CC BY
26REFERENCES
1. A. de Souza. Inhibition of human gingival gelatinases (MMP-2 and MMP-9) by metal salts. Dental Materials. 2000; 16 (2): 103-108.
2. Salama H., Marriaki N. Antimicrobial activity and phyto-chemical analysis of Polygonum Aviculare L. (Poligonaceae), naturally growing in Egept. Aust. J. Basic and App. Sci. 2009; 3: 2008-2015.
3. Markova M. I. Pharmako-toksikologicheskie svoistva travy Gorca Ptichego i primenenie jego preparata urophitolizina-k pri mochekamienoj bolezni koshek [Pharmaco-toxicologi property of the Knotweed herb and using its preparation urophitolizine-k with the urolithiasis of cats]. Abstract of dissertation of candidate of vetirinary sciences. Kazan, 2007:20.
4. Tkachenko E. K., Nosijchuk S. V. Prepare of the laboratory technology of the receiving and quantity determination of the similarity contens of polyphenols in the concentrate of above-ground part of Achillea Millefolium L. Vistnyk stomatologii. 2009; 2: 82-85.
5. Nikolaeva A. V. Vliyanie nekotorych nejrotropnych sredstv na sostoyanie tkaniej pri razdragenii verhniego sheinogo simpaticheskogo uzla [The influence of some neurotrophic means on the state of tissues by the irritation of the upper cervical sympathetic node]. Abstract of dissertation of candidate of medical sciences. Harkiv, 1967: 29.
6. Sharaev P. N., Peshkov V., Solovjeva N. Method of the determination of glycosaminoglycans in biological fluids. Laboratornoe delo. 1987; 5: 330-332.
7. Sharaev P. N. Method of the determination of free and tieing oxyproline in the bound serum. Laboratornoe delo. 1981; 5: 283-285.
8. Pachomova V. Kozlyanina N., Krukova G. В. Method for determination the activity of the glutathione peroxidase in biological tissues. А. s. 922637 SSSR 3, MKI 01 33/48. Publ.: 25.04.82. Bul. №15
9. Koroluk M. A., Ivanova D., Majorova I. Method for determination the activity of the katalasise. Laboratornoe delo. 1988; 1: 16-18.
Поступила 04.02.15
УДК 616.31:616.008:615.355
А. В. Борисенко1, д. мед. н., Ю. Ю. Кодлубовский1, В. В. Вит2, д. мед. н.
'Киевский национальный медицинский университет им. Богомольца Государственное учреждение «Институт глазных болезней и тканевой терапии им. В. П. Филатова НАМН Украины»
ГИСТОЛОГИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ РЕГЕНЕРАЦИИ КОСТНОЙ ТКАНИ НИЖНЕЙ ЧЕЛЮСТИ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ТРИКАЛЬЦИЙ ФОСФАТА И ГИАЛУРОНОВОЙ КИСЛОТЫ
У крыс воспроизводили механическим способом дефект костной ткани и заполняли его остеопластическими препаратами: коллапан или новый препарат, содержащий три-кальций фосфат, гиалуроновую кислоту, тиотриазолин и метронидазол. Состояние регенерации оценивали гистологическим методом через 10 и 30 дней опыта. Установлено, что оба препарата стимулируют остеогенез, причем, в большей степени новый препарат, содержащий гиалуроновую кислоту.
Ключевые слова: остеогенез, остеопластические материалы, гиалуроновая кислота, тиотриазолин, метронидазол.
