CC BY
36
УДК 575.162
Генетические варианты, ассоциированные с бронхиальной астмой, специфичные для населения РФ
Ю. Н. Ахмерова1**, Т. А. Шпакова1*, К. С. Грамматикати1*, С. И. Митрофанов1*, П. Г. Казакова1, А. А. Мкртчян1, П. Ю. Земский1, М. Н. Пилипенко1, Н. В. Фелиз1, Л. В. Фролова1, А. А. Фроловская1, В. С. Юдин1, А. А. Кескинов1, С. А. Краевой1, С. М. Юдин1, В. И. Скворцова2
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Центр стратегического
планирования и управления медико-биологическими рисками здоровью» Федерального
медико-биологического агентства (ФГБУ «ЦСП» ФМБА России), Москва, 119121 Россия
2Федеральное медико-биологическое агентство (ФМБА России), Москва, 123182 Россия
# Вклад этих авторов в работу равнозначный.
*E-mail: YUAhmerova@cspfmba.ru
Поступила в редакцию 07.11.2022
Принята к печати 09.01.2023
DOI: 10.32607/actanaturae.11853
РЕФЕРАТ Бронхиальная астма (БА) - хроническое заболевание, до сих пор не имеющее исчерпывающего протокола лечения. В связи с этим особое внимание привлекает поиск генетических предпосылок возникновения данного заболевания. Широкое распространение получило изучение ассоциаций генетических полиморфизмов ряда генов с бронхиальной астмой. В результате анализа литературы нами отобраны 167 генов, ассоциированных с развитием бронхиальной астмы. С целью биоинформатической проверки ассоциаций известных полиморфизмов генов с развитием бронхиальной астмы и поиска новых была сформирована группа из 7303 человек, добровольно предоставивших свой биоматериал (венозную кровь) для исследований. Эту группу разбили на две когорты, состоящие из лиц с бронхиальной астмой в анамнезе и условно здоровых доноров. Каждую когорту разделили в свою очередь в соответствии с их гендерной принадлежностью. В каждой когорте проанализировали полиморфные варианты отобранных генов и выявили те, встречаемость которых в разных когортах различалась статистически значимо (уровень значимости менее 0.0001). В ходе исследования обнаружено 11 полиморфизмов, влияющих на развитие БА: четыре генетических варианта (rs869106717, rs1461555098, rs189649077, rs1199362453), которые чаще встречаются у мужчин, болеющих бронхиальной астмой, чем у условно здоровых мужчин; пять генетических вариантов (rs1923038536, rs181066119, rs143247175, rs140597386, rs762042586), которые чаще встречаются у женщин с бронхиальной астмой в анамнезе, чем у условно здоровых женщин; два генетических варианта (rs1219244986, rs2291651), редко встречающихся у женщин с бронхиальной астмой в анамнезе.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА бронхиальная астма, полиморфизм, фенотип-генотипические ассоциации, генетические варианты.
СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ БА - бронхиальная астма; ВОЗ - Всемирная организация здравоохранения; ГДП - гиперактивность дыхательных путей; ГК - глюкокортикостероиды; ИГК - ингаляционные глю-кокортикостероиды; ОФВ - объем форсированного выдоха; SNP - однонуклеотидный полиморфизм (single-nucleotide polymorphism); PAF - фактор активации тромбоцитов (platelet-activating factor).
ВВЕДЕНИЕ
Бронхиальная астма (БА) - хроническое рецидивирующее заболевание, патогенез которого связан с измененной реактивностью бронхов, обусловленной как специфическими иммунологическими, так и неспецифическими механизмами. Основной (обязательный) клинический признак БА - присту-
пы удушья, возникающие вследствие бронхоспазма, гиперсекреции слизи и отека слизистой оболочки бронхов [1].
