CC BY
88
Том 148, кн. 4
Естественные науки
2006
УДК 577.15.024.025.535.243
КООРДИНАЦИОННЫЕ СОЕДИНЕНИЯ ИНДУЦИРУЕМОЙ ПРОТЕИНАЗЫ CANDIDA ALBICANS С КАТИОНАМИ d-МЕТАЛЛОВ КАК РЕГУЛЯТОРЫ ФЕРМЕНТАТИВНОЙ АКТИВНОСТИ
Р.Р. Галимзанова, М.П. Кутырева, Н.А. Улахович, Н.И. Глушко, А.А. Иванова, Р.А. Черкасов, Н.Г. Забиров
Аннотация
Оценено влияние соединений ZnCI2, MnCI2 и Zn[i-BuNHC(S)NP(S)(OPr-i)2]2 (Zn*L2) на каталитическую активность индуцируемой протеиназы Candida albicans (SAP C. albicans). По данным электронной спектроскопии рассчитаны логарифмы значений констант устойчивости, которые составили для комплекса [Zn-SAP C. albicans] -4.73 ± 0.20, [Mn - SAP C. albicans] - 7.02 ± 0.02, [Zn* - SAP C. albicans] - 22.40 ± 0.02, состав и максимальные доли накопления для координационных форм [модулятор -SAP C. albicans]. Прочность и стехиометрический состав образующихся комплексных соединений SAP C. albicans с модуляторами также оценена с использованием метода Скэтчарда и Дюрантона. Константы аффинности взаимодействия в системах [ZnCI2 -SAP C. albicans] составили 1.78 ± 0.02-107 моль1, [MnCI2 - SAP C. albicans] -(7.95 ± 0.02)-107 моль-1 и [Zn*L2 - SAP C. albicans] - (3.24 ± 0.1)-108 моль1. Оценена каталитическая активность SAP C. albicans в присутствии соединений - модуляторов. В диапазоне концентраций 0.2-10-8 - 1-10"4 моль/л соединение Zn^-BuNHC^NHP^XOPr-i)^ оказывает ингибирующее действие на SAP C. albicans. Ингибирующее действие Znd2 в том же концентрационном диапазоне меньше в два раза, и при концентрации соли 5-10-7 моль/л переходит в эффект активации. В диапазоне концентраций 0.2-10-8 -1-10"2 моль/л Mna2 оказывает ингибирующее действие.
Введение
Патогенный для человека вид грибкового аллергена рода Candida поражает наружные покровы и внутренние органы, вызывая глубокие микозы - кандидо-зы, болезни слизистых и сепсис. Чаще всего именно C. albicans являются возбудителями 70-80% системных микозов и 12-15% микозов кожных покровов [1, 2]. Это связано как с суперантигенными способностями данного гриба, так и с количеством и многообразием функций вырабатываемых им секреторных аспарагиновых протеиназ (SAP C. albicans) [3, 4].
С 1992 по 2000 гг. выделены десять изоферментов аллергена C. albicans, которые составили систему внеклеточных секреторных аспарагиновых протеи-наз C. albicans. На рис. 1 изображена модель клеточной секреции системы про-теиназ C. albicans и аминокислотная последовательность индуцируемой протеиназы C. albicans [5-7].
Рис. 1. Структура и аминокислотная последовательность секреторной аспарагиновой протеиназы. (Для наглядности а-спиральные участки представлены в виде цилиндров. Р-складки - в виде лент со стрелкой, указывающей направление цепи в складке от N-конца к С-концу)
В активном центре каждого фермента неизменно на расстоянии водородной связи друг от друга находятся два депротонированных остатка аспарагиновой кислоты (Asp32-Asp218), действующих совместно по отношению к входящим молекулам субстрата, осуществляя разрыв пептидной связи. Жестко зафиксированные остатки цистеина удерживают третичную структуру протеиназы [5]. Кроме активного центра в ферменте, существуют еще два координационно-активных участка. Это - Asp57, отвечающий за связывание металлов с ферментом, и Tyr84 - Asp85, формирующие конформационный центр фермента [6]. Тем не менее, вопрос о регуляции каталитической активности системы SAP C. albicans остается открытым и является актуальным и интересным для химических исследований.
