CC BY
38
Василий Павлович Иванюк, доктор ветеринарных наук, профессор, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632
Галина Николаевна Бобкова, кандидат биологических наук, доцент, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051
Vasily P. Ivanyuk, Doctor of Veterinary Sciences, Professor, vpivanuk@mail.ru, https://orcid.org/0000-0001-8439-1632
Galina N. Bobkova, Candidate of Biological Sciences, Associate Professor, olesyabobkova291101@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-8212-0051
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Автоы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: the authors contributed equally to this article. The authors declare no conflicts of interests.
Статья поступила в редакцию 11.01.2022; одобрена после рецензирования 28.01.2022; принята к публикации 28.01.2022.
The article was submitted 11.01.2022; approved after reviewing 28.01.2022; accepted for publication 28.01.2022. -♦-
Научная статья
УДК 636.082:636.22/.28
doi: 10.37670/2073-0853-2022-93-1-145-150
Концентрация иммуноглобулинов в сыворотке крови телят и секрете молочной железы коров
Евгения Борисовна Шарафутдинова, Алексей Петрович Жуков
Оренбургский государственный аграрный университет, Оренбург, Россия
Аннотация. Целью исследования явилось определение уровня иммуноглобулинов класса G и M в сыворотке крови и секрете молочных желёз у коров-реципиентов и у коров, содержащихся по традиционной технологии, а также у телят, полученных от них в различные периоды после отёла. Стельным коровам-реципиентам симментальской породы были трансплантированы эмбрионы от коров герефордской породы американской селекции. За 30 дней до отёла им двукратно с интервалом в 10 дней вводили ин-траперитонеально по 5 мл споропротектина и в течение 7 дней задавали споронормин из расчёта 0,5 мл на 1 кг живой массы. Предметом исследования была сыворотка крови коров через час после родов и телят после рождения, в течение первого часа жизни, через 1, 5, 10 и 15 суток. Установлено, что новорождённые телята с первых минут постнатального существования подвергаются воздействию множества патогенов. Передача иммуноглобулинов от матери к новорождённому является одним из основных факторов их защиты от инфекционных заболеваний. Показано, что у новорождённых телят-трансплантантов при удовлетворительном уровне иммуноглобулинов в молозиве матерей зафиксированы более низкие параметры наличия в крови IgM и IgG, чем у телят, полученных традиционным путём. Доказано, что инкорпорирование иммунотропных препаратов микробного происхождения коровам-реципиентам существенным образом инверсирует степень насыщения крови иммуноглобулинами и через молозиво повышает жизнеспособность телят.
Ключевые слова: телята-трансплантанты, кровь, белковый обмен, иммунотропные препараты, споро-нормин, споропротектин, естественная резистентность, иммуноглобулины.
Для цитирования: Шарафутдинова Е.Б., Жуков А.П. Концентрация иммуноглобулинов в сыворотке крови телят и секрете молочной железы коров // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 1 (93). С. 145 - 150. https://doi.org/10.37670/2073-0853-2022-93-1-145-150.
Original article
Serum immunoglobulin concentration calf blood and cow mammary secretion
Evgenia B. Sharafutdinova, Alexey P. Zhukov
Orenburg State Agrarian University, Orenburg, Russia
Abstract. The aim of the study was to determine the level of class G and M immunoglobulins in the blood serum and secretion of the mammary glands in recipient cows and in cows kept according to traditional technology, as well as in calves obtained from them in various periods after calving. Pregnant recipient cows of the Simmental breed were transplanted with embryos from Hereford cows of the American selection. 30 days before calving, they were injected intraperitoneally with 5 ml of sporoprotectin twice with an interval of 10 days, and for 7 days they were given sporonormin at the rate of 0.5 ml per 1 kg of live weight. The subject
of the study was the blood serum of cows one hour after birth and calves after birth, during the first hour of life, after 1, 5, 10 and 15 days. It has been established that newborn calves from the first minutes of postnatal existence are exposed to many pathogens. The transfer of immunoglobulins from mother to newborn is one of the main factors in their protection against infectious diseases. It was shown that in newborn calves transplanted with a satisfactory level of immunoglobulins in the colostrum of mothers, lower parameters of the presence of IgM and IgG in the blood were recorded than in calves obtained in the traditional way. It has been proven that the incorporation of immunotropic preparations of microbial origin to recipient cows significantly inverts the degree of blood saturation with immunoglobulins and increases the viability of calves through colostrum.
