CC BY
50
УДК 634.8
ИССЛЕДОВАНИЕ АБОРИГЕННЫХ СОРТОВ ВИНОГРАДА РОССИИ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ МИКРОСАТЕЛЛИТНЫХ МАРКЕРОВ
Звягин Андрей Сергеевич к.б.н., старший научный сотрудник
Милованов Александр Валериевич студент винплодфака
Трошин Леонид Петрович д. б. н., профессор
Кубанский государственный аграрный университет, Краснодар, Россия
Проведен анализ генетического полиморфизма 12 аборигенных сортов винограда, произрастающих в Национальной ампелографической коллекции России (Анапский район Краснодарского края) посредством изучения аллельного разнообразия по шести микросателлитным локусам: VRZAG79, VVMD5, VVMD7, VVMD27, VRZAG62, VVS2. Установлено, что все аборигенные сорта обладают уникальным аллельным набором. Оценка степени генетического родства сортов проведена с помощью кластерного анализа. Получены данные ДНК-паспортизации исследованных генотипов винограда
Ключевые слова: ВИНОГРАД, ВИД, ПОДВИД, МИКРОСАТЕЛЛИТНЫЕ МАРКЕРЫ, ИЗМЕНЧИВОСТЬ, ГЕНЕТИЧЕСКОЕ РАЗНООБРАЗИЕ
UDC 634.8
STUDY OF INDIGENEOUS RUSSIAN GRAPE VARIETIES USING MICROSATELLITE MARKERS
Zvyagin Andrey Sergeevich Сand.Biol.Sci., senior researcher scientists
Milovanov Aleksander Valerievich student of the Faculty of horticulture
Troshin Leonid Petrovich Dr.Sci.Biol., professor
Kuban State Agrarian University, Krasnodar, Russia
The analysis of genetic polymorphisms of 12 autochthonous grape varieties grown in the National ampelographic collection of Russia (Anapa district of the Krasnodar region) through the study of allelic diversity at six microsatellite loci: VRZAG79, VVMD5, VVMD7, VVMD27, VRZAG62, VVS2 has been done. We have found that all native varieties have a unique set of allele. The assessment of genetic relationships varieties has been performed using cluster analysis. Data for DNA certification of the investigated genotypes of the grapes has also been obtained in the article
Keywords: GRAPE, SPECIES, SUBSPECIES, MICROSATELLITE MARKERS, VARIABILITY, GENETIC DIVERSITY
Введение
Виноград является многолетней вегетативно размножаемой культурой и одним из наиболее возделываемых растений в мире. Эта культура выделяется большим генетическим разнообразием, поэтому характеристика и идентификация сортов вида Vitis vinifera L. являются важным шагом в познании биологии винограда для использования ее особенностей на практике [8].
Среди всех объектов исследований виноградной культуры аборигенные сорта России представляют собой еще далеко не полностью
раскрытый пласт знаний о потенциальных возможностях промышленного производства и использования генофонда в комбинативной и клоновой селекций. Поэтому исследование древних аборигенных сортов, происходящих из районов первичного формообразования культурного винограда, берущих начало с незапамятных времен и известных на заре земледелия (например, кавказские и традиционные западноевропейские сорта), естественно, являются по составу генетически более неоднородными, и улучшение их методами клоновой селекции может иметь положительный эффект, хотя между такими сортами имеется существенная разница в выравненности материала.
Более молодые сорта или культивируемые в данной области сравнительно недавно и размножаемые из ограниченного количества исходного материала генотипически более выровнены и являются менее ценным материалом для улучшения их путем клоновой селекции. Поэтому необходимо исследовать существующие аборигенные сорта с использованием новых современных методов.
Появление в естественно научной практике молекулярно-генетических методов привело к ускоренному изменению и развитию теории эволюции и систематики живых организмов, а также к появлению новых приемов селекции. Одним из наиболее распространенных методов молекулярного ДНК-маркирования широкое распространение нашли ДНК-маркеры, основанные на полиморфизме микросателлитных последовательностей генома (SSR-simple sequence repeat).
