CC BY
311УДК: 615.322
ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ТРАВЫ ОБЛАДАЮЩИЕ СПЕРМАТОПРОТЕКТИВНЫМИ СВОЙСТВАМИ
КАРОМАТОВ ИНОМЖОН ДЖУРАЕВИЧ
руководитель медицинского центра «Магия здоровья»,
город Бухара, Республика Узбекистан АБДУВОХИДОВ АСЛАМ ТОШПУЛОТОВИЧ преподаватель кафедры хирургии и сестринского патронажа в материнстве Бухарского медицинского колледжа.
Город Бухара. Республика Узбекистан АННОТАЦИЯ
Бесплодие у мужчин - не только важная медицинская, но и серьезная социальная проблема в развитых странах. Фитотерапия обладает богатым арсеналом для лечения, защиты тестикулярного аппарата. Применение фитопрепаратов перспективно при лечении нарушений работы тестикулярного аппарата, тем самым для профилактики и лечения мужского бесплодия. Благодаря своим антиоксидантным, противовоспалительным свойствам, такие лекарственные растения как корица, виноград, лук, чеснок, абрикос, кизил и другие улучшают качество спермы, количество подвижных сперматозоидов у больных с астенозоо-спермией. Благодаря этим же свойствам некоторые лекарственные травы защищают тестикулярный аппарат от повреждающего действия химических ядов, лекарственных препаратов, механических и электромагнетических факторов. Такие лекарственные растения как якорцы, бананы, чернушка, лопух обладают свойством стимулировать сперматогенез. Изучение лекарственных трав перспективно для для синтеза новых лекарственных средств как для профилактики так и лечения различных форм мужского бесплодия.
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №6 - июнь (23) 2018
Ключевые слова: мужское бесплодие, сперматогенез, лекарственные травы, фитотерапия, защита тестикулярного аппарата фитопрепаратами.
OFFICINAL HERBS HAVING SPERMATOPROTECTIVE
PROPERTIES KAROMATOVINOMZHON DZHURAYEVICH
head of the medical center"Health Magic" the city of Bukhara,
Republic of Uzbekistan ABDUVOKHIDOV ASLAM TOSHPULOTOVICH
teacher of department of surgery and sisterly patronage in motherhood of the Bukhara medical college. City of Bukhara.
Republic of Uzbekistan
ABSTRACT
Infertility at men - not only an important medical, but also serious social problem in the developed countries. Phytotherapy possesses a rich arsenal for treatment, protection of the testicular device. Use of phytomedicines is perspective at treatment of violations of operation of the testicular device, thereby for prevention and treatment of male infertility. Thanks to the antioxidant, anti-inflammatory properties, such herbs as cinnamon, grapes, onions, garlic, an apricot, a cornel and others improve quality of sperm, quantity of mobile spermatozoa at patients with an astenozoospermiya. Thanks to the same properties some officinal herbs protect the testicular device from the damaging effect of chemical poisons, medicines, mechanical and electromagnetic factors. Such herbs as yakorets, bananas, a burdock have property to stimulate a spermatogenesis. Studying of officinal herbs is perspective for for synthesis of new medicines as for prevention and treatment of various forms of male infertility.
Keywords: male infertility, spermatogenesis, officinal herbs, phytotherapy, protection of the testicular device phytomedicines.
СПЕРМАТОПРОТЕКТИВ ХУСУСИЯТЛАРИ БУЛГАН ДОРИВОР
УСИМЛИКЛАР КАРОМАТОВ ИНОМЖОН ДЖУРАЕВИЧ
«Магия здоровья» тиббий марказ бошлиги. Бухоро ш.,
Узбекистон Республикаси АБДУВОХИДОВ АСЛАМ ТОШПУЛОТОВИЧ Бухоро тиббий колледж хирургия кафедраси уцитувчиси.
Бухоро ш., Узбекистон Республикаси АННОТАЦИЯ
Эркакларда бепуштлик нафацат тиббий, балки мухим социал муаммолардан бири. Фитотерапия эркаклар бепуштлигини олдини олиш ва даволашда бой арсеналга эга. Доривор усимликларни ишлатиш, эркаклар бепуштлигининг асосий сабаби булган тестикуляр аппарат касалликларини даволашда ва профи-лактикасида катта ахамиятга эга. Узининг антиоксидант, яллигланишга царши хусусиятлари булган бир цатор доривор усимликлар - долчин, пиёз, чеснок, урик ва бошцалар сперманинг сифатини яхшилайдилар, харакатчан сперматозоидларнинг сонини оширадилар, хар хил кимёвий захарларда, дори воситаларида, механик ва нурли таъсирларда тестикуляр аппаратни химоялайдилар. Баъзи доривор усимликлар - шу жумладан темиртикон, седана, царициз, банан сперматогенезни кувватлайдилар. Доривор усимликларни урганиш эркаклик бепуштлигини олдини олишда ва даволашда янги дори воситаларини ишлаб чицишда сабоцлидир.
Калит сузлар: эркаклар бепуштлиги, сперматогенез, доривор усимликлар, фитотерапия, тестикуляр аппаратини химояловчи фитопрепаратлар.
Бесплодие у мужчин - не только важная медицинская, но и серьезная социальная проблема в развитых странах. Несмотря на достаточно высокий уровень развития современной медицины, нередко не удается установить причину инфертильности у мужчин. С целью анализа основных вопросов этиопатогенеза и диагностики мужского бесплодия проведен обзор специализированной литературы. Отмечено, что все формы мужского бесплодия сводятся к двум группам: секреторное, при котором отсутствует или нарушена функция продукции сперматозоидов, и экскреторное, при котором нарушен транспорт спермиев по семявыносящим путям; при этом часто отмечают сочетанную патологию -[11].
Так, по результатам исследования многих авторов, за последние 20 лет количество инфертильных мужчин выросло с 30% до 50%. Среди всех причин бесплодия доля мужского бесплодия составляет 25-50%. Положение обусловлено многоаспектностью факторов, присущих настоящему. Наиболее существенными следует признать социальноэкономические, экологические, образжизни, существенную деформацию межличностных, в том числе брачно-семейных отношений - [13].