Keywords: transplant calves, blood, protein metabolism, immunotropic drugs, sporonormin, sporoprotectin, natural resistance, immunoglobulins.
For citation. Sharafutdinova E.B., Zhukov A.P. Serum immunoglobulin concentration calf blood and cow mammary secretion. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2022; 93(1): 145-150. (In Russ.). https://doi. org/10.37670/2073-0853-2022-93-1-145-150.
Период раннего онтогенетического развития является одним из критических этапов в жизни животного, у которых до приёма молозива почти отсутствуют иммуноглобулины и мало лейкоцитов [1, 2]. У телят этой фазы постна-тального онтогенеза слабо развиты гуморальные механизмы защиты, образование антител при проникновении в организм антигена осуществляется медленно и в небольших количествах [3, 4]. В этот период большое значение имеет своевременная оценка иммунологического статуса новорождённых телят, основанная на поступлении иммуноглобулинов молозива [5, 6]. Телята-трансплантанты рождаются в состоянии большего иммунодефицита, чем телята, полученные традиционным путём. Кроме того, у новорождённых телят-трансплантатов как после первой выпойки молозива, так и в последующие дни содержание иммунных глобулинов в сыворотке крови значительно ниже, чем у телят, полученных традиционным способом [7, 8].
Целью исследования явилось определение уровня иммуноглобулинов классов G и М в сыворотке крови и секрете молочных желёз у коров-реципиентов и у коров, содержащихся по традиционной технологии, а также у телят, полученных от них в различные периоды после отёла.
Материал и методы. Исследование проводили в условиях НПО «Южный Урал» (Оренбургская область, Саракташский р-н), где были подобраны две группы стельных коров-реципиентов симментальской породы, которым были трансплантированы эмбрионы от коров герефордской породы американской селекции, и группа коров той же породы, содержащихся по традиционной технологии. Коровам-реципиентам за 30 дней до отёла двукратно с интервалом в 10 дней вводили интраперитонеально по 5 мл споропротектина и в течение недели задавали споронормин из расчёта 0,5 мл на 1 кг живой массы [9].
Приплод от коров-реципиентов разделили на две группы по 10 гол. в каждой. I гр. была сформирована из 10 новорождённых телят, полученных от коров, содержащихся по традиционной технологии, II - контрольная,
III - опытная состояла из телят от коров, обработанных препаратами. Телята содержались на подсосе в условиях, отвечающих ветеринарно-зоогигиеническим требованиям, коровы-матери получали хозяйственный рацион в соответствии с общепринятыми нормами.
Сыворотку крови исследовали через час после родов у коров и в течение часа у телят после рождения, а затем через 1, 5, 10 и 15 сут. Кровь отбирали в утренние часы до кормления в вакуумные пробирки, для выявления иммуноглобулинов G- и M-классов руководствовались «Методическими рекомендациями по оценке и коррекции иммунного статуса животных» [10].
Цифровой материал экспериментальных данных обрабатывали методом вариационной статистики с применением программного комплекса Microsoft Excel 7.0.