Источником полиморфизма микросателлитных последовательностей (SSR)-сайт — специфическое варьирование длины повтора, что, в свою
очередь, обусловлено различием в числе единиц повтора [10]. Наиболее важные свойства SSRs — это кодоминантность, распределение по всему геному, простота манипуляций и высокая аллельная изменчивость, что обеспечивает высокую информативность этих маркеров.
В настоящее время SSR-маркеры используют для поиска различий внутри вида, идентификации сортов, составлении генетических карт в маркерной селекции, а также в работах по изучению генетического разнообразия и паспортизации сортов культурных растений.
Целью нашей НИР являлось исследование генотипического разнообразия аборигенных образцов винограда Национальной ампелографической коллекции России (Анапский район Краснодарского края).
В задачи наших исследований входило выполнение ДНК-фингерпринтинга и оценка генетического полиморфизма 12 аборигенных сортов России с применением анализа микросателлитных локусов.
Материал и методы
Объектами анализа были использованы следующие аборигенные сорта России: Шавраны (1), Аг чакрак (2), Красностоп золотовский (3), Яй изюм черный (4), Цимладар (5), Краснянский (6), Яй изюм розовый (7), Мола гусейн цибил (8), Мушкетный (9), Алый терский (10), Тавлинский поздний (11), Хатми (12).
Образцы были собраны на НАКР и сохранены при -700С. Выделение ДНК производили, используя модифицированный СТАВ-метод [1].
Для анализа генетического разнообразия генотипов были использованы 6 нейтральных микросателлитных (SSR) маркеров: УК2Л079, УУМБ5, УУМБ7, УУМБ27, УК2Л062, VVS2 [3-7].
Параметры ПЦР, использованные в данном эксперименте: 5 минут при 94°С - начальная денатурация, затем следующие 30 циклов: 30 секунд денатурация при 94°С, 30 секунд отжиг праймеров при №С, 30 секунд синтез при 72°С; последний цикл синтеза 3 минуты при 72°С.
В состав ПЦР смеси входили: 40 нг ДНК, 0,05мМ аОТРэ, 0,2цМ каждого праймера, 1 единица Тад-полимеразы, 25 тМКС1, 60 mMTris-HCI, рН 8,5, 0,1 % Тритон Х-100, 10 мМ 2-меркаптоэтанол, 1,5мМ М§С12, в общем объеме реакционной смеси 25 мкл. Амплификация была проведена в амплификаторе Терцик, производства НПО ДНК-технологии, Россия.
Для электрофоретического разделения продуктов ПЦР использовали 8% акриламидный гель на основе 1ЧТрис-боратного буфера (0,09 МТрис, 0,09 М Борной кислоты, 2 мМ ЭДТА, рН=8,2). В качестве катализаторов полимеризации использовали ТЕМЕД и аммония персульфат, из расчета 40 мкл ТЕМЕДа (100 % раствор) и 350 мкл аммония персульфата 10 %-ного на 40 мл раствора геля.
Электрофорез проводили при напряжении 250 V в течение 3-4 часов. В работе был использован аппарат вертикального электрофореза УЕ-3 фирмы Хеликон. После электрофореза гелевые пластины помещали на 30 минут в раствор бромистого этидия 5 мкг/мл и фотографировали в ультрафиолете [2].
Результаты исследований
В результате работы был выявлен разный уровень полиморфизма: от 5 (маркер VrZag62) до 10 аллелей (маркер VVS2) на локус в изученной группе аборигенных сортов винограда. При этом все сорта обладали уникальным аллельным набором, позволяющим идентифицировать их среди сортов изученной выборки (рисунок 1).
м.в.
Рисунок 1. - Электрофоретическое разделение продуктов ПЦР
маркера VVS2.
Примечание: м.в. - маркер молекулярного веса ДНК; 2 - контроль, образец без ДНК; 3-12 - электрофоретические позиции продуктов ПЦР различных аборигенных сортов винограда: 3 - Шавраны, 4 - Аг чакрак, 5 - Красностоп золотовский, 6 - Яй изюм черный, 7 - Цимладар, 8 - Краснянский, 9 - Яй изюм розовый, 10 - Мола гусейн цибил, 11 - Мушкетный, 12 - Алый терский, 13 - Тавлинский поздний, 14 - Хатми.
