CC BY
13
19. Николаев А.А., Одениязова М.А. Иммунологический анализ мочи при преэклампсии // Международный журнал прикладных и фундаментальных исследований. 2016. №6-5. С.871-874. [Nikolaev A.A., Odeniyazova M.A. Immunochemical studies of urine in preeclampsia. Mezhdunarodnyi zhurnal prikladnykh i fundamental 'nykh issledovaniy. 2016; 6-5: 871-874. (In Russ.)]
20. Мельник Е.В., Малолеткина О.Л., Шилкина Е.В. Биохимические параметры околоплодных вод при дистрессе плода в родах // Журнал акушерства и женских болезней. 2016. Т.65. №5. С.33-40. [Mel'nik E.V., Maloletkina O.L., Shilkina E.V. Biochemical parameters of amniotic fluid in fetal distress during delivery. Journal of Obstetrics and Woman Disease. 2016; 65(5): 33-40. (In Russ.)] DOI: 10.17816/ J0WD65533-40.
21. Габриэлян Н.И., Липатова В.И. Опыт использования показателя средних молекул в крови для диагностики нефрологических заболеваний у детей // Лабораторное дело. 1984. №3. С.138-140. [Gabrielyan N.I., Lipatova V.I. Opyt ispol'zovaniya pokazatelya srednikh molekul v krovi
dlya diagnostiki nefrologicheskikh zabolevanii u detei. Laboratornoe delo. 1984; (3): 138-140. (In Russ.)]
22. Цапок П.И., Еликов А.В., Коротких И.С. Метод определения содержания аскорбиновой кислоты / Инф. листок № 82-96. Кировского ЦНТИ. Киров. 1996; 3 с. [Tsapok P.I., Elikov A.V., Korotkikh I.S. Metod opredeleniya soderzhaniya askorbinovoy kisloty. Kirov: Informatsionnyi listok Kirovskogo TsNTI. 1996; (82-96). 3 p. (In Russ.)]
23. Конторщикова К.Н. Перекисное окисление ли-пидов в норме и патологии. Н.Новгород. 2000; 24 с. [Kontorshchikova K.N. Perekisnoe okislenie lipidov v norme i patologii. Nizhniy Novgorod: NGMA Publ; 2000. 24 p. (In Russ.)]
24. Кан Н.Е., Салпагарова З.Х., Тютюнник В.Л., Ши-пицына В.С., Красный А.М. Содержание про- и антиокси-дантов в капиллярной крови при преждевременных родах // Акушерство и гинекология. 2022. №1. С.56-61. [Kan N.E., Salpagarova Z.Kh., Tyutyunnik V.L. et al. Prooxidant and antioxidant content in capillary blood in preterm birth. Akusherstvo i ginekologiya. 2022; 1: 56-61. (In Russ.)] DOI: 10.18565/aig.2022.1.56-61.
УДК 616-001.17-092.9 DOI 10.24412/2220-7880-2023-2-69-74
ИЗУЧЕНИЕ ВЛИЯНИЯ ПРЕПАРАТОВ-СТИМУЛЯТОРОВ НА РЕГЕНЕРАЦИЮ КОЖИ ПРИ ТЕРМИЧЕСКОЙ ТРАВМЕ
'Жданова О.Б., 'Дунаева Е.Б., 2Бизяев П.Д., 'Вишняков А.В., 3Акаева Т.В.