Объектом исследований является индуцируемая SAP C. albicans, обладающая антигенными свойствами. Ее высокая каталитическая активность и широкая субстратная специфичность приводят к многофункциональности данного фермента и его активному влиянию на жизнедеятельность организма [4, 8, 9].
Целью настоящего исследования является определение параметров каталитического действия индуцируемой SAP C. albicans в системе [фермент - субстрат - модулятор]. В качестве модуляторов каталитической активности фермента выбраны соединения d-металлов - цинка и марганца. Регуляция каталитической активности ферментов является одним из актуальных вопросов, касающихся изучения биоспецифических реакций. В настоящее время соединения Zn (II) входят в состав ряда антимикотических препаратов [10, 11]. Это связано с его окислительно-восстановительной стабильностью в биологических средах, потенциал которых постоянно изменяется. Однако действие данных препаратов описано только для грибковых культур и с позиций медицинской диагностики и клинических испытаний [12]. Химические аспекты координационных взаимодействий соединений Zn (II) с SAP C. albicans как первопричиной инфекции изучены недостаточно.
1. Методика
В работе использовали SAP C. albicans, выделенную из надосадочной жидкости при выращивании патогенных грибковых микроорганизмов C. albicans, с последующим центрифугированием биомассы и переосаждением этанолом по оригинальной методике, разработанной в лаборатории по разработке грибковых аллергенов Казанского НИИ эпидемиологии и микробиологии.
Исходный антиген C. albicans получен центрифугированием биомассы гриба C. albicans, выращенного в течение 48 ч при 30°С. Молекулярную массу SAP C. albicans определяли методом электрофореза. Гель-электрофорез в присутствии додецилсульфата натрия (Ds-Na) в денатурирующих условиях при 100°С проводили на установке АВГЭ-1 р/к «Хийу калур» (Эстония) в 4.5 и 9% полиакриламидном геле при pH 8.3. Нагрузка белка - метчика на одну дорожку - составляла 20 мкг, нагрузка SAP - 30-50 мкг. Электрофорез проводили при 20°С в течение 90 мин. при силе тока 45 мА. Гели окрашивали в течение 30 мин. в растворе кумасси бриллиантовый голубой G-250 и отмывали в течение суток в растворе 5% уксусной кислоты. Молекулярная масса выделяемого фермента составила 53.68 кДа.
Концентрацию лиофилизированной формы фермента (7.26-10-6 моль/л) определяли исходя из его подобности к антигену C. albicans методом циклической вольтамперометрии с помощью иммуноферментного сенсора на основе иммобилизованной холинэстеразы и антител к антигену C. albicans [13].
Растворы ZnCI2 и MnCI2 с концентрацией 1-10-9 - 110-1 моль/л готовили из соответствующих хлоридов марки «ч.д.а.» методом последовательного разбавления. Водные растворы лиганда i-BuNHC(S)NP(S)(OPr-i)2 и его комплекса Zn[i-BuNHC(S)NP(S)(OPr-i)2]2 готовили путем их растворения в малом количестве изопропанола и бидистиллированной воде. Методика синтеза, спектральные и количественные характеристики данных соединений описаны в работах [14, 15].
В качестве субстрата использовали сывороточный альбумин человека (САЧ) (95%, Mm = 65 кДа), приготовленный из препарата марки "Reanal" (Венгрия). Растворы САЧ получали растворением точной навески в бидистил-лированной воде. Исходная концентрация САЧ составила 1.54-10-3 моль/л. В работе использовали цитратные (рН = 1.08-4.8) и фосфатные (рН = 5.4-8.0) буферные растворы, приготовленные по стандартным методикам из реактивов марки ч.д.а.
