Научная статья на тему 'Схемы реализации биологического цикла эхинококкоза животных'

Схемы реализации биологического цикла эхинококкоза животных Текст научной статьи по специальности «Ветеринарные науки»

CC BY
280
57
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Аннотация научной статьи по ветеринарным наукам, автор научной работы — Биттиров A. M., Беккиева С. А., Шекихачева Л. З., Чилаев С. Ш.

Паразитарная система эхинококкоза животных и человека в природных экосистемах региона является многофункциональной и реализуется по схемам «пятнистый олень собака овца, крупный рогатый скот, кролик», «благородный олень собака овца, крупный рогатый скот, кролик», «косуля собака овца, крупный рогатый скот, кролик», «кавказский тур собака овца, крупный рогатый скот, кролик». При этом фертильные штаммы Echinococ-CUS granulosus пятнистого оленя, благородного оленя, косули, серны, кавказского тура и овец являются широко специфичными и могут обеспечить перекрестное заражение домашних и диких копытных опосредованно через круг дефинитивных хозяев (чабанских собак, одичавших собак, волков, шакалов, енотовидных собак, лисиц, барсуков и др.), что также многократно повышает биологическую заш,иш,енность паразитарной системы эхинококкоза животных в регионе.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «Схемы реализации биологического цикла эхинококкоза животных»

УДК 619:616.995.121.3 А.М. Биттиров, С.А. Беккиева,

Л.З. Шекихачева, С.Ш. Чилаев

СХЕМЫ РЕАЛИЗАЦИИ БИОЛОГИЧЕСКОГО ЦИКЛА ЭХИНОКОККОЗА ЖИВОТНЫХ

Паразитарная система эхинококкоза животных и человека в природных экосистемах региона является многофункциональной и реализуется по схемам «пятнистый олень - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «благородный олень - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «косуля - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик», «кавказский тур - собака - овца, крупный рогатый скот, кролик». При этом фертильные штаммы Echinococ-cus granulosus пятнистого оленя, благородного оленя, косули, серны, кавказского тура и овец являются широко специфичными и могут обеспечить перекрестное заражение домашних и диких копытных опосредованно через круг дефинитивных хозяев (чабанских собак, одичавших собак, волков, шакалов, енотовидных собак, лисиц, барсуков и др.), что также многократно повышает биологическую защищенность паразитарной системы эхинококкоза животных в регионе.

Введение. Придание животноводству экстенсивного пути развития, игнорирование дегельминтизации присельских и городских собак, ослабление борьбы с безнадзорными собаками, ухудшение эпидемиологического, ветеринарно-санитарного контроля и санитарно-просветительской работы в сфере производства продуктов животноводства и малая эффективность рекомендуемых профилактических мероприятий привели к широкому распространению эхинококкоза животных и человека в регионе. Распространение эхинококкоза животных в РФ приобретает угрожающий характер с тенденцией формирования активно функционирующих эпизоотологических сельских и городских очагов опасного зооноза. Инвазированность эхинококко-зом промежуточных хозяев составляет: крупного рогатого скота 42,4%, овец - 65,8%, коз - 26,2%, буйволов

- 35,0%, безнадзорных собак (дефинитивный хозяин) - 80-100%. С 1995 по 2006 г. в Кабардино-Балкарской республике с диагнозами эхинококкоз печени, легких, селезенки, перикарда, диафрагмы и головного мозга оперировано 1038 пациентов в возрасте от 6 до 68 лет. Инвазии копытных животных цестодой Echinococ-cus granulosus приобрели в регионе природную очаговость, стационарность и механизмы перекрестного заражения дефинитивных и промежуточных хозяев. О широком распространении эхинококкоза сельскохозяйственных и промысловых животных в Центральном регионе РФ можно судить по масштабности образования техногенных очагов эхинококкоза сельскохозяйственных животных. В этом контексте обращается внимание на актуальность изучения вопросов биолого-экологической активности эпизоотологического и эпидемиологического процесса Echinococcus granulosus у разных видов животных и человека. Цестода Echi-nococcus granulosus при паразитировании в паренхиматозных органах животных вызывает тяжелые патологические изменения, истощение, асциты, воспаление печени и легких. У сельскохозяйственных животных завершенные и незавершенные циклы Echinococcus granulosus снижают упитанность, прирост массы тела, молочную продуктивность коров на 18-30%. В связи с этим заслуживает научно-практический интерес изучение эпизоотологического процесса эхинококкоза животных и определение путей формирования инвазии в регионе.

