CC BY
67
Medical Immunology (Russia)/ Медицинская иммунология ОрЫгЫНаЛЬНЬ1@ C^fttt^ftbW Meditsinskaya Immunologiya 2015, Т. 17, № 1, стр. 59-70 * ^ . . . . . 2015, Vol. 17, No 1, pp. 59-70
© 2015, СПбРО РААКИ Original articles © 2015, SPb RAACI
ГОМОЛОГИЧНЫЙ И ГЕТЕРОЛОГИЧНЫЙ ГУМОРАЛЬНЫЙ И Т-КЛЕТОЧНЫЙ ИММУННЫЙ ОТВЕТ ЛЮДЕЙ НА ЖИВЫЕ РЕАССОРТАНТНЫЕ ГРИППОЗНЫЕ ВАКЦИНЫ А(Н5N2) И А(Н7N3)
Найхин А.Н.1, Донина С.А.1, Лосев И.В.1, Петухова Г.Д.1, Кореньков Д.А.1, Стукова М.А.2, Ерофеева М.К.2, Коншина О.С.2, Смолоногина Т.А.1, Дорошенко Е.М.1, Григорьева Е.П.1, Руденко Л.Г.1
1ФГБУ«Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
2 ФГБУ «Научно-исследовательский институт гриппа» МЗ РФ, Санкт-Петербург, Россия
Резюме. С начала века периодически регистрируются среди людей вспышки гриппа А, вызванные птичьими вирусами с гемагглютининами (НА) Н5, Н7 и Н9. Это не исключает, что данные вирусы могут стать возбудителями следующей пандемии. Поэтому создание резервных вакцин, включающих птичьи вирусы гриппа А является глобальным приоритетом для органов здравоохранения (меморандум ВОЗ). Нами изучен гуморальный и Т-клеточный иммунный ответ на живые реассортантные гриппозные вакцины (ЖГВ), приготовленные из птичьих вирусов гриппа А(Н5№) и А(Н7№). Тестировали сывороточные (РТГА, РМН, ИФА) и локальные (ИФА) антитела, а также вирусспецифи-ческие CD4+ и CDS+Т-клетки центральной (rcm) и эффекторной ^em) иммунологической памяти. Изучали иммунный ответ к вакцинным и гетерологичным штаммам птичьих вирусов. Двухкратная прививка ЖГВ А(Н5N2) и ЖГВ А(Н7№) индуцировали у волонтеров гомологичный и Т-клеточный иммунный ответ в виде конверсий сывороточных и локальных антител, а также вирусспецифиче-ских CD4+/CD8+Т-лимфоцитов пулов ^m и Тem. Те же вакцины стимулировали гетерологичный иммунный ответ, отражавшийся в накоплении перекрестнореагирующих сывороточных и локальных IgA-антител, а также перекрестнореагирующих CD4+/CD8+Т-клеток иммунологической памяти. Выраженность гетерологичных иммунных ответов зависела от антигенной формулы вакцинного и ге-терологичного вируса, а именно: от наличия или отсутствия в них общего НА.
Ключевые слова: птичьи вирусы гриппа, иммунный ответ к вирусам гриппа А, гуморальный иммунный ответ
Адрес для переписки:
Кореньков Даниил Анатольевич
ФГБУ «Научно-исследовательский институт
экспериментальной медициныI» СЗО РАМН
197376, Россия, Санкт-Петербург, ул. акад. Павлова, 12.
Тел.: 8 (812) 234-68-60.
E-mail: d.korenkov@gmail.com
Address for correspondence:
Korenkov Daniil A.
Research Institute for Experimental Medicine of the North-West Branch of the Russian Academy of Medical Sciences 197376, Russian Federation, St. Petersburg, Pavlov str., 12. Phone: 7(812) 234-68-60. E-mail: d.korenkov@gmail.com
Образец цитирования: For citation:
АН. Найхин, С.А. Донина, И.В. Лосев, Г.Д. Петухова, A.N. Naykhin, SA. Donina, I.V. Losev, G.D. Petukhova,
Д.А. Кореньков, М.А. Стукова, М.К. Ерофеева, О.С. Коншина, D.A. Korenkov, MA. Stukova, М.К. Erofeeva, O.S. Konshina, Т.А Смолоногина, Е.М. Дорошенко, Е.П. Григорьева, T.A Smolonogina, Е.М. Doroshenko, E.P. Grigorieva,
Л.Г. Руденко, «Гомологичный и гетерологичный гуморальный L.G. Rudenko, "Homologicalandheterologicalantibody and Tcell и Т-клеточный иммунный ответ людей на живые immune responses to live attenuated influenza vaccine A (H5N2)
реассортантные гриппозные вакцины А(Н5N2) и А(Н7N3)» // and A (H7N3)", Medical Immunology (Russia)/Meditsinskaya Медицинская иммунология, 2015. Т. 17, № 1. С. 59-70. Immunologiya, 2015, Vol. 17, no. 1,pp. 59-70.
doi: 10.15789/1563-0625-2015-1-59-70 doi: 10.15789/1563-0625-2015-1-59-70
© Найхин А.Н. и соавт., 2015 DOI: http://dx.doi.org/10.15789/1563-0625-2015-1-59-70
HOMOLOGICAL AND HETEROLOGICAL ANTIBODY AND T CELL IMMUNE RESPONSES TO LIVE ATTENUATED INFLUENZA VACCINE A (H5N2) AND A (H7N3)
Naykhin A.N.a, Donina S.A.a, Losev I.V.a, Petukhova G.D.a, Korenkov D.A.a, Stukova M.A.b, Erofeeva M.Kb, Konshina O.S.b, Smolonogina T.A.a, Doroshenko Е.М.a, Grigorieva E.P.a, Rudenko L.G.a
1 Research Institute for Experimental Medicine of the North-West Branch of the Russian Academy of Medical Sciences, St. Petersburg, Russian Federation
2 Research Institute of Influenza, St. Petersburg, Russian Federation
Abstract. From the beginning of 21th century outbreaks of H5, H7 and H9 avian flu are registered from time to time. These viruses are considered as one of the possible causes of the next pandemia. The development of avian influenza vaccines is one of the WHO priorities. The aim of this work was to study antibody and cellular immune responses to avian A (H5N2) and A (H7N3) live attenuated influenza vaccines (LAIVs). We examined serum antibodies (HAI assay, microneutralization assay, ELISA), local antibodies (ELISA) and virus-specific CD4+ and CD8+ central memory and effector memory T cells. Two doses vaccination of healthy volunteers with A (H5N2) and A (H7N3) LAIVs induced homological antibody and cellular immune responses (i. e. serum and local antibody conversions, virus-specific memory T cell growth). These vaccines also stimulated heterological immunity (heterological serum and local antibodies and T cells). Heterological immune response intensity depended on antigenic structure of vaccine strain and heterological virus, particularly on HA type.
Keywords: avian influenza viruses, immune response to influenza A viruses, humoral immune response
Работа выполнена при финансовой поддержке PATH Vaccine Solutions (США) и Российского фонда научных исследований. Авторы выражают благодарность сотрудникам фондового агентства PATH Vaccine Solutions (США) и ФГУП «Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам «Микроген» МЗ РФ за активное участие в проведении клинических исследований ЖГВ А(Н5Ш) и А(Н7Ю).
