Научная статья на тему 'Каталазная активность эритроцитов крови животных подверженных действию фитогормона эпибрассинолида и токсикантов в раннем постнатальном онтогенезе'

Каталазная активность эритроцитов крови животных подверженных действию фитогормона эпибрассинолида и токсикантов в раннем постнатальном онтогенезе Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

CC BY
148
42
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Аннотация научной статьи по фундаментальной медицине, автор научной работы — Егоров М. А.

Изучено влияние фитогормона эпибрассинолида на активность каталазы эритроцитов холоднокровных (рыбы, лягушки) и теплокровных (белые крысы) животных на ранних стадиях постнатального онтогенеза. Выявлено изменение активности каталазы эритроцитов при действии токсинов разной природы и нормализирующий эффект фитогормона на активность каталазы в условиях хронического влияния токсикантов на животных разных классов.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Похожие темы научных работ по фундаментальной медицине , автор научной работы — Егоров М. А.

iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «Каталазная активность эритроцитов крови животных подверженных действию фитогормона эпибрассинолида и токсикантов в раннем постнатальном онтогенезе»

Егоров М.А.

КАТАЛАЗНАЯ АКТИВНОСТЬ ЭРИТРОЦИТОВ КРОВИ ЖИВОТНЫХ ПОДВЕРЖЕННЫХ ДЕЙСТВИЮ ФИТОГОРМОНА ЭПИБРАССИНОЛИДА И ТОКСИКАНТОВ В РАННЕМ ПОСТНАТАЛЬНОМ ОНТОГЕНЕЗЕ

Изучено влияние фитогормона эпибрассинолида на активность каталазы эритроцитов холоднокровных (рыбы, лягушки) и теплокровных (белые крысы) животных на ранних стадиях постнатального онтогенеза. Выявлено изменение активности каталазы эритроцитов при действии токсинов разной природы и нормализирующий эффект фитогормона на активность каталазы в условиях хронического влияния токсикантов на животных разных классов.

Основной ролью каталазы, как известно, является утилизация перекиси водорода. Во время этой реакции каталаза высвобождает кислород и тем самым обеспечивает тканевое дыхание. С другой стороны, избыток перекисных соединений вызывает морфофункциональные нарушения в клетках и тканях организма (1, 10, 13). Биологическая роль фермента состоит в предотвращении накопления перекиси водорода, образующегося при дисмутации супероксид-аниона.

Избыток перекисных соединений вызывает мор-фофункциональные нарушения в клетках и тканях организма и снижение активности каталазы, которое может произойти в результате уменьшения его количества в процессе синтеза или за счет ингибирова-ния активного центра фермента. Во втором случае количество фермента может быть на уровне нормы, но за счет ингибирования его активность значительно понижается (2, 4, 11).

Исследования изменений ферментативной активности каталазы проводились при воздействии перспективного биологически активного вещества из класса брассиностероидов (6), широко распространенных в растительных организмах (14). Экологическая безопасность и известные биопротекторные свойства, выявленные у брассиностерои-дов, в частности у эпибрассинолида (в виде препарата «Эпин»), способствовали повсеместному применению его в практике (5, 7, 8, 15).

Цель данных исследований состояла в изучении влияния фитостероида эпибрассинолида на ферментативную активность каталазы крови типичных представителей трех классов позвоночных животных: серебряного карася, озерной лягушки и лабораторных крыс на фоне токсических воздействий в раннем периоде постнатального онтогенеза.

Материал и методы

Изучали активность каталазы эритроцитов крови неполовозрелых особей серебряного карася, озерной лягушки, лабораторных крыс в количестве 40-50 штук для каждой серии экспериментов.

Изучали изменения скорости ферментативного процесса разложения перекиси водорода ката-лазой эритроцитов крови неполовозрелых животных под влиянием биологически активного вещества (эпибрассинолида), токсикантов (меди, фенола, детергента) и их совместного действия в условиях хронических опытов.