'ФГБОУ ВО «Кировский государственный медицинский университет» Минздрава России, Киров, Россия (610027, г. Киров, ул. Карла Маркса, 112), e-mail: oliabio@yandex.ru 2«Агропромсельхозснаб», Россия (249665, Калужская обл., с. Асмолово, ул. Мира, 12)
3Центр регенеративной медицины «Жизненная сила», Москва, Россия (115191, Москва, ул. Малая Тульская, 24)
Цель исследования: оценка эффективности местного лечения ожогов на основе применения экспериментальных образцов препаратов - стимуляторов регенерации. В исследовании использовались беспородные белые крысы-самцы (18 голов), 3 группы были сформированы методом аналогов (№ 1 - контрольная, без лечения, и две опытные, группа № 2 получала препарат ПСР-1, группа № 3 - ПСР-2). После термической травмы проводились планиметрия и гистологические исследования в динамике. Количественные данные, полученные в эксперименте, обрабатывались с использованием методов вариационной статистики. Определялись средняя арифметическая, ошибка средней арифметической, уровень значимости (p<0,05) различий средних величин оценивался на основании t-критерия Стью-дента. Было выявлено, что после воздействия горячей пробирки на кожу примерно течение 30 секунд в месте контакта формировался участок сухого коагуляционного некроза со струпом белесоватого цвета - мягкой тонкой корочкой. Процессы регенерации у животных опытных групп были выражены уже к 10-му дню по сравнению с контрольной группой, а к 21-м суткам эпителий и дерма имели фактически нормальное строение у животных, получавших препараты ПСР-1 и ПСР-2.
Ключевые слова: регенерация, термическая травма, эпителий, фибробласты, планиметрия.
STUDY OF STIMULATING EFFECT OF DRUGS ON SKIN REGENERATION OF THERMAL INJURIES
'Zhdanova O.B., 'Dunaeva E.B., 2Bizyaev P.D., 'Vishnyakov A.V., 3Akaeva T.V.
'Kirov State Medical University, Kirov, Russia (610027, Kirov, K. Marx St., 112), e-mail: oliabio@yandex.ru 2Agropromselkhoznab (249665, Kaluga region, Asmolovo village, Mira St., 12)
3Center for Regenerative Medicine «Vital force», Moscow, Russia (115191, Moscow, M. Tul'skaya St., 24)
The purpose of the study is to estimate the effectiveness of local treatment of burns with experimental drugs stimulating regeneration. Mongrel white male rats (n=18) were involved. 3 groups were formed (1 control and 2 experimental groups). Group 2 received the drug PSR-1, group 3 received PSR-2. After the thermal injury, the effect of the drugs was evaluated in dynamics using planimetry and a histology. The quantitative data obtained in the experiment were processed using variational methods. The arithmetic mean and the arithmetic mean error were determined; the significance level of differences in the mean values was estimated using the Student's t-test for the confidence level (p<0.05). It was found that after exposure to a hot test tube on the skin
for about 30 minutes, coagulation necrosis with a dry scab - a white soft crust - was formed at the place of the contact. Regeneration processes in animals of the experimental groups were noticed by the 10th day compared with the control group. By the 21st day, the structure of the epithelium and dermis had actually regenerated in animals treated with PSR-1 and PSR-2.
Keywords: regeneration, thermal injury, epithelium, fibroblasts, planimetry.
Введение
Пирогенная ситуация, приводящая к термическим травмам, находится в зависимости от комплекса негативных факторов (алкоголизм, наркомания, криминализация общества, технические аварии и катастрофы). Ежегодно более 10 миллионов человек в мире получают ожоги такой степени тяжести, что требуется медицинская помощь, и нередко становятся причиной инвалидности [1]. Термическая травма (TT) может быть обусловлена воздействием бытовых, производственных и военных термических повреждающих факторов. Изучение эффективных способов терапии TT актуально в контексте необходимости снижения экономического бремени на нехирургическое и хирургическое лечение термической травмы и ее последствий, а также на непрямые экономические затраты на реабилитацию пациентов, перенесших термическую травму. В этой связи проблема восстановления кожного покрова при ожогах и поиск оптимальных терапевтических средств для лечения TT остаются крайне актуальными [1, 2]. Особое внимание в терапии TT привлекают биоактивные раневые покрытия, к которым относятся материалы на основе биологически активных полимеров природного происхождения, таких как гиалуроновая кислота, альгинаты и др. (Derma Col (DermaRite, ОША), Algiœll (Derma Srierces, CmÂ), Algisite (Smith&Nephew, Великобритания), Cutimed alginate (BSN medkal GmbH, Германия) и др.), которые могут модулировать клеточные сигналы, рост, дифференциацию клеток в области повреждения. Эти раневые покрытия используется при ожогах первой и второй степени, а также при других поражениях кожи, и крайне востребованы в настоящее время [1-3]. Tаким образом, введение в раневые покрытия стимуляторов регенерации крайне актуально, в этой связи была предпринята попытка изучения регенеративного процесса при экспериментальном воспроизведении TT с использованием препаратов стимуляторов регенерации (ПСТ): ПСТ-1 - лиофилизированная бластема тритона с электромагнитной обработкой и ПСТ-2 -препарат из фибробластов, обработанных аппаратом электро-, магнито- и светотерапии «ИMЕДИC-ЭКCПЕРT», Регистрационное удостоверение № ФC 022а2005/2263-05 от 16 сентября 2005 г. и [3, 4].