Главным интегративным центром репродуктивной системы у мужчин является гипоталамус. Получая информацию от центральной нервной системы и яичек, гипоталамус регулирует образование и секрецию гонадотропин-рилизинг гормона. Нейротрансмиттеры и нейропептиды оказывают как ингибирующее, так и стимулирующее влияние на гипоталамус. Гонадотропин-рилизинг гормон секрети-руется гипоталамусом в пульсирующем режиме, что является
необходимым звеном стимуляции синтеза и секреции обоих гонадотропинов гипофиза - лютеинизирующего и фолликулостиму-лирующего гормона. Лютеинизирующий и фолликулостимулирующий гормоны образуются в передней доле гипофиза и секретируются в импульсном режиме в ответ на пульсирующую продукцию гонадо-тропин-рилизинг гормона. В яичках лютеинизирующий и фоллику-лостимулирующий гормон связываются со специфическими рецепторами на клетках Лейдига и Сертоли - [13].
Тестостерон - гормон, который секретируют клетки Лейдига яичка, - является главным ингибитором секреции лютеинизирующего гормона гипофиза у мужчин. В периферических тканях тестостерон может превращаться в более мощный андроген дигидротестостерон или в мощный эстроген эстрадиол. Образующиеся андрогены и эстрогены независимо друг от друга ингибируют секрецию лютеинизирующего гормона - [2].
Продукция фолликулостимулирующего гормона регулируется по механизму обратной связи ингибином В, образующимся в клетках Сертоли. Ухудшение сперматогенеза и уменьшение образования ингибинаВвследствие нарушения функций клеток Сертоли по механизму отрицательной обратной связи приводит к увеличению секреции фолликулостимулирующего гормона. Изолированное повышение уровня фолликулостимулирующего гормона - важный маркер неблагополучного состояния семенной ткани яичек. Говоря о маркерах функции клеток Сертоли, нельзя не упомянуть об антимюллеровом гормоне. Это вещество также синтезируется в клетках Сертоли и во внутриутробном периоде ингибирует развитие мюллеровых протоков - зачатков женских половых органов. При недостаточности этого гормона развивается ложный мужской гермафродитизм, а при стертых формах - двухсторонний криптор-хизм и мужское бесплодие. У взрослого человека определяются
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №6 - июнь (23) 2018
остаточные уровни этого гормона. Оценка уровня антимюллерова гормона - важный показатель функции яичек. Секреция пролактина также имеет сложную взаимосвязь с гонадотропными гормонами гипофиза. У мужчин с гиперпролактинемией повышенный уровень пролактина оказывает ингибирующее влияние на секрецию гонадотропин-рилизинг гормона - [12; 2]. Семенные канальцы содержат клетки герминогенного эпителия на разных стадиях созревания, а также поддерживающие их клеткиСертоли. Семенные канальцысоставляют до 85-90% объема яичек. Клетки Сертоли представляют собой постоянную популяцию неделящихся клеток микроокружения. Они расположены на базальной мембране семенных канальцев и соединены между собой плотными соединениями. Эти плотные соединения клеток Сертоли вместе с тесно взаимосвязанными мышечными клетками перитубулярного пространства как пазлы формируют гемато-тестикулярный барьер. Его функциональное значение заключается в создании уникального микроокружения, необходимого для обеспечения сперматогенеза, и поддержании иммунологической изолированности яичка. Такая изоляция очень важна, так как образование сперматозоидов происходит с периода полового созревания, что намного позже становления функции самораспознавания иммунной системы. Если бы образование сперматозоидов не было иммунологически защищено, то дифференцирующиеся клетки распознавались бы иммунной системой как чужеродные и уничтожались. Клетки Сертоли участвуют как в обеспечении питания развивающихся клеток сперматогенеза, так и в фагоцитозе погибших клеток. Сперматогонии и молодые сперматоциты расположены в семенных канальцах ближе к базальной мембране и по мере созревания перемещаются в верхние слои вглубь просвета канальцев - [4; 3; 2]. Сперматогенные клетки располагаются в семенных канальцах строго определенным
образом. Сперматогонии лежат непосредственно над базальной мембраной, а в направлении просвета канальцев последовательно располагаются первичные сперматоциты, вторичные сперматоциты и сперматиды - [4; 2]. Сперматогенез - сложный процесс, при котором примитивные половые клетки, или сперматогонии, делятся, воспроизводя похожие на себя стволовые клетки, либо дают начало дочерним клеткам, которые в дальнейшем дифференцируются в сперматоциты. Деление последних дает начало линиям клеток, в конечном итоге дифференцирующимся в сперматиды и далее в сперматозоиды. Дифференцировка включает конденсацию ядра, формирование акросомы, утрату большей части цитоплазмы, формирование хвоста и перемещение митохондрий в среднюю часть сперматозоида, которая становится «машинным отделением» клетки, обеспечивающим работу хвостика. Группа клеток семенного эпителия, одновременно вступающая в процессы сперматогенеза, называется генерацией. Клетки одной генерации находятся на одной и той же стадии развития. Выделяют шесть стадий развития герминогенного эпителия. Развитие сперматозоида от первой стадии до шестой составляет один цикл. У человека продолжительность каждого цикла составляет приблизительно 16 дней, а путь превращения от раннего сперматогония до зрелого сперматозоида занимает у людей около 74 дней - [9]. Между двумя отдельными частями яичка - семенными канальцами и окружающей их межуточной тканью - существует тесная структурная и функциональная связь. Лютеинизирующий гормон гипофиза влияет на сперматогенез, косвенным образом стимулируя продукцию тестостерона. Клетки-мишени фолликулостимулирующего гормона -клетки Сертоли. Таким образом, тестостерон и фолликулостиму-лирующий гормон - гормоны, напрямую влияющие на эпителий семенных канальцев. Андроген-связывающийбелок, образующийся
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №6 - июнь (23) 2018