Результаты и обсуждение. В результате проведённых исследований установлено, что концентрация иммунных глобулинов в сыворотке крови и в секрете молочной железы имеет существенное различие. Так, через час после отёла содержание IgG в крови осеменённых коров было на уровне 19,43 ± 2,34 г/л, у реципиентов контрольной и опытной групп - соответственно 15,19 ± 1,78 и 18,68 ± 2,23 г/л, тогда как в молозиве этих животных содержание IgG было равно 62,19 ± 4,78; 44,26 ± 2,83 и 52,34 ± 3,19 г/л соответственно. Уровень IgM в сыворотке крови коров, содержащихся по традиционной технологии, был равен 5,23 ± 0,49 г/л, у коров-реципиентов контрольной группы - 3,68 ± 0,32, опытной - 4,29 ± 0,41 г/л, в молозиве - соответственно 6,79 ± 0,63; 4,22 ± 0,39 и 5,83 ± 0,49 г/л (табл. 1).
У новорождённых телят I гр. до первой выпойки молозива суммарное содержание иммуноглобулинов составляло 0,88 ± 0,07 г/л, а у телят II и III гр. - 0,63 ± 0,04 и 0,73 ± 0,06 г/л соответственно (табл. 2). Новорождённые с первых минут постнатального существования подвергаются воздействию множества патогенов, в то время как их организм ещё недостаточно иммунокомпетентен. Для того чтобы они могли выдержать переход из сравнительно безопасной внутриутробной жизни в окружающий мир с его
многочисленными инфекционными агентами, особенно опасными для новорождённых, им нужно оказывать пассивную, т.е. исходящую от материнского организма, защиту от инфекций. В данном случае иммуноглобулины молозива следует рассматривать как «концентрат иммунологических познаний» матерей, который они приобретают в течение жизни, контактируя с многочисленными патогенными вирусами окружающей среды [11].
Через сутки в сыворотке крови и молозиве у коров произошли существенные преобразования в качественном и количественном составе иммуноглобулинов. Так, у коров, содержащихся по традиционной технологии, в крови ^М уменьшился до 5,05 ± 0,51 г/л, в молозиве -до 5,43 ± 0,57 г/л, IgG в крови убавился до 17,84 ± 1,93 г/л, в молозиве - до 32,78 ± 3,83 г/л (на 48,3 %). У коров-реципиентов контрольной группы концентрация ^М в крови увеличилась на 0,22 ± 0,01 г/л, а в молозиве редуцировалась на 0,51 ± 0,02 г/л; уровень IgG в крови снизился до 10,73 ± 1,23 г/л, в молозиве - до 21,17 ± 2,33 г/л. У коров опытной группы уровень ^М в крови уменьшился на 0,15 ± 0,01 г/л, а в молозиве -на 1,31 ± 0,13 г/л, концентрация IgG в крови убавилась на 30,3 %, а в молозиве - на 50,6 % (табл. 1).
Как было установлено, у коров в молозиве содержался в основном IgG, который проникает из сыворотки крови через альвеолярный эпителий молочной железы в последние дни 3-го триместра стельности. Селективный транспорт IgG в сыворотке крови через альвеолярный эпителий вымени является функцией Fc-фрагмента молекулы IgG. Большое количество IgG молозива захватывается и перемещается в больших внутрицитоплазматических везикулах специализированных клеток, расположенных в верхней
части тонкого отдела кишечника для передачи в циркулирующую систему новорождённого в неизменном виде. Период, в течение которого происходит передача антител потомству, очень короткий и длится 24 - 36 час. [4].
Через сутки у телят I гр. концентрация IgM в крови составляла 1,19 ± 0,11 г/л, т.е. увеличилась в 2,24 раза, у телят II гр. - в 2,57 раза, у телят III опытной гр. - в 3,39 раза. Концентрация IgG у телят I гр. повысилась в 29,82 раза, у телят-трансплантантов II гр. - в 28,71 и III гр. - в 45,82 раза. От общего количества иммуноглобулинов на долю IgG приходилось у телят I гр. 89,54 ± 3,15 %, у телят II гр. - 84,8 ± 3,89 и III гр. - 88,87 ± 4,03 % (табл. 2).