Цель исследования: оценка эффективности местного лечения ожогов на основе применения экспериментальных образцов ПСТ-1 и пCР-2 в эксперименте.
Задачи исследования: изучить эффективность применения опытных образцов ПСТ-1 и ПСТ-2 в сравнении для лечения ожоговых ран у лабораторных животных при оценке общего состояния животных и планиметрического исследования и оценить эффективность регенераторного процесса при применении ПСТ в эксперименте.
Материал и методы
Исследования проводили в соответствии с правилами качественной лабораторной практики при
проведении доклинических исследований в РФ (Приказ Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации от 23 августа 2010 г. № 708н), а также правилами и Международными рекомендациями Европейской конвенции по защите позвоночных животных, используемых при экспериментальных исследованиях (1997 г.).
Экспериментальную часть проводили в медико-биологическом центре биомоделирования ФГБОУ ВО Кировского ГМУ Минздрава России.
Исследование проводилось на 18 беспородных белых крысах-самцах массой от 280 до 320 грамм. Животные содержались в общепринятых условиях: температура воздуха +20-22 °С, влажность 55-60%. Содержание индивидуальное, подстил в виде древесных пеллет и стружки. Кормление экспериментальных животных производилось полнорационными гранулированными комбикормами, обеспечивался свободный доступ животных к воде. Моделирование эксперимента проводили на основании результатов научных работ, направленных на создание оптимальной методики воспроизведения ожога на лабораторных животных [5, 6].
В день, предшествующий моделированию патологии, удаляли шерсть с межлопаточной области крысы путем выстригания и выбривания безопасной бритвой. Для моделирования патологии животное вводили в наркоз (эфир). После введения животного в наркоз, моделировали термический ожог: пробирку заполняли горячей водой, помещали ее вертикально в кипящую воду на 2/3 высоты, прогревали в течение 1 минуты и затем приводили в плотный контакт с оголенным участком кожи животного, находящегося под действием наркоза, на 30 секунд. Полученная рана соответствовала II-III степени ожога. Затем экспериментальные животные были разделены на три группы равной численности: контрольную (воспроизводили термическую травму без лечения) и опытные (аналогичные контрольной, но с дополнительным введением препаратов ПСР-1 - 2-я группа и ПСР-2, соответственно 3-я группа. Животным контрольной и 2-й и 3-й групп наносили ТТ по разработанной ранее методике [5-7], включающей контактный термический ожог кожи спины (площадь до 10% поверхности тела). Лечение начинали сразу - на раневую поверхность животных 2-й и 3-й опытных групп наносились образцы мази. Продолжительность лечения животных составляла 21 сутки. Лечебные манипуляции заключались в ежедневном трехразовом нанесении мази на раневую поверхность лабораторным животным с ожогами и выпойкой соответствующих препаратов в количестве 1 мл на животное 1 раз в день.
Эффективность местного лечения ожоговых ран оценивали по методике Л.Н. Поповой [7]. При подсчете использовали формулу:
5 = !>+-£■)-С:
где п - количество полных ячеек размером 1x1 мм2; к - количество неполных ячеек размером 1x1 мм2; С - площадь одной ячейки размером 1x1 мм2. На седьмые, десятые, четырнадцатые и двадцать первые сутки вновь измеряли раны. Изменение площади раны в ходе заживления считали с помощью формулы:
№ 2 несколько меньше выражен клеточный отек. Наблюдается локальное отделение струпа от поверхности раны.
