CC BY
4
аппликации с одновременным пероральным введе- = нием^рсго5 беременным самкам животных.
По эффекту повреждающего действия в хроническом эксперименте устанавливают пороговую дозу для наиболее чувствительного вида животного. На основании недействующей дозы рассчитывают пороговую дозу в почве по токсикологическому показателю вредности для каждого из компонентов комбинации. При пероральном введении комбинации пороговую дозу в почве определяют по формуле
0,48-0,2
D'per os 'm
° i per os
(6)
Допустим, что недействующая доза по первому компоненту, установленная в хроническом эксперименте, составляет 1 /2 01 рег05 [0,72 мг/(кг-сут) ], тогда
0,72-0,2
г=1,77 мг/кг.
^lim -____
Ч peros 0,5-0,025+0,1 -0,15+0,2-0,3"
При суммарном пероральном и перкутанном поступлении комбинации в организм животного с учетом того, что суммарная доза введения г'-го компонента составляет
Г) I _ Г)1 I Г)1
ЧИ per os~r^i per cut»
I Д к ét-H-d-Kcui-Sk
Д V^"/ + ° m ■
L0i
отсюда
[ Д KijVj+H.d-K^-Sk ] Dj^-m
^KiiYi+H-d-K^-Sb
(7)
(8) (9)
(10)
Для препарата с выраженным кожно-резорбтив-ным действием пороговая доза при суммарном введении должна быть ниже, чем при затравке животных только перорально. Допустим, что составляет '/з [0,48 мг/(кг-сут)], тогда пороговая концентрация компонента в почве составит
(0,5 • 0,025+0,1 -0,15+0,2 -0,3) + 2 • 1,5-0,001 -0.04 = 1,09 мг/кг.
Аналогично рассчитывают пороговые концентрации в почве каждого из компонентов комбинации, совокупность которых обеспечивает безопасность комбинации для млекопитающих животных при любом пути поступления остатков компонентов комбинации в организм.
Предложенный подход к оценке степени воздействия комбинации экзогенных химических веществ на организм применим для комбинаций постоянного состава и может быть использован как при одновременном, так и при последовательном поступлении компонентов комбинации в почву. Этот подход позволяет значительно сократить (с 2—3 лет до 6—12 мес) сроки токсикологических исследований повреждающего действия комбинации химических веществ, находящихся в почве.
Л итература
1. Гончарук Е. И., Сидоренко Г. И., Губский Ю. И., Голубчиков М. В. // Гиг. и сан,— 1988,— № 6,— С. 10—12.
2. Гончарук Е. И., Голубчиков М. В., Гайдук В. Ф., Прокопо-вич А. С. II Гигиена населенных мест.— Киев, 1983.— Вып. 22,— С. 7—9.
3. Голубчиков М. В., Демченко В. Ф. // Гигиена применения, токсикология пестицидов и полимерных материалоз.— Киев, 1986.—Вып. 16.—' С. 116—117.
4. Калоянова-Симеокова Ф. Пестициды. Токсическое действие и профилактика.— М., 1980.— С. 304.
5. Саригго 1. V. Ц Clin. Toxicol.— 1980,— Vol. 16, N 4,— P. 549—553.
Поступила 16.01.90
Summary. A technique of the assessment of toxic effect of a combination of chemicals in soil on the organism of mammals has been developed. It is based on the investigation of the damaging effect of components of the combination when they get into the organism through the soil-contiguous media on the level of summary 24-hour doses, as well as when their residues get into the organism with food, water, air and through the skin. A method calculating the threshold dose of each component of the combination in soil according to the toxicolo-gical harm index is suggested.
© В. О. ШЕФТЕЛЬ, 1991 УДК 614.31:613.298-036.675
В. О. Шефтель
ГИГИЕНИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА ПОЛИАМИДОВ (ОБЗОР)
ВНИИ гигиены и токсикологии пестицидов, полимеров и пластических масс Минздрава СССР, Киев
Среди полимерных материалов, широко приме- ры для продуктов, фасонных деталей и труб в няемых в народном хозяйстве, видное место зани- водопроводном строительстве. Изделия из полиа-мают полиамиды. Их используют для изготовле- мидов нах0дЯ1. 11римснсние и в медицине, глав-ния волокон и пленок, деталей машин и оборудования в мясомолочной промышленности, для ным образом в хирургии и ортопедии. Они обла-
производства покрытий, фильтрующих тканей, та- дают хорошими физико-механическими свойства-
ми и относительно высокой химической стабильностью.
В настоящем обзоре рассмотрены гигиенические свойства полиамидов, контактирующих с водой и пищевыми продуктами. Следует отметить, что не меньший интерес для гигиены представляет изучение полиамидных материалов, используемых для производва одежды и обуви.