По мнению В.С. Шипилова и др. [11], новорождённым телятам в суточном возрасте необходимо иметь в сыворотке крови столько иммуноглобулинов, сколько их имеется в сыворотке крови взрослых. Оценивая полученные результаты, следует признать, что ни в одной группе суммарный уровень иммуноглобулинов не достиг равной величины с показателями матерей: I гр. - 13,24 и 10,19 г/л; II гр. - 14,84 и 12,37; III гр. -10,73 и 6,03 г/л соответственно. Это можно объяснить не только более низким содержанием иммуноглобулинов в сыворотке крови и молозиве у коров-реципиентов в отдельные периоды после отёла, но и, возможно, пониженной их абсорбцией у новорождённых телят-трансплантантов из кишечника в кровь (табл. 1, 2).
Через 5 сут. после отёла насыщенность крови IgM возросла более чем на 50 % у коров с традиционной технологией содержания, а в молозиве уменьшилась на 27,9 %; у коров-реципиентов контрольной группы - соответственно на 47,7 и 36,6 %, а у коров-реципиентов опытной группы - на 62,9 и 47,9 %. Ещё более значимые масштабы изменений отмечены в спектре IgG в
1. Концентрация иммуноглобулинов в сыворотке крови и секрете молочной железы коров, г/л (X ± Sx)
Время после отёла Объект исследования Показатель
IgM IgG
группа
I (традиционная технология) реципиенты I (традиционная технология) реципиенты
II контрольная III опытная II контрольная III опытная
1 час кровь 5,23 ± 0,49 3,68 ± 0,32 4,29 ± 0,41 19,43 ± 2,34 15,19 ± 1,78 18,68 ± 2,23
молозиво 6,79 ± 0,63 4,22 ± 0,39 5,83 ± 0,49 62,19 ± 4,78 44,26 ± 2,83 52,34 ± 3,19
24 час. кровь 5,05 ± 0,51 3,86 ± 0,36 4,13 ± 0,38 14,84 ± 1,93 10,73 ± 1,23 13,24 ± 1,58
молозиво 5,43 ± 0,57 3,72 ± 0,41 4,52 ± 0,43 32,78 ± 3,83 21,17 ± 2,33 25,86 ± 2,81
5 сут. кровь 7,91 ± 0,73 5,79 ± 0,53 6,73 ± 0,61 15,36 ± 1,83 10,94 ± 1,28 13,67 ± 1,63
молозиво 3,97 ± 0,39 2,36 ± 0,28 2,81 ± 0,31 6,01 ± 0,58 2,67 ± 0,29 3,22 ± 0,36
10 сут. кровь 6,75 ± 0,61 4,61 ± 0,42 5,83 ± 0,51 29,69 ± 3,27 27,86 ± 2,81 27,16 ± 3,26
молозиво 2,88 ± 0,28 2,03 ± 0,17 2,39 ± 0,29 2,23 ± 0,31 2,19 ± 0,23 2,89 ± 0,33
15 сут. кровь 4,85 ± 0,43 3,86 ± 0,39 4,53 ± 0,44 29,81 ± 2,98 26,17 ± 3,09 28,03 ± 3,11
молозиво 1,73 ± 0,19 0,89 ± 0,07 1,17 ± 0,15 2,86 ± 0,27 2,78 ± 0,28 3,08 ± 0,29
сыворотке молозива. Так, у осеменённых коров количество их убавилось за 5 сут. после отёла до 6,01 ± 0,58 г/л, т.е. в 5,4 раза, у коров-реципиентов контрольной группы - до 2,67 ± 0,29 (в 7,9 раза) и у коров-реципиентов опытной группы -в 8,0 раза, до 3,22 ± 0,36 г/л. В сыворотке крови показатели концентрации IgG стабилизировались на уровне суточных значений с незначительным приростом у коров с традиционной технологией содержания.