AS =
(s0-st)-m%
где So - площадь раневой поверхности при предшествующем измерении; St - площадь раневой поверхности через промежуток времени t. Животных из эксперимента выводили методом ингаляции эфирных паров, были взяты фрагменты участка ТТ и здоровой ткани для приготовления гистологических препаратов. Парафиновые гистологические срезы проводили по общепринятым стандартным методикам. Использовали окраску гематоксилином и эозином. Фотографирование проводилось с применением системы Vision Bio (Epi 2014 г.). Полученные экспериментальные данные обработаны статистически. Определялись средняя арифметическая, ошибка средней арифметической, уровень значимости (p<0,05) различий средних величин оценивался на основании t-критерия Стьюдента.
Результаты исследований
Все экспериментальные животные моделирование патологического процесса перенесли хорошо и вернулись к привычной активности. Гибель животных до завершения эксперимента не наблюдали.
После моделирования ожоговой раны формировался некротический участок. Площадь смоделированной раны в среднем составила 395,18 ± 13,08 мм2. На четырнадцатые, двадцать первые сутки отбирали образцы кожи у животных всех групп. Проведенные планиметрические исследования показали, что у экспериментальных животных при применении терапии восстановительные процессы протекали намного быстрее, чем в контрольной группе. В первые сутки после ожога во всех группах ожоговая рана имела четкие границы с утолщением и уплотнением ожогового струпа. Цвет струпа в опытных группах буровато-коричневый, на ощупь плотный, при надавливании экссудата не отмечалось, в контрольной группе кожа в месте ожога красновато-бурого цвета, имеется отечность. На десятые сутки у всех животных 1-й опытной и у 25% 2-й группы наблюдается отхождение раневых струпов по краям ожоговой раны (рис. 1). При надавливании экссудат не выделяется.
Гистологические исследования на 10-е сутки после моделирования ожога во всех исследуемых препаратах выявляли истончение эпидермиса и выраженную зону некроза (гомогенный пласт), которая отграничивалась грануляционной тканью. Волосяные фолликулы разрушены, над ними имеются некротические массы. В строме наблюдается отек, с умеренной лейкоцитарной инфильтрацией, коллагеновые волокна утолщены. В гиподерме также отмечаются выраженная гиперемия, отек и диффузная воспалительная инфильтрация. У животных контрольной группы по сравнению с животными опытных групп инфильтрация более выражена, особенно на границе дна раны и струпа. Также отметили, что на 10-е сутки в группе
Рис. 1. Планиметрические исследования на 10-й
(1а, 2а, 3а) и 21-й день (1б, 2б, 3б) после термической травмы (1а, б - группа, получавшая ПСР-2; 2а, б - группа, получавшая ПСР-1; 3а, б -группа без лечения)
К четырнадцатым суткам вид раны у экспериментальных животных значительно отличался от контрольных животных. Так в группе № 2 у всех животных раневой струп практически отошел. Раневой струп у животных группы № 3 по всему диаметру раны отошел, но держался на поверхности раны. У животных контрольной группы визуально рана мало изменилась по сравнению с 10 сутками (рис. 1.1а, рис. 1.2а, рис. 1.3а). К 21 суткам у животных опытной группы № 2 ожоговые раны почти зажили и имели небольшую площадь. У животных 3-й группы также начинается отхождение раневой корки по краям, более интенсивное по сравнению с контрольной. Выделение экссудата в 1-й и в 3-й группах также не отмечено, однако имеются гиперемия и отек, которые отсутствуют в опытной группе, получавшей ПСР-1 (рис. 1.1б, рис. 1.2б, рис. 1.3б). Таким образом, установлено, что к 21-му дню эксперимента наилучшим терапевтическим эффектом обладал ПСР-1, так как у 80% животных группы, получавшей ПСР-1, струпов не было, а оставшийся у 1 животного имел крайне незначительный размер (рис. 1.2б). У животных 3-й группы, получавшей ПСР-2 частично держались струпы, однако у контрольной группы струпы держались плотнее, также в контрольной группе визуально площадь уменьшилась незначительно (рис. 1.3б). Относительная убыль площади поверхности раны во всех группах после ТТ показана на рис. 3.
