Научная статья на тему 'К методике выделения В. coli и "патогенных микробов из воды при помощи мембранных ультрафильтров'

К методике выделения В. coli и "патогенных микробов из воды при помощи мембранных ультрафильтров Текст научной статьи по специальности «Промышленные биотехнологии»

CC BY
29
7
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
Журнал
Гигиена и санитария
Scopus
ВАК
CAS
RSCI
PubMed
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.
iНе можете найти то, что вам нужно? Попробуйте сервис подбора литературы.
i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.

Текст научной работы на тему «К методике выделения В. coli и "патогенных микробов из воды при помощи мембранных ультрафильтров»

Для этого работающий должен следить за показанием' манометра в течение всего времени, пока формалин продолжает выпариваться. Кроме того, во всех случаях работы на старых камерах, если позволяет время, испарение формалина производить при давлении пара в 1 атмосферу, но более длительно, чем при давлении в 2 атмосферы. ,

5. Воспретить работать на камерах в зимнее время при неправильном их положении — сильных наклонах в ту или иную сторону.

6. При установке дезкамер на зимнее хранение после испытания и использования их в летнее врем« обязательно проверять части на содержание в них воды. С этой целью увлажненные и доступные части дезкамер необходимо смазать жиром, а в насос налить керосин или денатурированный спирт. „ I ,)

с1 Проф. Л. И. МАЦ

К методике выделения В. соН и "патогенных микробов из воды при помощи мембранных ультрафильтров

Из Центрального санитарного института им. Эрнсмана

Возможность быстрой диагностики санитарного и эпидемического состояния водоисточников занимает видное место в системе противоэпидемических мероприятий и санитарного оздоровления водоема. Однако диагностика микробов кишечной палочки —микроорганизма, показательного для санитарного состояния водоема, и в особенности непосредственное выделение патогенных микробов из воды встречают до сих пор значительные затруднения.

Определение микробов кишечной палочки в воде с помощью элективных жидких сред несовершенно либо вследствие неполной электив-ности предложенных оред, либо вследствие задерживающего действия входящих в среды ингредиентов (краски) на микробы кишечной палочки, либо, наконец, вследствие антагонизма развивающихся в этой среде разных видов микробов. Кроме того, расчеты количества микробов кишечной палочки, основанные на условном! допущении равномерного рас. пределения бактерий в воде, также неудовлетворительны. Вычисление титра кишечной палочки при помощи таблиц, разработанных на основе математической обработки (по теории вероятностей) всех отрицательных и положительных находок, несомненно, более совершенно, но тоже приблизительно. Длительность времени исследования воды на жидких средах является также одним из главных недостатков этого метода.

Методы непосредственного выделения бактерий при помощи прямого посева на твердые питательные среды полностью исключают ©се те явления, которые приводят к извращенной картине соотношения бактериальных групп, получающейся при посеве на жидкие среды накопления о последующим высевом! на твердые среды. Учет коли-груп-пы на твердой среде дает более полное выделение видов кишечной палочки, более точные цифры и притом на сутки раньше, чем при посеве на жидкую среду накопления.

Метод прямого подсчета колоний кишечной палочки, выделенных при помощи мембранных фильтров, предложенный советскими ученым« (Ворошилова, Дианова и проф. Разумов) и разработанный бактериологами Рублевской водопроводной лаборатории, дает возможность производить анализ воды в более короткий срок и с большей точностью.

В институте им. Зрисмяна (Суражевскап и Россовская) проведено за 1938—1940 гг. 514 параллельных исследований речных, колодезных, артезианских и водопроводных вод при помощи мембранных фильтров и метода накопления.

Выяснилось, что применение мембранных фильтров не только возможно для бактериологического анализа воды различного происхождения, но дает в среднем, на 20% больше высева кишечной палочки, Кроме того, применение мембранных фильтров ускоряет анализ на 24 часа и дает возможность прямого подсчета колоний кишечной палочки.

Для вод речных, колодезных, артезианских скважин и водопроводов, где кишечная палочка определяется в больших объемах воды и где вместе с бактериями на фильтре откладывается значительное количество загрязнений (планктон, органические вещества, соли окиси железа и т. п.), мешающие выявлению кишечной палочки при выращивании фильтра на среде Эндо, необходимо предварительно профильтровать взятые большие объемы воды через планктонный мембранный фильтр, задерживающий всякие загрязнения, но пропускающий в значительной степени кишечную палочку. Вторичное пропускание полученного фильтра через обычный мембранный фильтр выявляет кишечную палочку. Проращиванию подлежат оба. фильтра. Для заглушения сопровождающей сапрофитной микрофлоры наилучшим способом является выращивание фильтров на среде Эндо или среде.с конгорот при 43—45°. Для предохранения среды от высыхания необходимо поместить чашки с посевами в эксикатор, на дно которого положена вата, смоченная водой и отжатая.

