CC BY
9
не проходило должного обследования. На момент обращения в ветеринарную клинику наблюдалось увеличение всех доступных пальпации лимфоузлов, животное было сильно истощено.
В мазках большинство лимфоцитов характеризовалось признаками плазматизации: широкой цитоплазмой, перинуклеарным просветлением, а также разрежением хроматиновой субстанции. Ядрышки слабозаметные. Некоторые лимфоциты имели бледное сине-серое цитоплазматическое включение, расположенное рядом с ядром. Фон обильный, содержит большое количество эритроцитов и лимфогранулярных телец (рис. 4). Перечисленные признаки характеризуют неопластический процесс как лимфому лимфоплазмоцитарного типа (лимфома из клеток маргинальной зоны).
Рис. 4 - Ротвейлер, 6 лет, сука. Лимфома маргинальной зоны селезёнки. Лимфоциты: 1 - малый, 2 - средний, 3 - большой; 4 - эритроцит; 5 - лимфогранулярные тельца; 6 - цитоплаз-матические включения; 7 - фагоцитоз лимфо-гландулярных телец. Ок. 20, об. 100. Окраска по Паппенгейму
На основании полученных данных была проведена сравнительная оценка изменений лимфоидных клеток в описанных случаях. Определён комплекс параметров, позволяющих дифференцировать лимфомы от здоровых и реактивных лимфатических узлов.
Выводы. При исследовании цитологического материала разновозрастных собак разных пород
с различными состояниями лимфатических узлов были установлены морфологические признаки, характеризующие каждое из этих состояний. Проведена сравнительная оценка и определён комплекс параметров, позволяющих дифференцировать лим-фомы от здоровых и реактивных лимфатических узлов. Исходя из проделанной работы, можно судить о достаточно высокой эффективности цитологического метода диагностики при исследовании лимфатических узлов. Метод не требует больших затрат материалов и оборудования, а также прост в исполнении и не затратен по времени. Фактически предварительный диагноз можно установить в течение 2 — 3 часов после отбора материала. Всё это делает цитологическую диагностику удобной для первичной диагностики новообразований, также простота метода позволяет применять его даже в рядовых ветеринарных клиниках при наличии в них лаборатории.
Литература
1. Cora, R. The utility of fine needle aspiration cytology in canine lymphadenopaties / R. Cora, A.F. Gal, M. Taulescu, F. Tabaran, R. Vidrighinescu, C. Catoi // Annals of R.S.C.B. 2015. Vol. XIX, Issue 2. P. 47 - 54.
2. Morris J. Small animal oncology. / Morris J., Dobson J. // Blackwell Science. 2001. № 5. P. 228.
3. Valli, V.E. Classification of Canine Malignant Lymphomas According to the World Health Organization Criteria / V.E. Valli, M. San Myint, A. Barthel, D. Bienzle, J. Caswell, F. Colbatzky, A. Durham, E.J. Ehrhart, Y. Johnson, C. Jones, M. Kiupel, P. Labelle, S. Lester , M. Miller, P. Moore, S. Moroff, P. Roccabianca, J. Ramos-Vara, A. Ross, T. Scase, H. Tvedten, and W. Vernau // Veterinary Pathology 48(1), 2011. Р. 198 - 211.
4. Karen M. Young Cytologic Evaluation of Lymph Nodes in Dogs and Cats / Karen M. Young // Proceedings of the SCIVAC Congress, Rimini, Italy, 2007. P. 494 - 495.
5. Kim A. Selting Lymph node cytology What Should & Should Not be There / Kim A. Selting // Today's Veterinary Practice May/June 2014. P. 18 - 22.
6. Ruiz de Gopegui, R. Causes of lymphadenopathy in the dog and cat / R. Ruiz de Gopegui, B. Penalba, Y. Espada // Veterinary Record. 2004. July 3. P. 23 - 24.
7. Vail, David M. Lymphoma in Dogs: Diagnosis & Treatment / David M. Vail // NAVC clinician's brief. 2009. December. Р. 15 - 19.
8. Мазуров В.И. Классификация лимфом, морфология, иммунофенотип, молекулярная генетика неходжкинских лимфом / В.И. Мазуров, Ю.А. Криволапов // Практическая онкология, Т. 5. № 3. 2004. С. 169 - 175.