Электронные спектры поглощения снимали на спектрофотометре HITACHI U-2000 в области длин волн 190-600 нм. Измерения проводили в кварцевых кюветах толщиной 1 и 5 см с точность измерения оптической плотности (А) ± 1%. Молярные коэффициенты экстинкции растворов (ед) при нескольких длинах волн рассчитывали по соотношению:
ел= (A - Л)/cLl, (1)
где А и А0 - оптические плотности растворителя в присутствии и отсутствие реагентов соответственно, cL - концентрация изучаемого реагента.
рН измеряли прибором - рН 150 М с точностью 0.01 логарифмической единицы.
Каждый эксперимент повторяли не менее чем в трех отдельных опытах. При построении графиков использовали усредненные величины, определенные из трех - пяти измерений.
2. Обработка данных
2.1. Обработка результатов спектрофотометрических исследований.
Обработка результатов спектрофотометрических исследований для расчета состава и констант равновесия и образования комплексов проводилась в соответствии с программой CPESSP [16]. Использовали зависимости оптической плотности растворов от концентрации металла при постоянной концентрации комплексообразующего реагента. На основе рассчитанных степеней накопления комплексов (а) из электронных спектров поглощения различного состава с помощью программы Excel 2000 были построены графики накопления всех значимых форм изучаемых комплексов. Работа программы основана на минимизации целевой функции F при выбранной стехиометрии равновесия:
n (A . - A . )2
^ V з^пJ расчJ )
F = -2 , <2)
A
где Аэксп . и Арасч . - экспериментально измеренная и рассчитанная величины
оптической плотности раствора соответственно; ] и N - номер и количество экспериментов; а- относительная погрешность измерения А. С помощью программы СРЕ88Р оценка достоверности полученных результатов проводится по критерию Фишера, исходя из величин а и найденного значения Fmln.
2.2. Определение протеолитической активности. Активность фермента определяли в стандартных условиях по увеличению скорости каталитической реакции по сравнению с некаталитической. Скорость реакции указывали как изменение концентрации субстрата за единицу времени [17, с. 77].
2.3. Определение констант связывания (метод Скэтчарда). Для определения прочности связывания фермента с субстратом необходимо знать эффективные значения констант связывания (КА), характеризующих свойства используемых ферментов. КА можно представить в следующем виде:
Ка = X/(А0 -X)(В0 -X) (3)
или
X/( Ао - X) = КАВ0 - КАХ, (4)
где Х - равновесная концентрация фермент-субстратного комплекса, А0 - общая концентрация субстрата в системе, В0 - рабочая концентрация субстрата в системе, X/(А0 - X) - отношение концентраций связанного и свободного субстрата.
Рис. 2. Определение стехиометрического состава для реакции SAP C. albicans - САЧ (рН = 4.5, CSAP = 1.91-10-9 моль/л, t= 20 мин., ХСАЧ = 278 нм)
KA определяли, используя зависимость Xj(AO — X) от Х, известную как
график Скэтчарда и представляющую собой прямую линию с тангенсом угла наклона, равным KA, и пересекающую горизонтальную ось координат в точке соответствующей В0 [18, с. 351; 19].
2.4. Определение стехиометрического состава взаимодействий. Сте-хиометрический состав взаимодействий модулятора с SAP C. albicans определяли методом, предложенным Дюрантоном, измеряя остаточную ферментативную активность при разных концентрациях модулятора и постоянной концентрации фермента [20]. Строили зависимость ферментативной активности от соотношения концентраций CSAP / ССАЧ. Затем экстраполяцией линейного участка определяли точку эквивалентности и по ней оценивали стехиометриче-ский состав процесса взаимодействия фермент - модулятор (рис. 2).
