CC BY
540
2. Cazanave С., Greenwood-Quaintance K.E., Hanssen A.D., Patel R. Corynebacterium prosthetic joint infection. J. Clin. Microbiol. 2012; 50 (5): 1518-23.
3. Coyle M.B., Lipsky В.А. Coryneform bacteria in infectious diseases: clinical and laboratory aspects. Clin. Microbiol. Rev. 1990; 3 (3): 227-46.
4. Knox K., Nolmes А. Nosocomial endocarditis caused by Coryne-bacterium amycolatum and other non diphtheriae corynebacterium. Emerg. Infect. Dis. 2002; 8 (1): 97-9.
5. Reddy B.S., Chaudhury А., Kalawat U., Jayaprada R., Reddy G., Ramana B.V. Isolation, speciation, and antibiogram of clinically relevant non-diphtherial Corynebacteria (Diphtheroids). Indian J. Med. Microbiol. 2012; 30 (1): 52-7.
6. Bernard K.A. The genus corynebacterium and other medically relevant coryneform-like bacteria. J. Clin. Microbiol. 2012; 50 (10): 3152-8.
7. Dorella F.A., Pacheco L.G., Oliveira S.C., Miyoshi A., Azevedo V. Corynebacterium pseudotuberculosis: microbiology, biochemical properties, pathogenesis and molecular studies of virulence. Vet. Res. 2006; 37 (2): 201-18.
8. Харсеева Г.Г., ред. Дифтерия: микробиологические и иммунологические аспекты. М.: Практическая медицина; 2014.
9. Venezia J., Cassiday Р.К., Marani R.P., Shen Z., Buckley E.M., Peters Y. et al. Characterization of Corynebacterium species in macaques. J. Med.. Microbiol. 2012; 61 (Pt. 10): 1401-8.
10. Alatoom A.A., Cazanave C.J., Cunningham S.A., Inde S.M., Patel R. Identification of non-diphtheriae corynebacterium by use of matrixassisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry. J. Clin. Microbiol. 2012; 50(1): 160-3.
Поступила 01.08.15
REFERENCES
1. Kharseeva G.G., Voronina N.A., Gasretova T.D., Mamycheva N.I., Golovanova N.A. Persistent properties of Corynebacterium non diph-
theriae circulated in Rostov-on-Don and Rostov region. Zhurnal mikro-biologii, epidemiologii i immunobiologii. 2012; 3: 13-7. (in Russian)
2. Cazanave C., Greenwood-Quaintance K.E., Hanssen A.D., Patel R. Corynebacterium prosthetic joint infection. J. Clin. Microbiol. 2012; 50 (5): 1518-23.
3. Coyle M.B., Lipsky B.A. Coryneform bacteria in infectious diseases: clinical and laboratory aspects. Clin. Microbiol. Rev. 1990; 3 (3): 227-46.
4. Knox K., Nolmes A. Nosocomial endocarditis caused by Coryne-bacterium amycolatum and other non diphtheriae corynebacterium. Emerg. Infect. Dis. 2002; 8 (1): 97-9.
5. Reddy B.S., Chaudhury A., Kalawat U., Jayaprada R., Reddy G., Ramana B.V. Isolation, speciation, and antibiogram of clinically relevant non-diphtherial Corynebacteria (Diphtheroids). Indian J. Med. Microbiol. 2012; 30 (1): 52-7.
6. Bernard K.A. The genus corynebacterium and other medically relevant coryneform-like bacteria. J. Clin. Microbiol. 2012; 50 (10): 3152-8.
7. Dorella F.A., Pacheco L.G., Oliveira S.C., Miyoshi A., Azevedo V. Corynebacterium pseudotuberculosis: microbiology, biochemical properties, pathogenesis and molecular studies of virulence. Vet. Res. 2006; 37 (2): 201-18.
8. Kharseeva G.G., ed. Diphtheriae: Microbiological and Immunological Aspects [Difteriya: mikrobiologicheskie i immunolog-icheskie aspekty]. Moscow: Prakticheskaya meditsina; 2014. (in Russian)
9. Venezia J., Cassiday P.K., Marani R.P., Shen Z., Buckley E.M., Peters Y. et al. Characterization of Corynebacterium species in macaques. J. Med Microbiol. 2012; 61 (Pt. 10): 1401-8.
10. Alatoom A.A., Cazanave C.J., Cunningham S.A., Inde S.M., Patel R. Identification of non-diphtheriae corynebacterium by use of matrixassisted laser desorption ionization-time of flight mass spectrometry. J. Clin. Microbiol. 2012; 50(1): 160-3.
Received 01.08.15
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2015 УДК 616-008.87-073:543.42.062
Платонова А.Г., Осипов Г.А., Бойко Н.Б., Кириллова Н.В., Родионов Г.Г.
ХРОМАТО-МАСС-СПЕКТРОМЕТРИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ МИКРОБНЫХ ЖИРНЫХ КИСЛОТ В БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЯХ ЧЕЛОВЕКА И ИХ КЛИНИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ
ООО «МедБазис», 199034, г. Санкт-Петербург; Санкт-Петербургская государственная химико-фармацевтическая академия, 197376, г. Санкт-Петербург; Академическая группа акад. РАМН Ю.Ф. Исакова (при НЦ ССХ им. А.Н. Бакулева); Детская городская клиническая больница № 13 им. Н.Ф. Филатова, 123001, г. Москва; ФГБУ Всероссийский центр экстренной и радиационной медицины им. А.М. Никифорова, 194044, г. Санкт-Петербург
Метод масс-спектрометрии микробных маркеров (МСММ) известен 20 лет. Он описан в ряде научных публикаций, диссертациях и методической литературе, прошел регистрацию в Росздравнадзоре и разрешен к применению в качестве новой медицинской технологии в медицинских учреждениях на территории Российской Федерации ("Оценка микроэкологического статуса человека методом хромато-масс-спектрометрии", разрешение ФС № 2010/038 от 24.02.10). Метод МСММ только начал формироваться как инструмент клинического рутинного анализа и мониторинга микроэкологического статуса, инфекции и дисбиозов в клинической и амбулаторной практике. Описание технологии МСММ в таком аспекте требует иного, чем было сделано ранее, подхода к введению клинических лаборантов и врачей в метод. Подробно дается обоснование видовой специфичности состава жирных кислот и (жирных) альдегидов клеточной стенки микроорганизмов как основы их видовой дифференциации в чистой культуре. Объясняется выбор молекулярных маркеров для их детектирования в крови и другом клиническом материале с целью дальнейшей реконструкции состава микробного сообщества (микроэкологии) человека по крови или расчет состава микст-инфекции в органах по материалу из очага воспаления - моче, ликвору, мокроте, экссудату, дренажу и аналогичным пробам, содержащим химическую информацию о микробах.
Ключевые слова: микроэкологический статус; метод масс-спектрометрии микробных маркеров; метод газовой хроматографии - масс-спектрометрии; дисбиозы; гидроксикислоты липополисахарида; плаз-малоген.
Для цитирования: Клиническая лабораторная диагностика. 2015; 60 (12): 46-55. Для корреспонденции: Платонова Анна Геннадьевна, [email protected] For correspondence: PlatonovaA.G., [email protected]
Platonova A.G., Osipov G.A., Boiko N.B., Kirillova N.V., Rodionov G.G.