А. В. Борисенко1, Ю. Ю. Кодлубовський1, В. В. Bim2
'Кшвський нацюнальний медичний унгверситет iM. Богомольця 2Державна установа «1нститут очних хвороб i тканинно! терапй iM. В.П. Фшатова НАМН Укарши»
Г1СТОЛОГ1ЧНЕ ДОСЛ1ДЖЕННЯ РЕГЕНЕРАЦП К1СТКОВО1 ТКАНИНИ НИЖНЬО1 ЩЕЛЕПИ ПРИ ВПЛИВ1 ТРИКАЛЬЦШ ФОСФАТА ТА Г1АЛУРОНОВО1 КИСЛОТИ
У щ-ypie вiдтворювали мехатчним способом дефект юст-ково! тканини i заповняли його остеопластичними препаратами: колапан або новий препарат, який мктить три-кальцш фосфат, гiалуронову кислоту, miоmриазолiн i мет-ротдазол. Стан регенерацп оцтювали гicmологiчним методом через 10 i 30 дтв до^ду. Встановлено, що обидва пре-парати стимулюють остеогенез, причому в быьшш мiрi новий препарат, який мктить гiалуронову кислоту. Ключовi слова: остеогенез, остеопластичт маmерiали, гi-алуронова кислота, miоmриазолiн, метротдазол.
A V. Borisenko1, Yu. Yu. Kodlubovskiy1, V. V. Vit2
'National Medical University named after O.O. Bogomolets, 2State Establishment «The Institute of eye diseases and tissue therapy named after V. P. Filatov of the NAMS of Ukraine»
THE HISTOLOGICAL STUDY OF REGENERATION OF MANDIBULAR OSSEOUS TISSUE AT THE INFLUENCE OF TRIBASIC CALCIUM PHOSPHATE AND HYALURONIC ACID
ABSTRACT
Aim of the work. The histological investigation of the regeneration of osseous tissue of lower jaw at the influence of osteo-plastic preparations.
Materials and methods. The defect of osseous tissue was restored mechanically in rats. It was filled with osteoplastic preparations: collapan or new preparation, containing tribasic calcium phosphate, hyaluronic acid, thiotriazolin and metronida-zole. Regeneration state was estimated histologically in 10 and 30 days of experiment.
Findings. Both preparations stimulate osteogenesis, at that, new preparation, containing hyaluronic acid, in greater degree. Conclusion. The offered composition displays high osteoplastic activity.
Key words: osteogenesis, osteoplastic materials, hyaluronic acid, thiotriazolin, metronidazole.
Проблема регенерации костной ткани остается весьма актуальной для хирургической и ортопедической стоматологии [1-3]. Для этой цели было разработано большое число остеопластических материалов, содержащих, в основном, трикальций фосфат [4, 5]. Однако, костная ткань содержит не только минеральный компонент (гидроксиапатит), но и большое количество структурного органического материала, представленного коллагеном и гликозаминогликанами (ГАГ) [6, 7]. Имеются данные о стимулирующем действии на остеогенез таких ГАГ как гиалуроновая кислота [8, 9] и хондроитин сульфат [10].
© Борисенко А. В., Колдубовский Ю. Ю, ВАит В. В., 2015.
Недавно был предложен остеопластический препарат «Клипдент-ГЛ» (ЗАО «ОЭЗ «ВладМиВа», РФ), содержащий синтетический р-трикальцийфосфат, гид-роксиапатит и гиалуроновую кислоту (ТУ 9391-12145814830-2009, регистрационное удостоверение № ФСР 2010/08030 от 15.06.2010).
Мы усилили регенерационные свойства данного препарата за счет включения тиотриазолина, обладающего адаптационно-трофическим действием, и метронидазола, имеющего широкий спектр антимикробного действия [11]. Проведенные нами исследования показали более высокую минерализующую и противовоспалительную активность предложенного нами остеопластического комплекса по сравнению с широко применяемым коллапаном.
Целью настоящего исследования стало гистологическое исследование костной ткани альвеолярного отростка нижней челюсти крыс после экспериментального воспроизведения дефекта костной ткани и влияние на процессы остеогенеза двух остеопластиче-ских препаратов: предложенной нами композиции и препарата сравнения коллапана.
