CC BY
78
Материалы X съезда ВНПОЭМП, Москва, 12-13 апреля 2012 г.
Инфекция и иммунитет
ев, то в более старших возрастных группах этот показатель был несколько ниже: у детей 3—7 лет — 44%, 8—12 лет — 50%. В группе детей 12—18 лет грибы высевались в 60% случаев. Повышенная обсеменен-ность бактериями (более 104 КОЕ/тампон) наиболее часто выявлялась у детей 3—7 лет (32%) и 8—12 лет (40%). Следует отметить, что в ряде случаев совместно с Candida spp. высевалось значительное количество бактериальной флоры. Так, обсемененность Streptococcus spp. на уровне 104 КОЕ/тампон и выше в сочетании с Candida albicans выявлена у 16 детей (50%), Staphylococcus spp. и Candida albicans — у 6 детей (18,8%). Это свидетельствует о наличии бактериально-грибковой микст-инфекции и требует учета при назначении терапии.
Таким образом, хронические воспалительные заболевания глотки у детей могут быть обусловлены как бактериальной, так и грибковой флорой, что требует проведения углубленной дифференциальной диагностики для учета возможных ассоциаций и назначения рациональной терапии.
ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ЖИДКАЯ ДЛЯ ТРАНСПОРТИРОВКИ МАТЕРИАЛА И НАКОПЛЕНИЯ БРУЦЕЛЛ
С.И. Головнева, Г.И. Лямкин, Д.В. Русанова, Л.С. Катунина, О.Л. Старцева
ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора, г. Ставрополь
Несмотря на широкое распространение современных средств диагностики особо опасных инфекций, в том числе, бруцеллеза «золотым стандартом» в бактериологии остается выделение чистой культуры возбудителя инфекции.
Несмотря на сложную и длительную (до 30 дней) процедуру бактериологического анализа на бруцеллез в Российской Федерации по данным Референс-центра по мониторингу за возбудителем бруцеллеза ежегодно от людей выделяется от 20 до 25 штаммов бруцеллезного микроба.
Для бактериологического исследования на бруцеллез предлагается широкий набор питательных сред лабораторного приготовления, однако зарегистрированы в установленном порядке к настоящему времени 3 среды для культивирования бруцеллезного микроба: питательная среда для выделения и культивирования бруцелл (эритрит-агар) и питательная среда для накопления бруцелл (эритрит-бульон) производства НПО «Питательные среды», (г. Махачкала) и питательная среда для культивирования бруцелл сухая (бруцеллагар) производства ФГУН Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии (п. Оболенск).
Актуальным является разработка и внедрение в бактериологическую практику питательной среды, обеспечивающей ростовые потребности бруцеллезного микроба с сохранением их биологических свойств, имеющую более низкую себестоимость, простую в приготовлении и удобную при использовании.
Нами разработана новая питательная среда для накопления бруцелл, в состав которой входят: питательная основа, содержащая гидролизат говяжьего мяса; натрия хлорид; глицерин; глюкоза; цитрат натрия; липоевая кислота. Среда разлита по 5 мл в стерильные пенициллиновые флаконы, которые закупорены стерильными резиновыми пробками,
завальцованы алюминиевыми колпачками, что позволяет использовать данную среду для транспортировки посевного материала.
Применение питательной среды возможно для исследования проб крови больных с подозрением на бруцеллезную инфекцию, а также проб из других объектов, не контаминированных посторонней микрофлорой (спинномозговая жидкость, костный мозг и др.).
На разработанную питательную среду подготовлена первичная нормативная документация.