THE CHROMATOGRAPHY-MASS SPECTROMETRY ANALYSIS OF MICROBIAL FATTY ACIDS IN HUMAN BIOLOGICAL FLUIDS AND THEIR CLINICAL SIGNIFICANCE
"MedBasis" 199034 St. Petersburg, Russia; The St. Petersburg state chemical pharmaceutic academy, 197376 St. Petersburg, Russia; The academic group of academician RAS Yu.F. Isakov at the A.N. Bakulev research center of cardio-vascular surgery, Moscow, Russia; The N.F. Filatov children clinical hospital №13, 123001 Moscow, Russia; The A.M. Nikiforov all-Russian center of emergency and radiation medicine, 194044 St. Petersburg, Russia
The technique of mass-spectrometric microbial markers is known for almost 20 years. The technique is described in a number of research publications, dissertations and methodological literature. It passed the registration in Roszdravnadzor and is permitted for implementation as a new medical technology in medical institutions on the territory of the Russian Federation ("The evaluation of microecological human status using technique of mass-spectrometry" license FS № 2010/038 of 24.02.2010). The technique of mass-spectrometric microbial markers began to be developed as instrument of clinical routine analysis and monitoring of microecological status, infection and disbiosises in clinical and out-patient practice. The description of technology of mass-spectrometric microbial markers in this aspect requires different than before approach to introduction of clinical laboratory assistants and physicians into technique application. The substantiation given concerning species .specificity of composition of fatty acids and (fatty) aldehydes of cellular wall of microorganisms as a basis of their species differentiation in pure culture. The choice is explained concerning molecular markers for their detection in blood and other clinical material with the purpose of further reconstruction of composition of human microbial cenosis (microecology) on blood or calculation of composition of mixed infection in organs om samples of inflammation focus - urine, liquor, phlegm, exudate, drainage, and similar samples containing chemical information about microbes.
Keywords: microecological status; technique of mass-spectrometric microbial markers; technique of gas chromatography -mass-spectrometry; disbiosis; hidroxy acids of lipopolypolysaccharides; plasmalogen
Citation: KlinicheskayaLaboratornayaDiagnostika. 2015; 60 (12): 46-55. (in Russ.)
В основе метода масс-спектрометрии микробных маркеров (МСММ) - высокоточное определение специфических маркерных молекул, входящих в состав клеточных липидов микроорганизмов (МО). Они могут быть обнаружены в крови и другом клиническом материале высокочувствительным и селективным методом газовой хроматографии - масс-спектрометрии (ГХ-МС) на доминирующем фоне липидных веществ самого материала. Метод позволяет одновременно измерять концентрации более сотни микробных маркеров непосредственно в анализируемом материале: крови, моче, биоптатах и других биологических жидкостях и тканях, а также в небиологических пробах, минуя стадии предварительного посева на питательные среды или использование тестовых биохимических материалов. Бактериям свойственно большое разнообразие жирных кислот (ЖК) и жирных альдегидов. В настоящее время их насчитывают более 250. В организме человека их всего около 25. Это определяет возможность родового или видового анализа инфекций МО при инфекциях и дисбиозах на преобладающем фоне биологической жидкости непосредственно в клиническом материале. Специфичность клеточных ЖК МО в сравнении с высшими организмами показана на рис. 1.
Известно, что состав ЖК МО видоспецифичен и используется для их идентификации в чистой культуре [1-3], его информативность и специфичность на уровне вида показана в ряде обзоров и монографий [2, 4, 5-8]. Жирнокислотный состав особенно специфичен, если он дополнен оксикислотами и другими липидными компонентами - альдегидами, углеводородами, стеринами, которые методически, как правило, экстрагируют вместе с алифатическими ЖК в органической фракции. Логично искать маркеры МО в объектах их среды обитания, например, в фекалиях, мазках из зева, слюне, мокроте, гнойном отделяемом. Они присутствуют и в крови.
При исследовании методом ГХ-МС фракций ЖК, стеролов и жирных альдегидов в пробах крови пациентов найдено, что основными компонентами (на уровне содержания более 1% от максимального пика в хроматограмме) являются четные кислоты с 12-18 атомами углерода: олеиновая С18:1, пальмитиновая С16:0, линолевая С18:2, стеариновая С18:0, паль-митолеиновая С16:1, а также полиненасыщенные ЖК С20:п, С22:п, холестерин, насыщенные прямоцепочечные альдегиды и 2-гидроксикислоты. Их полные названия приведены в таблице, а расшифровка аббревиатуры - в примечании к ней. Иногда величину 1% превышает содержание длинноцепо-
чечных кислот С20-С26. Нечетные кислоты - пентадекано-вая С15:0 и гептадекановая (маргариновая) С17:0 составляют около 1% каждая. Перечисленные выше вещества являются липидными компонентами клеток организма человека. Обнаруживаются ЖК, специфичные клеткам микробов, колонизирующих организм человека. Это разветвленные четные ЖК il4, i16 и нечетные i15 и a15, i17 и a17, ненасыщенные ЖК с необычным для млекопитающих положением двойной связи 16:1ю9, 18:1ю7, 17:1. Их происхождение связано с МО, колонизирующими тело человека, в основном кишечник.
Мало изучены возможности метода маркера в детектировании МО непосредственно в биологической жидкости без выделения чистых культур. Известны диагностика кандидо-микоза по арабинитолу [9-11], неспецифическая диагностика бактерий по мурамовой кислоте в крови [12], попытки обнаружения МО, содержащих b-оксимиристиновую кислоту [13], диагностика видов Haemophylus по специфическим оксикис-лотам [14, 15], дифференциация видов Campylobacter [16], контроль менингококка по наличию b-гидроксилауриновой кислоты в крови [17]. Всего в процессе разработки метода МСММ в разных биологических жидкостях человека обнаружено более 170 веществ микробного происхождения. Часть из них приведена в таблице с отнесением к наиболее часто встречающимся МО.
Наиболее удобны для масс-спектрометрического детектирования гидроксикислоты липополисахарида (ЛПС) гра-мотрицательных бактерий, так как их спектры имеют сильные линии, отличные от линий масс-спектра других кислот и компонентов фона. Это важно в диагностике инфекционных процессов и при определении концентрации эндотоксина этой группы бактерий.
ЛПС является эндотоксином клеточной стенки грамотри-цательных бактерий. Организм человека чувствителен к бактериальным эндотоксинам. Липид А обладает наибольшей токсической активностью. Компоненты ЛПС - гидроксикис-лоты жирного ряда (от 10 до 20 атомов углерода) являются примером информативности химических маркеров. Они не только позволяют формально дифференцировать микроорганизмы, но и по существу связаны с функциональностью антигена: эндотоксические функции заключены в составе и строении липида А, причем О-связанные остатки ЖК определяют пирогенность, а N-связанные - летальную токсичность [18]. Если удалить ЖК, то ЛПС полностью теряет активность.
Рис. 1. Многообразие липидных компонентов клеток. Животные, растения и МО разных царств и родов имеют как общие, так и отличительные структурные компоненты липидов.
Первоначально исследователи, использовавшие метод ГХ-МС, наблюдали в-гидроксимиристиновую кислоту (3Ы4) в режиме масс-фрагментографии - детектировании только одного, самого интенсивного иона в ее спектре. Этот вариант анализа позволяет более чем на порядок увеличить чувствительность прибора. Считалось, что она является маркером Е.соЫ. По мере изучения структуры ЛПС других бактерий найдено, что 3Ы4 присутствует в клетках всех представителей сем. Е^егоЬа^епасеае, а также у бактерий многих других таксонов (строка 67 в таблице). Установить, кому именно принадлежит найденная в анализе кислота 3Ы4, можно при использовании других маркерных веществ. Одновременное наличие в пробе циклопропангептадекано-вой кислоты (17сус) выделяет представителей сем. ЕШег-оЬа^епасеае. Эта пара найдена в анализе мочи ребенка с пиелонефритом. Параллельный анализ той же пробы мочи культуральным методом выявил Е.соИ. Если вместе с 3Ы4 присутствует 3-гидроксипальмитиновая (3Ы6) кислота, то эта пара указывает на инфекцию ВигШоИепа серасеа. Такая комбинация маркеров найдена у пяти пациентов с муковис-цидозом (п=35), а это очень важно, так как своевременное обнаружение этого микроба позволяет избежать летального исхода, частого при инфекции В. серасеа. Метод комбинации маркеров широко использован при разработке алгоритма реконструкции микробного сообщества по маркерам в биологических жидкостях.