На 5-е сут. жизни у телят иммунная система эволюционировала за счёт увеличения общего количества иммуноглобулинов в сыворотке крови: I гр. - на 24,15 ± 1,96 %, II гр. - на 38,39 ± 2,76 %, III гр. - на 22,93 ± 1,78 %. У животных III гр. в этот период были зарегистрированы достаточно высокие показатели как по IgM - 2,12 ± 0,23 г/л, так и по IgG - 11,87 ± 1,46г/л, против 2,28 ± 0,19 и 13,58 ± 1,68 г/л у телят I гр. (табл. 2).
На 10-е сут. лактации содержание иммуноглобулинов класса М в молоке уменьшилось у коров с традиционной технологией содержания на 27,51 ± 2,12 %, у коров-реципиентов контрольной группы - на 14,89 ± 1,63 % и у коров-реципиентов опытной группы - на 15,18 ± 1,76 %, а IgG - соответственно на 54,58 ± 4,16 %; 17,98 ± 1,86 % и 10,25 ± 1,33 %. Количество IgG в молоке коров-реципиентов опытной группы впервые превысило аналогичный показатель у коров с традиционной технологией содержания - 2,89 ± 0,33 г/л против 2,23 ± 0,31 г/л (Р < 0,05). В сыворотке крови коров с традиционной технологией концентрация IgG увеличилась по сравнению с данными на 5-е сут. в 2,03 ± 0,21 раза и достигла 29,69 ± 3,27 г/л; у коров-реципиентов контрольной группы после 2,5-кратного увеличения уровень IgG был на отметке в 27,86 ± 2,81 г/л, а у коров-реципиентов опытной группы после почти двукратного нарастания - на высоте - 27,16 ±3,26 г/л (табл. 1).
Переход на молочное питание ознаменовался снижением концентрации иммуноглобулинов всех классов у молодняка. Так, у телят III гр. общее количество уменьшилось на 18,23 ± 2,17 %, при этом IgM снизился с 2,12 ± 0,23 до 1,66 ± 0,14 г/л, IgG - с 11,87 ± 1,46 до 9,13 ± 0,83 г/л; у телят II
гр. падающий рейтинг концентрации был заметен у ^М с 1,61 ± 0,19 до 1,08 ± 0,11, насыщение крови IgG редуцировалось до 7,28 ± 0,67 г/л, соответственно у телят I гр. была отмечена подобная альтерация с результатом - 1,72 ± 0,15 г/л и 12,13 ± 1,48 г/л (табл. 2).
Спустя 15 сут. после отёла насыщение молока ^М у коров с традиционной технологией содержания уменьшилось до стабильных значений для послеотельного периода с результатом 1,73 ± 0,19 г/л, у коров-реципиентов контрольной группы - до 0,89 ± 0,07 г/л, у животных опытной группы - до 1,17 ± 0,15 г/л, в сыворотке крови у этих же животных - соответственно до 4,85 ± 0,43; 3,86 ± 0,39 и 4,53 ± 0,44 г/л,. После убывающего спада концентрации ^М в молоке через 10 сут. после отёла была отмечена его диверсификация в сторону большего насыщения иммуноглобулинами крови коров всех групп спустя 15 суток. По сравнению с результатами, полученными через час после родов, параметры ^М в молоке уменьшились на 15-е сутки у коров с традиционной технологией содержания в 3,96 ± 0,67 раза, у коров-реципиентов контрольной группы - в 4,81 ± 0,87 раза и у коров-реципиентов опытной группы - в 4,98 ± 0,91 раза и IgG - соответственно в 21,79 ± 2,38; 15,96 ± 1,69 и 17,09 ± 1,78 раза. В сыворотке крови коров с традиционной технологией содержания на 15-е сутки после отёла концентрация ^М уменьшилась на 28,15 ± 2,19 %, у коров-реципиентов контрольной группы - на 17,02 ± 1,12 % и опытной группы -на 22,15 ± 1,93 % (табл. 1).