Рыбы и лягушки (возраст в начале опытов 60 дней) помещались в отдельные аквариумы с растворами токсикантов следующих концентраций: сульфат меди (по иону меди) - 0,1 мг/л, фенол - 1 мг/л, детергент - 1 мг/л. Предварительная обработка эпибрассинолидом заключалась в выдерживании рыбы в растворе данного фитогормона (концентрация эпибрассинолида 1*10-7 мг/л) в течение часа перед помещением в аквариум с раствором токсиканта.

Эксперименты проводились в течение 30 дней на крысах линии Вистар (возраст в начале опыта 20 дней). Крысы потребляли токсиканты, растворенные в питьевой воде (раствор сульфата меди дозой 0,15 мг/кг, доза фенола и детергента - 2,5 мг/кг). Часть животных перед воздействием токсикантов 7 дней получали раствор эпибрассинолида (в концентрации = 1*10-7 мг/л).

Активность каталазы эритроцитов определяли спектрофотометрически (3). Результаты опытов подвергнуты статистической обработке (2, 12).

Результаты исследования и их обсуждение

У молоди серебряного карася, находившейся длительное время под воздействием тосикантов, выявлено увеличение каталазной активности. В то же время у рыб из группы предварительно полу-чвших «Эпин» достоверных изменений активности каталазы не обнаружено (таблица 1).

Длительное воздействие ионов меди в токсической среде привело к значительному увеличению уровня каталазной активности. Этот показатель в 2,5 раза превысил аналогичный из контрольной группы рыб. Органические токсиканты столь же значительно изменили величину исследуемого показателя. Нами выявлены достоверные различия активности каталазы эритроцитов для рыб из групп

ВЕСТНИК ОГУ 5*2003 125

Естественные науки

«фенол» и «детергент». При этом активность ката-лазы, как и в предыдущем случае, оказалась повышенной. Для рыб, находившихся под влиянием указанных токсикантов, но получавших предварительно эпибрассинолид, в целом отмечено приближение величины каталазной активности к контрольному уровню. Также близкими к контрольным были показатели активности каталазы у животных, находившихся под воздействием органических токсикантов, но предварительно получавших эпибрас-синолид.

У озерных лягушек, получавших «Эпин», величина каталазной активности эритроцитов не отличалась от контрольной. Выявлено существенное изменение изучаемого показателя у лягушек, подвергнутых действию токсикантов: во всех случаях

Таблица 1. Анализ активности каталазы в эритроцитах крови неполовозрелых особей серебряного карася, озерной

лягушки, крыс при предварительном внесении эпибрассиноида и хронических воздействиях токсикантов

отмечено усиление ферментативной активности каталазы, что подтверждает токсический эффект применяемых нами токсинов. В то же время значения каталазной активности у животных, получавших токсины на фоне эпибрассиолида, обнаруживают близость к величинам рассматриваемого показателя контрольного уровня.

В большинстве случаев отмечен рост активности каталазы эритроцитов крыс в группах с токсикантами и некоторое нивелирование подобного эффекта в экспериментальных группах с предварительной обработкой эпибрасинолидом. Нами не выявлено значительных различий в изменении ферментативной активности каталазы между действием различных токсикантов.

На основании проведенных исследований по оценке роли эпибрассинолида в процессе утилизации перекисных соединений в эритроцитах крови неполовозрелых животных - представителей трех классов позвоночных, развивающихся в неблагоприятных экспериментальных условиях, можно сделать вывод о протекторной роли данного биологически активного вещества на ферментативную активность каталазы в организме животных, подвергнутых действию токсикантов. Возможно, эпибрассинолид изменяет скорость разложения данного субстрата либо существенно снижает уровень синтеза каталазы эритроцитов крови рассмотренных видов животных.