клетками Сертоли и участвующий во внутриклеточном транспорте тестостерона, может играть роль резервуара тестостерона внутри семенных канальцев в дополнение к тестостерону, поступающему из яичек в канальцы придатка яичка. Близкое взаимное расположение клеток Лейдига и семенных канальцев, а также образование клетками Сертоли андроген-связывающего глобулина, поддерживает высокую концентрацию тестостерона в микросреде дифференцирующихся клеток сперматогенеза. Гормональные изменения, необходимые для запуска сперматогенеза, происходят независимо от процесса его поддержания. Для поддержания сперматогенеза, например, при выключении гипофиза, необходим только тестостерон. Впрочем, если функция семенного эпителия выключилась в результате отсутствия тестостерона, то для повторного запуска сперматогенеза требуются как фолликулостимулирующий гормон, так и тестостерон - [2; 9; 85]. Хотя образование сперматозоидов происходит в яичке, процессы созревания, хранения и транспорта сперматозоидов обеспечиваются придатком яичка. Сперматозоиды, находящиеся в семенных канальцах яичка, неподвижны и неспособны к оплодотворению. Их созревание завершается вне яичка в протоках придатка. Извитые семенные канальцы яичка заканчиваются сетью яичка, которое, в свою очередь, формирует выносящие канальцы. По этим выносящим канальцам тестикулярная жидкость и сперматозоиды поступают из яичка в головку эпидидимуса. Придаток яичка, или эпидидимус имеет головку, тело, хвост и состоит из единственного, сильно извитого протока, длина которого составляет около 5-6 метров. Хотя продолжительность транспорта по протоку эпидидимуса изменяется в зависимости от возраста и половой активности мужчины, в среднем это время составляет 4 дня. Именно в период созревания в головке и теле эпидидимуса сперматозоиды приобретают все увеличивающуюся подвижность и способность к
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №6 - июнь (23) 2018
оплодотворению яйцеклетки - [3; 2; 30]. Помимо созревания сперматозоидов, придаток яичка выполняет роль «хранилища» или резервуара мужских половых клеток. Подсчитано, что внеяичковый резервуар спермы содержит около 440 млн сперматозоидов, более 50% которых заключено в хвостовой части эпидидимуса. Из хвоста придатка яичка сперматозоиды поступают в семявыносящий проток, представляющий собой мышечную трубочку длиной 30-35 см. Содержимое семявыносящего протока благодаря перистальтическим сокращениям стенки протока поступает в семявыбра-сывающий канал и далее,посредством эмиссии и эякуляции - в уретру. Во время эмиссии секрет семенных пузырьков и простаты поступает в задний отдел уретры. Эякуляторные сокращения семявыбрасывающего протока и мышц шейки мочевого пузыря находятся под контролем симпатической нервной системы.
Фитотерапия обладает богатым арсеналом для лечения, защиты тестикулярного аппарата. Применение фитопрепаратов перспективно при лечении нарушений работы тестикулярного аппарата, тем самым для профилактики и лечения мужского бесплодия.
Ресвератрол винограда, благодаря антиоксидантным свойствам защищает от разрушения аскорбатом железа сперматозоидов - [57].
Благодаря своим антиоксидантным, противовоспалительным свойствам, корица улучшает качество спермы, количество подвижных сперматозоидов у больных с астенозооспермией - [56; 92; 93; 18; 80]. Экспериментальные исследования показали, что прием 75 мг/кг/день корицы выражено увеличивает количество, подвижность и жизнеспособность спермы - [48]. Масло корицы предупреждает поражение тестикулярного аппарата высокой
температурой - [89]. Прием корицы предупреждает поражение тестикулярного аппарат тетрахлоридом углерода - [14].
Водно-спиртовые экстракты листьев крапивы улучшает качество спермы и предупреждает поражение сперматозоидов никотином - [46]. Экспериментальные исследования показали, что прием масла индау предупреждает поражение тестикулярного аппарата никотином - [14].
Прием семян кунжута предупреждает поражение тестикулярного аппарата химическими веществами, улучшает качество спермы
- [87; 24].
Экспериментальные исследования на животных показали, что спиртовые экстракты лопуха оказывают стимулирующее воздействие на процессы сперматогенеза - [16].
Кожица лука, экстракты растения мальва предупреждают поражение тестикулярного аппарата, уменьшение подвижности и выживаемости сперматозоидов различными неблагоприятными факторами - [28; 61]. Экстракт цветков и пыльцы фиников улучшает состояние сперматозоидов, их подвижность и выживаемость - [54; 67; 34; 55; 38].
Водный экстракт эмблики восстанавливал часть сперматозоидов после воздействия на них сперматоксичным веществом охратоксин - [29].
Исследования показали, что экстракты шалфея и фенхеля предупреждает от разрушения сперматозоидов при криоконсервации
- [58].
Экстракт пыльцы фиников защищает тестикулярный аппарат от разрушаего действия гормонов щитовидной железы - [32], от воздействия никотина - [73]. Экспериментальные исследования показали, что экстракт пыльцы фиников оказывает терапевтическое воздействие при атипичной гиперплазии простаты - [31].
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №6 - июнь (23) 2018
Исследования на добровольцах показали, экстракты Tribulus terrestris улучшают подвижность сперматозоидов и их живучесть -[87; 50; 77; 23]. Получены хорошие результаты лечения секреторных видов бесплодия у мужчин препаратами якорцов - [10; 1]. Экспериментальные исследования на животных показали, что поедание плодов бананов в малых дозах (500 мг./кг/день) увеличивает количество и качество вырабатываемой спермы, в то время как большое количество (1000 мг/кг/день) уменьшает ее выработку - [19]. Водный экстракт бананов оказывает анаболические и андрогенно стимулирующее воздействие, стимулирует функции тестикул - [90]. Экспериментальные исследования показали, что прием экстрактов коленницы предупреждает изменение тестикулярного аппарата при старении - [45].
