Механизмы и пути заражения животных эхинококкозом Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

Механизмы и пути заражения животных эхинококкозом

А.М. Биттиров, д.биол.н., профессор, С.А. Беккиева,

кхн, доцент, Л.З. Шекихачева, к.с.-х.н., доцент,

С.Ш. Чилаев, к.с.-х.н., Кабардино-Балкарская ГСХА

Придание животноводству экстенсивного пути развития, игнорирование дегельминтизации

присельских и городских собак, ослабление борьбы с безнадзорными собаками, ухудшение эпидемиологического, ветеринарно-санитарного контроля и санитарно-просветительской работы в сфере производства продуктов животноводства и малая эффективность рекомендуемых профи-

лактических мероприятий привели к широкому распространению эхинококкоза животных и человека в регионе. Рспространение эхинококкоза животных в РФ приобретает угрожающий характер с тенденцией формирования активно функционирующих эпизоотологических сельских и городских очагов опасного зооноза. Инвазиро-ванность эхинококкозом промежуточных хозяев составляет: крупного рогатого скота 42,4%, овец

— 65,8%, коз — 26,2%, буйволов — 35,0%, безнадзорных собак (дефинитивный хозяин) — 80— 100%. С 1995 по 2006 гг. в Кабардино-Балкарской республике с диагнозами эхинококкоз печени, легких, селезенки, перикарда, диафрагмы и головного мозга оперировано 1038 пациентов в возрасте от 6 до 68 лет. Инвазии копытных животных цестодой Echinococcus granulosus приобрели в регионе природную очаговость, стационарность и механизмы перекрестного заражения дефинитивных и промежуточных хозяев. О широком распространении эхинококкоза сельскохозяйственных и промысловых животных в Центральном регионе РФ можно судить по масштабности образования техногенных очагов эхино-коккоза сельскохозяйственных животных. В этом контексте обращается внимание на актуальность изучения вопросов биолого-экологической активности эпизоотологического и эпидемиологического процесса Echinococcus granulosus у разных видов животных и человека [1—14]. Цестода Ech. granulosus при паразитировании в паренхиматозных органах животных, вызывают тяжелые патологические изменения, истощение, асциты, воспаление печени и легких. У сельскохозяйственных животных завершенные и незавершенные циклы Ech. granulosus снижают упитанность, прирост массы тела, молочную продуктивность коров на 18—30%. В связи с этим заслуживает научно-практический интерес изучение эпизоотологического процесса эхинококкоза животных и определение путей формирования инвазии в регионе.

Материалы и методы исследований. Формирование празитарных систем эхинококкоза животных определение активно функционирующих штаммов Ech. granulosus и пути перекрестного заражения у разных видов жвачных животных изучали опытным путем, что отражается ниже в тексте статьи. При этом применяли метод гельминтологических вскрытий печени, желчного пузыря и легких жвачных животных при их убое (К.И. Скрябин, 1928). Для определения количество протосколексов Ech. granulosus в 1 мл жидкости применяли счетную камеру ВИГИС, разработанную Л.Г. Мигачевой, Г.А. Котельниковым (1986). Собранных при вскрытии легких и печени Ech. granulosus от каждого животного подсчитывали и определяли среднюю интенсивность инвазий, а также рассчитывали экстенсивность

инвазии. Полученные результаты обработали статистически с расчетом средних величин по программе «Биометрия».

Результаты и обсуждение. Степень участия диких копытных животных в реализации эпизоотического процесса эхинококкоза в природных экосистемах представляют определенный научнопрактический интерес. С этой целью нами были поставлены серии опытов по многоступенчатому моделированию эпизоотического процесса эхи-нококкоза с участием диких копытных. Опыты были поставлены в 2003—2005 гг. в условиях СХПК «Малокабардинский» Терского района. Порядок и схемы постановки опытов излагаются ниже.

Опыт 1. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1, 2, 3, 4, 5) в возрасте 3—5 мес., предварительно дегельминтизированным дронци-том в дозе 5 мг/кг массы тела в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени пятнистого оленя. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения через каждые 3 дня проводили копроо-воскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 39 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 1820 и 1278 экз. длиной от 0,8 до 1,4 см. Извлеченных цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем, по принципу аналогов, подобрали по 3 гол. агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 5 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по 3 лентецов Ech. granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150—160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и др. паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в табл. 1.

Как видно, штаммом Ech. granulosus от пятнистого оленя заразились все 100% ягнят и телят и 60% крольчат. При этом у ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Ech. granulosus в количестве 12,5±1,3 экз./гол., у телят 9,7±1,5 экз./гол. ацефалоцист альвеолярного строения и у крольчат — 5,5±0,8 экз./гол. фертильных цист. Количество протосколексов Ech. granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило 370,2±29,5 экз./мл, у телят —не обнаружено, у крольчат — 162,6±18,25 экз./мл.