Введение
Вирусы гриппа А, кроме ежегодных сезонных эпидемий, вызывают пандемии. Этиологическими агентами таких пандемий являются серопод-типы вируса с обновленным гемагглютинином. В последнее столетие зафиксированы пандемии гриппа А(НШ1), А(Н2Ш) и А(Н3Ш). С начала 21го века периодически регистрируются среди людей вспышки гриппа А, вызванные птичьими вирусами с гемагглютининами Н5, Н7 и Н9 [12, 14, 15, 26, 29]. Вспышки гриппа А(Н5№) сопровождались тяжелыми клиническими проявлениями болезни с высокой летальностью [13]. Хотя невозможно предсказать возбудитель следующей пандемии, не исключено, что это будет птичий вирус гриппа А с одним из перечисленных выше гемагглютининов. Это диктует необходимость создания резервных вакцин, приготовленных из всех потенциально пандемических птичьих подтипов вирусов гриппа А. Согласно меморан-
думу ВОЗ [28], создание таких вакцин является глобальным приоритетом для органов здравоохранения. Известно, что живые реассортантные гриппозные вакцины (ЖГВ) имеют преимущество перед инактивированными вакцинами в защите от сезонных возбудителей гриппа А за счет индукции локального гуморального и клеточного иммунитета [13]. В США проведены первые фазы клинических испытаний на волонтерах резервных реассортантных ЖГВ А(Н5Ш) [11], А(Н6Ш) [21], А(Н7Ш) [22] и А(Н9Ш) [10], включающих оба поверхностных белка, то есть гемагглютинин (НА) и нейраминидазу ^А), от соответствующих птичьих вирусов, и внутренние белки от донора аттенуации А/Ann Arbor/6/60 А(Н2№). Аналогичные клинические испытания прошла отечественная ЖГВ А(Н5N2), имеющая НА от апато-генного вируса А/утка/Потсдам/86/92(Н5N2), а NA и внутренние белки от донора аттенуации А/Leningrad/134/17/57 (ШШ) [4, 9].
В настоящей работе представлены данные об иммуногенности двух других отечественных резервных ЖГВ, приготовленные на основе того же донора аттенуации. Изучали в разных лабораторных тестах поствакцинальную продукцию гомологичных и гетерологичных сывороточных и локальных антител, а также вирусспецифиче-ских Т-клеток иммунологической памяти.
Материалы и методы
Вакцины
Вакцинные штаммы для ЖГВ A(H5N2) и A(H7N3) разработаны в отделе вирусологии имени А.А. Смородинцева Научно-исследовательского института экспериментальной медицины Российской академии наук и произведены в НПО «Микроген». Штаммы получены классическим реассортантным методом. Первая из них включала НА Н5 от патогенного вируса А/индюк/Турция/1/2005 (Н5Ш),а NA N1 и все внутренние белки — от донора аттенуации А/Ле-нинград/134/17/57 (H2N2) — генетическая формула 1/7. Второй штамм содержал НА Н7 и NA N3 от апатогенного вируса А/селезень/Нидер-ланды/12/00 (Н7№) и внутренние белки от того же донора аттенуации — генетическая формула 2/6. Для обеспечения безопасности лабораторных работ вакцинные НА Н5 и НА Н7 доктором J.Wood были модифицированы обратногенетиче-ским способом — вырезка полноосновного участка кливедж-сайта (National Institute for Biological Standartization and Control, United Kingdome). Это делало их апатогенными. Для удобства изложения материала далее ранее апробированная ЖГВ А/утка/Потсдам/86/92 (Н5Ш) [4, 9] обозначается как ЖГВ А(Н5№)-утка, а испытуемая ЖГВ А/индюк/Турция/1/2005 (Н5Ш) - как ЖГВ А(Н5Ш) - индюк.
Волонтеры
Испытание вакцин на волонтерах проведены в полном соответствии с национальным стандартом Российской Федерации (ГОСТ Р52379-2005) «Надлежащая клиническая практика», отражающем международный этический и научный стан-
дарт планирования и проведения исследований с участием человека (Good Clinical Practice; GCP). Схема вакцинации и отбора биологических проб (венозная кровь, секреты носа) при испытании обоих штаммов была одинаковой: первая точка — до вакцинации, вторая — через 28 дней после первичной вакцинации, третья — через 28 дней после вторичной вакцинации, которую осуществляли через 28 дней после первичной. Аналогичная схема применялась и при обследовании контрольных групп добровольцев, получавших препарат плацебо (все ингредиенты наполнителя без вируса). Состав групп по числу, полу и возрасту существенно не отличался (табл. 1). Вакцины и плацебо вводили стандартным коммерческим распылителем в обе ноздри по 0,25 мл в каждую. По клиническим данным обе вакцины были аре-актогенны.
Реакция торможения гемагглютинации (РТГА)
РТГА воспроизводили по стандартной методике [17]. Сыворотки крови обрабатывали RDE (receptor destroid enzime). Рабочая доза антигенов составляла 2АЕ, поскольку в предварительных исследованиях было показано ее преимущество перед 4АЕ. Применяли параллельно 1% взвесь человеческих эритроцитов 0(1) группы крови и эритроцитов лошади. Достоверной конверсией титров антител считали его поствакцинальное увеличение в 4 и более раза по отношению к до-вакцинальному.
Реакция микронейтрализации (РМН)
РМН выполняли стандартным методом [17] на культуре клеток MDCK в концентрации 200 тыс. клеток/мл. Рабочее разведение вируса составляла 100 TCD50/50 мкл. Достоверным считали увеличение титра сывороточных антител в 4 и более раза в поствакцинальный период по отношению к довакцинальному.
Иммуноферментный анализ (ИФА)
IgA- и IgG-антитела в сыворотке крови и IgA-антитела в секретах верхних дыхательных путей выявляли в ИФА по ранее описанной методике [1]. На планшете сорбировали 16АЕ вирусов, очищенных центрифугированием в градиенте плотности сахарозы (30-60%). За титр сывороточных
ТАБЛИЦА 1. ХАРАКТЕРИСТИКИ ВОЛОНТЕРОВ
Вакцина Группа Число лиц Возраст (лет) Пол
Средний Колебания Мужской Женский
A(H5N2) -индюк Привитые вакциной 29 27,2 20-49 20 (69,0%) 9 (31,0%)
Плацебо 10 29,2 20-46 6 (60,0%) 4 (40,0%)
Всего 39 27,7 20-49 26 (66,7%) 13 (33,3%)
A(H7N3) Привитые вакциной 29 30,9 18-49 14 (48,3%) 15 (51,7%)
Плацебо 10 39,0 20-48 6 (60,0%) 4 (40,0%)
Всего 39 32,9 18-49 20 (51,3%) 19 (48,7%)
и локальных антител принимали наибольшее разведение исследуемого материала, при котором оптическая плотность (ОП) лунки с образцами превышала среднюю ОП в контрольных лунках (все ингредиенты реакции, не содержащие исследуемый материал) в 2 и более раза. За достоверный прирост титров антител в сыворотке крови и в СВДП принимали его увеличение в 4 и более раза.