Таблица. - Результаты анализа 12 аборигенных сортов по 6 микросателлитным маркёрам
Сорт VrZag62 VrZag79 VVS2 VVMD5 VVMD7 VVMD27
Шавраны К/А* К/А 150* 259 238 184/196
Аг чакрак 218/224 247 128/150 254 232 К/А
Красностоп золотовский 218/226 247 146 235/268 266 К/А
Яй изюм черный К/А К/А 140/160 265 245 К/А
Цимладар К/А 254 134/155 268 232 К/А
Краснянский 218 254 140/150 262 238 196/212
Яй изюм розовый 218 262 152/162 К/А 259 К/А
Мола гусейн цибил К/А К/А 150/160 268 257 200/210
Мушкетный 220 262 142/160 259 257/266 205
Алый терский 216/226 251/262 150/160 268 257 210
Тавлинский поздний 216/223 260 152/162 К/А 257 203
Хатми К/А 262 150/162 К/А 262 203/212
Примечание: *- К/А, означает, что аллель не амплифицировалась.
**- длина аллелей указана в п.н.
Из приведенных данных таблицы видно, что гетерозиготность, характеризующаяся одновременным присутствием двух
амплифицированных фрагментов разного размера, значительно варьирует в пределах данной сортогруппы. Максимальный уровень гетерозиготности был выявлен по SSR-локусам VVS2 и VrZag62, VVMD27. Меньшую
степень гетерозиготности выявили по локусам VrZag79, VVMD5, VVMD7. В данном исследовании имеется высокая вероятность присутствия нулевых аллелей, однако, это не может быть полностью достоверно, так как не проводилось секвенирование данных участков и предполагается, что большинство очевидных гомозигот могут быть гетерозиготами: один аллель будет видим, другой - нет. Эти типы нулевых аллелей могут появляться, когда мутации не позволяют связывать праймеры на нацеленный регион [11].
На основании комплекса данных о частоте встречаемости аллелей и о размере амплифицированных последовательностей для каждой аллели была проведена оценка степени генетического сходства изученных аборигенных сортов винограда.
Для этой цели использовали кластерный анализ. Результаты кластеризации представлены ниже на дендрограмме (рисунок 2).
Рисунок 2. - Кластерный анализ изученных аборигенных сортов по шести микросателлитным маркерам.
Анализ полученного в результате кластеризации иерархического дендрита позволяет выделить в выборке исследованных сортов три основные группы (кластера).
В кластер 1 отнесены сорта Хатми, Тавлинский поздний, Яй изюм розовый, в то время как кластер 2 включает сорт Цимладар, а также в отдельные субкластеры включены аборигенных сорта Алый терский, Мушкетный, Краснянский, Красностоп золотовский, Аг чакрак.
В третий кластер входят аборигенные сорта Яй изюм черный, Мола гусейн цибил и Шавраны.
Выводы
Анализ данных ДНК-отпечатков аборигенных сортов показал, что исследуемые нами генотипы имеют отличающиеся наборы аллелей по представленным микросателлитным локусам.
Данные по шести микросателлитным маркерам могут быть использованы для дальнейшего анализа фенотипических особенностей аборигенных сортов винограда. Их ампелографические характеристики представлены в наших монографиях [10-11].
В результате работы были выявлены ДНК-паспорта 12 аборигенных сортов, которые будут использованы в дальнейших исследованиях по изучению генетического разнообразия, сохраняемого в Национальной ампелографической коллекции России, их фенотипического сходства и эволюции формирования подвида Vitis vinifera sativa D.C.
Список литературы
1. Звягин А. С. Молекулярно-генетические исследования полиморфизма винограда (монография). - Краснодар: КубГАУ, 2011. - 150 с.
2. Маниатис Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Молекулярное клонирование. - М.: Мир. -1984. - 480 с.