Для видов Bacteroides, Flavobacterium, Cytophaga характерны разветвленные гидроксикислоты с 15 и 17 атомами углерода. В одном из первых анализов методом ГХ-МС в 1991 г. в эякуляте больного орхитом на селективной хрома-тограмме были обнаружены три четких пика гидроксиизо-гептадекановой кислоты (3Ы17), ее антеизо-варианта (3ha17) и прямоцепочечного аналога 3Ы7, относящихся к В. fragiUs. Лечение метронидазолом сняло симптомы заболевания, а по-
вторный ГХ-МС-анализ показал отсутствие маркеров возбудителя в эякуляте.
Редким маркером является 3-гидроксиизотридекановая кислота (3hi13), которая содержится в ЛПС Stenotrophomonas maltophila. Методом ГХ-МС он найден в одном из 35 анализов мокроты при муковисцидозе, а в крови из сотен анализов маркер 3hi13 обнаружен лишь у пациента с редкой болезнью Рейно.
Наряду с 3-оксикислотами у некоторых организмов встречаются и 2-гидроксикислоты, которые содержатся в сфинголипидах. Это собственно сфингобактерии (Sphingobacterium), а также различные псевдомонады, виды Acinetobacter, Burkholderia, Alcaligenes и другие (см. таблицу). Имеются единичные случаи необычных оксикислот-это изо-2,3-дигидроксистеариновая кислота у видов Legionella [19]. Длинноцепочечные оксикислоты 3h20, 3h22 и 3hi20 характерны для Chlamidia trachomatis [20]. Они обнаруживаются в генитальных пробах или глазном отделяемом. Серия высших оксикислот 3h20-3h25 найдена в липопептиде Nocardia rubra [21]. Разнообразие оксикислот грамотрицательных микроорганизмов позволило построить их систематику [22].
В цитоплазматических мембранах некоторых МО гидрок-силы глицерина этерифицированы наряду с остатками жирных кислот (ацилрадикалами), еще и алк-1-енил-радикалами жирных альдегидов. Такие глицерофосфолипиды называются плазмалогенами. Они присущи в основном клеткам высших организмов, обнаруживаются в форменных элементах крови, сперме, миелине, клетках сердца, мозга и нервной ткани.
Специфические жирные альдегиды дают большую группу маркерных веществ, существенно повышающих специфичность хемодифференциации МО. Их удобство в практическом использовании связано также с тем, что они извлекаются из липидов в процессе получения метиловых эфиров
ЖК при кислом метанолизе. Альдегиды при этом трансформируются в диметилацетали (ДМА).
По разнообразию изомерных и ненасыщенных вариантов альдегиды повторяют номенклатуру ЖК. В разных организмах встречаются простые линейные, разветвленные и мононенасыщенные альдегиды с длиной цепи 14-18 атомов углерода. Не обнаружены только гидроксиальдегиды. Альдегиды присущи только грамположительным бактериям.
Плазмалоген играет протективную роль в окислении полиненасыщенных ЖК, управлении выброса холестерина из клеток. Его продукция существенно снижена у больных с синдромом Зельвегера, болезнь Рефсум и другими неврологическими заболеваниями. Деменция и общее старение организма сопровождается снижением уровня плазмалогена. В плазмалогене человека одна из ЖК в глицериде замещена на альдегид С16 или С18. В крови из жирных альдегидов наибольшую концентрацию, около 60 мкг/мл, имеют пальмитиновый и стеариновый. У МО кишечника человека и рубца жвачных животных более широкое разнообразие альдегидов, включающее ненасыщенные и разветвленные формы молекул. В пробах крови в концентрации до 10 мкг/мл обнаруживается 9-октадеценовый альдегид (18:1Д9а), содержащийся в клетках эубактерий и бифидобактерий. Следующими по величине альдегидами оказываются 11-октадеценовый (18:1Д11а) (род Eubacterium и род Clostridium coccoides) и изогептадекановый (i17a) (Propionibacterium и C. subterminale). Eubacterium - родственные клостридиям МО, являющиеся одними из основных обитателей кишечника; условные патогены с развитой системой видов и штаммов с универсальными свойствами. Эубактерии участвуют в качестве основных агентов во многих воспалительных процессах и синдромах: воспаления неизвестной этиологии, себорея, атопический дерматит, кахексия, воспаление кишечника, глютеновая энтеропатия, воспаление десен, средиземноморская семейная лихорадка, Yang Xiao-xia's «mysteriuos disease», синдром раздраженного кишечника, воспаление легких, бактериемия, хронический синусит, болезнь Крона, периодонтит, артрит, простатит, муковисцидоз, эндометрит, эндокардит, неспецифический вагинит, врожденный порок сердца и др. Основными функциями эубактерий в организме человека являются образование водорода, высвобождение гистамина, биотрансформация желчных кислот, индуцирование продукции провоспалительных цитокинов и TNFa, а также противовоспалительного цитокина IL-10 (как ЛПС или экзотоксины грамположительных патогенов).
Бактериальное происхождение в крови имеют многочисленные простые разветвленные и ненасыщенные ЖК, из которых выделяется 11-октадеценовая кислота. Несмотря на то что она содержится в клетках неопределенно большого числа видов МО, в организме человека ее основным продуцентом являются лактобациллы кишечника. В анализах крови на дисбактериоз пациентов с рассеянным склерозом выявлен драматический дефицит маркера лактобацилл (до 100 раз по сравнению с нормой) при одновременном избыточном росте маркера бифидобактерий. В 10 из 20 случаях в наших наблюдениях за критическими больными в ОРИТ преимущественный количественный прирост обнаруживают лактобациллы. По данным литературы, они зафиксированы как возбудители при эндокардите, бактериемии, бактериурии, перитонитах, абсцессах и менингитах. Наиболее часто выявляются L. casei и L. rhamnosus [22]. Lactobacillus spp. изолированы также из нарывов, при пневмонии, бактериемии и конъюнктивитах. Факторами патогенности лактобацилл считают продуцируемые ими гликозидазы и протеазы.
Мононенасыщенные ЖК специфичны для клостридий. Наиболее важной для клинической диагностики оказалась 7-гексадеценовая кислота (16:1 ш9), найденная в клетках, по крайней мере 10 видов клостридий: Clostridium ramosum, C. sordelii, C. septicum, C. subterminale, C. fallax, C. difficile, C. paraputrificum, C. celatum, C. cochlearum, C. limosum. Это вещество отсутствует в ключевых клетках человека. Экспе-
Микроорганизм Клеток/мл •ÍO5
проба норма
Clostridium hystolyticum 3 023 95
Pseudomonas aeruginosa 194 0
Clostridium propionicum 1 204 288
Selenomonas 113 0
Pseudonocardia 3 340 70
Clostridium ramosum 61 232 2000
Fusobacterium/Haemophylus 45 0
Alcaligenes 118 48
Rhodococcus 3 909 423
Helicobacter pylori 117 14
Clostridium perfringens 70 12
Nocardia asteroides 1 089 274
Actinomycetes 2 727 309
риментальным подтверждением тому является исследование ЖК-состава фосфолипидов эритроцитов [23], в котором фосфолипиды были предварительно препаративно выделены, а затем исследован их жирно-кислотный состав. Чистые фракции фосфолипидов эритроцитов содержат только прямоцепочечные четные насыщенные и ненасыщенные ЖК вплоть до уровня 0,01%. Этот вывод можно распространить и на другие форменные элементы крови, поскольку они происходят из одного источника синтеза - стволовых клеток. 7-Гексадеценовая кислота отсутствует также в химическом фоне аналитической процедуры, но встречается у бактерий рода Streptococcus и метилотрофных бактерий сем. Methylo-monadaceae. У последних в профиле липидных компонентов отсутствуют альдегиды, характерные для клостридий, что позволяет в целом в алгоритме анализа избежать перекрестных определений.