Определение вирусспецифических CD4+ и CD8+Т-клеток иммунологической памяти
Эти клетки тестировали в проточной цито-метрии общепринятым методом внутриклеточного окрашивания цитокинов (IFNy) после стимуляции клеток in vitro 12 МО1 очищенного ультрацентрифугированием вакцинного штамма [4, 9]. Мононуклеары периферической крови выделяли стандартным способом на градиенте плотности HISTOPAQUE-1077, отмывали и хранили до проведения анализа в жидком азоте. Для определения спонтанной продукции IFNy вместо стимуляции вирусом к клеткам добавляли соответствующий объем питательной среды RPMI-1640 (отрицательный контроль). В качестве положительного контроля использовали стимуляцию клеток поликлональным стимулятором — стафилококковым энтеротоксином В. После разморозки порции клеток волонтеров, отобранные во всех временных интервалах, были способны к активации продукции IFNy. При анализе данных показатели отрицательного контроля вычитались из аналогичных показателей, полученных для вирусстимулированных клеток. Показатели всех контролей были адекватны.
В проточной цитометрии маркерами Т-лимфоцитов центральной (Tcm) и периферической (Tem) иммунологической памяти CD4+
и CD8+ клеток служили меченные флюорохро-мом мононуклеарные антитела к, соответственно, CCR7+CD45RA- и CDR7"CD45RA"(Beckman Coulter, Becton Dickinson). Достоверным увеличением уровня клеток у привитых считали 3 стандартных отклонения от уровня тех же клеток у лиц контрольной группы, получавших препарат плацебо.
Антигены
В РТГА, РМН и ИФА использовали апато-генные вакцинные штаммы вирусов NIBRG-23 (А/индюк/Турция/1/2005*PR/8), А/17/утка/Пот-сдам/86/92 (H5N2), А/17/индюк/Турция/05/133 (H5N2), А/17/селезень/Нидерланды/00/95 (H7N3) и А/17/Ануи/2013/61 (H7N9).
Статистическая обработка результатов
Использовали программное обеспечение Statistica и Graph Pod Prizm 5. Для сравнения данных применяли Wilcoxon Mathed Paire Test, Friaman ANOVA и Fisher exact (two-tailed).
Результаты
В таблице 2 представлены сведения о числе конверсий сывороточных и локальных антител у волонтеров, привитых ЖГВ A(H5N2) — индюк.
По суммарным данным, учитывающим конверсии антител во всех лабораторных тестах в совокупности, то есть наличие иммунной реакции на прививку, гуморальный иммунный ответ к вакцинному штамму зафиксирован после первой прививки у 28% волонтеров, после второй — у 76% (Р < 0,001). К гетерологичным штаммам A(H5N2) - утка, A(H5N1) и A(H7N3) этот показатель составил, соответственно, 17 и 66%, 17 и 59% (Р > 0,05), 10 и 24% (Р < 0,01). Если к гетерологичным вирусам со сходными гемаг-глютинином (НА5) обнаруживались конверсии,
ТАБЛИЦА 2. ЧАСТОТА (%) ГОМОЛОГИЧНЫХ И ГЕТЕРОЛОГИЧНЫХ ГУМОРАЛЬНЫХ ИММУННЫХ ОТВЕТОВ НА ЖГВ А^2) - ИНДЮК
Антитела и лабораторный тест Конверсии антител у привитых добровольцев (n = 29 i к вирусам*
A(H5N2) - индюк A(H5N2) - утка A(H5N1) A (H7N3)
После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки
Сывороточные РТГА 4 (14%) 11 (38%) 3 (10%) 14 (48%) 0 3 (10%) 0 0
РМН 3 (10%) 14 (48%) ни** ни 3 (10%) 8 (28%) ни ни
ИФА-IgA 0 2 (7%) 1 (3%) 2 (7%) ни ни 2 (7%) 3 (10%)
ИФА-IgG 0 1 (3%) 0 0 ни ни 0 0
Локальные ИФА-IgA 2 (7%) 6 (21%) 2 (7%) 10 (35%) 4 (14%) 8(28%) 1 (3%) 5 (17%)
Кумулятивные данные по всем лабораторным тестам 8 (28%) 22 (76%) 5 (17%) 19 (66%) 5 (17%) 17 (59%) 3 (10%) 7 (24%)
Примечание. * - у волонтеров, получивших препарат плацебо (п = 10), конверсии антител во всех тестах отсутствовали; **- не исследовали.
как сывороточных (РТГА и ИФА-IgA), так и локальных IgA-антител (ИФА), то к гетерологич-ному вирусу с НА Н7 конверсии сывороточных антител (РТГА, ИФА-IgG) отсутствовали.
Таблица 3 содержит данные о конверсиях тех же антител у лиц, привитых ЖГВ А(Н7№). В качестве гетерологичных использовали вирусы А(Н7Ю) и А(Н5Ш) - утка.
Как в случае с вакциной А(Н5№) — индюк, наблюдали: (0 поствакцинальное накопление сывороточных антител (РТГА, ИФА-^А, ИФА-IgG) и локальных антител (ИФА — IgA) к вакцинному штамму; (и) поствакцинальную продукцию перекрестнонореагирующих сывороточных (ИФА-IgA) и локальных (ИФА-IgA) антител к гетерологичным вирусам; (ш) значительное отставание в частоте индукции антител к гетерологичному вирусу с отличающимся НА Н5 по сравнению с вирусом со сходным НА Н7. Так, по суммарным данным, после первой и второй иммунизации число конверсий антител к вакцинному штамму А(Н7№) составило, соответственно, 69 и 86%, а к гетерологичному штаммуА(Н7№) — соответственно, 31 и 69% (Р < 0,05), и ко второму гетерологичному штамму А(Н5№) — утка — соответственно, 10 и 24% (Р < 0,01).
Таким образом, на вакцинацию ЖГВ А(Н5№) — индюк и А(Н7№) абсолютное большинство волонтеров отвечали конверсиями сывороточных и/или локальных антител к вакцинным штаммам (соответственно, 76 и 86%). При этом у значительной части волонтеров наблюдалась продукция тех же антител к гетерологич-ным вирусам со сходным с вакцинным штаммом гемагглютинином (соответственно, 66 и 69%). В случае, когда вакцинный и гетерологичные
штаммы полностью отличались по составу НА и NА, число таких конверсий антител было значительно ниже (соответственно, 24 и 21%; Р < 0,01). Последние выявляли только в ИФА (сывороточные и локальные IgA-антитела), но не в РТГА и РМН. Если в отношении частоты (%) гуморальных иммунных ответов у волонтеров на ЖГВ А(Н5N2)-индюк и А(Н7№) результаты были вполне удовлетворительными, то данные об интенсивности продукции антител оказались более скромными (табл. 4). Так, после двухкратной прививки СГТ всех антител хотя и увеличился в 1,5-3,0 раза, но их уровень оказался весьма низким (от 1:5,1 до 1:13,2 — к вакцинным штаммам и от 1:2,5 до 1:10,4 — к гетерологичным штаммам). Исключение составили выявляемые в РТГА сывороточные антитела к вирусу А(Н7№) у привитых ЖГВ А(Н5Ш), а также к вирусу А(Н5Ш) у привитых ЖГВ А(Н7№). В этих случаях СГТ антител после вакцинации не изменились.