3. Bowers J.E., Dangl G.S. and Meredith C.P. Development and characterization of additional microsatellite DNA markers for grape // Am. J. Enol. Vitic. - 1999. - V. 50, №30. -P. 243-246.
4. Bowers J.E., Dangl G.S., Vignani R. and Meredith C.P. Isolation and characterization of new polymorphic simple sequence repeat loci in grape (Vitis vinifera L.) // Genome. - 1996. - V. 39. - P. 628-633.
5. Sefc K.M., Regner F., Tureschek E., Glossl J. and Steinkellner H. Identification of microsatellite sequences in Vitis riparia and their application for genotyping of different Vitis species // Genome. - 1999. - V. 42. - P. 367-373.
6. Thomas M.R. and Scott N.S. Microsatellite repeats in grapevine reveal DNA polymorphism when analysed as sequence-tagged sites (STSs) // Theor. Appl. Genet. - 1993.
- V. 86. - P. 985-990.
7. Thomas M.R., Matsumoto S., Cain P. and Scott N.S. Repetitive DNA of grapevine: classes present and sequences suitable for cultivar identification // Theor. Appl. Genet. - 1993.
- V. 86. - P. 173-180.
8. Лазаревский М.А. Изучение сортов винограда. - Ростов-н/Д.: РГУ, 1963. - 150 с.
9. Schlotterer C., Soller M. Polymorphism and locus-specific effects on polymorphism at microsatellite loci in natural Drosophila melanogaster populations // Genetics. - 1997. - V. 146. - P. 309-320.
10. Трошин Л.П. Аборигенные сорта винограда России. - Краснодар: КубГАУ, 2007.
- 256 с.
11. Troshin L.P. Viticulture and winemaking in Russia. Russia: native varieties of grapevine // D. Maghradze, L. Rustioni, J. Turok, A. Scienza, O. Failla. Caucasus and Northern Black Sea Region Ampelography. - COST: Vitis, 2012. - PP. 268-392.
References
1. Zvyagin AS Molecular genetic studies of polymorphism of grapes (monograph). -Krasnodar KubGAU, 2011. - 150.
2. Maniatis, T., E. Fritsch, Sambrook J. Molecular Cloning. - Mir. - 1984. - 480.
3. Bowers J.E., Dangl G.S. and Meredith C.P. Development and characterization of additional microsatellite DNA markers for grape / / Am. J. Enol. Vitic. - 1999. - V. 50, № 30. - P. 243246.
4. Bowers J.E., Dangl G.S., Vignani R. and Meredith C.P. Isolation and characterization of new polymorphic simple sequence repeat loci in grape (Vitis vinifera L.) / / Genome. - 1996. -V. 39. - P. 628-633.
5. Sefc K.M., Regner F., Tureschek E., Glossl J. and Steinkellner H. Identification of microsatellite sequences in Vitis riparia and their application for genotyping of different Vitis species / / Genome. - 1999. - V. 42. - P. 367-373.
6. Thomas M.R. and Scott N.S. Microsatellite repeats in grapevine reveal DNA polymorphism when analysed as sequence-tagged sites (STSs) / / Theor. Appl. Genet. - 1993.
- V. 86. - P. 985-990.
7. Thomas M.R., Matsumoto S., Cain P. and Scott N.S. Repetitive DNA of grapevine: classes present and sequences suitable for cultivar identification / / Theor. Appl. Genet. - 1993. - V. 86. - P. 173-180.
8. Lazarev MA The study of grape varieties. - Rostov-N / A: Rostov State University, 1963. -150.
9. Schlotterer C., Soller M. Polymorphism and locus-specific effects on polymorphism at microsatellite loci in natural Drosophila melanogaster populations / / Genetics. - 1997. - V. 146. - P. 309-320.
10. Troshin LP Native grape varieties Russia. - Krasnodar KubGAU, 2007. - 256.
11. Troshin L.P. Viticulture and winemaking in Russia. Russia: native varieties of grapevine / / D. Maghradze, L. Rustioni, J. Turok, A. Scienza, O. Failla. Caucasus and Northern Black Sea Region Ampelography. - COST: Vitis, 2012. - PP. 268-392.