Таким образом, штамм Ech. granulosus от

1. Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus от пятнистого оленя

Вид животных Подвергнуто заражению Ech. granulosus, гол. Из них инвазировано, гол. ЭИ, % ИИ, зкз./ гол. Кол-во протосколексов Ech. granulosus в мл жидкости

Ягнята 3 3 100 12,5±1,З 370,2±29,5

Телята 3 3 100 9,7±1,5 -

Крольчата 5 3 60,0 5,5±0,8 162,6±18,2

2. Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus от благородного оленя

Вид животных Подвергнуто заражению Ech. granulosus, гол. Из них инвазировано, гол. ЭИ, % ИИ, зкз./ гол. Кол-во протосколексов Ech. granulosus в мл жидкости

Ягнята 5 4 80,0 9,2±1,8 296,8±22,3

Телята 5 3 60,0 6,5±1,2 -

Крольчата 7 4 57,1 4,0±1,0 1З0,4±15,9

пятнистого оленя является биологически активным у ягнят и крольчат, так как формирует завершенный цикл, а у телят — биологически пассивным, так как формирует незавершенный цикл, т.е. ацефалоцист. Также можно полагать, что пятнистые олени, инвазированные эхинокок-козом, могут прямо и косвенно активизировать эпизоотологический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.

Опыт 2. По аналогичной схеме пяти агельмин-тозным беспородным щенкам (№ 1, 2, 3, 4, 5) в возрасте 3—5 мес. предварительно дегельминти-зированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела в условиях исключающих спонтанное заражение скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени благородного оленя. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения через каждые 3 дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 42 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 1383 и 952 экз. длиной от 0,9 до 1,2 см. Извлеченных цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем, по принципу аналогов, также подобрали по 5 гол. агельмин-тозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 7 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по 3 лентецов Ech. granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150—160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и др. паренхи-

матозных органов. Результаты исследований отражены в табл. 2.

Как видно, штаммом Ech. granulosus от благородного оленя заразились 80% ягнят, и 60,0% телят и 57% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Ech. granulosus в количестве 9,2±1,8 экз./ гол., телят — 6,5±1,2 экз./гол. ацефалоцист и у крольчат — 4,0±1,0 экз./гол. фертильных цист. Количество протоско-лексов Ech. granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило 296,8±22,3 экз./мл, у телят не обнаружено, у крольчат — 130,4±15,9 экз./мл.

Таким образом, штамм Ech. granulosus от благородного оленя также является биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Благородные олени, инвазиро-ванные эхинококкозом, также могут активизировать эпизоотологический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.

Опыт 3. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1, 2, 3, 4, 5) в возрасте 3—5 мес. предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени косули. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения щенят через каждые 3 дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 44 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 2076 и 1694 экз. длиной от 0,9 до 1,5 см. Цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре

на 7 дней для дозревания яиц. Затем, по принципу аналогов, также подобрали по 3 гол. агельмин-тозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 5 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по 3 лентецов Ech. granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150—160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и др. паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в табл. 3. Как видно, штаммом Ech. granulosus от косули заразились 100% ягнят и 66,7% телят и 80,0% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Ech. granulosus в количестве 15,7+2,3 экз./гол., телят

— 10,0±1,9 экз./гол. ацефалоцист и у крольчат — 7,6±1,3 экз./гол. фертильных цист. Количество протосколексов Ech. granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило 319,8±24,4 экз./мл, у телят

— не обнаружено, у крольчат — 207,5±15,8 экз./мл.

Таким образом, штамм Ech. granulosus от косули является наиболее биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Косули, инвазированные эхино-коккозом, также могут повышать активность эпизоотического процесса эхинококкоза в сельскохозяйственных системах при пастбищном содержании животных.

Опыт 4. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1, 2, 3, 4, 5) в возрасте 3—5 мес. предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела в условиях исключающих спонтанное заражение скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени и легких лося. Эхинококковые пузыри имели размеры до теннисного мяча. С 20 дня после заражения щенят через каждые 3 дня проводили копроовоскопию по методу Ка-лантарян (1957). При этом на протяжении исследований (до 60 дней) выделение члеников с яйцами цестоды у всех щенят не регистрировали.

Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника также не были обнаружены цепни. Таким образом, штамм Ech. granulosus от лося представляет биологический тупик и не вызывает заражение собак.