Таким образом, как гомологичный, так и гетерологичный гуморальный иммунный ответ волонтеров на двухкратную прививку ЖГВ А(Н5N2) — индюк и А(Н7№) был хорошо выражен по частоте (% конверсий антител), но значительно слабее по интенсивности продукции антител (СГТ).
Таблица 5 содержит материалы, отражающие частоту конверсий вирусспецифических CD4+ и CD8+Т-клеток центральной (Тст) и эффектор-ной (Тет) иммунологической памяти на ЖГВ А(Н5N2) — индюк и А(Н7№) у тех же волонтеров. После первой прививки этими вакцинами число конверсий лимфоцитов CD4+IFNy+Тсm и/или Тет и CD8+IFNy+Тсm и/илиТет отмечено, соответственно, у 21-28% волонтеров, после второй — соответственно, у 24-55% волонтеров
ТАБЛИЦА 3. ЧАСТОТА (%) ГОМОЛОГИЧНЫХ И ГЕТЕРОЛОГИЧНЫХ ГУМОРАЛЬНЫХ ИММУННЫХ ОТВЕТОВ НА ЖГВ А(Н7М3)
Конверсии антител у привитых добровольцев (n = 29) к вирусам*
Антитела и лабораторный тест А (H7N3) А (H7N9) A(H5N2) - утка
После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки
РТГА 7 (24%) 13 (45%) 5 (17%) 12 (41%) 0 0
Сывороточные РМН 5 (17%) 12 (41%) 2 (7%) 5 (17%) ни** ни
ИФА-1дА 3 (10%) 8 (28%) 0 4 (14%) 1 (4%) 3 (10%)
ИФА-IgG 1 (3%) 3 (10%) 0 0 0 0
Локальные ИФА-1дА 12 (41%) 14 (48%) 5 (17%) 7 (24%) 2(7%) 5 (17%)
Кумулятивные данные по всем лабораторным тестам 20 (69%) 25 (86%) 9 (31%) 20 (69%) 3(10%) 6 (21%)
Примечание. * - у волонтеров, получивших препарат плацебо (п = 10), конверсии антител во всех тестах отсутствовали; ** - не исследовали.
ТАБЛИЦА 4. ИНТЕНСИВНОСТЬ ГОМОЛОГИЧНЫХ И ГЕТЕРОЛОГИЧНЫХ ГУМОРАЛЬНЫХ ИММУННЫХ ОТВЕТОВ НА ЖГВ А(Н5М2) - ИНДЮК И А(Н7МЗ)
Лабораторный тест и антитела (АТ) Средние геометрические титры (СГТ) и кратность прироста СГТ
Привитые А(Н51М2) - индюк Привитые А(Н71МЗ)
А (Н51Ч2) - индюк А(Н51М2) - утка А(Н51\11) А(Н71МЗ) А (Н71МЗ) А (Н71М9) А (Н51М2)
I* II* М/Г I II М/1 I II М/1 I II М/1 1 II М/1 1 II М/1 1 II 11/1
РТГА (сывороточные АТ) 2,8 5,1 1,8 2,6 5,4 2,1 2,7 4,3 1,6 2,8 2,7 1,0 3,0 7,0 2,3 2,6 4,8 1,8 2,6 2,5 1,0
РМН (сывороточные АТ) 5,2 11,8 2,3 ни** ни ни 10,0 17,3 1,7 ни ни ни 4,2 12,4 3,0 3,0 5,1 1,7 ни ни ни
ИФА-локальные 1дА- АТ 7,8 13,2 1,7 5,8 10,4 1,8 5,7 8,5 1,5 5,4 7,9 1,5 7,6 12,6 2,0 2,9 4,9 1,7 6,3 9,2 1,5
Примечание. *1 - СГТ антител до прививки, II - СГТ антител после 2-й прививки, 11/1- кратность деления СГТ после 2-й прививки по отношению к довакцинальному периоду (аналогичный показатель улиц из контрольной группы плацебо (п = 10) колебался от 0,9 до 1,0); ** - не исследовали.
ТАБЛИЦА 5. ГОМОЛОГИЧНЫЙ Т-КЛЕТОЧНЫИ ИММУННЫИ ОТВЕТ НА ЖГВ А(Н5Ы2) - ИНДЮК И А(Н7МЗ)
Популяция Т-кпеток Число (%) волонтеров с конверсиями Т-кпеток*
А(Н51М2) - индюк, п = 29 чел. А(Н71МЗ), п = 29 чел.
После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки После 1й прививки После 1й и/или 2й прививки
С04+1Р1\Г Тст 5 (17%) 8 (28%) 5 (17%) 7 (24%)
Тет 5 (17%) 11 (38%) 1 (4%) 3 (10%)
Тст + Тет 8 (28%) 16 (55%) 6 (21%) 7 (24%)
С08+1Р1\Г Тст 2 (7%) 3 (10%) 1 (4%) 6 (21%)
Тет 6 (21%) 8 (28%) 5 (17%) 5 (17%)
Тст + Тет 8 (28%) 10 (35%) 6 (21%) 13 (45%)
Кумулятивные данные по всем Т-клеткам 11 (38%) 18 (62%) 9 (31%) 15 (52%)
Примечание. * - достоверным считали 3 стандартных отклонения (Р < 0,01) от данных по контрольной группе волонтеров, получивших препарат плацебо (п = 10 чел.
3 I
§ ж
® §
<о §
а ¡а
(Р < 0,01). Кумулятивные данные по конверсиям всех изученных популяций Т-клеток на иммунизацию ЖГВ А(Н5Ш) - индюк и А(Н7Ю) составили 38 и 31% (первая прививка) и 62 и 52% (вторая прививка).
Таким образом, обе вакцины индуцировали продукцию вирусспецифических CD4+ и CD8+Т-клеток иммунологической памяти. Отмечено существенное увеличение числа конверсий этих клеток после второй прививки.
Таблица 6 дает представление о развитии ге-терологичного Т-клеточного иммунного ответа к вирусу А(Н7N9) у лиц, привитых ЖГВ А(Н7№). Двухкратная прививка этой вакциной стимулировала продукцию специфических к ге-терологичному вирусу А(Н7Ю) CD4+ и CD8+Т-клеток, соответственно, у 35 и 10% волонтеров, а кумулятивный показатель для обоих типов клеток составил 38%.
Таким образом, вакцина А(Н7№) индуцировала не только гомологичный, но и гетеросубти-пический Т-клеточный иммунный ответ к вирусу с тем же гемагглютинином, но с отличающейся нейраминидазой.