Определяющим моментом в гигиенической характеристике полимерных материалов считается их химическая стабильность, возможность миграции из них вредных химических веществ. В настоящее время накоплены экспериментальные данные о миграционной способности полиамидов. Так, миграция низкомолекулярных соединений из полиамида-6,6 (полигексаметиленадипамид) достигает нескольких десятков миллиграммов на 1 л [1, 5]. Обнаружен слабый ароматический запах 0,3 % и 3 % молочнокислых вытяжек (20 °С, 5 сут). Установлена миграция небольшого количества азотсодержащих соединений, но выделение гексаметилендиамина не обнаружено [9]. Отмечена возможность весьма значительного выделения мономера капролактама из капрона — от десятых долей до десятков миллиграммов на 1 л [14]. Вытяжки приобретают неприятный посторонний запах и горьковатый вкус. Незначительно влияет на органолептические показатели качества воды капролон: несколько снижается прозрачность вытяжек. Миграция мономера в воду через 3 сут контакта достигает 6—8 мг/л [11]. Из фе-нилона (линейный ароматический термостойкий полиамид) мигрируют в воду растворитель N. N -диметилацетамид и фталевая кислота. Не обнаружено изменения рН, миграции формальдегида, перекиси водорода, надмуравьиной кислоты [3].
Санитарно-химическое исследование вытяжек из полиамида-7 (поли-со-энантамид) не выявило сколько-нибудь значительной миграции низкомолекулярных соединений. Органолептические свойства вытяжек практически не изменялись, посторонний запах зафиксирован только при высокой температуре [5].
Полиамиды инертны по отношению к водной микрофлоре. Как свидетельствуют результаты проведенных исследований [13], развитие и отмирание микроорганизмов в воде происходят практически одинаково как в контрольном сосуде, так и в сосудах, содержащих образцы этого материала. Значительное число работ посвящено изучению токсичности вытяжек из полиамидов, вводимых перорально лабораторным животным. По данным [15], введение белым крысам массы, обогащенной поликапролактамом (капроном), так же как и затравка их водой, длительное время находившейся в водопроводе, построенном из этого материала, не оказали токсического действия. 14-месячная затравка белых крыс водными вытяжками из полиамида-6,6 не вызывала изме-
нений в их состоянии и не отражалась на здоровье потомства в 2 поколениях.
В. В. Цапко и соавт. [10] не обнаружили отклонений в общем состоянии животных, которые в течение 4 мес получали водные вытяжки из полигексаметиленсебацамида (полиамид-6,10). Не наблюдали изменений гематологических и ферментативных показателей, а также гистологического строения внутренних органов. Потребление крысами водных и масляных вытяжек в течение 12 мес не привело к сдвигам в общем состоянии животных, функциональном состоянии печени, селезенки и половых органов [8]. Гистологическое строение внутренних органов у контрольных и подопытных крыс не различалось.
Хроническая затравка животных вытяжками из фенилона С2 вызвала эозинофилию и лейкоцитоз. Понизилась кислотная резистентность, сократилось время подвижности сперматозоидов, увеличилась активность глюкозо-6-фосфатдегидрогена-зы в гонадах и сыворотке крови [8].
Токсиколого-гигиеническая оценка полиамидов связана с регламентацией выделения из них вредных веществ, главным образом капролактама и гексаметилендиамина. Точка приложения токсического действия капролактама не установлена. Среднесмертельная доза мономера для различных лабораторных животных колеблется в пределах 0,5—2,5 г/кг [6, 14]. В картине острого отравления отмечаются выраженные судороги, повышенный диурез. Согласно [7], введение капролактама кроликам в течение 6 мес в дозе 500 мг/кг вызвало снижение прироста массы тела, уменьшение содержания эритроцитов и гемоглобина, увеличение количества ретикулоцитов в крови. Доза 1,5 мг/кг в хроническом опыте на крысах оказалась подпороговой по влиянию на условнореф-лекторную реакцию [7]. Нет убедительных данных об избирательном действии капролактама. Согласно [19], мономер быстро проходит через плаценту, но эмбриотоксический эффект на уровне пороговых доз по общетоксическому действию не установлен, мутагенный эффект у капролактама не выявлен.
Данные о возможности канцерогенного действия капролактама немногочисленны. Не обнаружено. [18] опухолевого роста у лабораторных животных, которым скармливали рацион, содержащий мономер в концентрации 7,5 и 15 г/кг (мыши) и 3,75 г/кг (крысы).
В организме капролактам накапливается главным образом в жировой ткани [12], а также в тканях головного мозга плодов [18]. Кролики ме-таболизируют капролактам почти полностью. После внутрибрюшинного введения крысам мономер выводится частично неизмененным, частично в виде е-аминокапроновой кислоты [17].
В последние годы проведены экспериментальные исследования по обоснованию допустимого уровня (ДУ) миграции вещества в питьевую воду. При этом были установлены пороговые дозы
по гонадотоксическому (1,5 мг/кг) и аллергенному (0,015 мг/кг) эффектам. На основании этих данных Минздравом СССР утвержден ДУ капро-лактама 0,3 мг/л.