В анализах клинического материала маркер 16:1 ш-9 бывает доминантным в биологических жидкостях, бедных клеточным материалом организма-хозяина. Это моча и лик-вор. На рис. 2 показан результат реконструкции состава МО по микробным маркерам в моче ребенка 11 лет, больного пиелонефритом. Здесь этот маркер, приписываемый группе C. ramosum, имеет 30-кратное превышение нормы и на порядок выше маркеров других участников инфекционного процесса - клостридий других видов и актинобактерий родов Rhodococcus, Pseudonocardia и др. В этом случае можно ожидать совпадения распределения концентраций ЖК предполагаемого МО с профилем чистой лабораторной культуры.
Действительно, сопоставление распределения ключевых ЖК клостридий C. ramosum с их соотношением в моче ребенка показывает совпадение профилей с коэффициентом ко-релляции 0,645 по алгоритму идентификации МО по составу ЖК (Microbial Identification System, MIDI Inc., Delaware), что означает совпадение на видовом уровне (рис. 3).
Редким для микробов веществом является додекановая кислота, которая в группе клостридий Clostridium perfringens, С. putrefacience, C. hystolyticum, C. tetani составляет до 17% от суммы всех ЖК клеточной стенки. Она обнаружена в крови пациента с аутизмом, что соответствует предполагаемой связи этого заболевания с инфекцией C. tetani [24], Clostridium bolteae и другими кишечными микробами [25].
В отличие от клеток человека половина царства прокариот синтезирует разветвленные ЖК [26], причем подавляющее большинство из них имеют в составе мембраны только нечетные разветвленные кислоты. Это стафилококки, виды Butirivi-brio, Bacillus, Prevotella, Propionibacterium, Corinebacterium, Bacteroides, Nocardia и др. Четные разветвленные кислоты из МО клинического значения синтезируют представители
7000 и
6000-
5000-
4000-
3000-
2000-
1000-
JL
2 3 4 5 6 7 V//A Проба
8 9 10 11 12 13 ■ Норма
Рис. 2. Реконструкции состава МО по микробным маркерам в моче ребенка 11 лет, больного пиелонефритом.
небольшого числа родов, в том числе стафилококки, виды Streptomyces, Bacteroides, Corinebacterium. Наряду с ними в программу скрининга включены маркеры группы актино-бактерий - 10-метилразветвленные кислоты с числом атомов углерода от 14 до 18, в том числе туберкулостеариновая кислота - маркер микобактерий туберкулеза, изопальмитиновая кислота (Streptomyces), 9-трансгексадеценовая (Nocardia asteroids) и др. При их мониторинге в клиническом материале (кровь, моча, ликвор, слюна, мокрота, вагинальное содержимое, эякулят, биоптаты кишечника, ткань клапана сердца, атеросклеротические бляшки) обнаружили присутствие этих маркеров в норме, повышение их концентрации при патологии, ответ на адекватную антибиотикотерапию, что еще раз подтверждает колонизацию организма человека актиномице-тами и их участие в микстинфекции. Актиномицеты относятся к трудно культивируемым микроорганизмам и поэтому редко фигурируют в качестве агентов инфекции или воспаления. Они являются участниками многих воспалительных процессов в организме человека. Российскими учеными-медиками [27-29] был опубликован ряд научных работ по актиномикозу желудочно-кишечного тракта, ротовой полости, респираторных органов, женских половых органов и пр. С актиноми-цетами связаны такие серьезные заболевания, как туберкулез, нокардиозы и актиномикозы. Более поздние результаты обобщения отделения микозов Центра по контролю заболеваний в Атланте (США) подтверждают участие актиномице-тов родов Streptomyces, Nocardia, Actinomadura, Rhodococcus, Nocardiopsis, Pseudonocardia и других при респираторных заболеваниях, эндокардите, уретрите, а также при раневых и травматических инфекциях [30, 31]. Аналогично примеру с C. ramosum нами показано совпадение профиля ЖК отделяемого перикарда у пациента с перикардитом с профилем чистой культуры актинобактерии Streptomyces albus. По данным Центра по контролю заболеваний США, около 10% проб изо-лятов актиномицетов, поступающих в центр, идентифицируют как Streptomyces. Известны также случаи респираторных заболеваний, связанные с представителями этого рода, а также случай выявления Streptomyces в качестве инфекционного агента при эндокардите. По данным Центра, стрептомицеты чувствительны только к амикацину [30]. Только после назначения амикацина пациент с доминирующей инфекцией S. al-bus выведен из септического состояния.
В состав липидов многих бактерий входят уникальные ЖК - циклопропановые, образующиеся из моно-
ненасыщенных ЖК. Циклопропановые ЖК имеют цис-конфигурацию. Для видов Lactobacillus, Pseudomonas, Brucella, Helicobacter и других характерна цис-11,12-ме-тиленоктадекановая (лактобацилловая) кислота, происходящая из цис-вакценовой кислоты и цис-9,10-ме-тиленгексадекановая кислота у представителей сем. Enter-obacteriaceae (маркер семейства).
Специфическим признаком грибов Candida в липидной фракции биологических жидкостей человека является гепта-деценовая кислота 17:1 [32]. Она обнаружена нами в чистых культурах C.albicans и других видов рода, а также у пациенток с вагинальным кандидозом [33].
Грибы плесневые, дерматофиты и другие можно детектировать по их стеринам, прежде всего эргостеролу, который считается грибным стерином, в отличие от холестерола, сте-рина животных и ситостерола - стерина растений. Ситосте-рол могут продуцировать и грибы. Они синтезируют также кампестерол. Эти вещества включены в программу МСММ. Кроме того, включены длинноцепочечные 2-гидрокси-кислоты с числом атомов углерода 22-26, которые обнаружены нами в чистых культурах грибов, патогенных для человека, а также в клиническом материале.
У детей с инфекционным мононуклеозом в отличие от других респираторных патологий обнаружено в динамике 10-кратное увеличение концентрации гидроксиэргостенила - производного холестерина, что нами логично ассоциировано с метаболическим действием вируса Эпштейна-Барр, известного микробного агента этого заболевания. Появление этого метаболита в крови пациентов связано также с синдромом хронической усталости, предполагается, что одной из причин его является вирусная инфекция [34].
На основании этих анализов методом МСММ расшифрован состав микробиоты пристеночного мукозного слоя отделов кишечника, а также фекалий [35, 36]. Данные о фекалиях оказались в полном количественном соответствии с приводимыми в литературе, что послужило основанием для подтверждения достоверности данных, получаемых методом МСММ. Одновременное исследование биоптатов кишечника и крови пациентов, а также доноров показало соответствие состава минорных ЖК, альдегидов и стеролов в тонкой кишке и крови. Показана количественная адекватность изменений их концентраций в этих органах при дисбактериозе, ассоциированном с синдромом раздраженной тонкой кишки с преобладанием поносов, болезнью Крона и псориазом [35]. Это означает возможность неинвазивной оценки изменений микрофлоры кишечника по данным анализа крови методом ГХ-МС микробных маркеров.
о:4
Л
Л
Моча
С. ramosum
Рис. 3. Сопоставление распределения ключевых маркеров клостридий С. ramosum с их соотношением в моче ребенка.
Приведена общепринятая аббревиатура ЖК и альдегидов (см. таблицу). Последние отмечены буквой а в конце символа.