Обсуждение
К настоящему времени клинические испытания на волонтерах в общей сложности прошли семь резервных ЖГВ, приготовленных из птичьих вирусов гриппа А: четыре в США (Н5№, Н6Ш, Н7Ш и Н7Ю) и три в России (Н5Ш -утка, Н5№ — индюк и Н7№). При оценке гуморального иммунного ответа волонтеров обе группы исследований использовали сходный набор лабораторных тестов. Это дает возможность провести сравнительный анализ полученных результатов.
По кумулятивным показателям иммуноген-ности российских и американских ЖГВ, отражающим в совокупности число достоверных конверсий сывороточных (РТГА, РМН, ИФА-IgG и ИФА-IgA) и локальных (ИФА-IgA) антител после двухкратных прививок, были близки
по значению: соответственно, 76-93% и 66-100% (табл. 2 и [4, 9, 10, 11, 22, 21]). В обоих случаях поствакцинальные титры сывороточных и локальных антител оказались существенно ниже, чем это наблюдалось после иммунизации сезонными ЖГВ [1, 16] и ЖГВ A(H1N1) pdm2009 [6]. Более слабый по интенсивности гуморальный иммунный ответ на ЖГВ, приготовленные из птичьих вирусов гриппа А, гипотетически связывают с тормозящим влиянием на их репродукцию предсуществующих факторов иммунитета у прививаемых людей, а именно: (i) антител к общей NA у вакцинного и циркулирующего вирусов; (ii) моноклональных антител к консервативному иммунодоминантному эпитопу НА; (iii) перекрестнореагирующими ЦТЛ к консервативным последовательностям внутренних белковых структур вириона [9, 10, 11, 22]. Однако следует помнить, что все эти факторы присутствовали и при формировании более интенсивного гуморального иммунного ответа к сезонным ЖГВ и ЖГВ A(H1N1) pdm2009. Вряд ли низкий уровень репродукции птичьих вирусов, и, следовательно, гуморального иммунного ответа людей на испытанные ЖГВ связан с отличительной от человеческих вирусов гриппа А способностью птичьих вирусов соединяться исключительно с эпителиальными клетками через рецептор 2,3 Gal [19], присутствие которого в данных клетках верхних дыхательных путей у людей ограничено. Аргументом тому может служить тот факт, что человеческий вирус парагриппа, который связывается с такими же клетками через тот же рецептор 2,3 Gal, прекрасно размножается в верхних отделах дыхательного тракта, и гуморальный иммунный ответ к нему достаточно интенсивный [7]. Объясняют влияние на гуморальный иммунный ответ людей на птичьи вирусы и особенностями его фенотипического рестриктирования, которое может возникать из-за констелляционных преобразований генома при реассортации птичьих и человеческих вирусов гриппа А [10]. Однако
ТАБЛИЦА 6. ГЕТЕРОЛОГИЧНЫЙ Т-КЛЕТОЧНЫЙ ИММУННЫЙ ОТВЕТ НА ВИРУС A(H7N9) У ВОЛОНТЕРОВ, ПРИВИТЫХ ЖГВ A^7N3)
Популяция Т-клеток Число (%) волонтеров с конверсиями Т-клеток*
После 1й прививки После 2й прививки После 1й и/или 2й прививки
CD4+IFNy+ 9 (31,0%) 4 (13,8%) 10 (34,5%)
CD8+IFNy+ 3 (10,3%) 2 (6,9%) 3 (10,3%)
Кумулятивные данные по всем Т-клеткам 10 (34,5%) 5 (17,2%) 11 (37,9%)
Примечание. * - достоверным считали 3 стандартных отклонения (Р < 0,01) от данных по контрольной группе волонтеров, получивших препарат плацебо (п = 10 чел.).
в литературе реальных подтверждений этому феномену мы не обнаружили.
Нам представляется, что ослабленный по интенсивности гуморальный иммунный ответ на ЖГВ, приготовленные из птичьих вирусов, связан не столько с их биологическими особенностями, сколько с фактом отсутствия у прививаемых лиц В-клеточной иммунологической памяти к данным возбудителям, поскольку эти люди контактировали с ними впервые. Такой же феномен наблюдался в 1977 году при рециркуляции вируса гриппа А(НШ1) после двадцатилетнего перерыва. Так, в начале его пандемического цикла у молодых людей, впервые встретившихся с этим вирусом, постинфекционный и поствакцинальный антительный иммунный ответ был намного ниже, чем у более старших людей, которые перенесли грипп А(НШ1) в период его предшествующего пандемического цикла [2, 3, 5]. Однако через 3 года после активной циркуляции вируса А(НШ1) этот феномен нивелировался. Другим важным аргументом может служить тот факт, что у непраймирован-ных лиц 1969 г. рождения и младше гуморальный иммунный ответ на двухкратную прививку ЖГВ А(Н2N2), приготовленную из циркулировавшего в 1957-1968 гг. пандемического вируса данного сероподтипа, был столь же низким по интенсивности, как и на ЖГВ, включавших птичьи вирусы [23]. И наконец, на ЖГВ А(НШ1) pdm 2009 этот тип иммунного ответа у волонтеров был намного выше, поскольку у них вирусспецифические Ти В-клетки памяти к данному вирусу обнаруживались еще до вакцинации [1, 6]. По-видимому, эти клетки, сформированные в период предшествующих контактов организма с вирусами сероподтипа А(НШ1), и послужили причиной сравнительно низкой заболеваемости населения гриппом А(Н1Ш) pdm 2009.
Помимо гуморального иммунного ответа нами проведено исследование индукции у тех же волонтеров Т-клеточной иммунологической памяти на вакцинацию ЖГВ А(Н5№) — индюк и А(Н7№). Тестировали вирусспецифические Т-клетки фенотипов CD4+ и CD8+, относящихся к двум пулам: центральные (Тст) и эффекторные (Тет). Оба типа клеток участвуют в формировании долговременной иммунологической памяти, но осуществляют это разными путями [18]. Ранее доказано два факта: первый — увеличение у людей уровня Тст и Тет после заболевания гриппом А(НШ1) pdm 2009, второй — наличие корреляции уровня этих клеток и снижение тяжести гриппозной инфекции, вызванной данным возбудителем [20]. Наши результаты показали, что ЖГВ А(Н5Ш) - индюк и А(Н7Ю) индуцирова-
ли достоверные конверсии этих клеток у большей части волонтеров (табл. 5).
Постоянный антигенный дрейф и неослабевающая угроза распространения новых пандемических вариантов вируса гриппа А привлекает особое внимание к проблеме формирования ге-терологичного постинфекционного и поствакцинального иммунного ответа к разным штаммам и подтипам вируса гриппа А [5]. Основу данного процесса составляет способность тех или иных вирусов индуцировать продукцию пе-рекрестнореагирующих антител, а также пере-крестнореагирующих Т- и В-лимфоцитов. Накопление знаний по этому вопросу важно как с точки зрения понимания степени защищенности населения от новых антигенных вариантов возбудителя, так и с позиции обоснования использования в экстренных ситуациях уже имеющихся вакцин для защиты от новых вирусов.