Рис. 2. Участок кожи ожоговой раны на 21-е сутки (1а, б - группа без лечения; 2а, б - группа, получавшая ПСР-1; 3а, б - группа, получавшая ПСР-2). Окраска гематоксилин-эозин. Ув.х 40
На 21-е сутки при анализе гистологических препаратов отмечено, что в группе, не получавшей лечения, сосочки дермы значительно сглажены, в виде слегка волнистой линии, кровеносные сосуды дермы расширены. В дерме имеется небольшой отек стромы, на препаратах визуализируются тонкий слой эпителия вокруг волосяных фолликулов и незначительная инфильтрация (рис. 2.1а). На препаратах ТТ кожи в данной группе эпидермис тонкий с небольшим ороговением. В центре среза эпидермис отсутствует, однако в этом месте хорошо выражена грануляционная ткань, с диффузной макрофагальной инфильтрацией. Помимо того, что в дерме сглажен сосочковый слой, также коллагеновые волокна деформированы и утолщены со взаимопараллельным расположением, между волокнами имеются скопления фиброцитов и фибробластов, ядра которых окрашены достаточно интенсивно. Эластические волокна практически не визуализируются (рис. 2.1а, рис. 2.1б). В гистологических препаратах группы ТТ, получавшей ПСР-1, эпидермис кожи имеет большую толщину, чем во всех группах исследуемых препаратов. В подлежащей дерме имеется незначительный отек. На периферии препарата хорошо просматривается типичная диффе-ренцировка на зоны (эпидермис, дерма и гиподерма), что характерно для всех групп, получавших лечение. К 21-м суткам общая динамика регенерации была сходной, однако при детальном анализе гистологических препаратов у исследуемых групп животных отмечено, что в группе, не получавшей лечение, сосочки дермы более сглажены, а кровеносные сосуды дермы расширены, хотя и выявляется ее характераная структура. Волокна соединительной ткани - розового цвета (рис. 2.1а). К 21-м суткам в 3-й группе животных, получавших препарат ПСР-2, исследуемый
участок кожи имеет несколько истонченный эпидермис и слабое ороговение, также имеется небольшой клеточный отек в виде просветления перинуклеар-ных пространств (рис. 2.3б). Сосочки дермы менее сглажены, чем у контрольной группы. У группы, получавшей ПСР-1, имеются умеренная базофилия кол-лагеновых волокон и незначительный отек стромы. В собственно коже коллагеновые волокна несколько утолщены, но меньше, чем в исследуемых препаратах ТТ 2-й группы. Особенно ярко визуализируется регенерация в области волосяных фолликулов, также их эпителий пролиферирует в большей степени, чем в группе, получавшей ПСР-2 (рис. 2).
■ КОНТРОЛЬ
■ ПСР-2
■ ПСР-1
0 10 20 30
Площадь регенерации поверхности раны,%
Рис. 3. Относительная убыль площади поверхности раны после ТТ, %
Обсуждение
Наиболее важным звеном в комплексе процессов регенерации эпидермиса при ТТ является утолщение эпидермального пласта за счет размножения стволовых клеток (СК). Известно, что в эпидермисе имеются два типа клеток, способных к митотическо-му делению и играющих важную роль в регенеративных процессах, это редко делящиеся региональные эпидермальные СК (самоподдерживающиеся, обладающие способностью к дифференцировке клетки ба-зального слоя эпидермиса) и активно пролиферирую-щие транзиторные СК. Клетки первой группы лежат на базальной мембране, они тесно взаимодействуют с ней с помощью полудесмосом и ряда адгезивных молекул. Клетки, образовавшиеся в результате деления этих клеток, формирующие шиповатый слой, также являются субпопуляцией клеток, способных к делению. Этот слой является переходным, то есть эти клетки эпидермиса переходят к терминальной диф-ференцировке. Митотическая активность базальных клеток во время ТТ зависит как от толщины эпителиального слоя, так и от силы повреждающего агента. Процесс регенерации контролируется гормонами и факторами роста, а также зависит от силы повреждающего агента и площади повреждения. В настоящее время активно ведется поиск маркеров регенерации, так как отсутствуют базовые критерии, что затрудняет процесс изучения механизма регенерации и активации эпидермальных стволовых клеток. Известно, что основными маркерами данного процесса являются трансформирующий фактор роста - бета-рецептор типа II и молекула адгезии нервных клеток, которые позволяют проводить точный анализ анатомических регенерирующих отделов волосяных фолликулов [8-10].