Уcлoвия onbira Koличecrвo yrилизиpoвaннoй nepe^^ вoдopoдa в кpoви иccлeдoвaннbix живorныx ммoль/мин

cepeбpянbIЙ ^pa^ oзepнaя лягушка ^bicbl линии Brarap

1. Koнrpoль 2. Эпин 3,G9 i G,41 2,95 i G,24 3,45 i G,14 3,31 i G,23 1,G2 i G,21 1,19 i G,16

3.Meдь (0,1мг/л) 4. Meдь + Эпин 7,85 i G,42*** 4,97 i G,47* 6,26 i G,31*** 4,24 i G,12** 4,84 i G,35*** 2,93 i G,41**

5. Фeнoл (1мг/л) 6. Фeнoл + Эпин 6,43 i G,22*** 4,G2 i G,34 7,29 i G,33*** 4,78 i G,23** 3,53 i G,29*** 1,75 i G,27

7. Дerepгeнr (1мг/л) В. Дerepгeнr + Эпин 5,56 i G,13*** 3,37 i G,62 6,G2 i G,47*** 3,81 i G,63 4,23 i G,18*** 2,13 i G,41*

Звездочками отмечены величины, достоверно отличающиеся от соответствующих значений в контроле: * - р<0,05; ** - р<0,01; *** - р<0,001.

Список использованной литературы:

1. Apтеменко A.^ Органическая химия. M.: ВШ, 1994. 560 с.

2. Венчиков A.^, Венчиков ВА. Основные критерии статистической обработки результатов наблюдений в области физиологии. M.: Mедицинa, 1982. 21l с.

3. Гительзон И.И. Исследование крови методами объективной спектрофотометрии. Красноярск, 1954. 12 с.

4. Давыдов В.П., Куликов ВА., Кулешова A.R Каталаза, глютатион и альфоза крови при острой пневмонии у детей младшего возраста // Педиатрия, 19l5. №4. С.31-38.

5. Егоров M.A. Aнтитеppaтогенное воздействие некоторых биологически активных веществ в условиях осетровых рыбоводных заводов //I конгресс ихтиологов России. Тезисы докладов. Mоcквa. Изд-во ВНИРО, 1991. С. 310.

6. Егоров M.A. Исследование изменений активности каталазы крови амфибий и рыб на фоне действия факторов среды и эпибрассино-лида //IV Всерос. науч. конф «Эколого-биологические проблемы Волжского региона и Северного Прикаспия». Acтpaхaнь, ATOy, 2001. С. 10-11.

I. Егоров M.A., Витвицкая Л.В., Тихомиров A.M., Никоноров С.И. Maлевaннaя Н.Н. Влияние «Эпина» на выживаемость русского осетра // Рыбное хозяйство. 1998. N 3-4. С.31-38.

8. Егоров M.A., Загрийчук В.П. Новые направления исследований и некоторые практические пути применения биологически активного вещества эпибрассинолида в рыбоводстве // Наука - производству, N6. Mоcквa, 2001. С. 15-11.

9. Загрийчук В.П. Егоров M.A. Исследование токсикопротекторных возможностей эпибрассинолида на молоди осетровых рыб //Ж. Наука - производству, N6. Mоcквa, 2001. С. 11-19.

10. Кретович ВА. Введение в энзимологию. M., Наука, 1986. 330 с.

II. Maкcименко A3., Тищенко Е.Г. Голубых В.Л. Aнтитpомботичеcкое действие производных каталазы и хондроитинсульфата при артериальном поражении у крыс // Вопросы медицинской химии. Т. 44. Вып. 4. 2000. С. 45-49.

12. Плохинский НА. Биометрия. M., Изд-во M^, 1910. 361 с.

13. Рубаник M^. Катализ и катализаторы. Киев: Наукова Думка, 1965. 181 с.

14. Хрипач ВА., Лахвич ФА., Жабинский В.Н. Брассиностероиды. Mинcк: Наука и техника, 1993. 281 с.

15. Vitvitskaya L.V., Egorov M.A. The еvaluation of biologically active substances influence on sturgeon embriogenesis under unfavorable conditions // ^e Caspian sea science edication tecnologies. International Journal of collected academic articles. Book I. Astrakhan. 1998. P. 104-109.

126 ВЕСТНИК ОГУ 5'2QQ3

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.