У волонтеров, привитых ЖГВ А(Н5N2)-индюк, проведен анализ гуморального иммунного ответа к вирусу А(Н5№)-утка (табл. 2). Этим мы попытались ответить на вопрос: отличает ли иммунная система человека птичьи вирусы одного сероподтипа, но выделенные в разное время от разных представителей? Кумулятивные данные о числе конверсий антител к обоим вирусам оказались близки по значению: к А(Н5N2) — индюк и А(Н5№) — утка, соответственно, 76 и 66%. При этом в РТГА поствакцинальные конверсии сывороточных антител совпали в 100% случаев, а локальные IgA-антитела в ИФА — в 80%. Это свидетельствует, что у обоих штаммов имеется значительный набор общих иммунодоминантных эпитопов, связанных с индукцией у прививаемых лиц перекрестнореаги-рующих антител. Возможно, что данный феномен относится ко всем ЖГВ, приготовленным из антропонозных и зоонозных вирусов гриппа А одного сероподтипа. Так, по нашим неопубликованным данным, у лиц, привитых сезонной тривалентной ЖГВ, количество конверсий сывороточных антител в РТГА к свиному вирусу гриппа А/0П;агю/ЯУ1273/2005(Н3№) существенно не отмечалось от аналогичного показателя в отношении вакцинного человеческого вируса того же сероподтипа. Кроме того, у 60% обследованных добровольцев еще до вакцинации обнаруживались антитела к свиному вирусу в защитных титрах 1:40. В этих условиях, несмотря на то, что свиной вирус А(Н3№) вызывал заболевания у людей [27], вряд ли он мог обладать какими-то эпидемическими, а тем более пандемическими потенциями.
Нами проверена способность испытуемых ЖГВ индуцировать конверсии перекрестноре-агирующих антител к двум типам гетерологич-
ных вирусов: с одинаковым с вакцинным штаммом НА и с полным отличием в антигенной формуле по НА и NА (табл. 2, 3). У привитых ЖГВ А(Н7№) кумулятивный показатель числа конверсий антител к потенциально пандемическому вирусу А(Н7N9) приближался к аналогичному показателю в отношении вакцинного штамма - соответственно, 86 и 69% (табл. 3). ЖГВ А(Н5№) — индюк активно индуцировала продукцию перекрестнореагирующих сывороточных антител к потенциально пандемическому вирусу А(Н5№) (табл. 2). В этом случае кумулятивный показатель числа их конверсий к вакцинному и гетерологичному вирусу составил, соответственно, 76 и 59%. При различии антигенной формулы вакцинных и гетерологичных вирусов гриппа А по НА кумулятивные показатели числа конверсий перекрестнореагирующих антител оказались значительно ниже — 24 и 21%. При этом наблюдали конверсии только сывороточных (ИФА) и локальных ^А-антител, но не сывороточных (антигемагглютинирующих антител (РТГА), вируснейтрализующих (РМН) и сывороточных IgG-антител (ИФА). Это объясняется, с одной стороны, штаммоспецифическими свойствами РТГА и РМН, с другой — повышенной кроссреактивностью антител класса А. В целом данные о гетерологичном гуморальном и клеточном иммунном ответе на испытуемые вакцины свидетельствуют, что они вполне успешно могут индуцировать иммунитет к птичьим вирусам со сходным НА.
Ранее нами обнаружена способность ЖГВ А(Н5№) — утка стимулировать у людей гетеро-субтипический Т-клеточный ответ к циркулирующему среди людей вирусу гриппа А(НШ1) [4, 9]. Аналогичные свойства выявлены и в отношении ЖГВ А(Н7№) — таблица 6. Эта вакцина вызывала продукцию CD4+ и CD8+Т-клеток, специфичных к другому потенциально пандемическому вирусу — А(Н7№). Частота гетероло-гичных иммунных ответов оказалась не намного ниже по сравнению с гомологичными (соответственно, 38 и 52%). Обнаруженные специфические к этому вирусу CD4+ и CD8+Т-лимфоциты можно отнести к пулу клеток иммунологической
памяти, поскольку они обнаружены на отдаленные сроки после иммунизации (через 28 дней).
И в заключение необходимо остановиться на ключеком вопросе: каким образом оценивать потенциальную протективность ЖГВ, приготовленных из птичьих вирусов гриппа А? В настоящее время нет возможности предсказать поствакцинальное состояние иммунитета людей к птичьим вирусам гриппа А с точки зрения его воздействия на реальную защиту от этих возбудителей. Традиционно о протективных свойствах сезонных и пандемических вакцин судят по их способности индуцировать продукцию антигемагглютинирующих антител в защитных титрах > 1:40. Однако по нашим и зарубежным данным, ЖГВ, включающие птичьи вирусы, вызывают продукцию этих антител в данных титрах только в единичных случаях. Поэтому такой подход оценки резервных ЖГВ не приемлем. Кроме того, ЖГВ защищали людей от гриппа А и в ситуациях, когда у привитых антигемагглютини-рующие антитела не определялись [8]. Поскольку противогриппозная иммунизация основана на успешности индукции долговременно функционирующей В- и Т-клеточной иммунологической памяти, возникает вопрос, могут ли ЖГВ, приготовленные из птичьих вирусов гриппа А, стимулировать у людей такую память в условиях высокого по частоте, но слабого по интенсивности иммунного ответа к вакцинным штаммам. Недавние американские исследования показали полную состоятельность в этом плане резервной ЖГВ А(Н5№), а именно: у людей, прививавшихся год назад этой вакциной, отмечено мощное бу-стирование системного гуморального иммунного ответа на инактивированную вакцину А(Н5№) по сравнению с непраймированными лицами [24]. Нами установлено такое же бустирование этого типа иммунного ответа на инактивирован-ную вакцину А(Н5№) у добровольцев, предварительно (9 месяцев назад) иммунизированных ЖГВ А(Н5N2) — индюк (материалы готовятся к печати). Кроме того, у этих лиц отмечена более интенсивная продукция CD4+ и CD8+Т-клеток иммунологической памяти.
Список литературы / References
1. Донина С.А., Петухова Г.Д., Кореньков Д.А., Григорьева Е.П., Кузнецова С.А., Лосев И.В., Руден-ко Л.Г., Найхин А.Н. Локальный и гуморальный иммунный ответ у больных гриппом и у лиц, привитых против сезонных и пандемических вирусов гриппа А // Вопросы вирусологии, 2013. Т. 58, № 3. С. 3742. [Donina S.A., Petukhova G.D., Korenkov D.A., Grigorieva E.P., Kuznetsova S.A., Losev I.V.,Rudenko L.G., Naykhin A.N. Local Antibody Immune Responses in Influenza Patients and Persons Vaccinated with Seasonal, Pre-pandemic, and Pandemic Live Attenuated Influenza Vaccines. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2013, Vol. 58, no. 3, pp. 37-42. (In Russ.)]