К ВОПРОСУ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ БРУЦЕЛЛЕЗА У ЛЮДЕЙ
С.И. Головнева, Г.И. Лямкин, Н.И. Тихенко, Е.А. Манин, Д.В. Русанова, С.В. Вилинская
ФКУЗ Ставропольский противочумный институт Роспотребнадзора, г. Ставрополь
Лабораторная диагностика бруцеллеза в Российской Федерации (РФ) проводится в соответствии с МУ 3.1.7.1189-03 «Профилактика и лабораторная диагностика бруцеллеза людей» с использованием серологических, бактериологического, аллергического и мол екулярно-генетического (ПЦР) методов исследования. Для их осуществления разработаны и зарегистрированы в установленном порядке следующие препараты: «Диагностикум бруцеллезный жидкий для реакции агглютинации, суспензия для диагностических целей»; «Иммуноглобулины диагностические флуоресцирующие бруцеллезные сухие, лиофилизат для диагностических целей»; «Аллерген бруцеллезный жидкий (бруцеллин), раствор для внутрикожного введения»; «Набор реагентов тест-система диагностическая для выявления возбудителя бруцеллеза в иммуноферментном анализе (ИФА) («ИФА-Бру-СтавНИПЧИ»)»; «Бактериофаги диагностические бруцеллезные жидкие (Tb, Wb, Bk, Fi)»; «Набор реагентов для выявления ДНК бактерий Brucella spp. в биологическом материале и культурах микроорганизмов методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с гибридизационно-флуоресцентной детекцией «АмплиСенс Brucella spp.-FL», «Тест-система для выявления ДНК Brucella ssp. методом ПЦР» («Ген-Бру»).
Анализ работы лабораторий особо опасных инфекций (ООИ) ФБУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии» («ЦГиЭ») в субъектах РФ в 2009—2011 гг. по лабораторной диагностике бруцеллеза, проведенный Референс-центром по мониторингу за возбудителем бруцеллеза (ФКУЗ Ставропольский противочумный институт) показал, что наиболее доступными и распространенными остаются серологические методы (реакции агглютинации по Хеддельсону и по Райту, ИФА, РНГА), которые используются практически во всех лабораториях ООИ ФБУЗ «ЦГиЭ», включая филиалы. Сохраняется тенденция к снижению количества бактериологических исследований материала от больных людей. За период с 2009 по 2011 гг. в лабораториях ООИ от людей изолировано 65 штаммов возбудителя бруцеллеза (в Республике Калмыкия — 16 штаммов, Республике Тыва — 16, Республике Дагестан — 5, Оренбургской области — 6, Омской области — 21, Орловской области — 1 штамм), идентифицированные как Brucella melitensis.
Представляется перспективным дальнейшее внедрение ПЦР и ИФА в лабораторную практику, нала-
2012, Т. 2, № 1-2
Современное лабораторное обеспечение.
живание коммерческого выпуска ИФА тест-системы для выявления антител к возбудителю бруцеллеза, поливалентной и моноспецифических (anti-abortus и anti-militensis) сывороток для внутривидовой дифференциации бруцелл, питательной среды жидкой для транспортировки материала и накопления бру-целл.
ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ КОКЛЮША В г. САМАРЕ
Л.Н. Голубчикова, Е.М. Меркулова, О.М. Ревтович
Управление Роспотребнадзора по Самарской области, г. Самара
Динамика заболеваемости населения г. Самары коклюшем в период с 2001 по 2011 гг. не отличается от типовой кривой, характерной для эпидемического процесса данной инфекции. При волнообразном течении эпидемического процесса на протяжении означенного периода наиболее высокие показатели заболеваемости были зарегистрированы в 2003 г. (6,08 на 100 тыс. населения) и в 2007 г. (7,35 на 100 тыс. населения).
В 2007 и в 2009 годах эпидемический процесс коклюша проявлялся в форме круглогодичной заболеваемости. В 2008 г., 2010 г. и 2011 г. заболеваемость носила сезонный характер. Эпидемический процесс развивается на фоне высоких показателей привито-сти детского населения города. Так, в 2011 г. охват своевременной вакцинацией в возрасте 12 мес. составил 98,1%; охват своевременной ревакцинацией в возрасте 24 мес. составил 98,4%.