9. Rose E. Raskin Canine And Feline Cytology: A Color Atlas And Interpretation Guide, Second Edition / Rose E. Raskin, Denny J. Meyer, Copyright 2010, 2001 by Saunders, an imprint of Elsevier Inc. P. 77 - 122.
Источники иннервации половых органов у самок кролика
С.Н.Хохлова, к.б.н., МА. Богданова, к.б.н., АН. Фасахут-динова к.б.н., А.Д.Шишова, соискатель, АА.Мухитов,
соискатель, ГА.Юдич, соискатель, ФГБОУ ВО Ульяновский ГАУ
В доступной литературе данных по комплексному изучению макроморфологии нервов полового аппарата от источников формирования до мест
вступления их в яичники, матку и влагалище, а также изучение особенностей строения и распределения ганглиозных образований в нервных сплетениях у крольчихи мы не нашли.
Материалы и методы исследования. Нами изучены источники иннервации и морфологии нервов половых органов на материале от 15 половозрелых крольчих с помощью тонкой анатомической
препаровки по В.П. Воробьёву под контролем бинокулярной лупы МБС-2. Цифровые данные подвергнуты математической обработке.
Результаты исследования Установлено, что количество узлов в поясничной части пограничного симпатического ствола не всегда соответствует количеству позвонков в этом отделе. Межузловые соединения в краниальной части поясничного отдела симпатического ствола характеризуются большей толщиной, чем в каудальной. Симпатические стволы соединены одной—двумя ветвями с каждым спинномозговым нервом. Висцеральные ветви симпатических стволов на уровне 1 — 4-го поясничных позвонков принимают участие в образовании солнечного, почечного, преаортального и яичникового сплетений, а также в формировании каудального брыжеечного узла. От четвёртого поясничного спинномозгового нерва берёт начало нервная ветвь, которая направляется каудально параллельно правому пограничному симпатическому стволу. На уровне пятого поясничного ганглия эта ветвь получает соединительную веточку от симпатического ствола. Диаметр нерва (0,72 мм) равен диаметру симпатического ствола в поясничной части. Одной ветвью нерв направляется к запи-рательным мышцам таза, а второй — к широкой маточной связке [1, 2].
Между последним поясничным узлом и первым крестцовым нервом, а также саркальными ганглиями симпатических стволов обеих сторон отмечены поперечные связи.
Солнечное сплетение расположено на уровне 1 — 2-го поясничных позвонков на краниальной брыжеечной и чревных артериях и полой вене. В состав сплетения входят непарный краниальный брыжеечный узел подковообразной формы, два чревных узла неправильной четырёхугольной формы, вытянутой в краниальном направлении, и 3 — 4 узелка округлой формы, размером в просяное зерно. Сплетение служит источником образования преаортального, почечного, яичникового сплетений [3, 4]
Преаортальное сплетение у крольчихи расположено на вентральной, дорсальной, латеральной поверхностях аорты, на уровне 2 — 6-го поясничных позвонков. Сплетение образовано висцеральными ветвями от второго —пятого поясничных ганглиев пограничного симпатического ствола, от правого чревного, краниального брыжеечного и почечного узлов солнечного сплетения. В краниальной части преаортального сплетения, на уровне 3 — 5-го поясничных позвонков расположены 3 — 4 нервных узелка четырёхугольной, треугольной, веретенообразной формы, а в каудальной части у основания каудальной брыжеечной артерии постоянно локализируется непарный каудальный брыжеечный узел веретенообразной формы. Размер узла (4,6^8,5 мм). Через преаортальное сплетение узел связан с симпатическим стволом, с почечными
и солнечным сплетениями. В свою очередь от узла отходит множество нервных ветвей:
а) 2 — 3 нервные ветви к каудальной брыжеечной артерии;
б) 2 нервные ветви к мочеточникам;
в) 4 — 5 нервных ветвей к преаортальному сплетению;
г) парные подчревные нервы.
Полученные нами данные в отношении
строения преаортального сплетения у крольчих несколько отличаются от таковых у голубого песца. В частности, у крольчих от преаортального сплетения к подчревному и тазовому сплетениям, минуя каудальный брыжеечный узел, отходят две нервные ветви. Второй отличительной особенностью является то, что от каудального брыжеечного узла у крольчих отходят парные подчревные нервы. А у голубого песца от названного узла подчревные нервы отходят непарным стволом.