Насыщенность крови иммуноглобулинами класса G за этот период была несущественна и статистически недостоверна. Следует отметить, что концентрация ^М в крови была более стабильная на всех этапах обследования, чем концентрация IgG, который существенно изменил свои параметры через 24 час. и 5 сут. после рождения в сторону их минимизации, а через 10 и 15 сут. вновь существенно укрепил свои позиции.
В сыворотке крови телят, полученных от коров с традиционной технологией содержания,
2. Содержание иммуноглобулинов в сыворотке крови телят, г/л
Возраст, сутки Показатель
IgM IgG
группа телят
I (традиционная технология) трансплантанты I (традиционная технология) трансплантанты
II контрольная III опытная II контрольная III опытная
До выдойки молозива 0,46 ± 0,03 0,42 ± 0,04 0,53 ± 0,05 0,27 ± 0,03 0,21 ± 0,01 0,35 ± 0,03
1 1,56 ± 0,13 1,08 ± 0,09 1,19 ± 0,11 12,37 ± 1,56 6,03 ± 0,58 10,19 ± 0,93
5 2,28 ± 0,19 1,61 ± 0,19 2,12 ± 0,23 13,58 ± 1,68 8,23 ± 0,72 11,87 ± 1,46
10 1,72 ± 0,15 1,08 ± 0,11 1,66 ± 0,14 12,13 ± 1,48 7,28 ± 0,67 9,13 ± 0,83
15 1,96 ± 0,21 1,46 ± 0,19 1,79 ± 0,23 15,21 ± 1,86 10,74 ± 0,89 12,96 ± 1,26
уровень иммуноглобулина класса М увеличился, но не достиг показателей 5-суточного возраста, такая же ситуация отмечена у телят-трансплантантов, причём резкое падение концентрации иммуноглобулина класса М по окончании первой декады жизни не восполнилось к учётному времени. Однако эволюция IgG в сторону заметного насыщения крови у животных через 15 сут. позволила повысить их общий рейтинг у телят III гр. на 36,71 ± 2,96 %, II гр. - на 46,93 ± 3,89 %, III гр. - на 23,71 ± 2,09 % по сравнению с данными на 10-е сут. Максимальный уровень содержания IgG - 15,21 ± 1,86 г/л - был зафиксирован у телят с традиционной технологией содержания, у телят-трансплантантов контрольной группы он составлял 10,74 ± 0,89 г/л, у телят-трансплантантов опытной группы -12,96 ± 1,26 г/л (табл. 2).
Вывод. Передача иммуноглобулинов от матери к новорождённому является одним из основных факторов защиты новорождённых от инфекционных заболеваний. Это определяет интенсивность поглощения адекватного количества иммуноглобулинов молозива как необходимый и лимитирующий факторы формирования ко-лострального иммунитета. Следует отметить, что у новорождённых телят-трансплантантов при удовлетворительном уровне иммуноглобулинов в молозиве матерей фиксируются более низкие параметры концентрации в крови ^М и IgG, чем у телят, полученных традиционным путём. Инкорпорированием мунотропных препаратов микробного происхождения коровам-реципиентам можно существенным образом инверсировать степень насыщения крови иммуноглобулинами и через молозиво повысить жизнеспособность телят.
Список источников
1. Афанасьева А.И., Сарычев В.А. Физиологическая зрелость новорождённых телят, полученных от скота герефордской породы канадской селекции // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2017. № 9 (155). С. 120 - 124.
2. Связь колострального иммунитета и биохимического статуса у новорождённых телят в первые дни жизни / А.Е. Черницкий, А.И. Рецкий, А.И. Золотарев и др. // Сельскохозяйственная биология. 2013. № 6. С. 94 - 99.
3. Рецкий М.И., Шабунин С.В., Фоменко О.Ю. Молозиво как основной источник жирорастворимых биооксидантов для новорождённых телят в первые сутки жизни // Сельскохозяйственная биология. 2011. № 4. С. 72 - 76.