Очередной подъем заболеваемости коклюшем в г. Самаре начался в августе 2010 г. и продолжился в 2011 г. Показатель заболеваемости 2010 г. (3,26 на 100 тыс. населения) в 3,7 раза превысил аналогичный показатель 2009 г. (0,88 на 100 тыс. населения), в свою очередь, показатель заболеваемости коклюшем 2011 г. (11,64 на 100 тыс. населения) в 3,6 раза превысил показатель 2010 г. Наиболее пораженным контингентом по-прежнему являются дети. На долю детского населения (0—14 лет) в течение анализируемого периода пришлось от 89,2% случаев заболеваний (2010 г.) до 100% случаев заболеваний (2009 г.). Наиболее высокий показатель заболеваемости стабильно регистрируется в группе детей первого года жизни и значительно превышает аналогичные показатели в других возрастных группах. Так, в 2011 г. интенсивный показатель заболеваемости детей первого года жизни был выше показателя заболеваемости в других возрастных группах детей: в 4,6 раза — в сравнении с группой 1—2 года, в 8,9 раза — в сравнении с группой 3—6 лет, в 7 раз — в сравнении с группой 7—14 лет и в 19,7 раз — в сравнении с группой 15—17 лет. В большей степени заболеванию коклюшем подвержены не привитые лица. На их долю пришлось 65% от всех случаев заболеваний, зарегистрированных в течение последних пяти лет. Признак организованности не имеет определяющего значения при вовлечении в эпидемический процесс детей младших возрастных групп. В 2011 г. в возрастной группе 0—2 года 100% заболевших были неорганизованными; в возрастной группе 3—6 лет доля неорганизованных составила 50% от количества заболевших.
На современном этапе необходимо уделять пристальное внимание как вопросам максимально полного охвата детей иммунизацией, так и повышению
эпидемиологической настороженности врачей с целью обеспечения ранней диагностики коклюша.
МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЕ АСПЕКТЫ ЭТИОЛОГИИ И ПАТОГЕНЕЗА ЭНДОГЕННЫХ БАКТЕРИАЛЬНЫХ ИНФЕКЦИЙ ЧЕЛОВЕКА
В.А. Гриценко, Я.В. Гриценко
Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза УрО РАН, г. Оренбург
Эндогенные бактериальные инфекции (ЭБИ) — инфекционно-воспалительная патология, возбудителями которой выступают потенциально патогенные микроорганизмы, входящие в качестве ассоциативных симбионтов (комменсалы) в состав естественных микробиоценозов тела человека. Распространенность и вариабельность нозологических форм указанной патологии определяют ее медико-социальную значимость и междисциплинарный характер.
С учетом локализации воспаления выделяют две группы ЭБИ (Гриценко В.А., Иванов Ю.Б., 2009): 1 — заболевания, при которых в патологический процесс вовлечены органы, где исходно обитает возбудитель (тонзиллит, колит, вагинит и др.); 2 — заболевания внутренних органов в результате их инфицирования патогенами с проявлениями местного и системного воспаления, нарушений микроциркуляторного и общего кровообращения, сдвигов хемо- и цито-кинового статуса и нейроэндокринной регуляции, активации адаптивного иммунного ответа (инфекции урогенитального тракта и желчевыводящих путей — пиелонефрит, простатит, сальпингоофорит, холецистит, холангит; сепсис, абсцессы; некоторые нозокомиальные и перинатальные инфекции, и др.). Приоритетными этиологическими агентами ЭБИ 2 группы являются энтеробактерии и стафилококки, хотя в разряд проблемных патогенов входят бак-териоды, энтерококки и другие представители обли-гатной и факультативной (иногда — транзиторной) аутофлоры. Универсальная схема патогенеза таких ЭБИ включает следующие ключевые этапы: премор-бидный, транслокация, колонизация, альтерация, санация или персистенция, а основными факторами риска выступают стрессовые воздействия (не зависимо от их природы) и дисбиотические сдвиги собственной микрофлоры (не зависимо от их генеза), инициирующие и потенцирующие процесс транслокации бактерий во внутреннюю среду организма и приводящие к инфицированию паренхиматозных органов (Гриценко В.А., 2006). При этом главным атрибутом возбудителей ЭБИ является их патогенный потенциал, способный обеспечить выживание бактерий на всем протяжении развития заболевания и, прежде всего, на этапах транслокации, альтерации и персистенции при неминуемом контакте с гуморальными и клеточными эффекторами иммунитета макроорганизма. Его «каркасом» служит комплекс разнообразных факторов бактериальной персистен-ции, включающий устойчивость к лейко- и тром-бодефенсинам, серорезистентность, ^А-протеазы, антилизоцимный, антиинтерцидный, антикомплементарный и другие персистентные характеристики (Бухарин О.В., 1999). Важное патогенетическое значение этих свойств микроорганизмов в развитии ЭБИ подтверждается их высокой информативностью при диагностике многих вариантов данной патологии.