Материалы и методы исследований. Формирование паразитарных систем эхинококкоза животных, определение активно функционирующих штаммов Echinococcus granulosus и путей перекрестного заражения у разных видов жвачных животных изучали опытным путем, что отражается в тексте статьи. При этом применяли метод гельминтологических вскрытий печени, желчного пузыря и легких жвачных животных при их убое (Скрябин К.И., 1928). Для определения количества протосколексов Echinococcus granulosus в 1 мл жидкости применяли счетную камеру ВИГИС, разработанную Л.Г. Мигачевой, Г.А. Котельниковым (1986). Собранных при вскрытии легких и печени Echinococcus granulosus от каждого животного подсчитывали и определяли среднюю интенсивность инвазий, а также рассчитывали экстенсивность инвазии. Полученные результаты обработали статистически с расчетом средних величин по программе «Биометрия».

Результаты и обсуждение. Степень участия диких копытных животных в реализации эпизоотического процесса эхинококкоза в природных экосистемах представляет определенный научно-практический интерес. С этой целью нами были поставлены серии опытов по многоступенчатому моделированию эпизоотиче-

ского процесса эхинококкоза с участием диких копытных. Опыты были поставлены в 2003-2005 гг. в условиях СХПК «Малокабардинский» Терского района. Порядок и схемы постановки опытов излагаются ниже.

Опыт 1. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте 3-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени пятнистого оленя. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения через каждые 3 дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 39 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника которых были обнаружены цепни, соответственно, 1820 и 1278 экземпляров длиной от 0,8 до 1,4 см. Извлеченных цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем, по принципу аналогов отобрали по 3 голов агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 5 гол. крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по три лентецов Echinococcus granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в таблице 1.

Таблица 1

Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Echinococcus granulosus

от пятнистого оленя

Вид животных Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз./ гол. Количество протоско-лексов Echinococcus granulosus в мл жидкости

Ягнята З З 100 12,5±1,З З70,2±29,5

Телята З З 100 9,7±1,5 -

Крольчата 5 З 60,0 5,5±0,8 162,6±18,2

Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от пятнистого оленя заразились все 100% ягнят и телят и 60% крольчат. При этом у ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echinococcus granulosus в количестве 12,5±1,З экз/гол., у телят 9,7±1,5 экз/гол. ацефалоцист альвеолярного строения и у крольчат -5,5±0,8 экз/гол фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило З70,2±29,5 экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 162,6±18,25 экз/мл.

Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от пятнистого оленя является биологически активным у ягнят и крольчат, так как формирует завершенный цикл, а у телят - биологически пассивным, так как формирует незавершенный цикл, т.е ацефалоцист. Также можно полагать, что пятнистые олени, инвазиро-ванные эхинококкозом, могут прямо и косвенно активизировать эпизоотологический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.

Опыт 2. По аналогичной схеме пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте З-5 месяцев предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени благородного оленя. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 42 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 1З8З и 952 экземпляров длиной от 0,9 до 1,2 см. Извлеченных цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц Echinococcus granulosus. Затем, по принципу аналогов, также подобрали по 5 голов агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 7 голов крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по З лентецов Echinococcus granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исклю-

чающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в табл. 2.

Таблица 2

Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus

от благородного оленя

Вид Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз./ гол. Количество протос-колексов Echinococcus granulosus в мл жидкости

Ягнята 5 4 80,0 9,2±1,8 296,8±22,З

Телята 5 З 60,0 6,5±1,2 -

Крольчата 7 4 57,1 4,0±1,0 1З0,4±15,9

Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от благородного оленя заразились 80% ягнят и 60,0% телят и 57% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echinococcus granulosus в количестве 9,2±1,8 экз/гол., телят 6,5±1,2 экз/гол. ацефалоцист и у крольчат - 4,0±1,0 экз/гол. фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило 296,8±22,З экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 1З0,4±15,9 экз/мл.

Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от благородного оленя также является биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Благородные олени, инвазированные эхи-нококкозом, также могут активизировать эпизоотологический процесс эхинококкоза у сельскохозяйственных животных.

Опыт 3. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте З-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени косули. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения щенят через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на 44 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника были обнаружены цепни, соответственно, 2076 и 1694 экземпляров длиной от 0,9 до 1,5 см. Цестод помещали в чашку Петри, промывали трижды дистиллированной водой, с помощью лупы отбирали цестод с крупными мешковидными последними члениками и помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц. Затем по принципу аналогов также подобрали по З головы агельминтозных ягнят (6 мес.) и телят (6 мес.) и 5 голов крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по З лентецов Echinococcus granulosus. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в таблице З. Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от косули заразились 100% ягнят и 66,7% телят и 80,0% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echinococcus granulosus в количестве 15,7±2,З экз/гол., телят 10,0±1,9 экз/гол. ацефалоцист и у крольчат - 7,6±1,З экз/гол. фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило З19,8±24,4 экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 207,5±15,8 экз/мл.

Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от косули является наиболее биологически активным у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят. Косули, инвазированные эхинококкозом, также могут повышать активность эпизоотического процесса эхинококкоза в сельскохозяйственных системах при пастбищном содержании животных.

Опыт 4. Пяти агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-5) в возрасте З-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени и легких лося. Эхинококковые пузыри имели размеры до теннисного мяча. С 20 дня после заражения щенят через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). При этом на протяжении исследо-

ваний (до 60 дней) выделение члеников с яйцами цестоды у всех щенят не регистрировали. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника также не были обнаружены цепни. Таким образом, штамм Echinococcus granulosus от лося представляет биологический тупик и не вызывает заражение собак.

Таблица 3

Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus от косули

Вид животных Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз/гол. Количество протоско-лексов Echinococcus granulosus в мл жидкости

Ягнята З З 100 15,7±2,З З19,8±24,4

Телята З 2 66,7 10,0±1,9 -

Крольчата 5 4 80,0 7,6±1,З 207,5±15,8

Опыт 5. Трем агельминтозным беспородным щенкам (№ 1-З) в возрасте З-5 месяцев, предварительно дегельминтизированных дронцитом в дозе 5 мг/кг массы тела, в условиях, исключающих спонтанное заражение, скормили с мясным фаршем по три эхинококковых пузыря, которых извлекали из печени и легких кавказского тура. Эхинококковые пузыри имели хорошо развитые протосколексы с крючьями. С 20 дня после заражения щенят через каждые З дня проводили копроовоскопию по методу Калантарян (1957). В результате установлено, что первое выделение члеников с яйцами цестоды отмечается на З8 день после заражения у всех щенят. Щенков № 1 и 2 подвергли вскрытию, в тонком отделе кишечника которых были обнаружены цепни, соответственно, 2,47 и 1,85 тыс. экз. длиной от 0,9 до 1,З см. Цестод в чашке Петри помещали в термостат при комнатной температуре на 7 дней для дозревания яиц Echinococcus granulosus. Затем, по принципу аналогов также подобрали по З головы агельминтозных ягнят (б мес.) и телят (6 мес.) и 7 голов крольчат (4 мес.), которым скормили с комбикормом по З лентеца. Подопытных животных содержали в условиях, исключающих спонтанное заражение. Через 150-160 дней после заражения всех подопытных животных подвергали убою и ПГВ печени, легких и других паренхиматозных органов. Результаты исследований отражены в таблице 4. Как видно, штаммом Echinococcus granulosus от кавказского тура заразились 100% ягнят, ЗЗ,З% телят и 57,1% крольчат. У ягнят обнаружено в печени и легких фертильных цист Echino-coccus granulosus в количестве 12,4±2,7 экз/гол., телят 8 экз. ацефалоцист у одной особи и у крольчат -6,З±1,8 экз/гол. фертильных цист. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости у цист ягнят составило З16,З±28,6 экз/мл, у телят не обнаружено, у крольчат - 186,0±19,4 экз/мл. Штамм Echino-coccus granulosus от кавказского тура является наиболее биологически активным только у ягнят и крольчат и биологически пассивным у телят.

Таблица 4

Показатели зараженности ягнят, телят и крольчат штаммом Ech. granulosus

от кавказского тура

Вид животных Подвергнуто заражению Echinococcus granulosus, гол. Из них инвазиро-вано, гол. ЭИ, % ИИ, экз/гол. Количество протосколексов Echinococcus granulosus в мл жидкости

Ягнята З З 100 12,4±2,7 З16,З±28,6

Телята З 1 ЗЗ,З 8 -

Крольчата 7 4 57,1 6,З±1,8 186,0±19,4

Литература

1. Абуладзе, К.И. Тениаты - ленточные гельминты животных и человека и вызываемые ими заболевания / К.И. Абуладзе// Основы цестодологии. - М.: Наука, 1964. - Т.4. - 530 с.

2. Абуладзе, К.И. Современное воззрение на «штаммность» и новые данные по ультраструктуре Ech. granulosus / К.И. Абуладзе // Мат-лы 1-й Закавказ. конф. по общей паразитол. - Тбилиси, 1978. -С. 50-68.