Подчревное сплетение постоянно формируется парными подчревными нервами, расположенными по обе стороны прямой кишки, двумя ветвями от преаортального сплетения (20% случаев), а также единичными ветвями от спинномозговых крестцовых нервов (21% случаев) [5, 6]. Большинство изученных препаратов показало, что подчревные нервы на начальном участке не отдают боковых нервных ветвей до момента вступления их в полость таза. Однако в одной трети случаев при своем исследовании в нее они отдают 1 — 2 веточки к мочеточнику и к широкой маточной связке. В тазовой полости подчревные нервы ещё до соединения с тазовыми нервами распадаются на 4 — 5 веточек с образованием подчревного сплетения. В сплетении имеется 2 — 3 нервных узелка треугольной, округлой формы, которые можно считать общими как для тазового, так и для подчревного сплетений. От последнего отходят ветви к мочеточнику (2 — 3), мочевому пузырю (1 — 2) и к широкой маточной связке.
Яичник иннервируется ветвями от краниального брыжеечного узла (2 ветви), почечного ганглия (1 ветвь), от преаортального сплетения (3 — 5 ветвей) и единичными ветвями от третьего-четвёртого поясничных ганглиев симпатического ствола [7, 8].
Наши данные несколько отличаются от литературных (И.С. Квачадзе, 1963; Н.А. Жеребцов, 1966) относительно сельскохозяйственных животных, которые свидетельствуют об участии нервных ветвей от каудального брыжеечного узла в образовании яичникового сплетения.
По данным И.И. Яновского (1955), источником образования яичникового сплетения у свиней, собак, крупного и мелкого рогатого скота являются нервные стволики, отходящие от подчревного нерва.
По нашим наблюдениям, яичниковые нервы в количестве двух —пяти нервных стволиков сопровождают яичниковую артерию и вену. Вблизи яичника нервные ветви объединяются в общий
ствол, который затем распадается на краниальные маточные, иннервирующие краниальную и среднюю часть рогов матки и яйцеводы, и яичниковые, вступающие в ворота яичника 1 — 2 ветвями. Диаметр яичниковых нервов равен 0,2 мм. У основания яичниковой артерии в сплетении имеются нервные узелки округлой и веретенообразной формы. Нередки случаи вступления нервных ветвей в яичниковую артерию [9].
Каудальная граница правого яичникового сплетения проходит на уровне краниальной границы левого яичникового сплетения. Кроме того, от яичникового сплетения идут возвратные ветви к мочеточнику соответствующей стороны.
Довольно противоречивые мнения высказывают исследователи в отношении иннервации матки и влагалища. Так, по данным Langerley, Anderson (1986), Н.Г. Фельдман (1935), М.С. Найдич (1939), Г.М. Салганник (1953), тело матки иннервируется симпатическими нервами, а шейка и влагалище — парасимпатическими. Н.Л. Гармашева (1960), Н.Г. Колосов (1954) установили, что половые органы получают смешанную иннервацию, т.е. симпатическую и парасимпатическую.
По нашим наблюдениям, тазовое сплетение является сложным смешанным нервным образованием, так как оно формируется подчревными симпатическими и тазовыми парасимпатическими нервами. Тазовые нервы у крольчих формируются вентральными ветвями от первого—второго сар-кальных нервов. Диаметр тазовых нервов равен 0,7 — 0,8 мм. В тазовом сплетении можно выделить две формы строения: компактную и рассеянную.
При компактной форме строения в центре сплетения находится 2 — 4 нервных узелка, от которых отходят нервные веточки к прямой кишке, мочевому пузырю, мочеточнику, телу и шейке матки и краниальной части влагалища. При компактной форме строения тазового сплетения нервные ветви до момента вхождения в их названные органы не аностомозируют между собой.
При рассеянной форме строения количество нервных ветвей и аностомозов увеличивается, а крупных узлов — уменьшается.
Тазовое сплетение условно можно разделить на краниальный, средний и каудальный участки. От краниального и среднего участков сплетения отходят нервные ветви в количестве 4 — 9, иннерви-рующие тело, шейку, каудальную часть влагалища. Этот отдел можно назвать условно генитальным пристеночным сплетением. Маточные ветви идут прямо и краниально. Восходящие ветви от маточного сплетения иннервируют широкую маточную связку и рога матки.