3. Результаты и их обсуждения
Оценка параметров каталитического действия индуцируемой SAP в системе [протеиназа SAP C. albicans - субстрат - модулятор] представляет собой сложную комплексную задачу. Первым этапом данной работы являлось рассмотрение взаимодействий протеиназы SAP C. albicans с субстратом. Для оценки константы связывания в системе [протеиназа (SAP C. albicans) - альбумин (САЧ)] использовано представление данных в координатах Скэтчарда. График Скэтчарда (рис. 3) свидетельствует о наличии в ферменте одного участка связывания с субстратом.
Константа связывания, стехиометрический состав взаимодействий и оптимальные условия ферментативного протеолиза САЧ с участием SAP C. albicans представлены в табл. 1.
Рис. 3. График Скэтчарда для нахождения констант связывания фермент - субстратного комплекса (С8АР = 1.91-10-9 моль/л, рН = 4.5)
Табл. 1
Параметры взаимодействия в системе [SAP C. albicans - САЧ]
KA, моль 1 Стехиометр. состав С* г/мл CsAP, моль/л рН t, мин. Активность, мг/мл-ч
(3.43 ± 0.02)-105 1 : 25 0.003 2.33-10-6 4.5 25 6.86
На втором этапе работы оценено взаимодействие SAP C. albicans с модуляторами (ZnCl2, MnCl2 и Zn*L2). Для определения устойчивости и максимальных долей накопления значимых комплексных форм в растворах протеиназа - модулятор использовали метод сдвига равновесий с обработкой данных спектро-фотометрических исследований методом математического моделирования. В электронных спектрах поглощения растворов SAP C. albicans, наблюдаются полосы поглощения при 210 и 278 нм. Введение в раствор, содержащий SAP C. albicans, ZnCI2, МпС12 или хелатного комплекса Zn*L2 приводит к изменению спектральной картины исходных соединений и появлению новых полос поглощения, интенсивность которых зависит от концентрации вводимых в раствор SAP C. albicans эффекторов (рис. 4, 5).
Следует отметить, что полоса поглощения соединения Zn*L2 полностью исчезает при рН = 4.01, что соответствует рК аспарагиновой кислоты, входящей в активный центр фермента (рис. 6).
По данным электронной спектроскопии рассчитаны логарифмы значений констант устойчивости, состав и максимальные доли накопления, количество участков специфического связывания (n), константы аффинности (KA) и сте-хиометрический состав взаимодействий в образующихся системах [протеиназа SAP C. albicans - модулятор] координационных форм (табл. 2).
1 • I ■ I-■-I •-1
200 250 300 350 400
/ Н <"
Рис. 4. Электронные спектры поглощения SAP C. albicans в концентрации 1.91-10-9 моль/л, SAP C. albicans и растворов ZnCl2 в концентрации 2-10-4 моль/л и MnQ2 в концентрации 3-10-7 моль/л в цитратном буферном растворе pH = 4.5
Za*L
2Ю 220 240 260 200 МО
\ нм
Рис. 5. Электронные спектры поглощения SAP C. albicans в концентрации 1.91-10"9 моль/л (1), SAP C. albicans и растворов Zn*L2 в концентрации 1-10-8 моль/л (2) и в концентрации 1-10-7 моль/л (3) в цитратном буферном растворе pH = 4.5
Табл. 2
Характеристические параметры координационных систем [ZnCI2 - SAP], [MnCI2 -SAP] и [Zn*L2 - SAP] в растворе
Макси-
Состав мальные Стехио-
Соединение lg ß доли на- KA, моль 1 n метр.
копления (а), % состав
[Zn - SAP] 4.73 ± 0.02 1 : 1 96.4 ± 0.1 (1.78 ± 0.02)-107 1 1 : 1
[Mn - SAP] 7.02 ± 0.20 1 : 1 39.4 ± 0.1 (7.95 ± 0.02)-107 1 1 : 1
[Zn* - SAP] 17.59 ± 0.02 3 : 1 73.6 ± 0.1 (1.12 ± 0.04)-107
22.42 ± 0.02 4 : 1 58.2 ± 0.1 (3.24 ± 0.01)-108 (7.04 ± 0.03)-106 3 3.5 : 1
При взаимодействии индуцируемой SAP C. albicans с хлоридами цинка или марганца происходит координация иона металла с кислородом депротонирован-ного при рН 4.5 Asp57 с образованием комплекса 1 : 1. Вид графиков Скэтчарда, описывающих взаимодействия хлоридов цинка или марганца с протеиназой, также указывает на наличие только одного участка в составе молекулы фермента, специфично взаимодействующего с катионами металлов (рис. 7, а, б).