Материалы и методы исследования. Препарат «Клипдент-ГЛ» (гранулы 500-1000 мкм, 1 см3, производитель «Опытно-экспериментальный завод «Влад-МиВа», РФ), препарат «Тиотриазолин» (раствор для инъекций 10 мг/мл в ампулах, регистрационное удостоверение UA/2931/01/01, производства АС «Галич-фарм», г. Львов, Украина). Препарат «Метронидазол» (раствор для инъекций «Метрогил», 5 мг/мл, производитель «Юник Фармасьютикал Лабораториз», Индия).
Композицию готовили ex tempore путем растирания в ступке 800 мг гранул «Клипдента-ГЛ» с 4 мл раствора тиотриазолина и 4 мл раствора метронидазо-ла. В эксперименте было использовано 56 белых крыс линии Вистар (самцы, 8 мес., живая масса 280±12 г), распределенных в 7 равных групп:
1-ая - норма (интактные);
2-ая - дефект в альвеолярной кости нижней челюсти (без лечения), продолжительность опыта 10 дней;
3-я - дефект в альвеолярной кости без лечения -30 дней;
4-ая - дефект в альвеолярной кости + коллапан в дозе 25 мг в лунку костного дефекта (растирали в ступке 400 мг коллапана с 4 мл 0,9 % NaCl) - продолжительность 10 дней;
5-ая - аналогично 4-й, но продолжительность 30 дней;
6-ая - дефект в альвеолярной кости + комплексная композиция, содержащая «Клипдент-ГЛ», тиот-риазолин и метронидазол, в дозе 25 мг в лунку костного дефекта, продолжительность опыта 10 дней;
7-ая - аналогично 6-й, но продолжительность опыта 30 дней.
Костный дефект в альвеолярной кости вызывали под тиопенталовым наркозом после бритья операционного поля и его обработки 3 %-ным йодом. Разрез длиной 1,5-2,5 см через кожу, подкожную клетчатку и фасции делали на расстоянии 0,5 см от края нижней челюсти. Тело и угол нижней челюсти освобождали от надкостницы и с помощью диспенсера в наиболее
толстом месте угла нижней челюсти делали дефект круглым и обратноконусным бором диаметром 4 мм, промывая струей воды. Костный дефект просушивали сухим тампоном.
Эвтаназию животных осуществляли под тиопен-таловым наркозом (20 мг/кг) путем тотального кровопускания из сердца, иссекали очаг костного дефекта диаметром 6 мм и помещали в 10 %-ный нейтральный формалин.
Иссеченные участки костной ткани альвеолярных отростков после декальцинации соляной кислотой заключали в парафин, и полученные срезы окрашивали гематоксилином и эозином [12].
Микроскопические исследования проводили с использованием микроскопа Jenamed 2. Фоторегистрация производилась с использованием цифровой камеры Canon 5D.
Результаты и их обсуждение. Группа 1 (контроль).
В препаратах определяется костная ткань альвеолярных отростков обычного строения, характерная именно этой локализации.
Группа 2. Операция без лечения (10 суток).
В препаратах спустя 10 суток после оперативного вмешательства определяется гомогенизация костных пластинок и их базофилия, а также исчезновение ос-теоцитов. Костные пластинки подвергаются резорбции в результате чего в кости появляются пустоты (рис. 1). Отдельные фрагменты костной ткани окружены соединительной тканью и пропитаны кровью.
Рис. 1. Десять суток после операции. Деструкция костной ткани альвеолярного отростка. Исчезновение остеоцитов. Определяются участки базофилии и гомогенизации костных пластинок. Гематоксилин-эозин. х 40.
Группа 3. Операция без лечения (30 суток).
Спустя месяц после оперативного вмешательства выявляется, что фрагменты сохранившихся костных пластинок деформированы, подверглись фокальной декальцинации и окружены некротически измененной волнистой тканью. Выявляется также скопление мелкодисперсного базофильного материала, гемолизиро-ванной крови и сгустков фибрина (рис. 2). Признаки начала регенерации костной ткани или замещения дефекта фиброзной тканью отсутствуют.