Так как СК эпидермиса имеют более простую структуру и меньше органелл, чем основная масса клеток этого слоя, для них характерны очень высокое
14-е сутки 10-е сутки 7-е сутки 1-е сутки
ядерно-цитоплазматическое соотношение и меньшее количество органелл, эти морфологические особенности и лежат в основе идентификации. Однако только морфологические методики не позволяют надежно идентифицировать СК [11-14]. К тому же среди СК волосяного фолликула имеются 2 популяции клеток. Первая из них располагается в дермальном сосочке в самой нижней части волосяного фолликула. Вторая популяция находится в бугорке самого фолликула, располагаясь ближе к его верхней части, и находится перед устьем сальной железы. Размножение и дальнейшая дифференцировка этих клеток дают начало различным типам клеток волосяного фолликула и сальных и потовых желез. При изучении гистологических препаратов обнаружили, что в месте повреждения кожи при ТТ на фоне применения ПСР-1 и ПСР-2 регенерация идет как за счет СК базального слоя, так и за счет СК сосочка волоса и СК волосяного фолликула (рис. 2.2, 2.3), полученные данные вполне согласуются с результатами ряда отечественных и зарубежных исследователей [11, 12]. До сих пор регенераторная активность клеток волосяного фолликула изучена недостаточно. Исследователи University of Pennsylvania обнаружили специфическую особенность СК волосяного фолликула в виде повышения уровня экспрессии протеина цито-кератина-15 [11]. Ранее было показано, что СК бипо-тентны и они способны к перемещениям в эпидермис при регенераторных процессах [14-17]. Также обнаружено, что СК волосяных фолликулов мульти-потентны. Например, при аутотрансплантации волос СК дают начало всем линиям клеток, участвующим в формировании волоса, кроме того, обнаружено, что многочисленные фолликулы были сформированы от дочерних генераций всего одной СК [14,16,18-20].
Таким образом, результаты исследований отечественных и зарубежных исследователей доказывают, что часть клеток волосяных фолликулов являются СК у взрослых млекопитающих. Участие данных клеток в регенераторном процессе было подтверждено гистологическими исследованиями кожи группы животных, получавших ПСР-1, также отмечено усиление роста волос в группе, получавшей данный препарат. Хотя оба исследуемых препарата (ПСР-1 и ПСР-2) оказывают влияние на скорость заживления раны после ТТ, большей эффективностью обладает ПСР-1, вполне возможно, за счет активации СК волосяных фолликулов. Использование данного препарата также может быть эффективным при тяжелых ТТ, сопровождающихся пересадкой кожи для получения наилучшего косметологического и эстетического результата.
Выводы
Таким образом, в результате оценки процесса заживления ран при экспериментальных ТТ с применением образцов мази, содержащих стимуляторы регенерации (ПСР-1, ПСР-2), можно сделать следующие выводы:
1. Стимуляторы регенерации ПСР-1 и ПСР-2 достаточно эффективны для лечения экспериментальных ожоговых ран у белых крыс в сравнении с контрольной группой.
2. При лечении ожоговых ран экспериментальной мазью ПСР-1 сокращается срок заживления ожоговых ран за счет раннего начала эпителизации с вовлечением СК волосяных фолликулов.
Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии явного или потенциального конфликта интересов, связанного с публикацией статьи.
Финансирование. Источник финансирования -средства университетского научного гранта № 02-НИР-2022.
Литература/References
1. Сайт ВОЗ / Центр СМИ / Информационные бюллетени /Ожоги. [WHO. Tsentr SMI. Informatsionnye byulleteni. Ozhogi. (In Russ.)] Доступно по: http://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/ detail/burns. Ссылка активна на 02.12.2022.