Сплетение широкой маточной связки образовано восходящими ветвями от маточной части тазового сплетения и единичными ветвями от сплетения мочеточника и представляет собой тонкую ажурную сеточку, от которой отходят 4 — 5
нервных веточек диаметром 0,1 — 0,2 мм к рогу матки соответствующей стороны.
Влагалищные ветви от тазового сплетения идут косо, каудально, образуя каудальный отдел тазового сплетения. От названного отдела идут 3 — 4 нервные ветви к среднему и каудальному участку влагалища и его преддверию.
Срамной нерв берёт начало от вентральных ветвей первого—третьего сакральных нервов одним—двумя стволиками. Корешки, объединившись между собой, идут косо, каудально, затем параллельно прямой кишке, иннервируют 1 — 2 ветвями каудальную часть влагалища и его преддверие. Наблюдали случаи участия срамных нервов в образовании тазового сплетения.
Выводы. Анализируя данные морфологического исследования источников иннервации органов половой сферы у крольчих, можно констатировать их множественность и топографические особенности ганглиозных образований, имеющих отношение к органам генитального аппарата.
1. Яичники иннервируются веточками от солнечного, преаортального сплетений, а также от третьего—четвёртого поясничных узлов симпатического ствола.
2. Иннервация матки осуществляется за счёт маточно-влагалищной части тазового сплетения. Непосредственно ветвей тазовых нервов к матке и влагалищу не наблюдали.
3. Яичниковые ганглии расположены в преаор-тальном сплетении у корня одноимённой артерии, маточно-влагалищные — в центре тазового сплетения на уровне 1 — 2-го крестцовых позвонков.
Литература
1. Симанова Н.Г., Хохлова С.Н., Фасахутдинова А.Н. Морфогенез нервной системы домашних животных: монография / Немецкая национальная библиотека. Saarbrucken, 2014. 149 с.
2. Хохлова С.Н. Топография и морфогенез нейроцитов симпатических ганглиев у собаки // Юбилейный сборник к 75-летию профессора Н.А. Жеребцова. Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2005. С. 32 - 37.
3. Закономерности постнатального морфогенеза нервной системы домашних животных / Н.Г. Симанова, С.Н. Хохлова, Н.П. Перфильева [и др.] // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути решения: матер. V междунар. науч.-практич. конф. / Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А. Столыпина, 2013. С. 146 - 154.
4. Симанова Н.Г., Хохлова С.Н. Гистогенез дистального ганглия блуждающего нерва свиньи // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения: матер. междунар. науч.-практич. конф. Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2009. С. 102 - 104.
5. Закономерности морфогенеза нервной системы домашних животных в постнатальном онтогенезе: монография / Н.Г. Симанова, С.Н. Хохлова, Н.П. Перфильева [и др.]. Ульяновск, 2015. 115 с.
6. Возрастные изменения ганглиев автономной нервной системы у собак / Н.Г. Симанова, С.Н. Хохлова, Т.Г. Скрипник [и др.] // Аграрная наука и образование на современном этапе развития: опыт, проблемы и пути их решения: матер. III междунар. науч.-практич. конф. Ульяновск: УГСХА им. П.А. Столыпина, 2011. С. 168 - 172.
7. Симанова Н.Г., Хохлова С.Н., Марьина О.Н. Морфогенез стенки сфинктеров пищеварительной трубки собаки // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2011. № 2 (30). С. 98 - 100.
8. Возрастная морфология нейроцитов краниального шейного и чревного ганглиев собаки / С.Н. Хохлова, Н.Г. Симанова,
А.А. Степочкин [и др.] // Механизмы и закономерности индивидуального развития человека и животных: матер. междунар. науч.-практич. конф., посвящ. 75-летию заслуженного деятеля науки Российской Федерации, доктора биологических наук, профессора Леонида Петровича Тель-цова. Саранск, 2013. С. 188 - 194.
9. Наука биология развития — практике ветеринарной медицины / Л.П. Тельцов, И.Г. Музыка, А.А. Степочкин
[и др.] // Актуальные проблемы биологии и ветеринарной медицины мелких домашних животных: матер. междунар. науч.-практич. конф., посвящ. 80-летию каф. анатомии и гистологии сельскохозяйственных животных, 110-летию со дня рождения профессора Н.И. Акаевского и 15-летию кинологического центра. Троицк, 2009. С. 109 — 114.