Высшие ЖК, альдегиды и стерины в составе клеточной стенки с отнесением к микроорганизмам, у которых они наиболее часто встречаются
№ п/п Обозначение Название Микроорганизмы
Жирные кислоты
1 С10 Декановая Streptococcus
2 i11 Изоундекановая р. Xanthomonas,
3 С12:0 Лауриновая p. Arcobacter,
4 iC12 Изолауриновая Peptostreptococcus anaerobius
5 iC13 Изотридекановая Stenotrophomonas maltophilia, Bacillus subtilis,
6 а13 Антеизотридекановая Bacillus cereus, Brevibacterium
7 13:0 Тридекановая p. Selenomonas
8 i14 Изомиристиновая pp. Streptomyces, Bacillus, актинобактерии,
9 14:1Д9 9,10-Тетрадеценовая Clostridium, Streptococcus pneumoniae
10 14:1Д11 11,12-Тетрадеценовая Simonsiella, Kingella kingae, Nocardia
11 14:0 Миристиновая рр. Lactobacillus, Helicobacter, Campylobacter, Streptococcus, Clostridium
12 2Me14 2-Метилтетрадекановая Mycobacterium gordonae
13 i15:1 Изопентадеценовая Flavobacterium
14 15:1Д9 9,10-Пентадеценовая Cl. propionicum, Bacteroides hypermegas
15 i15 Изопентадекановая Propionibacterium, Bacteroides
16 а15 Антеизопентадекановая Staphylococcus, Bacillus, коринеформные бактерии
17 15:0 Пентадекановая Большинство видов МО, минорный компонент, pp. Cytophaga, Selenomonas, Cl. sporogenes, Bacteroides succinogenes, Bact. ruminicola, Ps. stutzeri
18 i16:1 Изогексадеценовая p. Desulfovibrio
19 16:1Д7 7,8-Гексадеценовая Clostridium ramosum
20 16:1Д9 9,10-Гексадеценовая Большинство видов МО
21 16:1Д11 11,12-Гексадеценовая Ruminococcus
22 i16:0 Изопальмитиновая Streptomyces, Nocardiopsis,
25 10Ме16 10-Метилгексадекановая Rhodococcus
26 16:0 Пальмитиновая Большинство видов МО
27 i17:1 Изопентадеценовая Campylobacter mucosales
28 17:1 Гептадеценовая Mycobacterium, Candida albicans
29 i17:0 Изогептадекановая Bacillus, Propionibacterium, Prevotella
30 a17:0 Антеизогептадекановая Corynebacterium, Bacteroides, Nocardiopsis, Nocardia
31 17сус Циклогептадекановая Сем. Enterobacteriaceae
32 17:0 Гептадекановая Большинство видов МО, минорный компонент
33 18:4 Октадекатетраеновая Некоторые грибы и дрожжи
34 18:3 Ланоленовая Грибы и дрожжи
35 18:2 Линолевая Грибы, дрожжи, простейшие
36 18:1Д9 Олеиновая Все организмы
37 i18:1 Н Enterococcus faecalis
38 18:1Д11 Цис-вакценовая Lactobacillus, Streptococcus, Pseudomonas, Cardiobacterium hominis
39 18:0 Стеариновая Многие МО
40 i18 Изооктадекановая pp. Peptostreptococcus, Bifidobacterium, Nocardiopsis, Bacillus subtilis, Clostridium difficile
41 10Me18 10-Метилоктадекановая (туберку-лостеариновая) рр. Mycobacterium, Nocardia; Corynebacterium bovis, C. гр. xerosis, C.urealyticum,
42 11Me18:1 11-Метилоктадеценовая Afipia, Helicobacter mustelae
43 19cyc Циклононадекановая pp. Lactobacillus, Enterococcus, Pseudomonas, Brucella, Campylobacter, сем. Enterobacteriaceae, Helicobacter pylori
44 i19 Изононадекановая Bacillus subtilis, Bacteroides hypermegas
45 а19 Антеизононадекановая рр. Staphylococcus
46 19:0 Нонадекановая pp. Nitrobacter, Bacillus, Serratia; Burkholderia cepacia
47 i19:1 Изононадеценовая Afipia
48 20:1 Эйкозеновая Propionibacterium jensenii, Actinomyces, Streptococcus thermophilus, St. salivarius, St. mutans
49 20:0 Эйкозановая Actinomyces sp
50 20:1Д11 11-Эйкозеновая Streptococcus mutans
51 21:0 Бегеновая р. Francisella
Продолжение на стр. 52
Продолжение таблиц
52 22:6 Докозагексеновая Грибы, эукариоты
53 22:0 Докозановая р. Francisella
54 С22:4 Арахидоновая кислота Простейшие и высшие организмы
55 24:0 Тетракозановая р. Francisella, Mycobacterium, микроэукариоты
56 25:0 Пентакозановая Микроэукариоты
57 26:0 Гексакозановая p. Mycobacterium, микроэукариоты Гидроксикислоты
58 3h10 3-Гидрксидекановая Bordetella pertussis, B.parapertussis, Pseudomonas syringae, P. alcaligenes, P. stutzeri, P. mendocina, Comamonas
59 2h10 2-Гидроксидекановая p. Pseudomonas
60 3hi11 3-Гидроксиизоундекановая Stenotrophomonas maltophilia,
61 2hi11 2-Гидроксиизоундекановая Stenotrophomonas maltophilia,
62 3h12:1 Гидроксидодеценовая Pseudomonas aeruginosa
63 3h12 3-Гидроксилауриновая p. Acinetobacter, Pseudomonas, Vibrio; Neisseria, N. gonorrhoeae, Moraxella, Arcobacter, Eikenella, Suttonella, Kingella
64 2h12 2-Гидроксилауриновая Pseudomonas putida, P. aeruginosa, pp. Acinetobacter, Alcaligenes, Bordetella
65 3hi13 3-Гидроксиизотридекановая Stenotrophomonas maltophilia,
66 3h13 3-Гидрокситридекановая p. Selenomonas; Bacteroides hypermegas,
67 3h14 3-Гидроксимиристиновая Alcaligenes, Fusobacteriun, Haemophilus, Wolinella, Campylobacter, Neisseria, сем. Enterobacteriaceae Burkholderia
68 2h14 2-Гидроксимиристиновая Alcaligenes, Salmonella
69 2,3hi14 2,3-Дигидроксиизотетрадекановая р. Legionella
70 3h15 3-Гидроксипентадекановая Bacteroides ruminicola
71 3hi15 3-Гидроксиизопентадекановая pp. Flavobacterium, Bacteroides melaninogenicus, Prevotella
72 2hi15 2-Гидроксиизопентадекановая рр. Flavobacterium
73 3ha15 3-Гидроксиантеизопентадекановая Bacteroides ruminicola
74 3h16 3-Гидроксипальмитиновая pp. Erwinia, Brucella, Bacteroides, Wolinella, Cytophaga, Flexibacter, Fusobacterium, Bordetella; Burkholderia, P. pseudomallei, Campylobacter fetus, C. sputorum, C. fecalis
75 2h16 2-Гидроксипальмитиновая p. Flexibacter; Alcaligenes, Burkholderia cepacia, P. pickettii (2h16:1), клетки эпителия, спермий и другие эукариотические клетки
76 3hi16 3-Гидроксиизопальмитиновая Riemerella
77 3hi17 Гидроксиизогептадекановая рр. Bacteroides, Flavobacterium, Cytophaga, Riemerella
78 2hi17 2-Гидроксиизогептадекановая Bacteroides
79 3h17 3-Гидроксигептадекановая Bacteroides ruminicola, B. thetaiotaomicron
80 3ha17 3-Гидроксиантеизогептадекановая Bacteroides ruminicola
81 10h18:1 10-Гидроксиоктадеценовая Clostridium perfringens
82 3h18 3-Гидроксистеариновая pp. Francisella (F. philomiragia), Brucella, Achromobacter, Helicobacter pylori
83 2h18 2-Гидроксистеариновая Простейшие
84 10h18 10-Гидроксистеариновая Clostridium perfringens
85 9,10 epoxy18 9,10-Эпоксиоктадекановая Pneumocistis carinii
86 3h20 3-Гидроксиэйкозановая Chlamydia trachomatis
87 3hi20 3-Гидроксиизоэйкозановая Chlamydia trachomatis, Legionella
88 3h22 3-Гидроксидокозановая Chlamydia trachomatis Спирты
89 16alc n-Пальмитиновый p. Moraxella
90 18alc, 2-OH Стеариновый, 2-ОН p. Mycobacterium MAIS, n18 - Moraxella
91 20alc n-Эйкозиловый Mycobacteria
92 2h20alc 2-Оксиэйкозиловый Mycobacterium tuberculosis
93 2h22alc 2-Оксидокозиловый Mycobacterium xenopii
94 2h24alc 2-Окситетракозиловый Mycobacteria
95 2h26alc 2-Оксигексакозиловый Mycobacteria Альдегиды