Таким образом, спустя месяц после операции практически отсутствуют признаки начала репара-тивных процессов и формирования костной ткани.
Группа 4. Операция + коллапан (10 суток).
Спустя 10 суток после оперативного вмешательства структурные изменения в области оперативного вмешательства отмечается продолжение процессов деструкции костной ткани. При этом отмечается рассасывание костных пластинок и начальные процессы формирования соединительной ткани (рис. 3).
Рис. 2. Месяц после оперативного вмешательства. Деструкция костной ткани альвеолярного отростка. Гематоксилин-эозин. х 40.
Рис. 4. Месяц после оперативного вмешательства. Определяется фрагмент хорошо васкуляризованной недифференцированной костной ткани, содержащей большое количество остеобластов. Межклеточное вещество слабо базофиль-ное. Гематоксилин-эозин. х 40.
Необходимо отметить, что в различных участках исследованных тканей степень и направленность регенерации были различными. В некоторых участках отмечались явления продолжающейся резорбции, сопровождающиеся выраженной фибротизацией пораженных участков. В других местах отмечались признаки регенерации костной ткани различной степени выраженности. Формирующиеся костные пластинки различного размера и разной степени оссификации.
Группа 6. Операция + комплексный препарат (10 суток).
Спустя 10 суток после оперативного вмешательства отмечается частичный лизис костной ткани. Частично сохранены остеоциты. Определяются участки кальцификации. Окружены костные пластинки пропитанной кровью волокнистой тканью. На границе с волокнистой тканью определяется увеличение количества остеоцитов, образующих ряд и участвующих в начальных процессах регенерации (рис. 5).
Рис. 3. Десятые сутки после оперативного вмешательства и использования коллапана. Отмечается продолжающийся лизис костных пластинок и появление вблизи них соединительной ткани. Гематоксилин-эозин. Х 120.
Группа 5. Операция + коллапан (30 суток).
Спустя месяц после оперативного вмешательства и применения препарата отмечаются признаки репарации, которые сводятся к формированию вокруг сохранившихся костных фрагментов плотной неоформленной соединительной ткани, содержащей большое количество различной степени зрелости кровеносных сосудов. При этом соединительнотканные образования плотно прилежат к кости (рис. 4). На границе с соединительной тканью и фрагментами формирующейся незрелой костной тканью располагаются активные остеобласты. Небольшие различной формы и размера очаги остеогенеза обнаруживаются в непосредственной близи от сохранившихся костных пластинок, окруженные соединительной васкуляризован-ной тканью.
Рис. 5. Десять суток после операции. Костные пластинки окружены соединительной тканью. На границе определяется слой остеоцитов, участвующих в начальных процессах регенерации. Гематоксилин-эозин. х 120.
Группа 7. Операция + комплексный препарат (30 суток).
б
Рис. 6. Месяц после оперативного вмешательства. Определяется сформированная костная хорошо васкуляризованная ткань. Справа определяется участок плотной (компактной) костной ткани. Гематоксилин-эозин. а- х 40, б - х 120.
Спустя месяц после оперативного вмешательства отмечается формирование участков костной ткани. Степень дифференциации вновь сформированной ткани в различных местах различная. Участки достаточно хорошо сформированной костной ткани чередуются с участками волокнистой слабо васкуляризо-ванной костной ткани (рис. 6). В подобных участках остеоциты распределены равномерно и окружены большим количеством межклеточного вещества. Местами плотная волокнистая ткань проникает между фрагментами костных пластинок.
Проведенное исследование указывает на положительное влияние исследованных остеопластических препаратов на процессы регенерации костной ткани и процессы заместительной регенерации наиболее поврежденных участков. Комплексный препарат, содержащий трикальций фосфат, гидроксиапатит, гиа-луроновую кислоту, тиотриазолин и метронидазол, несколько превосходил по своим репаративным способностям препарат сравнения коллапан.