2. Найхин А.Н., Денисов Г.М., Исмагулов А.Т., Топурия Н.В., Платонов В.Г., Царицына И.М., Иван-ников Ю.Г. Формирование, длительность сохранения и защитная роль антигемагглютининов к ранее циркулировавшим вирусам гриппа А // Вопросы вирусологии, 1980. № 4. С. 408-412. [Naykhin A.N., Denisov G.M., Ismagulov A.T., Topuriia N.V., Platonov V.G. Formation, persistence period and protective role of antihemagglutinins to earlier circulating influenza A viruses. Voprosy virusologii = Problems of Virology 1980, no. 4, pp. 408-412. (In Russ.)]
3. Найхин А.Н., Денисов Г.М., Иванников Ю.Г., Лисок Т.П., Олейникова Е.В., Царицына И.М. Итоги изучения коллективного иммунитета к вирусу гриппа А(Н1Ш) в 1976-1980 гг. // Вопросы вирусологии, 1981. № 5. С. 553-557. [Naykhin A.N., Denisov G.M., Ivannikov Yu.G., Lisok T.P., O^nikova E.V. Results of a study of collective immunity to influenza A virus (H1N1) from 1976 to 1980. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 1981, no. 5, pp. 553-557. (In Russ.)]
4. Найхин А.Н., Чиркова Т.В., Петухова Г.Д., Кореньков Д.А., Донина С.А., Руденко Л.Г. Стимуляция гомо- и гетерологичной Т-клеточной иммунологической памяти у волонтеров, привитых живой реассортантной гриппозной вакциной типа А(Н5№) // Вопросы вирусологии, 2012. Т. 57, № 1. С. 38-42. [Naykhin A.N., Chirkova T.V., Petukhova G.D., Korenkov D.A., Donina S.A., Rudenko L.G. Stimulation of homo-and heterologic T-cell immunological memory in volunteers inoculated with live influenza A (H5N2) reassortant vaccine. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2012, Vol. 57, no. 1, pp. 38-42. (In Russ.)]
5. Найхин А.Н. Гетеросубтипический иммунитет к вирусам гриппа А: эпидемиологические данные, вовлеченность разных иммунологических факторов, вакцинация // Вопросы вирусологии, 2012. Т. 57, № 3. С. 4-9. [Naykhin A.N. Heterosubtypic immunity to influenza A viruses: epidemiological data, involvement of different immunological factors, vaccination. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2012, Vol. 57, no. 3, pp. 4-9. (In Russ.)]
6. Найхин А.Н., Донина С.А., Петухова Г.Д., Кореньков Д.А., Дорошенко Е.М., Григорьева Е.П., Суворова М.А., Руденко Л.Г. Гуморальный и клеточный иммунный ответ у людей к вирусу гриппа А/ Калифорния/07/2009(Н1N1)pdm2009 // Вопросы вирусологии, 2013. Т. 58, № 2. С. 38-42. [[Naykhin A.N., Donina S.A., Petuhova G.D., Korenkov D.A., Doroshenko E.M., Grigorieva E.P., Suvorova M.A., Rudenko L.G. Humoral and Cell-mediated Immune Responses in Humans to the A/California/ 07/ 2009 (H1N1) Virus, A(H1N1) pdm2009. Voprosy virusologii = Problems of Virology, 2013, Vol. 58, no. 2, pp. 38-42. (In Russ.)]
7. Bartlett E.J., Hennessey M., Skiadopoulos M.N., Schmidt A.C., Collins P.L., Murphy B.R., Pickles R.J. .Role of interferon in the replication of human parainfluenza virus type 1 wild type and mutant viruses in human ciliated airway epithelium . J. Virol., 2008, Vol. 82, no. 16, pp. 8059-8070.
8. Belshe R.B., Gruber W.C., Mendelman P.M., Mehta H.B., Mahmood K., Reisinger K., Treanor J., Zangwill K., Hayden F.G., Bernstein D.I., Kotloff K., King J., Piedra P.A.,Block S.L., Yan L., Wolff M. Correlates of immune protection induced by live attenuated cold-adapted, trivalent, intranasal influenza virus vaccine. J. Infect. Dis., 2000, Vol. 181, no. 3, pp. 1133-1137.
9. Chirkova T.V., Naykhin A.N., Petukhova G.D., Korenkov D.A., Donina S.A., Mironov A.N., Rudenko L.G. Memory T-cell immune response in healthy young adults vaccinated with live attenuated influenza A(H5N2) vaccine. Clinical and vaccine Immunol., 2011, Vol. 18, no. 10, pp. 1710-1718.
10. Karron R.A., Callahan K., Luke C., Thumar B., McAuliffe J., Schappell E., Joseph T., Coelingh K., Jin H., Kemble G., Murphy B.R., Subbarao K. A live attenuated H9N2 influenza vaccine is well tolerated and immunogenic in healthy adults. J. Infect. Dis., 2009, Vol.199, no. 5, pp. 711-716.
11. Karron R.A., Talaat K., Luke C., Callahan K., Thumar B., Dilorenzo S., McAuliffe J., Schappell E., Suguitan A., Mills K., Chen G., Lamirande E., Coelingh K., Jin H., Murphy B.R., Kemble G., Subbarao K. Evaluation of two live attenuated cold-adapted H5N1 influenza vaccines in healthy adults. Vaccine. 2009, Vol. 27, no. 36, pp. 4953-4960.
12. Meijer A., Bosman A., van de Kamp E.E., Wilbrink B., van Beest Holle Man R., Koopmans M. Measurement of antibodies to avian influenza virus A(H7N7) in human by hemagglutination inhibition test. Virol. Methods, 2006, Vol. 132, pp. 113-120.
13. Murphy B.K., Coelingh K. Principles underlying the development and use of live attenuated cold-adapted influenza A and B virus vaccines. Viral. Immunol., 2002, Vol. 15, pp. 295-323.
14. Myers K.P., Setterquist S.F., Capuano A.W., Cray G.C. Infection due to 3 avian influenza subtypes in United States veterinarian. Clin. Infect. Dis., 2007, Vol. 45, pp. 4-9.
15. Nguyen-Van-Tam J.S., Nair P., Acheson P., Baker A., Barker M., Bracebridge S., Croft J., Ellis J., Gelletlie R., Gent N., Ibbotson S., Joseph C., Mahgoub H., Monk P., Reghitt T.W., Sundkvist T., Sellwood C., Simpson J., Smith J., Watson J.M., Zambon M., Lightfoot N. Outreak of low pathogenicity H7N3 avian influenza in UK, including associated case of human conjunetivitis. Euro Surveill, 2006, Vol. 11, F 0605042.
16. Petukhova G., Korenkov D., Chirkova T., Donina S., Rudenko L., Naykhin A. B- and T-cell memory eliciated by seasonal live attenuated reassortant influenza vaccine: assessment of local antibody avidity and virus-specific memory T-cell using trogocytosis based method. Influenza and other resp. viruses., 2012, Vol. 6, no. 2, pp. 1-8.
17. Rowe T., Abernathy R.A., Hu-Primmer J. Detection of antibody to avian influenza A(H5N1) virus in human serum by using a combination of serologic assay. J. Clin. Microbiol., 1999, Vol. 37, pp. 937-943.