Рандомизированные, плацебо контролируемые исследования показали, что экстракты якорцов оказывают терапевтическое воздействие при олигозооспермии - [81]. Экстракты якорцов оказывают терапевтическое воздействие при олигоастеноте-ратоспермии - [27]. Но, препараты якорцов не эффективны при идиопатическом мужском бесплодии - [69].
Экстракт чилийского прополиса защищает сперматозоиды от повреждающего действия химических веществ - [70].
Проантоцианы предохраняют разрушение сперматозоидов при механическом воздействии на тестикулярный аппарат - [25; 6; 84] и при оксидативном напряжении - [40], от токсического воздействия солей кадмия и др. - [86; 15; 42; 20].
Экстракт артишока, водные экстракты базилика, виноградный сок предупреждают поражение яичников и тестикулярного аппарата солями кадмия - [36; 75; 64; 53; 8]. Экспериментальные исследования показали, что потребление лука предупреждает гибель сперматозоидов под воздействием солей кадмия - [43]. Экстракты лука
Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» №6 - июнь (23) 2018
предупреждают поражение почечной ткани предстательной железы при кадмиевой интоксикации - [44; 62]. Семена пажитника защищают тестикулярный аппарат и клетки печени от токсического воздействия солей кадмия - [5; 22]. Финики защищают тестикулярный аппарат экспериментальных животных от разрушительного действия солей кадмия - [33]. Диалил сульфит чеснока предупреждает токсическое воздействие солей кадмия на тестикулы - [72; 63; 5].
Экспериментальные исследования показали, что прием плодов кизила предупреждает поражение тестикулярного аппарата мето-трексатом - [96; 95]. Экстракт плодов лимона предохраняет тестикулярный аппарат, кишечник и поджелудочную железу при приеме циклофосфамида - [66; 7; 65]. Гесперидин предупреждает поражение тестикулярного аппарата химиотерапевтическим препаратом цис-платин - [47]. Спиртовые экстракты семян пажитника предупреждают поражение почек и печени - [41], тестикулярного аппарата - [39] -цисплатином. Прием хурмы предупреждает поражение тестикулярного аппарата цислатином - [79].
Сок грейфрута предупреждает поражение почечной ткани и тестикул аминодароном - [76; 74].
Корень имбиря предупреждает поражение тестикулярного аппарата гентамицином - [94].
Прием корня имбиря предупреждает поражение тестикулярного аппарата солями свинца - [68] и алюминием хлоридом - [59].
Экстракты листьев инжира предупреждают поражение и развитие оксидативного напряжения в тестикулярном аппарате под воздействием формальдегида - [60].
Экспериментальные исследования показали, что водные экстракты якорцов предупреждают поражение сперматозоидов метринадозолом - [52].
Экстракты коленницы предупреждают поражение тестикулярного аппарат препаратом Алоклор 1260 - [21].
Куркумин предупреждает поражение тестикулярного аппарата, под воздействием дексаметазона - [51].
Экспериментальные исследования показали, что экстракты мальвы предупреждают поражение миокардиоцитов, клетки почек и тестикулярного аппарата от токсического воздействия лития карбоната - [26; 71]. Экстракты якорцов предупреждают поражение тестикулярного аппарата при воздействие вальпроата натрия - [82].
Экстракты листьев белой шелковицы защищают тестикулярный аппарат от поражения, повышают продукцию тестостерона при сахарном диабете 2 типа - [37]. Прием корицы и имбирного корня, экстрактов семян сумаха предупреждает поражение тестикулярного аппарата при сахарном диабете - [83; 35; 49; 14].
Экспериментальные исследования показали, что прием экстрактов чаги предупреждает поражение тестикулярного аппарата под воздействием микроволн - [97]. Листья мяты защищают тестикулярную ткань от разрушающего действия радиации - [78]. Абрикосовая диета защищает сперматозоиды от губительного воздействия рентгеновского облучения - [89].
Список литературы:
1. Баныра О.Б., Строй A.A. Аспекты использования экстракта Tribulus terrestris в практике врача-уролога - Здоровье мужчины 2014, 49, 2, 16.
2. Вайнбойер Дж.Ф., Громолл Дж., Симонии М. Физиология мужских половых желез - Андрология. Мужское здоровье и дисфункция репродуктивной системы: пер. с англ. М.: Медицинское информационное агентство, 2005, Гл. 3, 29-74.
3. Глыбочко В.П. Практическая урология М. Медфорум, 2012. 309 с.
4. Калиниченко С.Ю. Практическая андрология М. Практическая медицина, 2009. - 162 с.
5. Кароматов И.Д. Простые лекарственные средства Бухара
2012
6. Кароматов И.Д., Абдувохидов А.Т. Лечебные свойства косточек винограда и виноградного масла (обзор литературы) -Электронный научный журнал «Биология и интегративная медицина» 2018, 1 (январь).
7. Кароматов И.Д., Абдуллаева Д.А. Лечебное и профилактическое значение лимона - Биология и интегративная медицина 2017, 6.
8. Кароматов И.Д., Рахматова С.Н. Артишок как лечебное средство (обзор литературы) - Биология и интегративная медицина 2016, 1.
9. Купер Т.Г. Физиология созревания сперматозоидов и оплодотворение - Андрология. Мужское здоровье и дисфункция репродуктивной системы: пер. с англ. М. Медицинское информационное агентство, 2005. - Гл. 4. - С. 75-98.
10. Литвинець С.А., Сандурський О.П. ОцЫка ефективносл лкування хворих на хроычний бактерiальний простатит та екскреторно-токсичне безплщдя - Актуальн проблеми сучасноТ медицини: Вюник УкраТнськоТ МедичноТ Стоматолопчно'Т Академп 2013, 13, 4 (44), 47-50.
11. Мирский В., Рищук С. Заболевания репродуктивной системы у детей и подростков (андрологические аспекты). - Litres, 2017.
12. Тиктинский О.Л. Андрология М. Медиа Пресс, 1999. - 398 с
13. Хеффнер Л. Половая система в норме и патологии М. : ГЭОТАР-МЕД, 2003. - 38 с.