96 12a Лауриновый p. Butyrivibrio
97 13a Тридекановый p. Butyrivibrio, Selenomonas
Продолжение на стр. 53
Продолжение таблицы
98 i14a Изомиристиновый pp. Bifidobacterium, Butirivibrio
99 14:1A9a 9,11-Тетрадеценовый р. Butyrivibrio, Clostridium fimetarum
100 14:1A11a 11,12-Тетрадеценовый р. Butyrivibrio, Clostridium fimetarum
101 14а Тетрадекановый рр. Butyrivibrio, Bifidobacterium, Spirochaeta,
102 i15a Изопентадекановый рр. Butyrivibrio, Lactobacillus (rumen), Propionibacterium
103 a15a Антеизопентадекановый р. Butyrivibrio, Eubacterium, Frigoribacterium, Propionibacterium freudenreichii
104 15:1а Пентадеценовый р. Butyrivibrio
105 15а Пентадекановый р. Butyrivibrio
106 16:1A9a 9,10-Гексадеценовая р. Butyrivibrio, Selenomonas, Lactobacillus, Eubacterium, Mobiluncus, Peptostreptococcus anaerobius
107 16:1A11a 11,12- Гексадеценовый Clostridium fimetarum
108 16a Пальмитиновый C. fallax, pp. Lachnospira, Butyrivibrio, Lactobacillus
109 i17a Изогептадекановый Propionibacterium freudenreichii
110 a17a Антеизогептадекановый Eubacterium, Propionibacterium freudenreichii
111 17суса Циклогептадекановый Clostridium
112 17a Гептадекановый Lactobacillus (rumen)
113 i18a Изостеариновый рр. Eubacterium, Lachnospira, Butyrivibrio, Bifidobacterium, Selenomonas, Mobiluncus, Clostridium butiricum
114 18:1a Октадеценовый Eubacterium, Clostridium
115 18а Стеариновый Clostridium thermocellum
116 а16а Антеизопальмитиновый Clostridiun acetobutilicum, Cl. butiricum
117 19суса Циклононадекановый p. Lactobacillus
118 19а Нонадекановый Clostridium turobutiricum
119 17:1а Гептадеценовый Стерины
120 Холестанол Копростанол Eubacterium
121 Холестендиол простой герпес
122 Холестадиенон цитомегаловирус
123 Пневмоцистерол Pneumocystis carini, P. hominis
124 Кампестерол микроскопические грибы
125 Эргостерол Aspergillus Mucor и другие, содержащие эргостерол
126 Ситостерол ß-Ситостерол Микроскопические грибы, растения
127 Холестерин Простейшие и высшие организмы
128 Эргостенил-окси Эпштейна-Барр вирус
П р и м е ч а н и е. Обозначения веществ: 17:1 - 17 - число атомов углерода, цифра после двоеточия - число двойных связей; h - оксикис-лота; аД - в начале означает разветвление; сус - циклопропановая кислота. Например, ha17-3-оксиантеизогептадекановая кислота.
Выбор антибиотиков при лечении по данным масс-спектрометрии микробных маркеров имеет свои особенности. Опыт предыдущих и настоящих исследований показывает, что отнесение дисбиоза на счет антибиотикотерапии следует рассматривать во вторую очередь, отдавая предпочтение другим стрессовым факторам. Самым красноречивым подтверждением этого является опыт по воздействию экстремальных доз ампициллина на микробиоту крыс. Она (микробиота) оказалась устойчивой к этому препарату [37], так же, как устойчива биопленка к действию антибиотиков in vitro [38]. Молекулярный метод диагностики инфекции и дисбиозов не требует выделения микробов в чистой культуре - это его преимущество [39]. Оно имеет свою отрицательную сторону. Нельзя определить привычную для врача чувствительность к антибиотикам штаммов МО, выделенных от данного больного. Но ведь метод определяет по большей части некультивируемые МО, значит это естественный недостаток. Его преимущество - обнаружение в количественном измерении реально действующих МО инфекционного процесса - стоит большего. После первого назначения антибиотикотерапии этот недостаток снова обращается в преимущество, когда при повторном анализе методом МСММ выявляют реальное, in vivo, действие первичной терапии по убыванию маркеров агентов инфекции,
а также выявляют толерантную составляющую микстин-фекции и обнаруживают микробные агенты конкурентной (оппортунистической) микробиоты.
Благодарность. Авторы выражают глубокую признательность руководителю Отдела лабораторной диагностики НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского, доктору медицинских наук Годкову Михаилу Андреевичу за прочтение статьи и ценные замечания, которые с благодарностью приняты в ее окончательной редакции.
ЛИТЕРАТУРА
1. Митрука Б.М. Применение газовой хроматографии в микробиологии и медицине. М.: Медицина; 1978.
2. Goodfellow М., Minnikin D., eds. Chemical Methods in Bacterial Systematics. London: Academic Press; 1985.
3. О'Лири В. Липиды микроорганизмов. В кн.: О'Лири В. Молекулярная микробиология. М.: Мир; 1977: 201-39.
4. Larsson L. Determination of microbial chemical markers by gas chromatography-mass-spectrometry potential for diagnosis and studies on metabolism in situ. APMIS. 1994; 102(3): 161-9.
5. Brondz J., Olsen J. Microbial chemotaxonomy. Chromatography, electrophoresis and relevant profiling techniques. J. Chromatogr. 1986; 379: 367-411.
6. Moss C.W., Dees S.R. Identification of microorganisms by gas chro-
matographic - mass spectrometry analysis of cellular fatty acids. J. Chromatogr. 1975; 112: 594-604.
7. Васюренко З.П., Фролов А.Ф., Смирнов В.В., Рубан Н.М. Жир-нокислотные профили бактерий, патогенных для человека и животных. Киев: Наукова думка; 1992.
8. Поздоровкина В.В., Белобородова Н.В., Курчавов В.А., Бойко Н.Б., Рогатина Е.Л., Демина А.М. Газохроматографическая диагностика кандидоза и мониторинг эффективности противогрибковой терапии по уровню арабинитола и маннозы у детей. Антибиотики и химиотерапия. 1998; 16(5): 23-5.
9. Larsson L., Pehrson С., Wiebe T., Christensson B. Chromatographic determination of D-arabinitol/L-arabinitol ratios in urine: a potential method for diagnosis of disseminated candidiasis. J. Clin. Microbiol. 1994; 32(8): 1855-9.
10. Lehtonen L., Anttila V.J., Ruutu T., Salonen J., Nikoskelainen J., Ee-rola E. et al. Diagnosis of disseminated candidiasis by measurement of urine D-arabinitol/I-arabinitol ratio. J. Clin. Microbiol. 1996; 34(9): 2175-9.
11. Lehtonen L., Eerola E., Oksman P., Toivanen P. Muramic acid in peripheral blood leukocytes of healthy human subjects. J. Infect. Dis. 1995; 171(4): 1060-4.
12. Maitza S.K., Schotz M.C., Yoshikawa T.T., Guze L.B. Defermination of lipid A and endotoxin in serum by mass-spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978; 75(8): 3993-7.
13. Sugimoto C., Miyagawa E., Mitani K., Nakazawa M., Isayama Y. Cellular fatty acid composition of Haemophilus equigenitalis. J. Clin. Microbiol. 1982; 15(5): 791-4.
14. Bronds J., Olsen J. Chemotaxonomy at a crossroads? Gas chromatographic analysis of a single colony from the bacterium Haemophylus aphrophilus. J. Chromatogr 1986; 374(1): 119-25.