При взаимодействии SAP C. albicans с хелатом ZnL2 при рН = 4.5 наряду с депротонированием аспарагиновой кислоты протекает процесс протониро-вания лиганда, на что указывает появление полосы поглощения свободного ¿-Ви1ЧНС^)]ЧНР^)(ОРг-02 при X = 257.5 нм (рис. 6).
Данные математического моделирования свидетельствуют о существовании двух комплексных форм состава 3 : 1 в результате координации модулятора с кислородом Asp57 (центр связывания с металлами) и Asp32 и 218 (активный центр фермента) и 4 : 1 при высоких концентрациях хелата с участием во взаимодействии конформационного центра. Данные, полученные в координатах Скэтчарда, подтверждают, что взаимодействие с хелатным комплексом идет по трем специфическим участкам фермента с различными константами аффинности. Лиганд в данном случае может служить транспортом ионов цинка к ферменту. И общую схему координационных взаимодействий с участием Zn*L2 можно представить в следующем виде:
ZnL2 + SAP C. albicans ^ [SAP C. albicans - Zn*(II)] + 2HL.
Оценена ферментативная активность индуцируемой SAP C. albicans в присутствии соединений - модуляторов в различных концентрациях в оптимальных условиях ферментативного гидролиза. Установлено, что в присутствии хлорида цинка наблюдается эффект ингибирования в диапазоне концентраций 110-4 - 1-10-6 и 1 • 10-7 - 1-10-8 моль/л и эффект активации при концентрации 5-10- моль/л. В присутствии хелатного комплекса цинка наблюдается эффект ингибирования в диапазоне концентраций 1-10 - 5-10- моль/л. В присутствии
130-1 120 -110 100 -90 80 70 SO 50 40 30 20
a)
ZnCb-SAP MnCli-SAP
10
1.5
2.0 2.5
ХхЮ , моль/л
30 3.5
1.6-,
1.2-
< 1.0-
0.6-
ХхЮ. моль/л
Рис. 7. Зависимость Скэтчарда, описывающая связывание: а - [ZnCI2 - SAP C. albicans] (CZnCI2 = 4-10-8 моль/л) и [MnCl2 - SAP C. albicans] (CMnCi2 = 1-10"8 моль/л); б - [ZnL2 -SAP C. albicans] (CZn*L2 = 1-10"5 моль/л)
хлорида марганца наблюдается эффект ингибирования во всем диапазоне исследованных концентраций (рис. 8).
Следует отметить, что образование координационных соединений в системе [SAP C. albicans - Zn*L2] с более высокими значениями констант устойчивости, констант связывания и стехиометрией взаимодействия по сравнению с системой [SAP C. albicans - ZnCI2] сказывается на силе и характере эффектов, проявляемых данными модуляторами. Если в присутствии ZnCI2 эффект инги-бирования чередуется с эффектом активации, то в присутствии комплекса цинка с тиофосфорилтиомочевиной наблюдается только эффект ингибирования. Значительный эффект ингибирования в присутствии хлорида марганца обусловлен большей поляризуемостью и токсичностью данного металла для фермента. Кроме того, возможно образование прочных координационных соединений фермента с Mn (III).
SAP-ZnCI
SAP-Zn*L-
Рис. 8. Зависимость ферментативной активности SAP C. albicans по отношению к САЧ в присутствии модуляторов ZnCI2, MnCI2 и Zn*L2 (ССач = 0.003 г/мл, CSAP C. ыь. = = 1.91-10"9 моль/л, рН = 4.5)
Полученные в ходе экспериментальной работы данные значимы для разработки путей регуляции каталитической активности индуцируемых протеиназ C. albicans, а также для разработки методов комплексной терапии микозов Candida.