14. Abd El-Aziz G.S., El-Fark M.O., Hamdy R.M. Protective effect of Eruca sativa seed oil against oral nicotine induced testicular damage in rats - Tissue. Cell. 2016, May 26.
15. Abdel-Kawi S.H., Hashem K.S., Abd-Allah S. Mechanism of diethylhexylphthalate (DEHP) induced testicular damage and of grape seed extract-induced protection in the rat - Food Chem. Toxicol. 2016, Apr., 90, 64-75.
16. Ahangarpour A., Oroojan A.A., Heidari H., Ghaedi E., Taherkhani R. Effects of Hydro-alcoholic Extract from Arctium lappa L. (Burdock) Root on Gonadotropins, Testosterone, and Sperm Count and Viability in Male Mice with Nicotinamide/ Streptozotocin-Induced Type 2 Diabetes -Malays. J. Med. Sci. 2015, Mar-Apr., 22(2), 25-32.
17. Ahangarpour A., Oroojan A.A., Radan M. Effect of aqueous and hydro-alcoholic extracts of lettuce (Lactuca sativa) seed on testosterone level and spermatogenesis in NMRI mice - Iran. J. Reprod. Med. 2014, Jan., 12(1), 65-72.
18. Akour A., Kasabri V., Afifi F.U., Bulatova N. The use of medicinal herbs in gynecological and pregnancy-related disorders by Jordanian
women: a review of folkloric practice vs. evidence-based pharmacology -Pharm. Biol. 2016, Sep., 54(9), 1901-1918.
19. Alabi A.S., Omotoso G.O., Enaibe B.U., Akinola O.B., Tagoe C.N. Beneficial effects of low dose Musa paradisiaca on the semen quality of male Wistar rats - Niger. Med. J. 2013, 54(2), 92-95.
20. Alkhedaide A., Alshehri Z.S., Sabry A., Abdel-Ghaffar T., Soliman M.M., Attia H. Protective effect of grape seed extract against cadmium-induced testicular dysfunction - Mol. Med. Rep. 2016, Feb 23.
21. Aly H.A., Alahdal A.M., Nagy A.A., Abdallah H.M., Abdel-Sattar E.A., Azhar A.S. Lipoic acid and Calligonum comosumon attenuate aroclor 1260-induced testicular toxicity in adult rats - Environ. Toxicol. 2016, Sep 1.
22. Arafa M.H., Mohammad N.S., Atteia H.H. Fenugreek seed powder mitigates cadmium-induced testicular damage and hepatotoxicity in male rats - Exp. Toxicol. Pathol. 2014, Sep., 66(7), 293-300. doi: 10.1016/j.etp.2014.04.001.
23. Asadmobini A., Bakhtiari M., Khaleghi S., Esmaeili F., Mostafaei A. The effect of Tribulus terrestris extract on motility and viability of human sperms after cryopreservation - Cryobiology. 2017, Apr., 75, 154-159.
24. Ashamu E., Salawu E., Oyewo O., Alhassan A., Alamu O., Adegoke A. Efficacy of vitamin C and ethanolic extract of Sesamum indicum in promoting fertility in male Wistar rats - J. Hum. Reprod. Sci. 2010, Jan., 3(1), 11-14.
25. Bayatli F., Akku§ D., Kilic E., Saraymen R., Sonmez M.F. The protective effects of grape seed extract on MDA, AOPP, apoptosis and eNOS expression in testicular torsion: an experimental study - World J. Urol. 2013, Jun., 31(3), 615-622.
26. Ben Saad A., Rjeibi I., Brahmi D., Smida A., Ncib S., Zouari N., Zourgui L. Malva sylvestris extract protects upon lithium carbonate-induced kidney damages in male rat - Biomed. Pharmacother. 2016, Dec., 84, 1099-1107.
27. Capece M., Romeo G., Ruffo A., Romis L., Mordente S., Di Lauro G. A phytotherapic approach to reduce sperm DNA fragmentation in patients with male infertility - Urologia. 2017, Apr 28, 84(2), 79-82.
28. Chae M.R., Kang S.J., Lee K.P., Choi B.R., Kim H.K., Park J.K., Kim C.Y., Lee S.W. Onion (Allium cepa L.) peel extract (OPE) regulates human sperm motility via protein kinase C-mediated activation of the human voltage-gated proton channel - Andrology. 2017, Sep., 5(5), 979-989.
29. Chakraborty D., Verma R. Spermatotoxic effect of ochratoxin and its amelioration by Emblica officinalis aqueous extract - Acta Pol. Pharm. 2009, Nov-Dec., 66(6), 689-695.
30. Delaware E.M., Felius B., Delemarre-van de Waal H.A. Inducing puberty - Eur. J. Endocrinol. 2008, 159, 1, S9-S15.
31. Elberry A.A., Mufti S., Al-Maghrabi J., Abdel Sattar E., Ghareib S.A., Mosli H.A., Gabr S.A. Immunomodulatory effect of red onion (Allium cepa Linn) scale extract on experimentally induced atypical prostatic hyperplasia in Wistar rats - Mediators Inflamm. 2014, 2014, 640746.
32. El-Kashlan A.M., Nooh M.M., Hassan W.A., Rizk S.M. Therapeutic Potential of Date Palm Pollen for Testicular Dysfunction Induced by Thyroid Disorders in Male Rats - PLoS One. 2015, Oct 1, 10(10), e0139493.
33. El-Neweshy M.S., El-Maddawy Z.K., El-Sayed Y.S. Therapeutic effects of date palm (Phoenix dactylifera L.) pollen extract on cadmium-induced testicular toxicity - Andrologia. 2013, Dec., 45(6), 369-378.
34. Fallahi S., Rajaei M., Malekzadeh K., Kalantar S.M. Would Phoenix Dactyflera Pollen (palm seed) be considered as a treatment agent against Males' infertility? A systematic review - Electron. Physician. 2015, Dec 20, 7(8), 1590-1596.