Опыт 5. Трем агельминтозным беспородным щенкам (№ 1, 2, 3) в возрасте 3—5 мес., предварительно дегельминтизированным дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени и легких кавказского тура. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения щенят через каждые 3 дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 38 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 2,47 и 1,85 тыс. экз. длиной от 0,9 до 1,3 см. Цестод помещали в чашку Петри и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем, по принципу аналогов, также подобрали по 3 гол. агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 7 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по 3 лентеца Ech. granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150—160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и др. паренхиматозных органов.

Результаты исследований отражены в табл. 4. Как видно, штаммом Ech. granulosus от кавказского тура заразились 100% ягнят и 33,3% телят и 57,1% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Ech. granulosus в количестве 12,4±2,7 экз./гол., телят — 8 экз. ацефалоцист у одной особи и у крольчат — 6,3±1,8 экз./гол. фертильных цист. Количество прото-

3. Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus от косули

Вид животных Подвергнуто заражению Ech. granulosus, гол. Из них инвазировано, гол. ЭИ, % ИИ, зкз./ гол. Кол-во протосколексов Ech. granulosus в мл жидкости

Ягнята 3 3 100 15,7±2,З 319,8±24,4

Телята 3 2 66,7 10,0±1,9 -

Крольчата 5 4 80,0 7,6±1,З 207,5±15,8

4. Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus от кавказского тура

Вид животных Подвергнуто заражению Ech. granulosus, гол. Из них инвазировано, гол. ЭИ, % ИИ, зкз./ гол. Кол-во протосколексов Ech. granulosus в мл жидкости

Ягнята 3 3 100 12,4±2,7 316,3±28,6

Телята 3 1 33,3 8 -

Крольчата 7 4 57,1 6,З±1,8 186,0±19,4

сколексов Ech. granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило 316,3 ±28,6 экз./мл, у телят — не обнаружено, у крольчат — 186,0+19,4 экз./мл. Штамм Ech. granulosus от кавказского тура является наиболее биологически активным только у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят.

Литература

1. Абуладзе, К.И. Тениаты — ленточные гельминты животных и человека и вызываемые ими заболевания / К.И. Абуладзе // Основы цестодологии. М.: Наука. 1964. Т. 4. 530 с.

2. Абуладзе, К.И. Современное воззрение на «штаммность» и новые данные по ультраструктуре Ech. granulosus / К.И. Абуладзе // Материалы 1-й Закавказ. конф. по общей паразитол. Тбилиси. 1978. С. 50—68.

3. Атаев, А. М. Эп изо отологический процесс и активно функционирующие штаммы Echinococcus granulosus у жвачных животных Дагестана / Вестник ветеринарии. Ставрополь. № 9/3. 1997. С. 32-37.

4. Бессонов, А.С. Распространение эхинококкоза животных в Центральном регионе РФ: мат. науч.-практ. конф. ВО Г. Москва. ВИГИС. 1988. С. 3-7.

5. Бессонов, А.С. Эпизоотология альвеолярного эхинококкоза животных и человека / М.: Колос. 2003. 255 с.

6. Биттиров, A.M. Эпизоотология эхинококкоза овец и крупного рогатого скота в КБР / Бюл. Всес. ин-та гельминтол. 2000. Вып. 56. С. 97-99.

7. Биттиров, А.М. Формирование гельминтологических комплексов животных на Центральном Кавказе и разработка способов регуляции численности трематод: автореф. дисс... докт. биол. наук. 1999. Москва. ВИГИС. 43 с.

8. Брофман, B.C. Инвазии копытных животных и человека, вызванные ларвальной цестодой Echinococcus granulosus: мат. Всероссийской науч.-практ. конф. / B.C. Брофман // М., Ч. 1. 2004. С. 47-49.

9. Скрябин, К.И. Методы исследований в гельминтологии / Сельхозизд. Т. 1. 1928. С. 147-164.

10. Колесников, В.И. Эхинококкоз собак в г. Ставрополе / Вестник ветеринарии. Ставрополь. № 12/1. 2003. С. 32—37.

11. Мовсесян, С.О. Эпизоотологические особенности эхинококкоза животных в условиях Араратской долины Республики Армения: мат. Всероссийской науч.-практ. конф. ВОГ. Москва. ВИГИС. 1999. С. 88-91.

12. Оробец, В.А. Терапия экспериментального эхинококкоза собак / Вестник ветеринарии. Ставрополь. № 4. 2002. С. 76-78.

13. Петров, Ю.Ф. Эколого-эпизоотологические особенности эхинококкозной инвазии животных в Нечерноземной зоне РФ: мат. Всероссийской науч.-практ. конф. ВОГ. М.: ВИГИС. 1997. С. 121-124.

14. Успенский, А.В. Иммуноферментная диагностика ларвальных цестодозов животных / Бюлл. Всес. ин-та гельминтол. 1995. Вып. 36. С. 75-78.