Список литературы
1. Гулюк А. Г. Кси^новане застосування остеопластичних матерiалiв та стимулятс^в остеогенезу при х1рурпчних операщях в
дитячш стоматологЦ / А. Г. Гулюк, Р. В. Керницький, В. В. Лепсь-кий // Вюник стоматологи. - 2005. - № 2 (Спецвыпуск). - С. 145.
2. Кострюков Д. А. Сравнительное клиническое исследование эффективности использования биокомпозиционных материалов в комплексном лечении заболеваний пародонта / Д. А. Кострюков, Ф. М. Махова // Российский стоматоматологический журнал. -2007. - № 6. - С. 25-27.
3. Гайко Г. В. Теоретические аспекты физиологической и ре-паративной регенерации костей с позиций системных представлений / Г. В. Гайко, А. Т. Бруско // Журнал НАМН Укра!ни. - 2013. -т. 19, № 4. - С. 471-481.
4. Ульянич Н. В. Использование остеотропных (остеоплас-тических, биосовместимых, кальцийфосфатных) материалов в стоматологии (в комплексном лечении заболеваний пародонта) / Н. В. Ульянич, А. Б. Аввакумов // Дентальные технологии. - 2003. - № 1. - С. 11 -12.
5. Мудрая В. Н. Применение костопластических материалов в современной стоматологии / В. Н. Мудрая, И. Г. Степаненко, А. С. Шаповалов // Укра!нський журнал клшично! та лабораторно! ме-дицини. - 2010. - т. 5, № 1. - С. 52-57.
6. Опыт использования остеопластического материала «Остеопласт-К» при хирургических вмешательствах на пародонте / Л. А. Дмитриева, З. Э. Ревазова, Т. А. Катиева [и др.] // Стоматология. - 2007. - т. 86, № 6. - С. 53-55.
7. Морфологические исследования биосовместимости материала для замещения костных дефектов челюстных костей на основе костного коллагена, насыщенного сульфатированными глюкоза-миногликанами / Д. Н. Володина, А. М. Панин, Е. В. Ларионов [и др.] // Стоматология. - 2008. - т. 87, № 3. - С. 9-12.
8. Усиление остеоинтеграции дентального импланта, напыленного биокерамикой, с помощью геля на основе гиалуроновой кислоты и гидроксиапатита в эксперименте / А. А. Кулаков, А. И. Воложин, В. М. Ткаченко [и др.] // Стоматология. - 2007. - т. 86, № 6. - С. 4-9.
9. Паламарчук С. I. Остеостимулююча композищя для регенерацп альвеолярно! юстки в експерименп / С. I. Паламарчук, А. В. Борисенко // Вюник стоматологи. - 2012. - № 2 (79). - С. 10-15.
10. Экспериментальное исследование регенераторных процессов в дефектах челюстной кости при использовании остеопласти-ческого материала ГАПКОЛ с гиалуроновой кислотой и хондроитин сульфатом / А. И. Воложин, Г. М. Барер, А. С. Григорьян [и др.] // Российский стоматологический журнал. - 2005. - № 5. - С. 4-7.
11. Borysenko A. V. Остеопластическое действие на костную ткань альвеолярного отростка комплексного препарата, содержащего трикальций фосфат и гиалуроновую кислоту / A. V. Borysenko, Yu. Yu. Kodlubovskiy, A. P. Levitsky // Journal of Health Sciences. - 2014. - № 4 (11). - С. 111-120.
12. Меркулов Г. А. Курс патогистологической техники / Меркулов Г. А.. - Л.: Медицина, 1969. - 424 с.
REFERENCES
1. Gulyuk A. G., Kernitskiy R. V., Lepskiy V. V. The combined use of osteoplastic materials and stimulators of osteogenesis at surgeries in pediatric dentistry. Visnykstomatologiy. 2005; 2: 145.
