CC BY
5
Суворов Г. А., Шкаринов JJ. //., Денисов Э. И. Гигиеническое нормирование производственных шумов и вибраций.—Л, 1984.— С. 15—16.
Dutkiewicz J., Kus L., Dutkiewicz E., Warren С. // Ann. Allergy. — 1985. — Vol. 54. — P. 1.
Haider M., Koller M. //Acta med. austr. — 1984. — Vol. 11. — P. 161—164.
Kotimaa M. HHusman K. #., Terho E. O. // Scand. J. Work environm. Hlth. — 1984. — Vol. 10.— P. 115— 119.
Поступила 16.02.88
1. Зверева Г. СРатнер М. В., Колганов А. В. и др. // Гиг. труда. — 1982. — № 7.— С. 7—11.
2. Кундиев Ю. И., Краснюк Е. П. Профессиональные заболевания работников сельского хозяйства. •— Киев, 1983.
3. Николов С. X., Колычева С. С. // Гиг. и сан. — 1979.— № 6. — С. 55—59.
4. Пастернак Н. И., Брысин В. Т. Аллергенность плесневых грибов. — Ташкент, 1985. — С. 8—11,
Н. Р. Шепельская
ГОНАДОТОКСИЧЕСКИЙ ЭФФЕКТ ДИКУРИНА ПРИ ВНУТРИЖЕЛУДОЧНОМ ВВЕДЕНИИ ЗОНДОМ И С ПИЩЕЙ
ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимеров и пластических масс Минздрава СССР, Киев
Цель настоящей работы заключалась в выявлении возможного гонадотоксического действия дикурина, а также влияния внутрижелудочного введения пестицида на выраженность гонадотоксического эффекта. Принимая во внимание данные литературы о влиянии способа введения пестицида на выраженность тератогенного и эмбриотокси-ческого эффектов [4—6], представлялось целесообразным выявить наличие или отсутствие аналогичной зависимости при изучении гонадотоксической активности указанного препарата.
Регулятор роста растений дикурин вводили белым беспородным крысам внутрижелудочно зондом и с пищей: с помощью зонда — в виде водной суспензии в дозах 2 мг/кг (на уровне Ьипсь. ¡теег) и 0,2 мг/кг, с пищей — в дозах 20 и 2 мг/кг. Контрольным животным зондом вводили растворитель (вода). Животные подопытных групп получали препарат в течение 10 нед (по 5 дней в неделю). По окончании затравки исследовали морфофункцио-нальные показатели состояния гонад, способность животных к воспроизведению потомства. Функциональное состояние гонад самцов оценивали по двигательной активности сперматозоидов, их количеству и наличию патологически
измененных форм. У самок изучали состояние эстрального цикла, продолжительность и частоту отдельных стадий.
О состоянии процессов сперматогенеза судили по величине индекса сперматогенеза, количеству канальцев со слушенным эпителием и XII стадией мейоза [3], среднему количеству покоящихся сперматоцитов в 20 круглых канальцах. Подсчет клеток проводили на VII стадии цикла сперматогенного эпителия, маркером которой служили сперматиды с акросомной системой, покрывающей; 7з ядра [2].
Состояние репродуктивной функции оценивали на 20-й день беременности подопытных забеременевших от подопытных самцов интактных самок.
Все данные, полученные в эксперименте, подвергал» статистической обработке [1].
Анализ результатов изучения гонадотоксической активности дикурина показал, что самцы оказались более чувствительными к действию препарата, чем самки. При введении зондом обеих изученных доз дикурина у самок, спаренных с подопытными самцами, снижается масса и
Таблица 2
Состояние репродуктивной функции у интактных крыс^ спаренных с подопытными самцами, получавшими дикурин
с пищей (тИ+т)
Таблица 1
Состояние репродуктивной функции у интактных крыс, спаренных с подопытными самцами, получавшими дикурин через
зонд {М±т)
Доза препарата, мг/кг
Показатель
Контроль
Контроль
Число желтых тел Число нормальных
плодов Число зародышей, погибших до им плантации: абс.
Число желтых тел Число нормальных пло Дов
Число зародышей, погиб ших до имплантации абс.
Число зародышей, погибших после имплантации; абс.
Число зародышей, погибших после имплантации:
абс.
%
Средняя масса плодов, г
Средний краниокаудаль-ный размер плодов, см
Число самок в группе
Средняя масса плодов, г Средний краниокау-дальный размер плодов, см Число самок в группе
!Ч а н и е. Одна звездочка — различия достоверны при две звездочки —при р<0,01,- три —при р<0,05.
Примечание. Звездочка — различия достоверны при 0,05
Литература
5. Сенкевич Н. А., Васильева О. С.//Гиг. труда. — 1982. № 6. —С. 1—5.
уменьшается размер плодов, т. е. изменяются наиболее интегральные показатели, характеризующие физиологическую зрелость плода (табл. 1). Вместе с тем показатели морфофункционального состояния семенников, а также процессов сперматогенеза у подопытных самцов остаются без изменений.
Введение дикурина в пищу животных в дозах, па порядок превышающих количества, вводимые зондом, не вызывает патологических сдвигов изучавшихся показателей. Более того, у самцов, получавших дикурин в дозе 2 мг/кг, достоверно повышается количество нормальных плодов по отношению как к контролю, так и к подопытной группе самцов, получавших препарат в той же дозе через зонд (табл. 2).
Таким образом, дикурин при введении его в желудок белых крыс с помощью зонда в дозах на уровне Limch. integr (2 мг/кг) и ниже (0,2 мг/кг) оказывает на гонады животных токсическое влияние, которое по степени выраженности можно принять близким к LimCh. spec-
Поступление препарата в желудок лабораторных животных с пищей в дозах на порядок выше не дает гоиадоток-
сического эффекта. Результаты проведенных экспериментов свидетельствуют о зависимости на выраженности гонадо-токсического эффекта от способа внутрижелудочного введения пестицида.