Широко используют в синтезе полиамидов гек-саметилендиамин. Его среднесмертельная доза для лабораторных животных — около 0,6 г/кг [2]. После введения вещества быстро развивался отек легких. Данное соединение обладает выраженными кумулятивными свойствами. При повторном поступлении в организм возникали дистрофические изменения в печени и почках [16]. Дозы 0,05 и 0,005 мг/кг в хроническом опыте на кроликах влияли на состав периферической крови, активность ферментов, содержание нуклеиновых кислот в крови. Доза 0,0005 мг/кг оказалась подпороговой [2]. ПДК и ДУ установлены на уровне 0^01 мг/л. Сведения об отдаленных эффектах и аллергенном действии гексаметилендиами-на противоречивы.
Ряд исследований посвящен изучению влияния комплекса вредных веществ, мигрирующих из полиамидов, на репродуктивную функцию животных. И. А. Карплкж и Н. А. Волкова [4] установили, что водные вытяжки из пленки П-12 не оказывают эмбриотоксического действия и не влияют на процессы воспроизводства и развития потомства белых крыс. Потребление крысами водных вытяжек из фенилона С2, полученных в аггра-вированных условиях, снизило у животных индекс сперматогенеза, привело к увеличению числа канальцев со слущенным семяродным эпителием. Отмечены эмбриотоксическое действие и мутагенный эффект: в клетках костного мозга крыс повысилось число хромосомных аберраций и снизилась митотическая активность клеток [8].
Таким образом, изделия из полиамидов представляют потенциальную опасность загрязнения контактирующих с ними жидких сред вредными химическими веществами. Гигиеническая регламентация применения материалов из полиамидов в водоснабжении и пищевой промышленности должна основываться на тщательном изучении
их миграционной способности и биологической активности. Дальнейшее накопление данных о гигиенических свойствах полиамидов будет способствовать разработке и применению безопасных для здоровья отечественных материалов.
Л итература
1. Бабаев Д. А. // Тематический сборник науч. трудов Азер-байдж. НИИ вирусологии, микробиологии и гигиены.— Баку, 1976,- С. 196-199.
2. Брук Е. С., Климкина Н. В., Панов П. В. // Санитарная охрана водоемов от загрязнений промышленными сточными водами.— М., 1965,— Вып. 7.— С. 69.
3. Гуричева 3. Г. и др. // Гиг. и сан,— 1983,— № 3,— С. 57—58.
4. Карплюк И. А.. Волкова Н. А. // Вопр. питания,— 1977.— № I,— С. 63-66.
5. Морозова Е. В. Исследования взаимодействия технических линейных полимеров с молоком: Автореф. дне. ... канд. наук.— М„ 1972,— С. 20.
6. Полушкин Б. В. // Фармакол. и токсикол.— 1974.— № 2,— С. 234—237.
7. Савелова В. А., Брук Е. С., Климкина-Н. В. // Гиг. и сан.— 1962.— № 1,- С. 80-82.
8. Солохина Т. А. и др. // Сборник науч. трудов ин-та общей и коммунальной гигиены им. А. Н. ¿ысина,— 1977.— Вып. 5,— С. 72—74.
9. Справочник по гигиене применения полимеров / Под ред. К. И. Станкевича,— Киев, 1984,— С. 113.
10. Цапко В. В. и др. // Гиг. и сан,— 1967,— № 1 — С. 101-103.
11. Шефтель В. О., Goea Р. Е. // Гиг. и сан,— 1974,— № 10,— С, 66—68.
12. Шефтель В. О., Батуева Л. Н., Сова Р. Е. //"Там же.— 1978,— № 8.- С. 97-98.
13. Шефтель В. О. // Гигиена и токсикология пластмасс, применение в водоснабжении.— Киев, 1981.— С. 30.
14. Шефтель В. О. // Полимерные материалы: (Токсические свойства).— Л., 1982,—С. 16.
15. Bornmann G., Loeser А. // Arzneimittel-Forsch.— 1959.— N 9.— S. 9-13.
16. Ceresa С., de Blasiis M. // Med. Lavoro.— 1952 — N 3,— P. 124—128.
17. Goldblatt M. W. et al. // Brit. J. industr. Med.— 1954.— N П.- P. 1 — 10.
18. National Toxicology Program. Carcinogenesis Bioassay of Caprolactam (CAS—N105—60—2). Technical Report Series N 214. (Research Triangle Park — NC).— 1982.
19. Waddel W. J. et al. // Food Chem. Toxicol.— 1984.— Vol. 22, N 4,— P. 303.
Поступила 27.11.89
Гигиена труда
© Е. Л. ГЕЛЬТИШЕВА. Г. Н. СЕЛЕХОВА, 1991 УДК 613.6:681.31-084
Е. А. Гельтищева, Г. И. Селехова
ГИГИЕНИЧЕСКОЕ ОБОСНОВАНИЕ ПРОФИЛАКТИЧЕСКИХ МЕРОПРИЯТИЙ ПРИ РАБОТЕ
НА ВИДЕОТЕРМИНАЛАХ
Московский НИИ гигиены им. Ф. Ф. Эрисмана
Предыдущими исследованиями [2,3, 11] пока- значительное напряжение центральной нервной зано, что работа на видеотерминалах вызывает системы, зрительного анализатора; большая на-
31