18. Sallusto F., Geginat J., Lanzavecchia A. Central memory and effector memory T-cell subsets: function, generation and maintenance. Annu. Rev. Immunol., 2004, Vol. 22, pp. 745-763.
19. Shinya K., Ebina M., Yamada S., Kasai N., Kawaoka Y. Avian flu: Influenza virus receptors in the human airway. Nature, 2006, Vol. 440 (7083), pp. 435-436.
20. Sridhar S., Begom Sh., Bermingham A., Hoschler K., Adumson W., Carman W., Bean T., Barelay W., Deek J.J., Lalvani A. Cellular immune correlates of protection against symptomatic pandemic influenza. Nat. Med., 2013, Vol. 19, pp. 1305-1313.
21. Talaat K.R., Karron R.A., Luke C.J., Thumar B., McMahon B.A., Chen G.L., Lamirande E.W., Jin H., Coelingh K.L., Kemble G., Subbarao K. An open label phase I trial of live attenuated H6N1 influenza virus vaccine in healthy adults. Vaccine, 2011, Vol. 29, no. 17, pp. 3144-3148.
22. Talaat K.R., Karron R.A., Callahan K.A., Luke C.J., DiLorenzo S.C., Chen G.L., Lamirande E.W., Jin H., Coelingh K.L., Murphy B.R., Kemble G., Subbarao K. A live attenuated H7N3 influenza virus vaccine is well tolerated and immunogenic in a Phase I trial in healthy adults. Vaccine, 2009, Vol. 27, no. 28, pp. 3744-3753.
23. Talaat K.R., Karron R.A., Liang P.H., McMahon B.A., Luke C.J., Thumar B., Chen G.L., Min J.Y., Lamirande E.W., Jin H., Coelingh K.L., Kemble G.W., Subbarao K. An open-label Phase I trial of a live attenuated H2N2 influenza virus vaccine in healthy adults. Influenza and other resp. viruses., 2013, Vol. 7, no. 1, pp. 66-73.
24. Talaat K.R., Luke C.J., Khurana S., Manischewitz J., King L.R., McMahon B.A., Karron R.A., Lewis K.D., Qin J., Follmann D.A., Golding H., Neuzil K.M.,Subbarao K. A live attenuated influenza A(H5N1) vaccine induse long-term immunity in the absence of primary antibody response. J. Infect. Dis., 2014, Vol. 209, pp. 1860-1869.
25. Treanor J.J., Cambell J.D., Zangwill K.M., Rowe T., Wolff M. Safety and immunogenity of an inactivated subvirion influenza A(H5N1) vaccine. N. Engl. J. Med., 2006, Vol. 354, pp. 1343-1351.
26. Tweed S.A., Skowronski D.M., David S.T., Larder A., Petric M., Lees W., Li Y., Katz J., Krajden M., Tellier R., Halpert C., Hirst M., Astell C., Lawrence D., Mak A. Human illness from avian influenza H7N3, British Columbia. Emerg. Infect. Dis., 2004, Vol. 10, pp. 2196-2199.
27. Update: influenza A(H3N2) transmission and guidelines - five states, 2011 Morb. Mort. Weekly Rep. January 6. 2012/60(51). pp. 1741-1744.
28. Who global action plan vaccine supple for influenza vaccine. 2006, Geneva, Belgium. WH0/IVB/06.13. WH0/0DS/EPR/GIP/2006.1.
29. (http:www.who.int/csr/disease/avianinfluenza/country/cases.table2008.03.18 /en/indexhtml)
Авторы:
Найхин А.Н. — д.м.н., профессор, заведующий лабораторией иммунологиии и профилактики вирусных инфекций отдела вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия Донина С.А. — к.м.н., старший научный сотрудник, лаборатория иммунологиии и профилактики вирусных инфекций отдела вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Authors:
Naykhin A.N., PhD, MD (Medicine), Professor, Head, Laboratory of Immunology and Prophylactics of Viral Infections, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation Donina S.A., PhD (Medicine), Senior Research Associate, Laboratory of Immunology and Prophylactics of Viral Infections, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Лосев И.В. — научный сотрудник, лаборатория иммунологиии и профилактики вирусных инфекций отдела вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Петухова Г.Д. — к.б.н., старший научный сотрудник, лаборатория иммунологиии и профилактики вирусных инфекций отдела вирусологии, ФГБУ«Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Кореньков Д.А. — к.м.н., старший научный сотрудник, лаборатория иммунологиии и профилактики вирусных инфекций отдела вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Losev I.V., Research Associate, Laboratory of Immunology and Prophylactics of Viral Infections, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Petukhova G.D., PhD (Biology), Senior Research Associate, Laboratory of Immunology and Prophylactics of Viral Infections, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Korenkov D.A., PhD (Medicine), Senior Research Associate, Laboratory of Immunology and Prophylactics of Viral Infections, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Стукова М.А. — ведущий научный сотрудник, лаборатория молекулярной вирусологии и генной инженерии, ФГБУ«Научно-исследовательский институт Institute of Influenza, St. Petersburg, Russian Federation гриппа» МЗ РФ, Санкт-Петербург, Россия
Stukova M.A., Leading Research Associate, Laboratory of Molecular Virology and Genetic Engineering, Research
Ерофеева М.К. — заведующая лабораторией испытаний новых средств защиты от вирусных инфекций, ФГБУ «Научно-исследовательский институт гриппа» МЗ РФ, Санкт-Петербург, Россия
Коншина О.С. — научный сотрудник, лаборатория испытаний новых средств защиты от вирусных инфекций, ФГБУ «Научно-исследовательский институт гриппа» МЗ РФ, Санкт-Петербург, Россия Смолоногина Т.А. — к.б.н., старший научный сотрудник, отдел вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Дорошенко Е.М. — к.м.н., научный сотрудник, отдел вирусологии им. акад. РАМН А.А. Смородинцева, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Григорьева Е.П. — к.м.н., старший научный сотрудник, отдел вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Руденко Л.Г. — д.м.н., профессор, руководитель отдела вирусологии, ФГБУ «Научно-исследовательский институт экспериментальной медицины» СЗО РАМН, Санкт-Петербург, Россия
Erofeeva M.K., Head, Laboratory of Trials of Novel Remedies for Antiviral Protection, Research Institute of Influenza, St. Petersburg, Russian Federation
Konshina O.S., Research Associate, Laboratory of Trials of Novel Remedies for Antiviral Protection, Research Institute of Influenza, St. Petersburg, Russian Federation
Smolonogina T.A., PhD (Biology), Senior Research Associate, Laboratory of General Virology, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Doroshenko E.M., PhD (Medicine), Research Associate, Laboratory of Vaccine Strains, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Grigorieva E.P., PhD (Medicine), Senior Research Associate, Laboratory of General Virology, Departament of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation Rudenko L.G., PhD, MD (Medicine), Professor, Head, Department of Virology, Research Institute of Experimental Medicine of the North-West Branch of the RAMS, St. Petersburg, Russian Federation
Поступила 24.10.2014 Received 24.10.2014
Отправлена на доработку 30.10.2014 Revision received 30.10.2014
Принята к печати 14.12.2014 Accepted 14.12.2014