Литература
1. Беленький М. Л. Элементы количественной оценки фармакологического эффекта. — Л., 1965.
2. Райцина С. С. // Современные проблемы сперматогенеза. — М., 1982. — С. 73—107.
3. Саноцкий И. ВАехименко M. М., Фоменко В. П. // Методы определения токсичности и опасности химических веществ.— М., 1970. — С. 245—264.
4. Kimmel С. А. // Toxicol, appl. Pharmacol. — 1977- — Vol. 40. — P. 299—306.
5. Staples R.t Stobbe H., Pool J. L.// Environ. Hlth Pers-pect. — 1976.— Vol. 13.— P. 133—140.
6. Staples R., G out din g M. // Ibid. — 1979. — Vol. 30.— P. 105—113.
Поступила 18.05.87
ДК 614.718:579.852.13]-074
А. Г. Кольчевский
ИНАКТИВАЦИЯ ТЕРМОСТАБИЛЬНОГО ЭКЗОТОКСИНА
BACILLUS THURINGIENS5S ПОЧВЕННЫМИ МИКРООРГАНИЗМАМИ
ВНИИ защиты растений, Ленинград
Постоянно расширяющееся применение бактерийных препаратов, в частности битоксибациллина, в защите растений от вредителей приводит к внесению в биосферу значительных количеств спор, кристаллов эндотоксина и термостабилыюго экзотоксина. Споры и белковый токсин кристаллообразующих бацилл относительно безопасны для человека и теплокровных животных. Что касается экзотоксина, то отмечены его токсичность для теплокровных животных, цитогенетическое и цитотоксическое действие [3, 6, 7]. В связи с этим возникает необходимость санитарно-гигиенического обоснования применения препаратов, содержащих экзотоксин.
Обязательное требование, предъявляемое к химическим ¿пестицидам, — инактивация их в окружающей среде. Если сохранность спор кристаллообразующих бактерий в различных экосистемах изучена достаточно хорошо, то данные относительно сохранности и инактивации экзотоксина в объектах окружающей среды немногочисленны
и.
В качестве первого этапа на пути решения проблемы сохранности экзотоксина нами было проведено изучение детоксикации этого компонента бактерийных препаратов некоторыми почвенными микроорганизмами.
В качестве продуцента экзотоксина использовали культуру В. thuringiensis уаг. Шипг^егшэ, штамм № 202. Детоксикацию экзотоксина изучали в культурах ряда микроорганизмов, полученных из музея типовых культур ВНИИСХМ, и в водных вытяжках следующих почв: дерново-подзолистой, хорошо окультуренной легкосуглинистой с содержанием гумуса 2,91 % и рН водной вытяжки 7,0; дерново-подзолистой легкосуглинистой с содержанием гумуса 3,5 % и рН 6,5; поверхностно-подзолистой песчаной с содержанием гумуса 1,79 % и рН 5,0; морского песка.
Для получения экзотоксина культуру продуцента выращивали на кукурузно-меллассовой среде в качалочных колбах. По 1 мл упаренного в 10 раз стерильного супер-натанта культуральной жидкости вносили в пробирки с '9 мл среды Мак-Коннела и Ричардса или мясопептонного бульона (МПБ) и засевали соответствующим микроорганизмом. Пробирки инкубировали на качалке при 28 °С в течение 48 ч. Повторность опытов 3-кратная. По окончании инкубирования культуральную жидкость центрифуги-
ровали, супернатант автоклавировали и разводили в 2, 4, 8 и 16 раз. Токсичность каждого разведения определяли биотестом [1]. ЬО50 определяли методом пробитов [4].
Для приготовления водных вытяжек брали 10 г воздушно-сухой почвы йа 50 мл стерильной дистиллированной воды, взбалтывали 2 ч на качалке, центрифугировали 10 мин при 1000 об/мин и супернатант фильтровали через бумажный фильтр. Дальнейший ход опытов, как описано выше. В одном из опытов использовали содержащую экзотоксин фракцию, полученную осаждением этанолом на холоду. Степень развития микроорганизмов в водных вытяжках определяли по изменению коэффициента свето-пропускания, измеренного на ФЭК-56М при желтом светофильтре.
Испытания не содержащих экзотоксин культуральных жидкостей опытных микроорганизмов не выявили их токсичность для гусениц большой пчелиной огневки. Следовательно, эти микроорганизмы не продуцируют термостабильные водорастворимые метаболиты, обладающие инсектицидной активностью.
Токсичность содержащих экзотоксин центрифугатов культуральных жидкостей незначительно отличается от контроля. Только в варианте с В. те£а1егшт наблюдалось более значительное снижение токсичности супернатанта культуральной жидкости. Однако отличие от контроля и в этом варианте недостоверно (¿ф = 2,35).
Степень детоксикации экзотоксина на среде Мак-Коннела и Ричардса значительно выше, чем на МПБ. Токсичность супернатанта культуральной жидкости В. эиМШв составляет 72% от контроля, В. туалете — 71%, а В. megateгium — 67 %. Отличие от контроля во всех этих вариантах достоверно при р = 0,05.
Таким образом, на полусинтетической среде Мак-Коннела и Ричардса степень детоксикации экзотоксина одними и теми же микроорганизмами значительно выше, чем на МПБ, Однако полной детоксикации не наблюдалось пи в одном из вариантов опыта.
Токсичность вытяжек из дерново-подзолистых почв практически не отличалась от контроля. В вытяжках из поверхностно-подзолистой почвы и песка наблюдалась значительная инактивация экзотоксина.