4. Ерёменко В.И., Морозов К.Г. Содержание общего белка и иммуноглобулинов в крови телят при скармливании им пробиотиков // Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2016. № 8. С. 63 - 65.
5. Мотова Е.Н. Оценка биологического и иммунного статуса телят в ранний постнатальный период
при выпаивании замороженного молозива с высоким содержанием иммуноглобулинов // Сельскохозяйственная биология. 2008. № 2. С. 84 - 87.
6. Башаров А.А., Хазиахметов Ф.С. Использование пробиотиков серии «Витафорт» при выращивании телят молочного периода // Главный зоотехник. 2010. № 7. С. 17 - 20.
7. Петров А.М. Иммунологическая реактивность телят-трансплантантов и её коррекция // Сельскохозяйственная биология. 1995. № 2. С. 13 - 21.
8. Воронин Е.С., Петров А.М. Содержание иммуноглобулинов в молозиве коров-реципиентов // Зоотехния. 1994. № 6. С. 17 - 18.
9. Воробьев А.В., Серова О.Н. Иммунотропная профилактика послеродовых эндометритов коров // Вестник ветеринарии. 2011. № 53 (4). С. 126 - 127.
10. Методические рекомендации по оценке и коррекции иммунного статуса животных / А.Г. Шахов, Ю.Н. Масьянов, М.И. Рецкий и др. Воронеж, 2005. 119 с.
11. Шипилов В.С., Шишков В.П., Зароза В.Г. Получение и выращивание здоровых телят - важнейшее условие увеличения производства продуктов питания / В.С. Шипилов / Центр правления; НТО сельского хозяйства. Секция ветеринарной медицины. М., 1988. 43 с.
References
1. Afanas'eva A.I., Sarychev V.A. Physiological maturity of newborn calves obtained from cattle of the Hereford breed of Canadian selection. Bulletin of Altai State Agricultural University. 2017; 155(9): 120-124.
2. Communication of colostral immunity and biochemical status in newborn calves in the first days of life / A.E. Chernitsky, A.I. Retsky, A.I. Zolotarev et al. Agricultural biology. 2013; 6: 94-99.
3. Retsky M.I., Shabunin S.V., Fomenko O.Yu. Colostrum as the main source of fat-soluble biooxidants for newborn calves in the first days of life. Agricultural biology. 2011; 4: 72-76.
4. Eremenko V.I., Morozov K.G. The content of total protein and immunoglobulins in the blood of calves when they are fed with probiotics. Bulletin of the Kursk State Agricultural Academy. 2016; 8: 63-65.
5. Motova E.N. Evaluation of the biological and immune status of calves in the early postnatal period when drinking frozen colostrum with a high content of immunoglobulins. Agricultural biology. 2008; 2: 84-87.
6. Basharov A.A., Khaziakhmetov F.S. The use of pro-biotics of the «Vitafort» series in the cultivation of calves of the dairy period. Chief Livestock Expert. 2010; 7: 17-20.
7. Petrov A.M. Immunological reactivity of transplant calves and its correction. Agricultural biology. 1995; 2: 13-21.
8. Voronin E.S., Petrov A.M. The content of immunoglobulins in the colostrum of recipient cows. Zootechniya. 1994; 6: 17-18.
9. Vorobyov A.V., Serova O.N. Immunotropic prevention of postpartum endometritis in cows. Vestnik Veterinarii. 2011; 53(4): 126-127.
10. Guidelines for assessing and correcting the immune status of animals / A.G. Shakhov, Yu.N. Masyanov, M.I. Retsky et al. Voronezh, 2005. 119 p.
11. Shipilov V.S., Shishkov V.P., Zaroza V.G. Obtaining and growing healthy aphids is the most important condition for increasing food production // Center for Management; NTO of Agriculture. Section of Veterinary Medicine. M., 1988. 43 р.