15. Dennemont J., Roupas A., Heitz M. Differentiation of Campylobacter jejuni, C.coli, C.lary and C.fetus fatty acid profiles obtained by gas chromatography - mass spectrometry and by their hippurate hydrolysis. Mitt. Geb. Lebensmittelunters. Hyg. 1992; 83(2): 142-8.
16. Brandtzaeg P., Bryn K., Kierulf P., Ovstebo R., Namork E., Aase B. et al. Meningococcal endotoxin in lethal septic shock plasma studied by gas chromatography, mass-spectrometry, ultracentrifugation and electron microscopy. J. Clin. Invest. 1992; 89 (3): 816-7.
17. Jantzen E., Bryn K. Whole-cell and lipopolysaccharide fatty acids and sugars of gram-negative bacteria. In: Goodfellow M., Minnikin D., eds. Chemical Methods in Bacterial Systematics. London: Academic Press; 1985: 145-72.
18. Luderitz O., Galanos C., Lechman V., Mayer H., Rietchel E.T., Weckesser J. Chemical structure and biological activities of lipid A from various bacterial families. Naturwissenschaften. 1978; 65(11): 578-85.
19. Marmet D., Bornstein N., Flourette J. Identification des Legionella par analyse des acides gras en chromatographie phase gazeose (CPG) et des ubiquinones en chromatographie liquide haute perfomance (CLHP). Ann. Biol. Clin. (Paris). 1988; 46(6): 371-4.
20. Nurminen M. Chemical characterization of Chlamidia trachomatis LPS. Infect. Immun. 1985; 48(2): 573-5.
21. Fujioka M. et al. Structural analysis of a lipopeptide from the cell wall skeleton of Nocardia rubra (N-CWS) by FAB MS/MS. Nippon ioymasu supecotoru gakkai koenshu. 1989; 14: 201-3. (in Japan)
22. Cannon J.P., Lee T.A., Bolanos J.T., Danziger L.H. Pathogenic relevance of Lactobacillus: a retrospective review of over 200 cases. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2005; 24(1): 31-40.
23. Alexander L.R., Justice J.B.Jr., Madden J. Fatty acid composition of human erythrocyte membranes by capillary gas chromatography -mass spectrometry. J. Chromatogr.1985; 342(1): 1-12.
24. Bolte E.R. Autism and Clostridium tetani. Med. Hypotheses. 1998; 51(2): 133-44.
25. Олескин А.В., Шендеров Б.А. Биополитический подход к реа-битологии: потенциальная роль микробной биохимии. Обзор. Вестник восстановительной медицины. 2013; 1: 60-7.
26. Kaneda T. Iso- and anteiso-fatty acids in bacteria: biosynthesis, function and taxonomic significans. Microbiol. Rev. 1991; 55(2): 288-302.
27. Егорова Е.В., Минскер О.Б. Грибковые и некоторые паразитарные заболевания женских половых органов. М.: Медицина; 1988.
28. Московская М.А. Актиномикоз женских половых органов. Акушерство и гинекология. 1982; 8: 41-3.
29. Сутеева Т.Г. Сравнительное изучение аэробных грибков, выделенных из полости рта людей, здоровых в отношений ак-тиномикоза, и из очагов поражения у больных актиномикозом челюстно-лицевой области и шеи: Дисс. ... канд. мед. наук. М.; 1968.
30. McNeil M.M., Brown J.M., Jarvis W.R., Ajello L. Comparison of species distribution and antimicrobial susceptibility of aerobic ac-tinomycetes from clinical specimens. Rev. Infect. Dis. 1990; 12(5): 778-83.
31. McNabb A., Shuttleworth R., Behme R., Colby W.D. Fatty acid characterization of rapidly growing pathogenic aerobic actinomycetes as a means of identification. J. Clin. Microbiol. 1997; 35(6): 1361-8.
32. Поздоровкина В.В. Идентификация клинически значимых грибов и диагностика инвазивной грибковой инфекции методом газовой хроматографии: Дисс. ... канд. биол. наук. М.; 1998.
33. Крымцева Т.А., Осипов Г.А., Бойко Н.Б., Соколов Я.А., Демина А.М., Радюшина Т.В. и др. Минорные жирные кислоты биологических жидкостей урогенитальных органов и их значимость в диагностике воспалительных процессов. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2003; 2: 92-3.
34. Википедия. Available at: http://ru.wikipedia.org/wiki/Синдром_ хронической_усталости
35. Осипов Г.А., Парфенов А.И., Верховцева Н.В., Ручкина И.Н., Курчавов В.А., Бойко Н.Б. и др. Клиническое значение исследования микроорганизмов слизистой оболочки кишечника культурально-биохимическим и хромато-масс-спектрометрическим методами. Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. 2003; 4: 59-6.
36. Osipov G.A., Boiko N.B., Fedosova N.F., Kasikhina S.A., Lyadov K.V. Comparative gas chromatography-mass spectrometry study of the composition of microbial chemical markers in feces. Microb. Ecol. Health Dis. 2009; 21: 159-71.
37. Дьяченко И.А, Осипов Г. А., Архипова А., Захарова Л., Мурашев А.Н. Изучение влияния ампициллина на микробиоту кишечника у крыс методом газовой хроматографии - масс-спектрометрии по маркерным веществам в крови. В кн.: Международное сотрудничество в биотехнологии: Ожидания и реальность. Третья международная конференция из серии "Наука и бизнеc" 19-21 июня 2006 г. Тезисы докладов. Пущино; 2006. Available at: http://www.rusbio.biz/ru/nb2006_06.shtm
38. Николаев Ю.А., Плакунов В.К. Биопленка - «город микробов» или аналог многоклеточного организма? Микробиология. 2007; 76(2): 149-63.
39. Попов Д.А., Овсеенко С.Т., Осипов Г.А., Вострикова Т.Ю. Ускоренный способ идентификации возбудителей бактериемий с применением метода газовой хромато-масс-спектрометрии. Клиническая лабораторная диагностика. 2013; 5: 54-8.
Поступила 27.05.15
REFERENCES
1. Mitruka B.M. Application of Gas Chromatography in Microbiology and Medicine [Primenenie gazovoy khromatografii v mikrobiologii i meditsine]. Moscow: Meditsina; 1978. (in Russian)
2. Goodfellow M., Minnikin D., eds. Chemical Methods in Bacterial Systematics. London: Academic Press; 1985.
3. O'Liri V. Lipids of microorganisms. In: O'Liri V. Molecular Microbiology [Molekulyarnaya mikrobiologiya]. Moscow: Mir; 1977: 201-39. (in Russian)
4. Larsson L. Determination of microbial chemical markers by gas chromatography-mass-spectrometry potential for diagnosis and studies on metabolism in situ. APMIS. 1994; 102(3): 161-9.
5. Brondz J., Olsen J. Microbial chemotaxonomy. Chromatography, electrophoresis and relevant profiling techniques. J. Chromatogr. 1986; 379: 367-411.
6. Moss C.W., Dees S.R. Identification of microorganisms by gas chro-matographic - mass spectrometric analysis of cellular fatty acids. J. Chromatogr. 1975; 112: 594-604.
7. Vasyurenko Z.P., Frolov A.F., Smirnov V.V., Ruban N.M. The Fatty Acid Profiles of Bacteria Pathogenic for Humans and Animals [Zhir-nokislotnye profili bakteriy, patogennykh dlya cheloveka i zhivot-nykh]. Kiev: Naukova dumka; 1992. (in Russian)
8. Pozdorovkina V.V., Beloborodova N.V., Kurchavov V.A., Boyko
N.B., Rogatina E.L., Demina A.M. Gas chromatographic diagnosis of candidiasis and monitoring the effectiveness of antifungal therapy on the level arabinitol and mannose in children. Antibiotiki i khimiot-erapiya. 1998; 16(5): 23-5. (in Russian) 9. Larsson L., Pehrson C., Wiebe T., Christensson B. Chromatographic determination of D-arabinitol/L-arabinitol ratios in urine: a potential method for diagnosis of disseminated candidiasis. J. Clin. Microbiol. 1994; 32(8): 1855-9.