2. Kostryukov D. A., Makhova F. M. The comparative clinical study of the effectiveness of the application of biocompositional materials at the complex treatment of periodontal diseases. Rossiyskiy stomatologicheskiy zhurnal. 2007; 6: 25-27.
3. Gayko G. V., Brusko A. T. The theoretical aspects of physiological and reparative regeneration of bones according to system notions. ZhurnalNAMN Ukrainy. 2013; 19(4): 471-481.
4. Ulyanich N. V., Avvakumov A. B. Using osteotropic (osteo-plastic, biocompatible, calcium phosphate) materials in dentistry (in the complex treatment of periodontal disease). Dentalnye tekhnologii. 2003; 1: 11-12.
5. Mudraya V. N., Stepanenko I. G., Shapovalov A. S. The use
of osteoplastic materials in modern dentistry. Ukrainskiy zhurnal klinscheskoy ta laboratornoy meditsuny. 2010; 5 (1): 52-57.
6. Dmitrieva L. A., Revazova Z. E., Katieva T. A. [i dr.]. The experience of the use of osteoplastic material "Osteoplast-K" at surgical invasions to periodontium. Stomatologiya. 2007; 86 (6): 53-55.
7. Volodina D. N., Panin A. M., Larionov E. V. [i dr.]. The morphological studies of biocompatibility of materials for the replacement of osseous defects of maxillary bones on the basis of osseous collagen, saturated with sulphated glycosamineglycanes. Stomatologiya. 2008; 87(3): 9-12.
8. Kulakov A. A., Volozhyn A. I., Tkachenko V. M. [i dr.]. Amplification osseointegration of dental implants sprayed bioceramics
using gel based on hyaluronic acid and hydroxyapatite experiment. Stomatologiya. 2007; 86(6): 4-9.
9. Palamarchuk S. I., Borisenko A. V. The osteostimulating composition for the regeneration of alveolar bone at the experiment Visnykstomatologiy. 2012; 2(79): 10-15.
10. Volozhyn A. I., Barer G. M., Grigoryan A. S. [i dr.]. Experimental study of regenerative processes in the jaw bone defects using osteoplastic material GAPKOL with hyaluronic acid and chondroitin sulfate. Rossiyskiy stomatologicheskiy zhurnal. 2005; 5: 4-7.
11. Borysenko A. V., Kodlubovskiy Yu. Yu., Levitsky A. P. Os-teoplastic effects on bone alveolar process complex preparations containing tricalcium phosphate and hyaluronic acid. Journal of Health Sciences. 2014; 4(11): 111-120.
12. Merkulov G. F. Kurs patogistologicheskoy tekhniki [The course of pathohistological technique]. Moskva, Meditsina, 1969: 424.
nocrynH^a 22.01.15
пластинчастою кктковою тканиною (в 1,1 та в 2,4 eidno-eidm).
При мoрфoлoгiчнiй оцтщ вираженoстi резорбтивних про-цеЫв в кортикальнш юстщ, прилегло! до дефекту, показни-ки були вище в 2,1 рази при вiдтвoреннi подвтного дефекту.
Два i быьше дефекты кортикальной юстки створюють ре-зорбцю, на якт можна спрямовано nеремiщати зуб, що дозволить прискорити термти ортодонтичного л^вання. Ключовi слова: юсткова тканина, кoртiкoтoмiя, морфо-метричний аналiз.
V. I. Kutsevliak, Yu. G. Danylova
Kharkiv Medical Academy of Postgraduate Education
MORPHOMETRIC ANALYSIS OF BONE TISSUE CHANGES AT MANDIBULAR BODY CORTICOTOMY
УДК 616.314-007.1-089.23
В. И. Куцевляк, д. мед. н., Ю. Г. Данилова
Харьковская медицинская академия последипломного образования
МОРФОМЕТРИЧЕСКИЙ АНАЛИЗ ИЗМЕНЕНИЙ КОСТНОЙ ТКАНИ ПРИ КОРТИКОТОМИИ ТЕЛА НИЖНЕЙ ЧЕЛЮСТИ
В эксперименте на 12 кролях воспроизведены одиночные и двойные раневые дефекты в области края тела нижней челюсти (кортикотомии) диаметром 2 мм и на расстоянии 5 мм.