Евгения Борисовна Шарафутдинова, кандидат биологических наук, evgesha-xp@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-4389-6383
Алексей Петрович Жуков, доктор ветеринарных наук, профессор, vet_fac@mail.ru
Evgenia B. Sharafutdinova, Candidate of Biologу, evgesha-xp@mail.ru, https://orcid.org/0000-0002-4389-6383
Alexey P. Zhukov, Doctor of Veterinary Sciences, Professor, vet_fac@mail.ru
Вклад авторов: все авторы сделали эквивалентный вклад в подготовку публикации. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.
Contribution of the authors: the authors contributed equally to this article. The authors declare no conflicts of interests.
Статья поступила в редакцию 12.01.2022; одобрена после рецензирования 28.01.2022; принята к публикации 28.01.2022.
The article was submitted 12.01.2022; approved after reviewing 28.01.2022; accepted for publication 28.01.2022. -♦-
Научная статья
УДК 636.087.6:636.4:612.017
Влияние разных схем использования кормовой добавки Протамин на клеточное звено иммунной системы свиней в поствакцинальный период
Елена Владимировна Крапивина, Екатерина Васильевна Сергеева,
Дмитрий Валерьевич Иванов
Брянский государственный аграрный университет, с. Кокино, Брянская область, Россия
Аннотация. Цель исследования - изучение влияния выпаивания кормовой добавки Протамин на клеточное звено иммунной системы свиней в различные периоды после введения антигенов. Изучены две схемы выпаивания кормовой добавки. Использование добавки по схеме № 1 обеспечило через 35 суток опыта снижение числа клеток, обладающих преимущественно супрессорной активностью, через 75 суток опыта - повышение числа клеток, обладающих преимущественно хелперной активностью, а через месяц после окончания выпаивания препарата обусловило более высокий уровень Т-лимфоцитов. Использование препарата по схеме № 2 обеспечило через месяц после окончания выпаивания более высокое абсолютное количество в крови у животных лейкоцитов и лимфоцитов, снижение числа клеток, обладающих преимущественно супрессорной активностью и более высокий уровень в крови В-лимфоцитов. Применение препарата Протамин по обеим схемам повышало степень дифференцировки лимфоцитов уже начиная с 35 суток после начала опыта.
Ключевые слова: кормовая добавка, свиньи, иммунокомпетентные клетки.
Для цитирования: Крапивина Е.В., Сергеева Е.В., Иванов Д.В. Влияние разных схем использования кормовой добавки Протамин на клеточное звено иммунной системы свиней в поствакцинальный период // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2022. № 1 (93). С. 150 - 155.
Original article
Influence of different schemes for use of feed supplement Protamin on cellular link of pigs immune system during post vaccination period
Elena V. Krapivina, Ekaterina V. Sergeeva, Dmitry V. Ivanov
Bryansk State Agrarian University, Kokino, Bryansk region, Russia
Abstract. The purpose of the study was to study the effect of drinking the feed additive Protamine on the cellular link of the pigs' immune system at different periods after the introduction of antigens. Two schemes for feeding the feed additive were studied. The use of the supplement according to scheme No. 1 ensured after 35 days of the experiment a decrease in the number of cells with predominantly suppressor activity, after 75 days of the experiment - an increase in the number of cells with predominantly helper activity, and a month after the end of drinking the drug caused a higher level of T-lymphocytes. The use of the drug according to scheme No. 2 provided a month after the end of drinking, a higher absolute amount of leukocytes and lymphocytes in the blood of animals, a decrease in the number of cells with predominantly suppressive activity and a higher level of B-lymphocytes in the blood. The use of the drug Protamine according to both schemes increased the degree of differentiation of lymphocytes starting from 35 days after the beginning of the experiment.
Keywords: biologically active feed additive; pigs; immunocompetent cells.
For citation: Krapivina E.V., Sergeeva E.V., Ivanov D.V. Influence of different schemes for use of feed supplement Protamin on cellular link of pigs immune system during post vaccination period. Izvestia Orenburg State Agrarian University. 2022; 93(1): 150-155. (In Russ.).