35. Ghlissi Z., Atheymen R., Boujbiha M.A., Sahnoun Z., Makni Ayedi F., Zeghal K., El Feki A., Hakim A. Antioxidant and androgenic effects of dietary ginger on reproductive function of male diabetic rats - Int. J. Food Sci. Nutr. 2013, Dec., 64(8), 974-978.
36. Gurel E., Caner M., Bayraktar L., Yilmazer N., Dogruman H., Demirci C. Effects of artichoke extract supplementation on gonads of cadmium-treated rats - Biol. Trace Elem. Res. 2007, Oct., 119(1), 51-59.
37. Hajizadeh M.R., Eftekhar E., Zal F., Jafarian A., Mostafavi-Pour Z. Mulberry leaf extract attenuates oxidative stress-mediated testosterone depletion in streptozotocin-induced diabetic rats - Iran. J. Med. Sci. 2014, Mar., 39(2), 123-129.
38. Hamed A.I., Ben Said R., Al-Ayed A.S., Moldoch J., Mahalel U.A., Mahmoud A.M., Elgebaly H.A., Perez A.J., Stochmal A. Fingerprinting of strong spermatogenesis steroidal saponins in male flowers of Phoenix dactylifera (Date Palm) by LC-ESI-MS - Nat. Prod. Res. 2017, Jan 4, 1-8.
39. Hamza A.A., Elwy H.M., Badawi A.M. Fenugreek seed extract attenuates cisplatin-induced testicular damage in Wistar rats -Andrologia 2016, Mar., 48(2), 211-221. doi: 10.1111/and.12435.
40. Hassan H.A., Isa A.M., El-Kholy W.M., Nour S.E. Testicular disorders induced by plant growth regulators: cellular protection with proanthocyanidins grape seeds extract - Cytotechnology 2013, Oct., 65(5), 851-862.
41. Hegazy M.G., Emam M.A. Ethanolic extract of Trigonella Foenum Graecum attenuates cisplatin-induced nephro- and hepatotoxicities in rats - Cell. Mol. Biol. (Noisy-le-grand). 2015, Nov 25, 61(7), 81-87.
42. Hou F., Xiao M., Li J., Cook D.W., Zeng W., Zhang C., Mi Y. Ameliorative effect of grape seed proanthocyanidin extract on cadmium-
induced meiosis inhibition during oogenesis in chicken embryos - Anat. Rec. (Hoboken). 2016, Jan 21.
43. Ige S.F., Olaleye S.B., Akhigbe R.E., Akanbi T.A., Oyekunle O.A., Udoh U.A. Testicular toxicity and sperm quality following cadmium exposure in rats: Ameliorative potentials of Allium cepa - J. Hum. Reprod. Sci. 2012, Jan., 5(1), 37-42.
44. Ige S.F., Salawu E.O., Olaleye S.B., Adeeyo O.A., Badmus J., Adeleke A.A. Onion (Allium cepa) extract prevents cadmium induced renal dysfunction - Indian. J. Nephrol. 2009, 19(4), 140-144.
45. Jahromi M.A., Mansoureh M., Zohreh M., Masoud A., Mowla S.J., Batooli H. Evaluating the effects of Escanbil (Calligonum) extract on the expression level of Catsper gene variants and sperm motility in aging male mice - Iran J Reprod Med. 2014 Jul; 12(7), 459-466.
46. Jalili C., Salahshoor M.R., Naseri A. Protective effect of Urtica dioica L against nicotine-induced damage on sperm parameters, testosterone and testis tissue in mice - Iran. J. Reprod. Med. 2014, Jun., 12(6), 401-408.
47. Kaya K., Ciftci O., Cetin A., Dogan H., Ba§ak N. Hesperidin protects testicular and spermatological damages induced by cisplatin in rats - Andrologia. 2015, Sep., 47(7), 793-800.
48. Khaki A. Effect of Cinnamomum zeylanicumon on Spermatogenesis - Iran Red. Crescent. Med. J. 2015, Feb 21, 17(2), e18668.
49. Khaki A., Khaki A.A., Hajhosseini L., Golzar F.S., Ainehchi N. The anti-oxidant effects of ginger and cinnamon on spermatogenesis dysfunction of diabetes rats - Afr. J. Tradit. Complement. Al-tern. Med. 2014, Jun 4, 11(4), 1-8.
50. Khaleghi S., Bakhtiari M., Asadmobini A., Esmaeili F. Tribulus terrestris Extract Improves Human Sperm Parameters In Vitro - J. Evid. Based Complementary Altern. Med. 2016, Sep 30.
51. Khorsandi L., Mirhoseini M., Mohamadpour M., Orazizadeh M., Khaghani S. Effect of curcumin on dexamethasone-induced testicular toxicity in mice - Pharm. Biol. 2013, Feb., 51(2), 206-212.
52. Kumari M., Singh P. Tribulus terrestris ameliorates metronidazole-induced spermatogenic inhibition and testicular oxidative stress in the laboratory mouse - Indian. J. Pharmacol. 2015, May-Jun., 47(3), 304-310.
53. Lamas C.A., Gollucke A.P., Dolder H. Grape juice concentrate (G8000(®)) intake mitigates testicular morphological and ultrastructural damage following cadmium intoxication - Int. J. Exp. Pathol. 2015, Oct., 96(5), 301-310.
54. Mahaldashtian M., Makoolati Z., Ghorbanian M.T., Naghdi M., Kouhpayeh S.A. In vitro cytotoxicity effects of date palm (Phoenix dactylifera L.) pollen on neonate mouse spermatogonial stem cells - Nat. Prod. Res. 2015, 29(6), 578-581.
55. Mahaldashtian M., Naghdi M., Ghorbanian M.T., Makoolati Z., Movahedin M., Mohamadi S.M. In vitro effects of date palm (Phoenix dactylifera L.) pollen on colonization of neonate mouse spermatogonial stem cells - J. Ethnopharmacol. 2016, Jun 20, 186, 362-368.