Summary
R.R. Galimzanova, M.P. Kutyreva, N.A. Ulahovich, N.I. Glushko, A.A. Ivanova, R.A. Cherkasov, N.G. Zabirov. Coordination compounds of induction proteinase of Candida albicans with iones of d-metalls as regulators of enzymatic activity.
Influence of compounds ZnCl2, MnCl2 and Zn[t-BuNHC(S)NP(S)(OPr-i)2]2 (Zn*L2) on catalytic activity induction proteinase of Candida albicans (SAP C. albicans) were estimates. Logarithms of stability constant from the data of electronic spectroscopy were calculated: lg ß = 4.73 ± 0.20 for the complex [Zn - SAP C. albicans], lg ß = 7.02 ± 0.02 - [Mn - SAP C. albicans] and lg ß = 22.40 ± 0.02 - [Zn* - SAP C. albicans]. The composition and maximum accumulation of complexes [modulator - SAP C. albicans] were calculated. Strength and stechiometry of complexes SAP C. albicans with modulators was estimated with the use of methods Skatchard and Duranton. The constants affinity of interaction in system [ZnCl2 -SAP C. albicans] - (1.78 ± 0.02)-107, [MnCl2 - SAP C. albicans] - (7.95 ± 0.02)-107 and [Zn*L2 - SAP C. albicans] - (3.24 ± 0.1)-108 was formed. The activity SAP C. albicans in the presence of compounds - modulators was estimated. The experimental dates were shows the inhibiting action of ZnL2 in concentration range 0.2-10-8 - 110-4 M on SAP C. albicans. Inhibiting action ZnCl2 in the same range of investigated concentrations less for two times. The activating action ZnCl2 in concentrations 5-10-7 M was observed. The MnCl2 was inhibiting action in concentration range 0.2-10-8 - 110-2 M.
Литература
1. Лещенко В.М. Грибковые заболевания: современное состояние проблемы // Меж-дунар. мед. журн. - Харьков, 1999. - Т. 3. - С. 5-51.
2. Hube B., Naglik J. Candida albicans proteinases: resolving the mystery of a gene family // Microbiology. - 2001. - V. 147. - P. 80-87.
3. Calderone R.A., Fonzi W.A. Virulence factors of Candida albicans // Trends in Microbiology. - 2001. - V. 9, No 7. - P. 327-335.
4. Naglik J.R., Challacombe S.J., Hube B. Candida albicans secreted aspartyl proteinases in virulence and pathogenesis // Microbiol. Mol. Biol. Rev. - 2003. -V. 67. - P. 400-428.
5. CutfieldS.M., Dodson E.J., Anderson B.F., Marshall C.J., Sullivan P.A., Cutfield J.F. The crystal structure of a major secreted aspartic proteinase from Candida albicans in complexes with two inhibitors // Current Biology. - 1995. - V. 3. - P. 1261-1271.
6. Abad-Zapatero C., Goldman R., Muchmore S.W., Hutchins C., Stewar J., Payne C.D., Ray T.L. Structure of a secreted aspartic protease from Candida albicans with a potent inhibitor: implications for the design of antiful agents // Protein Sci. - 1996. - V. 5. -P. 640-652.
7. Smolenski G., Sullivan P.A., Cutfield S.M., Cutfield J.F. Analysis of secreted aspartic proteinases from Candida albicans: purification and characterization of individual Sap1, Sap2 and Sap3 isoenzymes // Microbiology. - 1997. - V. 143, No 2. - P. 349-356.
8. Schaller M., Bein M., Korting H.C., Baur S., Hamm G., Monod M., Beinhauer S., Hube B. The secreted aspartyl proteinases SAP1 and SAP2 cause tissue damage in an in vitro model of vaginal candidiasis based on reconstituted human vaginal epithelium // Infection and immunity. - 2003. - V. 71, No 6. - P. 3227-3234.
