липидной фазы МЭ может быть причиной нарушения ионной проницаемости, липид-липидных и липид-белковых взаимодействий, увеличения «жесткости» мембраны [4]. Исследование МЭ неполярным зондом пиреном, диффундирующим в ее гидрофобном компартменте, у крыс при метгемоглобинемиях, индуцированных НН и ФГ, позволило получить фактические доказательства нарушения структуры мембраны красных клеток крови. Было установлено, что средние значения отношения величин интенсивностей флуоресценции экси-мерных и мономерных молекул пирена достоверно
ниже средней величины аналогичного показателя у животных контрольной группы, что указывало на повышение упорядоченности липидной фазы МЭ. Признаки повышения микровязкости липидного матрикса МЭ у экспериментальных животных после введения ФГ сохранялись в течение 21 сут (рис. 2).
3 5 7 13 Срок исследования, сут
Рис. 2. Параметры эксимеризации зонда пирена при ^ = 340 нм в мембране эритроцитов у крыс после острого воздействия нитрита натрия (НН) в дозе 90 мг на 1 кг массы животного и солянокислого фенилгидразина (ФГ) в дозе 150 мг 1 кг массы животного: 1 — контроль, 2 — после введения НН; 3 — после введения ФГ
Заключение
Приведенные выше результаты свидетельствуют о значительном нарушении липидного бислоя МЭ у животных при токсическом действии метгемоглобин-образователей. Изменения структуры эритроцитарной мембраны при метгемоглобинемиях, индуцированных действием нитрита натрия и солянокислого фенилгид-разина в ОЬ50, носят однонаправленный характер и проявляются снижением абсолютного содержания общих липидов и фосфолипидов, нарушением липид-ного спектра — увеличением доли холестерина, лизо-фосфатидилхолина, сфингомиелина и фосфатидилсе-рина на фоне снижения содержания фосфатидилэта-ноламина и фосфатидилхолина, а также возрастанием микровязкости липидной фазы. Действие фенилгидра-зина оказывает более выраженный и продолжитель-
36 3*
ный во времени мембранодестабилизирующий эффект. Важно подчеркнуть, что молекулярные нарушения МЭ, достигая своего максимального проявления в острый период метгемоглобинемии, носят стойкий характер, сохраняясь после ее ликвидации. Этот факт, на взгляд авторов настоящей статьи, следует учитывать при разработке патогенетически обоснованных стратегии и тактики коррекции развивающихся при отравлениях метгемоглобинобразователями гипокси-ческих расстройств и связанных с ними осложнений.
Литература
1. Башарин В.А. Экспериментальная оценка состояния системы глутатиона и перекисного окисления липидов в различных органах и тканях при острых отравлениях 1,1-диметилгидразином и фенилгидразином: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. СПб., 2001. 24 с.
2. Биологические мембраны. Методы: Пер. с англ. / Под ред. Дж.Б. Финдлея, У.Г. Эванза. М.: Мир, 1990. 424 с.
3. Владимиров Ю.А. Свободные радикалы и антиоксиданты // Вестн. РАМН. 1998. № 7. С. 43—51.
4. Владимиров Ю.А., Добрецов Г.Е. Флуоресцентные зонды в исследовании биологических мембран. М.: Наука, 1980. 320 с.
5. Добрецов Г.Е. Флуоресцентные зонды в исследовании клеток, мембран и липопротеидов. М.: Наука, 1989. 277 с.
6. Кальнова Н.Ю., Пальмитина Н.П. Изменение фосфоли-пидного состава и антиокислительной активности липи-
дов эритроцитов при опухолях молочной железы и их радиационном лечении // Биохимия. 1980. Т. 45. № 9. С. 1646—1653.
7. КушаковскийМ.С. Клинические формы повреждения гемоглобина. Л.: Медицина, 1968. 324 с.
8. Новицкий В.В., Рязанцева Н.В., Степовая Е.А. Физиология и патофизиология эритроцита. Томск: Изд-во Том. ун-та, 2004. 202 с.
9. Новицкий В.В., ШперлингИА, Жаткин ОА. и др. Изменения морфофункционального статуса эритроцитов при экспериментальных метгемоглобинемиях // Токсикол. вестн. 2004. № 1. С. 16—20.
10. СтруковМ.А. Кислородтранспортные системы при различных методах реанимации больных с тяжелым экзо-токсическим шоком // Токсикол. вестн. 1999. № 2. С. 11 —16.
11. Тино Г., Гриппи М.А. Транспорт газов к периферическим тканям и обратно. Патофизиология легких. 3-е изд., испр. М.; СПб.: БИНОМ: Невский диалект, 2001. С. 144—162.
12. ШперлингИ.А. Морфофункциональный статус эритроцитов при экспериментальных метгемоглобинемиях: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. Томск, 2002. 24 с.
13. Suju M., DavilaM., Poleo G. et al. Phosphatidylethanol stimulates the plasma-membrane calcium pump from human erythrocytes // Biochem. J. 1996. V. 317. Pt. 3. P. 933—938.
Поступила в редакцию 25.08.2005 г.