56. Mancini-Filho J., Van-Koiij A., Mancini D.A., Cozzolino F.F., Torres R.P. Antioxidant activity of cinnamon (Cinnamomum Zeylanicum, Breyne) extracts - Boll. Chim. Farm. 1998, 11, 443-447.
57. Mojica-Villegas M.A., Izquierdo-Vega J.A., Chamorro-Cevallos G., Sánchez-Gutiérrez M. Protective effect of resveratrol on biomarkers of oxidative stress induced by iron/ascorbate in mouse spermatozoa -Nutrients 2014, Jan 27, 6(2), 489-503.
58. Monton A., Gil L., Malo C., Olaciregui M., Gonzalez N., de Blas I. Sage (Salvia officinalis) and fennel (Foeniculum vulgare) improve cryopreserved boar epididymal semen quality study - Cryo Letters. 2015, Mar-Apr., 36(2), 83-90.
59. Moselhy W.A., Helmy N.A., Abdel-Halim B.R., Nabil T.M., AbdelHamid M.I. Role of ginger aga-inst the reproductive toxicity of aluminium chloride in albino male rats - Reprod. Domest. Anim. 2012, Apr., 47(2), 335-343.
60. Naghdi M., Maghbool M., Seifalah-Zade M., Mahaldashtian M., Makoolati Z., Kouhpayeh S.A., Ghasemi A., Fereydouni N. Effects of Common Fig (Ficus carica) Leaf Extracts on Sperm Parameters and Testis of Mice Intoxicated with Formaldehyde - Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2016, 2016, 2539127.
61. Noohizadeh Z., Parivar K., Hayati R.N. The effects of malva sylvestris leaves on sperm and spermatogenesis of the C-57 mice -Journal of animal biology 2015, winter, 7, 2, 81-88.
62. Ola-Mudathir F.K., Suru S.M. Onion and garlic extracts as potential antidotes for cadmium-induced biochemical alterations in prostate glands of rats - Andrologia. 2015, Nov., 47(9), 1075-1082.
63. Ola-Mudathir K.F., Suru S.M., Fafunso M.A., Obioha U.E., Faremi T.Y. Protective roles of onion and garlic extracts on cadmium-induced changes in sperm characteristics and testicular oxidative damage in rats - Food Chem. Toxicol. 2008, Dec., 46(12), 3604-3611.
64. Pires V.C., Gollücke A.P., Ribeiro D.A., Lungato L., D'Almeida V., Aguiar O. Jr. Grape juice con-centrate protects reproductive parameters of male rats against cadmium-induced damage: a chronic assay -Br. J. Nutr. 2013, Dec 14.
65. Quita S.M. Evaluation of lemon fruit extract as an antioxidant agent against histopathological changes induced by cyclophosphamide in the testes of albino mice - Electron. Physician. 2016, Jan 15, 8(1), 18241831.
66. Quita S.M., Balbaid S.O. The protective effect of lemon fruit extract on histopathological changes induced in small intestines and
pancreas of male mice by cyclophosphamide - Electron. Physician. 2015, Oct 19, 7(6), 1412-1422.
67. Rasekh A., Jashni H.K., Rahmanian K., Jahromi A.S. Effect of Palm Pollen on Sperm Parameters of Infertile Man - Pak. J. Biol. Sci. 2015, Apr., 18(4), 196-199.
68. Riaz F., Khan U.A., Ayub M., Shaukat S. Protective role of ginger on lead induced derangement in plasma testosterone and luteinizing hormone levels of male Sprague Dawley rats - J. Ayub. Med. Coll. Abbottabad. 2011, Oct-Dec., 23(4), 24-27.
69. Roaiah M.F., Elkhayat Y.I., Saleh S.F., Abd El Salam M.A. Prospective Analysis on the Effect of Botanical Medicine (Tribulus terrestris) on Serum Testosterone Level and Semen Parameters in Males with Unexplained Infertility - J. Diet. Suppl. 2016, Jun 23, 1-7.
70. Russo A., Troncoso N., Sanchez F., Garbarino J.A., Vanella A. Propolis protects human sperma-tozoa from DNA damage caused by benzo[a]pyrene and exogenous reactive oxygen species - Life Sci. 2006, Feb 23, 78(13), 1401-1406.
71. Saad A.B., Rjeibi I., Alimi H., Ncib S., Smida A., Zouari N., Zourgui L. Lithium induced, oxidative stress and related damages in testes and heart in male rats: The protective effects of Malva sylvestris extract -Biomed. Pharmacother. 2017, Feb., 86, 127-135.
72. Sadik N.A. Effects of diallyl sulfide and zinc on testicular steroidogenesis in cadmium-treated male rats - J. Biochem. Mol. Toxicol. 2008, Sep., 22(5), 345-353.
73. Saeed K., Tahir M., Lone K.P. Effect of phoenix dactyliferia (date palm) pit powder on nicotine induced spermatotoxicty in adult albino mice - J. Pak. Med. Assoc. 2015, Jan., 65(1), 43-48.
74. Sakr S.A., El-Gamal E.M. Effect of grapefruit juice on amiodarone induced nephrotoxicity in albino rats - Toxicol. Ind. Health. 2016, Jan., 32(1), 68-75.
75. Sakr S.A., Nooh H.Z. Effect of Ocimum basilicum extract on cadmium-induced testicular histomorphometric and immunohistochemical alterations in albino rats - Anat. Cell. Biol. 2013, Jun., 46(2), 122-130.
76. Sakr S.A., Zoil Mel-S., El-Shafey S.S. Ameliorative effect of grapefruit juice on amiodarone-induced cytogenetic and testicular damage in albino rats - Asian. Pac. J. Trop. Biomed. 2013, Jul., 3(7), 573-579.
77. Salgado R.M., Marques-Silva M.H., Gonçalves E., Mathias A.C., Aguiar J.G., Wolff P. Effect of oral administration of Tribulus terrestris extract on semen quality and body fat index of infertile men -Andrologia. 2017, Jun., 49(5).