9. Koelsch G., Tang J., Loy J.A., MonodM., Jackson K., Foundling S.I., Lin X Enzymic characteristics of secreted aspartic proteases of Candida albicans // Biochim. et Bio-physica Acta. - 2000. - V. 1480. - P. 117-131.
10. Magyar J.S., Godwin H. A. Spectropotentiometric analysis of metal binding to structural zinc-binding sites: accounting quantitatively for pH and metal ion buffering effects // Analytical biochemistry. - 2003. - V. 320. - P. 39-54.
11. McCall K.A., Huang C., Fierke C.A. Function and mechanism of zinc metalloenzymes // Zinc and Health: current status and future directions. - 2000. - V. 130. - P. 1437-1446.
12. Schaller M., Krnjaic N., Niewerth M., Hamm G., Hube B., Korting H.C. Effect of anti-mycotic agents on the activity of aspartyl proteinases secreted by Candida albicans // J. Med. Microbiol. - 2003. - V. 52. - P. 247-249.
13. Кутырева М.П., Медянцева Э.П., Халдеева Е.В., Будников Г.К., Глушко Н.И. Определение антигена Candida albicans с помощью амперометрического иммунофер-ментного сенсора // Вопросы биомед. хим. - 1998. - Т. 44, № 2. - С. 172-178.
14. Кутырева М.П., Улахович Н.А., Сальников Ю.И., Брусько В.В., Соколов Ф.Д., Заби-ров Н.Г. Комплексообразующие свойства ^(тио)фосфорилированных тиомочевин по отношению к ионам двухзарядным ионам d-металлов // Журн. неорг. химии. -2004. - C. 1643-1651.
15. Брусько В.В., Рахматуллин А.И., Забиров Н.Г. Комплексы N-диизопропокситио-фосфорил-№-фенилтиомочевины с рядом тиофильных металлов // Журн. общ. химии. - 2000. - Т. 70, № 10. - С. 1705-1711.
16. Сальников Ю.И., Глебов А.Н., Девятов Ф.В. Полиядерные комплексы в растворах. - Казань: Изд-во Казан. ун-та, 1989. - 632 с.
17. Березин И.В., Клесов А.А. Практический курс химической и ферментативной кинетики. - М.: Изд-во Моск. ун-та, 1976. - 320 с.
18. Варфоломеев С.Д., Гуревич К.Г. Биокинетика: Практический курс. - М.: ФАИР-ПРЕСС, 1999. - 720 с.
19. Кашкин А.П. Иммуноферментный анализ биологически активных веществ. - М.: Мед. пром-сть, 1985. - 43 с.
20. Duranton J., Adam C., Bieth J.G. Kinetic mechanism of the inhibition of cathepsin G by alpha 1-antichymotrypsin and alpha 1-proteinase inhibitor // Biochemistry. - 1998. -V. 37. - P. 11239-11245.
Поступила в редакцию 23.05.06
Галимзанова Рамиля Рустимовна - младший научный сотрудник отдела неорганической и координационной химии Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского государственного университета.
Кутырева Марианна Петровна - кандидат химических наук, доцент кафедры неорганической химии Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского государственного университета.
Улахович Николай Алексеевич - доктор химических наук, профессор, заведующий кафедрой неорганической химии Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского государственного университета.
Глушко Надежда Ивановна - старший научный сотрудник Казанского НИИ эпидемиологии и микробиологии.
Иванова Ангелина Александровна - студентка Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского государственного университета.
Черкасов Рафаэль Асхатович - доктор химических наук, профессор, заведующий кафедрой химии высокомолекулярных и элементорганических соединений Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского государственного университета.
Забиров Наиль Галиевич - доктор химических наук, профессор Химического института им. А.М. Бутлерова Казанского государственного университета.