Кандидоз желудочно-кишечного тракта свиней
ЕО.Рысцова, к.с.-х.н, ФГАОУ ВО РУДН; Т.С.Кубатбеков,
д.б.н., профессор, ФГБОУВО РГАУ-МСХА; НЛ. Сачивкина, к.б.н., ЕВ. Куликов к.б.н, ОВ. Березняк, магистрант, ФГАОУ ВО РУДН
Свиноводство в Российской Федерации является динамично развивающейся отраслью животноводства [1 — 4]. При этом заболеваемость микозами ежегодно растёт в связи с содержанием животных на ограниченных площадях, увеличением числа и спектра патогенных убиквитарных микроорганизмов, распространением иммунодефицитных состояний, возросшего числа вирусных и бактериальных инфекций, безразборным приёмом антибиотиков и т.д. [5, 6]. Множество патогенных грибов, а также дрожжеподобные грибы рода Candida, принадлежат к 4-й группе — условно-патогенных. В большинстве случаев кандидоз вызывают такие представители рода Candida как С. albicans, С. parapsilosis, С. tropicalis, С. glabrata, С. krusei. Чаще всего они выглядят под микроскопом в виде почкующихся клеток, некоторые имеют псевдомицелий.
С. albicans — паразитирующий грибок, имеющий возможность образовывать как истинный мицелий, так и псевдомицемий с хламидоко-нидиями. Этот грибок наиболее распространён в организме животных [7, 8], причём одним из уязвимых мест локализаций при развитии канди-доза служит желудочно-кишечный тракт (ЖКТ). Ситуацию могут усугублять острые и хронические заболевания слизистой ротовой полости, болезни ЖКТ (хронические гастриты, воспалительные заболевания кишечника, синдром раздражённого кишечника, травматизация слизистой оболочки), приём антибиотиков, которые ликвидируют все бактерии, в том числе и здоровую микрофлору пищеварительного тракта [9, 10].
Патогенез кандидоза ЖКТ патологии определяется соотношением факторов патогенности микроорганизма и снижением резистентности макроорганизма. Патогенность С. Albicans определяют следующие факторы [11]:
— изменчивость за счёт генетических и регу-ляторных механизмов: полиморфизм, «феномен переключения»;
— способность к грибковой адгезии: к фибриногену, ламинину, фибронектину, системе комплимента;
— активные протеиназы, фосфолипаза, гиалуро-нидаза, гемолитический фактор, благодаря которым грибы проникают сквозь защитный гликопротеи-новый слой слизистой оболочки ЖКТ
По наличию факторов патогенности С. albicans превосходит все прочие виды Candida. Анализ генетических детерминант некоторых штаммов C.albicans показал широкую распространённость генов резистентности к препаратам-антимикотикам [11 — 12]. Доказано существование 10 генов, секре-тирующих аспартат-протеиназы (SAP1 — 4, SAP6 7, SAP9 — 10 и др.), ведущих к прогрессированию заболевания. Неспецифическая резистентность ЖКТ представлена в основном иммунной системой, ассоциированной с кишечником. Интраэпителиаль-ные лимфоциты, препятствующие проникновению Candida через lamina propria и агрегации в пейеровых бляшках, а также В-лимфоциты кишечника — продуценты секреторных IgA и IgM, которые блокируют способность грибов к адгезии, составляют клеточную часть этой системы. Т-клетки вырабатывают интерферон, усиливают фагоцитоз, активируют Т-цитотоксические лимфоциты. CD4 и CD8 участвуют в реакциях местного иммунитета. Фагоцитоз (макрофагальный и нейтрофильный) препятствует диссеминации кандидоза инфекции. Нейтрофилы благодаря собственной «киллерной» субстанции через специфический механизм запускают активацию комплемента, который усиливает фагоцитоз [11, 13]. Защитными факторами, препятствующими проникновению грибов Candida, становятся также физиологически протекающие процессы в ЖКТ полноценная регенерация эпителиоцитов, кислотно-ферментативный барьер, достаточная перистальтическая активность. Значительную роль, снижающую неспецифическую резистентность, играет длительная кислото-супрессия в желудке. В этих условиях появляются вегетирующие формы, Candida активирует патогенные свойства, образуется псевдомицелий или мицелий, повреждающий слизистую оболочку.
Представители постоянной микрофлоры желудочно-кишечного тракта (аэробные лактоба-