При воспроизведении двойного дефекта задерживаются процессы дифференцировки тканей. В зоне дефекта в 1,8 раза больше площадей, занятых грануляционной тканью, в 2 раза больше остеоида, снижены территории, занимаемые губчатой и пластинчатой костной тканью (в 1,1 и в 2,4 соответственно).
При морфологической оценке выраженности резорбтивных процессов в кортикальной кости, прилежащей к дефекту, показатели были выше в 2,1 раза при воспроизведении двойного дефекта.
Два и более дефекта кортикальной кости создают резорбцию, на которой можно направленно перемещать зуб, что позволит ускорить сроки ортодонтического лечения. Ключевые слова: костная ткань, кортикотомия, морфо-метрический анализ.
В. I. Куцевляк, Ю. Г. Данилова
Харювська медична академiя тслядипломно! освгги
МОРФОМЕТРИЧНИЙ АНАЛ1З ЗМ1Н К1СТКОВО1 ТКАНИНИ ПРИ КОРТ1КОТОМП Т1ЛА НИЖНЬО1 ЩЕЛЕПИ
В експериментi на 12 кролях вiдтворенi одиночт i подвтт рановi дефекти в областi краю тыа нижньоI щелепи (кор-тжотоми) дiаметром 2 мм i на вiдстанi 5 мм. При вiдтвореннi подвтного дефекту затримуються проце-си диференцювання тканин. У зош дефекту в 1,8 рази бi-льше площ, зайнятих грануляцтною тканиною, в 2 рази бi-льше остеоiда, знижею територп, займаш губчастою i
ABSTRACT
An experiment on 12 rats reproduced solitary and double wound defects in the area of the margin of mandibular body (corticotomy) 2 mm in diameter and at 5 mm distance. At double defects, reproduction tissue differentiation processes delayed. The zone of the defect contained 1.8 times more areas occupied by granulation tissue and 2 times more osteoid but the number of the areas occupied by spongeous and lamellar bone was decreased 1.1 and 2.4 times, respectively. Morphometric assessment demonstrated pronounced resorption processes in the vertical bone adjacent to the defect. The values were 2.1 times higher at reproduction of double defects. Two and more defects of the cortical bone result in resorption promoting directed transfer of the tooth, which allows shortening of the terms of orthopedic treatment. Key words: bone tissue, corticotomy, morphometric analysis.
Введение. В период ортодонтического лечения в постоянном прикусе на первый план выходят сроки лечения, что часто является решающим в исходе, так как пациенты из-за больших сроков прекращают лечение. Одним из основных методов ускоренного ортодонтического лечения является кортикотомия. Поэтому исследование по направленному перемещению зубов в ортодонтии являются актуальными.
Цель исследования. Морфометрический анализ тканей, заполняющих раневой дефект и оценка материнской компактной кости вблизи и между двумя дефектами.
Метод морфометрического анализа. Морфо-метрический анализ проводили с использованием сетки Автандилова (Автандилов Г.Г., 1990). Сетка закладывалась в окуляр микроскопа (ок. 10, об. 8). Шаг сетки - 0,5 мм. Производили дифференцированный подсчет точек, попадающих на профиль анализируемой ткани или структуры. Учитывали ткани, формирующиеся в зоне дефекта, грануляционную, остеоид, губчатую и пластинчатую костные ткани. В материнской кости оценивали площадь (усл. ед.), занимаемую сосудистыми каналами и резорбционными лакунами в области 3-х полей зрения микроскопа в наружных краевых отделах дефекта или между дефектами. В каждой серии экспериментов анализировали с каждо-
© Куцевляк В. И., Данилова Ю. Г., 2015.