2. Шаповалов С.Г. Современные раневые покрытия в комбустиологии // ФАРМиндекс: Практик. 2005. № 8 С. 38-46. [Shapovalov S.G. Modern wound coatings in combustiology. FARMindeks: Praktik. 2005;8:38-46. (In Russ.)]
3. Акаева Т.В., Згурский А.А., Мхита-рян К.Н. Применение управляющих сигналов репарации соединительной ткани при последствиях акне // Традиционная медицина. 2009. №3 (18). С.119-122. [Akaeva T.V., Zgurskiy A.A., Mhitaryan K.N. Application of control signals of connective tissue repair in the consequences of acne. Traditsionnaya meditsina. 2009; 3:119-122. (In Russ.)]
4. Акаева Т.В., Готовский М.Ю., Згурский А.А., Мхитарян К.Н. Управляющий сигнал пролиферации соединительной ткани в терапии акне и возрастных изменений кожи // Тезисы XI Международной конференции «Современные технологии восстановительной медицины и реабилитации». г. Сочи, 11-15 апреля 2010 г. С.21-23. [Akaeva T.V., Gotovskiy M.Yu., Zgursky A.A., Mhitaryan K.N. Upravlyayushchii signal proliferatsii soedinitel'noi tkani v terapii akne i vozrastnykh izmenenii kozhi. Tezisy XI Mezhdunarodnoi konferentsii «Sovremennye tekhnologii vosstanovitel'noi meditsiny i reabilitatsii». Sochi, April 11-15, 2010. P. 21-23. (In Russ.)]
5. Козвонин В.А., Анисимов А.Н., Дунаева Е.Б., Сазанов А.В. Возможность применения соединений перфторуглеродов, гиалуроновой кислоты и коллоидного серебра в новых типах раневых покрытий. Экспериментальное исследование // Вятский медицинский вестник. 2022. №2. С. 67-74. [Kozvonin V.A., Anisimov A.N., Dunaeva E.B., Sazanov A.V. Wound covering. Compounds of perfluorocarbons, hyaluronic acid and colloidal silver. Experimental research. Vyatskii meditsinskii vestnik. 2022;2:67-74. (In Russ.)]
6. Козвонин В.А., Дунаева Е.Б., Куклина С.А. и др. Разработка и оценка эффективности раневого покрытия аэрозольного типа на основе соединений пер-фторуглеродов и компонентов клея БФ-6 в эксперименте // Вятский медицинский вестник. 2022. №4. С. 56-63. [Kozvonin VA., Dunaeva E.B., Kuklina S.A. et al. Ехherimental design and assessment of effectiveness of an aerosol-type wound coating based on perfluorocarbon compounds and BF-6 glue components. Vyatskii meditsinskii vestnik. 2022; 4:56-63. (In Russ.)]
7. Попова Л.Н. Как измеряются границы вновь образующегося эпидермиса при заживлении ран: автореф. дис. <...> канд. мед. наук. Воронеж, 1942. 22 с. [Popova L.N. Kak izmeryayutsya granitsy vnov' obrazuyushchegosya epidermisa pri zazhivlenii ran [dissertation]. Voronezh; 1942. 22 p. (In Russ.)]
8. Cristofalo V.J. et al. Proc. Nat. Acad. Sci USA. 1998 Sept 1; 95(18): 10614-10619.
9. Gilbert S.F. Developmental biology. 11th ed. Sunderland, 2018.
10. Kalabusheva E.P., Vorotelyak E.A. Hair follicle dermal papilla cells as a potential novel source for diabetic wound healing. Wound Repair and Regeneration; Blackwell Publishing Inc. (United Kingdom), № A 8.
11. Cotsarelis G., Sun T.T., Lavker R.M. Label-retaining cells resident in the bulge area of pilosebaceous unit: implications for follicular stem cells, hair cycle, and skin carcinogenesis. Cell. 1990; 61: 1329-37.
12. Morasso M.I., Tomic-Canic M. Epidermal Stem Cells: the cradle of epidermal determination, differentiation and wound healing. Biol. Cell. 2005; 97: 173-83.
13. Liu Y., Lyle S., Yang Z., Cotsarelis G. Keratin 15 promoter targets putative epithelial stem cells in the hair follicle bulge. J. Invest. Dermatol. 2003; 121: 963-8.