Выращивание необходимо производить на среде Эндо с рН = 7,5 или среде конгорот с рН = 7,5—7,6.

Атипичные колонии кишечной группы (из грамотрицательных палочек) должны идентифицироваться наравне с типичными колониями кишечной палочки, так как при непосредственном высеве на твердые питательные среды выделяется значительно большее количество видов бактерий кишечной группы, чем при проведении через жидкие среды обогащения.

Существующие методы выделения патогенных микробов из воды при помощи коагуляции, фильтрования, отстаивания, осаждения и применения агглютинирующих сывороток крайне громоздки и дают чрезвычайно редко удовлетворительный ответ.

В институте им. Эрисмана выделение тифозных, паратифозных и ан-тракоидных микробов из питьевой воды производят при помощи ультрафильтров. С этой целью 500 см0 исследуемой воды пропускают через ряд ультрафильтров, но не более 50 см0 воды через один ультрафильтр.

По окончании фильтрации ультрафильтры переносят на чашки Петри с питательной средой.

В случае анализа воды, содержащей значительное количество взвешенных частиц, коллоидов или опалесцирующих, применяется предварительное фильтрование через планктонный мембранный фильтр с последующим пропуском фильтрата через бактериальный ультрафильтр. Проращиванию подлежат оба фильтра.

Наилучшей средой для выращивания тифозных и паратифозных микробов, осажденных на ультрафильтрах, является модифицированная 1ДИЭМ среда Вильсон-Блера, так называемая сухая среда ЦИЭМ№1.

На ультрафильтрах с осажденными микробами, перенесенных на сухую среду № 1, уже через 18—20 часов инкубации при +37° появляются характерные черные колонии в случае наличия тифозно-парати-фозных микробов.

Пробная агглютинация подозрительной колонии с соответствующими

3 Гигиена и здоровье, № 11—12

сыворотками дает предварительный ответ. При положительной реакции изучение культуры продолжается.

В институте им. Эрисмана проведено 104 анализа воды, экспериментально зараженной различным количеством микробов паратифа В и брюшнотифозной палочки, а также воды, присланной для анализа на присутствие тифозно-паратифозной группы.

Анализы показали, что метод выделения тифозно-паратифозных ми-кробоз из питьевой воды при помощи ультрафильтров вёсьма чувствителен (с процентом высеваемости от 40 до: 100) даже для вод со значительной сапрофитной микрофлорой и ничтожным содержанием палочек тифа или паратифа.

Наблюдения (Саламандра и Тукалевская) за речными пробами воды, присланными в течение года, показали, что обычной методикой паратифозные палочки обнаруживаются только в течение одного месяца. При помощи ультрафильтров паратифозные палочки выделялись 74/г месяцев.

Методика выделения кишечно-тифозной группы микробов из воды при помощи мембранных ультрафильтров должна быть широко внедрена в практик^ са;;итарно-бактериологических лабораторий.

Е. Д. ОВЧИННИКОВА (Москва)

/^х

Эффективный метод борьбы с головной вшивостью

Из Центрального научно-исследовательского дезинфекционного института

НКЗдрава СССР

Несмотря на наличие значительного количества дезсредств, применяемых в борьбе с головной вшивостью, мы все же до настоящего времени не имеем ни одного препарата, который бы действовал эффективно, так как большинство ,этих средств, иногда весьма простых (керосин, ксилол, сольвент)* хорошо убивает взрослых насекомых, но не действуют достаточно быстро на гнид. Кроме того, многие из них обладают рядом отрицательных свойств. Так, например, ксилол делает волосы ломкими, сольвент иногда вызывает раздражение кожи, и т. д. Помимо того, большинство этих средств огнеопасно.

Главная задача настоящей работы — найти средство, которое убивало бы не только вшей, но и гнид и растворяло бы клейкое вещество, которым гниды приклеиваются к волосам.

С этой целью нами были испытаны следующие средства: скипидар, керосин и его модификации, и средство, предложенное МДИ (состав его следующий: скипидар очищенный 35%, кальцинированная сода 35%, мыло 30%). Были испытаны также сольвентиая паста, флицид, спирты — изоамиловый, бутиловый, метиловый и пиретриновые препараты. )

В наших работах 1936 г. мы установили, что уксусная кислота в концентрациях 5, 10 и 15% безвредна для кожи человека и даже 25°/> кислота не вызывает раздражения кожи головы. Действие уксусной кислоты 15 и 25% крепости мы проверили у себя на коже рук и головы и не получили раздражения. Под влиянием уксусной кислоты крепость клейкого вещества ослабляется в значительной степени, и гниды легко снимаются с волос.

i Надоели баннеры? Вы всегда можете отключить рекламу.