3. Атаев, А.М. Эпизоотологический процесс и активно функционирующие штаммы Echinococcus granulosus у жвачных животных Дагестана / А.М. Атаев // Вестн. ветеринарии. - Ставрополь, 1997. - №9/3. -С. 32-37.

4. Бессонов, А.С. Распространение эхинококкоза животных в Центральном регионе РФ / А.С. Бессонов // Мат-лы науч.-практ. конф. ВОГ. - М.: Изд-во ВИГИС, 1988. - С. 3-7.

5. Бессонов, А.С. Эпизоотология альвеолярного эхинококкоза животных и человека / А.С. Бессонов. - М.: Колос, 2003. - 255 с.

6. Биттиров, А.М. Эпизоотология эхинококкоза овец и крупного рогатого скота в КБР / А.М. Биттиров // Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 2000. - Вып. 56. - С. 97-99.

7. Биттиров, А.М. Формирование гельминтологических комплексов животных на Центральном Кавказе и разработка способов регуляции численности трематод: автореф. дис. ... д-ра биол. наук / А.М. Биттиров. - М.: Изд-во ВИГИС, 1999. - 43 с.

8. Брофман, В.С. Инвазии копытных животных и человека, вызванные ларвальной цестодой Echinococcus granulosus / В.С. Брофман // Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф. - М., - 2004. - Ч.1.- С. 47-49.

9. Скрябин, К.И. Методы исследований в гельминтологии / К.И. Скрябин. - М.: Сельхозизд. - 1928. - Т.1. -С. 147-164.

10. Колесников, В.И. Эхинококкоз собак в г. Ставрополе / В.И. Колесников // Вестн. ветеринарии. - Ставрополь. - 2003. - №12/1. - С. 32-37.

11. Мовсесян, С.О. Эпизоотологические особенности эхинококкоза животных в условиях Араратской долины Республики Армения / С.О. Мовсесян // Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф. ВОГ. - М.: Изд-во ВИГИС.

- 1999. - С. 88-91.

12. Оробец, В.А. Терапия экспериментального эхинококкоза собак / В.А. Оробец // Вестн. ветеринарии. -Ставрополь. - 2002. - №4. - С. 76-78.

13. Петров, Ю.Ф. Эколого-эпизоотологические особенности эхинококкозной инвазии животных в Нечерноземной зоне РФ / Ю.Ф. Петров // Мат-лы Всерос. науч.-практ. конф. ВОГ. - М.: Изд-во ВИГИС. - 1997.

- С. 121-124.

14. Успенский, А.В. Иммуноферментная диагностика ларвальных цестодозов животных / А.В. Успенский // Бюл. Всес. ин-та гельминтол. - 1995. - Вып. 36. - С.75-78.

---------♦'-----------

УДК 619:616.995.121.3 М.Б. Чапаев, А.С. Канокова

ЭКОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОБЛЕМЫ ЭПИЗООТОЛОГИИ ТРИХОНЕМАТИДОЗОВ ЛОШАДЕЙ АНГЛО-КАБАРДИНСКОЙ ПОПУЛЯЦИИ В РЕГИОНЕ ЮЖНОГО ФЕДЕРАЛЬНОГО ОКРУГА

Наибольший показатель ЭИ (42,7%) трихонематидозов лошадей отмечается в горной зоне при обнаружении в среднем, 157,0±1,6 экземпляров личинок в 1 г фекалий. Сравнительно меньше ЭИ трихонематидозов лошадей в предгорной зоне (30,7%). Результаты исследований также показали на рост ЭИ трихонематидозов лошадей табунно-конюшенного содержания от 26,0 до 50,0%, ИИ - от 1178,6±41,7 до 4193,2±183,9 экз/гол. (в среднем ЭИ - 35,6%, ИИ - 3175,4±118,7 экз/гол) и у лошадей круглогодичного табунного содержания, соответственно от 32,1 до 67,4%, ИИ - от 2185,4±65,2 до 5319,5±237,8 экз/гол. (в среднем, ЭИ - 47,1%, ИИ - 3862,8±146,5 экз/гол). У лошадей круглогодичного табунного содержания ЭИ и ИИ трихонематидозов были больше, что обусловлено продолжительностью трофического контакта с биотопами инвазии.

Введение. Представители нематод семейства ТпсЬюпетаМае Witenberg (1925) вызывают трихоне-матидозы. У лошадей паразитируют преимущественно гельминты подсемейства ТпсЬюпетайпае Railliet

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.