14. Sukhinich K.K., Dashinimaev E.B., Vorotelyak E.A., Aleksandrova M.A. Regenerative Effects and Development Patterns of Solid Neural Tissue Grafts Located in Gelatin Hydrogel Conduit for Treatment of Peripheral Nerve Injury. Plastic and Reconstructive Surgery - Global Open, издательство Wolters Kluwer Health (Hagerstown, MD, United States) DOI: 10.1097/G0X.0000000000002610.
15. Claudinot S., Nicolas M., Oshima H. et al. Long-term renewal of hair follicles from clonogenic multipotent stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2005; 102(41): 14677-82.
16. Sukhinich K., Dashinimaev E., Vorotelyak E., Aleksandrova M. Fetal nervous tissue grafts injected in gelatin hydrogel conduits promote peripheral nerve regeneration. FEBS Open Bio Supplement for the 44th FEBS. Congres, Vol. 9. P. 237. DOI: https://doi. org/10.1002/2211-5463.12675.
17. Taylor G., Lehrer M.S., Jensen P.J. et al. Involvement of follicular stem cells in forming not only the follicle but also the epidermis. Cell. 2000; 102(4): 451-61.
18. Morris R.J., Liu Y., Marles L. et al. Capturing and profiling adult hair follicle stem cells. Nat. Biotechnol. 2004; 22(4): 411-7.
19. Tumbar T., Guasch G., Greco V. et al. Defining the epithelial stem cell niche in skin. Science. 2004; 303(5656): 359-63.
20. Tottoli E.M., Dorati R., Genta I., Chiesa E., Pisani S., Conti B. Skin Wound Healing Process and New Emerging Technologies for Skin Wound Care and Regeneration. Pharmaceutics. 2020;12(8):1-30. Available at: https://doi.org/10.3390/ PHARMACEUTICS12080735.
УДК 612.87-053.81 DOI 10.24412/2220-7880-2023-2-74-78
ОСОБЕННОСТИ ПОРОГОВ ВКУСОВОЙ ЧУВСТВИТЕЛЬНОСТИ К ПОВАРЕННОЙ СОЛИ У ЛИЦ МОЛОДОГО ВОЗРАСТА С ВЫСОКИМ НОРМАЛЬНЫМ АРТЕРИАЛЬНЫМ ДАВЛЕНИЕМ И СИМПАТИКОТОНИЕЙ
Частоедова И.А.
ФГБОУ ВО «Кировский государственный медицинский университет» Минздрава России, Киров, Россия (610027, г. Киров, ул. К. Маркса, 112), e-mail: kf17@kirovgma.ru
В исследование были включены практически здоровые обучающиеся 18-21 года (n=298). Были сформированы группы обследуемых: 1) по уровню артериального давления (с оптимальным, нормальным и высоким нормальным давлением); 2) по типу вегетативного тонуса (нормотоники, ваготоники, симпа-тотоники). Проведены сравнительный анализ порогов вкусовой чувствительности к поваренной соли (ПВЧПС) в выделенных группах и оценка корреляционных взаимосвязей ПВЧПС с параметрами гемодинамики. Результаты проведенного исследования показывают, что у лиц с высоким нормальным артериальным давлением выше пороги вкусовой чувствительности к поваренной соли, чем у лиц с оптимальным и нормальным артериальным давлением. При доминировании симпатической системы (симпатикотонии) ПВЧПС выше, чем при нормотонии и ваготонии. Были обнаружены корреляционные взаимосвязи ПВЧПС с уровнем систолического артериального давления.
Ключевые слова: порог вкусовой чувствительности к поваренной соли, вариабельность сердечного ритма, высокое нормальное артериальное давление, симпатикотония, ваготония, нормотония.
FEATURES OF SALT TASTE SENSITIVITY THRESHOLD IN YOUNG PEOPLE WITH HIGH NORMAL BLOOD PRESSURE AND SYMPATHICOTONIA
Chastoedova I.A.
Kirov State Medical University, Kirov, Russia (610027, Kirov, K. Marx St., 112), e-mail: kf17@kirovgma.ru