78. Samarth R.M., Samarth M. Protection against radiation-induced testicular damage in Swiss albi-no mice by Mentha piperita(Linn.) - Basic. Clin. Pharmacol. Toxicol. 2009, Apr., 104(4), 329-334.
79. Sarai S., Ozcelik E., Cetin A., Sarai O., Basak N., Aydin M., Ciftci O. Protective role of Diospyros lotus on cisplatin-induced changes in sperm characteristics, testicular damage and oxidative stress in rats -Andrologia. 2016, Apr., 48(3), 308-317. doi: 10.1111/and.12448.
80. Sariözkan S., Türk G., Güveng M., Yüce A., Özdamar S., Cantürk F., Yay A.H. Effects of Cinnamon (C. zeylanicum) Bark Oil Against Taxanes-Induced Damages in Sperm Quality, Testicular and Epididymal Oxidant/Antioxidant Balance, Testicular Apoptosis, and Sperm DNA Integrity - Nutr. Cancer. 2016, 68(3), 481-494.
81. Sellandi T.M., Thakar A.B., Baghel M.S. Clinical study of Tribulus terrestris Linn. in Oligozoospermia: A double blind study - Ayu. 2012, Jul., 33(3), 356-364.
82. Shalaby M.A., Hammouda A.A. Assessment of protective and anti-oxidant properties of Tribulus terrestris fruits against testicular toxicity in rats - J. Intercult. Ethnopharmacol. 2014, Jul-Sep., 3(3), 113-118.
83. Shalaby M.A., Hamowieh A.R. Safety and efficacy of Zingiber officinale roots on fertility of male diabetic rats - Food Chem. Toxicol. 2010, Oct., 48(10), 2920-2924.
84. Shang R., Zheng X.M., Xia Z.P., Zhang L., Zheng X.J. [Protective effect of grape seed proantho-cyanidin on spermatogenesis following testicular torsion/detorsion in mice] - Zhonghua Nan Ke Xue. 2013, May, 19(5), 409-413.
85. Simoni M., Tuttelmann F., Michel C. et al Polymorphisms of the luteinizing hormone/chorionic gonadotropic receptor gene: association with maldescended testes and male infertility - Pharmacogenet. Genomics. 2008, 18, 3, 193-200.
86. Sönmez M.F., Tascioglu S. Protective effects of grape seed extract on cadmium-induced testicular damage, apoptosis, and endothelial nitric oxide synthases expression in rats - Toxicol. Ind. Health. 2015, Jan 22.
87. Tahvilzadeh M., Hajimahmoodi M., Toliyat T., Karimi M., Rahimi R. An evidence-based approach to medicinal plants for the treatment of sperm abnormalities in traditional Persian medicine - Andrologia 2016, Oct., 48(8), 860-879.
88. Türk G., §im§ek Ü.G., Qeriba§i A.O., Qeriba§i S., Özer Kaya §., Güveng M., Qiftg M., Sönmez M., Yüce A., Bayrakdar A., Yaman M., Tonbak F. Effect of cinnamon (Cinnamomum zeylanicum) bark oil on heat stress-induced changes in sperm production, testicular lipid peroxidation, testicular apoptosis, and androgenic receptor density in developing Japanese quails - Theriogenology 2015, Aug., 84(3), 365-376.
89. Ugras M.Y., Kurus M., Ates B., Soylemez H., Otlu A., Yilmaz I. Prunus armeniaca L (apricot) protects rat testes from detrimental effects of low-dose x-rays - Nutr. Res. 2010, 30(3), 200-208.
90. Yakubu M.T., Oyeyipo T.O., Quadri A.L., Akanji M.A. Effects of aqueous extract of Musa paradesiaca root on testicular function parameters of male rats - J. Basic Clin. Physiol. Pharmacol. 2013, 24(2), 151-157.
91. Yüce A., Türk G., Çeribaçi S., Gûvenç M., Çiftçi M., Sönmez M., Özer Kaya §., Çay M., Aksakal M. Effectiveness of cinnamon (Cinnamomum zeylanicum) bark oil in the prevention of carbon tetrachloride-induced damages on the male reproductive system -Andrologia 2014, Apr., 46(3), 263-272.
92. Yüce A., Türk G., Ceribaçi S., Sönmez M., Ciftçi M., Gûvenç M. Effects of cinnamon (Cinnamo-mum zeylanicum) bark oil on testicular antioxidant values, apoptotic germ cell and sperm quality - Andrologia 2012, Aug 3.
93. Yüce A., Türk G., Çeribaçi S., Sönmez M., Çiftçi M., Gûvenç M. Effects of cinnamon (Cinnamomum zeylanicum) bark oil on testicular antioxidant values, apoptotic germ cell and sperm quality -Andrologia 2013, Aug., 45(4), 248-255.
94. Zahedi A., Fathiazad F., Khaki A., Ahmadnejad B. Protective effect of ginger on gentamicin-indu-ced apoptosis in testis of rats - Adv. Pharm. Bull. 2012, 2(2), 197-200.
95. Zarei L., Sadrkhanlou R., Shahrooz R., Malekinejad H., Eilkhanizadeh B., Ahmadi A. Protective effects of vitamin E and Cornus mas fruit extract on methotrexate-induced cytotoxicity in sperms of adult mice - Vet. Res. Forum. 2014, Winter, 5(1), 21-27.
96. Zarei L., Shahrooz R., Sadrkhanlou R., Malekinejad H., Ahmadi A., Bakhtiary Z. Protective effects of cornus mas extract on in vitro fertilization potential in methotrexate treated male mice - Vet. Res. Forum. 2015, Winter, 6(1), 55-61.
97. Zhao L.W., Zhong X.H., Sun Y.M., Yang S.Y., Shen N., Zhang Y.Z., Yang N.J., Ren K., Lu S.J. [Prevention of Inonotus obliquus polysaccharides for high power microwave radiation induced testicular injury in rats: an experimental research] - Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi. 2014, Jul., 34(7), 864-868.