10. Lehtonen L., Anttila V.J., Ruutu T., Salonen J., Nikoskelainen J., Ee-rola E. et al. Diagnosis of disseminated candidiasis by measurement of urine D-arabinitol/I-arabinitol ratio. J. Clin. Microbiol. 1996; 34(9): 2175-9.
11. Lehtonen L., Eerola E., Oksman P., Toivanen P. Muramic acid in peripheral blood leukocytes of healthy human subjects. J. Infect. Dis. 1995; 171(4): 1060-4.
12. Maitza S.K., Schotz M.C., Yoshikawa T.T., Guze L.B. Defermination of lipid A and endotoxin in serum by mass-spectroscopy. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1978; 75(8): 3993-7.
13. Sugimoto C., Miyagawa E., Mitani K., Nakazawa M., Isayama Y. Cellular fatty acid composition of Haemophilus equigenitalis. J. Clin. Microbiol. 1982; 15(5): 791-4.
14. Bronds J., Olsen J. Chemotaxonomy at a crossroads? Gas chromatographic analysis of a single colony from the bacterium Haemophylus aphrophilus. J. Chromatogr. 1986; 374(1): 119-25.
15. Dennemont J., Roupas A., Heitz M. Differentiation of Campylobacter jejuni, C.coli, C.lary and C.fetus fatty acid profiles obtained by gas chromatography - mass spectrometry and by their hippurate hydrolysis. Mitt. Geb. Lebensmittelunters. Hyg. 1992; 83(2): 142-8.
16. Brandtzaeg P., Bryn K., Kierulf P., Ovstebo R., Namork E., Aase B. et al. Meningococcal endotoxin in lethal septic shock plasma studied by gas chromatography, mass-spectrometry, ultracentrifugation and electron microscopy. J. Clin. Invest. 1992; 89 (3): 816-7.
17. Jantzen E., Bryn K. Whole-cell and lipopolysaccharide fatty acids and sugars of gram-negative bacteria. In: Goodfellow M., Minnikin D., eds. Chemical Methods in Bacterial Systematics. London: Academic Press; 1985: 145-72.
18. Luderitz O., Galanos C., Lechman V., Mayer H., Rietchel E.T., Weckesser J. Chemical structure and biological activities of lipid A from various bacterial families. Naturwissenschaften.1978; 65(11): 578-85.
19. Marmet D., Bornstein N., Flourette J. Identification des Legionella par analyse des acides gras en chromatographie phase gazeose (CPG) et des ubiquinones en chromatographie liquide haute perfomance (CLHP). Ann. Biol. Clin. (Paris). 1988; 46(6): 371-4.
20. Nurminen M. Chemical characterization of Chlamidia trachomatis LPS. Infect. Immun. 1985; 48(2): 573-5.
21. Fujioka M. et al. Structural analysis of a lipopeptide from the cell wall skeleton of Nocardia rubra (N-CWS) by FAB MS/MS. Nippon ioymasu supecotoru gakkai koenshu. 1989; 14: 201-3. (in Japan)
22. Cannon J.P., Lee T.A., Bolanos J.T., Danziger L.H. Pathogenic relevance of Lactobacillus: a retrospective review of over 200 cases. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2005; 24(1): 31-40.
23. Alexander L.R., Justice J.B.Jr., Madden J. Fatty acid composition of human erythrocyte membranes by capillary gas chromatography -mass spectrometry. J. Chromatogr. 1985; 342(1): 1-12.
24. Bolte E.R. Autism and Clostridium tetani. Med. Hypotheses. 1998; 51(2): 133-44.
25. Oleskin A.V., Shenderov B.A. Biopoliticheskie approach to reali-
talia: the potential role of microbial biochemistry. Review. Vestnik vosstanovitel'noy meditsiny. 2013; 1: 60-7. (in Russian)
26. Kaneda T. Iso- and anteiso-fatty acids in bacteria: biosynthesis, function and taxonomic significans. Microbiol. Rev. 1991; 55(2): 288-302.
27. Egorova E.V., Minsker O.B. Fungal and Parasite Conditions of the Female Genital Organs [Gribkovye i nekotorye parazitarnye zabol-evaniyazhenskikhpolovykh organov]. Moscow: Meditsina; 1988. (in Russian)
28. Moskovskaya M.A. Actinomycosis of the female genital organs. Akusherstvo i ginecologiya. 1982; 8: 41-3. (in Russian)
29. Suteeva T.G. Comparative Study of Aerobic Fungi Isolated from the Oral Cavity of People in Healthy Relationships Lumpy, and from Lesions in Patients with Actinomyces Zoom Maxillofacial Area and Neck: Diss. Moscow; 1968. (in Russian)
30. McNeil M.M., Brown J.M., Jarvis W.R., Ajello L. Comparison of species distribution and antimicrobial susceptibility of aerobic ac-tinomycetes from clinical specimens. Rev. Infect. Dis. 1990; 12(5): 778-83.
31. McNabb A., Shuttleworth R., Behme R., Colby W.D. Fatty acid characterization of rapidly growing pathogenic aerobic actinomycetes as a means of identification. J. Clin. Microbiol. 1997; 35(6): 1361-8.
32. Pozdorovkina V.V. Identification and Diagnostic of Valuable Clinical Fungi and Fungal Infections by Using Gas Chromatography : Diss. Moscow; 1998. (in Russian)
33. Krymtseva T.A., Osipov G.A., Boyko N.B., Sokolov Ya.A., Demina A.M., Radyushina T.V. et al. Minor fatty acids in biological fluids urogenital organs and their significance in the diagnosis of inflammatory processes. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunobi-ologii. 2003; 2: 92-3. (in Russian)
34. Wikipedia. Available at: http://ru.wikipedia.org/wiki/CHHgpoM_xpo-HH^ecKOH_ycTagoc™ (in Russian)
35. Osipov G.A., Parfenov A.I., Verkhovtseva N.V., Ruchkina I.N., Kurchavov V.A., Boyko N.B. et al. The clinical value of the study of microorganisms of the intestinal mucosa culture and biochemical and chromato-mass-spectrometric methods. Eksperimental'naya i klinicheskaya gastroenterologiya. 2003; 4: 59-65. (in Russian)
36. Osipov G.A., Boiko N.B., Fedosova N.F., Kasikhina S.A., Lyadov K.V. Comparative gas chromatography-mass spectrometry study of the composition of microbial chemical markers in feces. Microb. Ecol. Health Dis. 2009; 21: 159-71.
37. D'yachenko I.A, Osipov G.A., Arkhipova A, Zakharova L, Mu-rashev A.N. To study the effect of ampicillin on microbiota in rats by gas chromatography - mass spectrometry for a marker substances in the blood. In: International Cooperation in Biotechnology: Expectations and Reality. Third International Conference from the Series "Science and Business", 19-21 June 2006. Abstracts [Mezhdun-arodnoe sotrudnichestvo v biotekhnologii: Ozhidaniya i real'nost'. Tret'ya mezhdunarodnaya konferentsiya iz serii "Nauka i biznec" 19-21 iyunya 2006 g. Tezisy dokladov]. Pushchino; 2006. Available at: http://www.rusbio.biz/ru/nb2006_06.shtm (in Russian)
38. Nikolaev Yu.A., Plakunov V.K. Biofilm - "City of microbes" or an analogue of multicellular organisms? Mikrobiologiya. 2007; 76(2): 149-63. (in Russian)
39. Popov D.A., Ovseenko S.T., Osipov G.A., Vostrikova T.Yu. Rapid method for the identification of pathogens bacteriemia using the method of gas chromatography-mass spectrometry. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2013; 5: 54-8. (in Russian)
Received 27.05.15