ВОЗ считает бронхиальную астму одним из самых серьезных неинфекционных заболеваний с хроническим течением. Большинство летальных исходов, вызванных БА, наблюдается в странах
с низким и средним уровнем доходов населения, где выявление и лечение этого заболевания, как и здравоохранение в целом, находятся на недостаточно высоком уровне [2]. В настоящее время до 350 млн человек в мире страдают БА [1], к 2025 году этот показатель может увеличиться до 450 млн [3].
В Российской Федерации, по официальным данным, зарегистрировано 1.3 млн больных БА. Это означает, что распространенность данного заболевания в РФ составляет менее 1%, а доля болеющих БА не достигает 0.4% от всех астматиков в мире. При этом, по данным Европейского общества пульмонологов, распространенность БА в ряде европейских стран составляет 5% среди взрослого населения и более 7% среди детей. Во многих странах отмечена тенденция к росту инвалидизации и смертности в результате БА. Так, в Великобритании смертность от БА за последние 20 лет увеличилась в 7 раз, в Северной Америке - в 2-3 раза. В США от БА ежегодно умирает более 5000 человек.
Возникновение БА обусловлено рядом факторов, в том числе интенсивностью экспозиции аллергенов, разрушением среды обитания, иммунной реактивностью и генетическими особенностями [3]. Показано, что у ребенка, один из родителей которого болен бронхиальной астмой, вероятность развития этого заболевания составляет 25%. Если больны оба родителя, то риск развития БА у ребенка возрастает до 50% [4]. Также доказана связь увеличения частоты БА с повышением загрязнения почвы, воздуха и воды [5].
В 2018 году прямые затраты российского здравоохранения на лечение БА составили около 8.5 млрд рублей, две трети из которых пришлись на оплату стационарного лечения. Кроме того, значительные средства требуются на выплаты по листкам нетрудоспособности и пособиям по инвалидности [6]. Ранняя диагностика и предупреждение развития БА помогут не только снизить эти затраты, но и уменьшить распространенность бронхиальной астмы в России.
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ
Формирование когорт
Манифестация и характер течения БА у женщин и мужчин существенно различаются, что в значительной мере обусловлено разной вовлеченностью половых гормонов в патогенез БА [7]. В связи с этим участники данного исследования были разделены на когорты, выделенные как по наличию БА в анамнезе, так и по половому признаку.
Из 7303 участников группы были сформированы четыре когорты:
1А - женщины с подтвержденным диагнозом БА (средний возраст 52 ± 10 лет), 218 человек;
2А - мужчины с подтвержденным диагнозом БА (средний возраст 41 ± 12 лет), 70 человек;
3Н - условно здоровые женщины, в анамнезе которых отсутствует БА, а также иные диагнозы со сходной клинической картиной (средний возраст 52 ± 8 лет), 4015 человек;
4Н - условно здоровые мужчины, в анамнезе которых отсутствует БА, а также иные диагнозы со смежной клинической картиной (средний возраст 44 ± 6 лет), 3000 человек.
Критерием включения в группы 1А и 2А служил диагноз бронхиальная астма в анамнезе. В группы 3Н и 4Н вошли условно здоровые женщины и мужчины, критериями не включения в эти когорты служили записи в анамнезе о заболеваниях, симптомы которых сходны с такими проявлениями БА, как острый бронхит, эмфизема легких, аллергический ринит, гастроэзофагеальный рефлюкс, пищеводно-трахеальный свищ, врожденный порок сердца, трахео- и бронхомаляция, муковисцидоз, первичная цилиарная дискинезия, бронхоэктазы другой этиологии, туберкулез, злокачественные новообразования легкого, сосудистое кольцо, сар-коидоз, увеличение внутригрудных лимфоузлов, бронхолегочная дисплазия, аллергический брон-холегочный аспергиллез, системная анафилаксия, первичный иммунодефицит, дисфункция голосовых связок, психогенный кашель, аффективно-респираторные приступы [8].
Сбор биоматериала и данные участников исследования
В данном исследовании использовали образцы из ранее собранных коллекций ФГБУ «ЦСП» ФМБА России. Во всех случаях соблюдены заданные методикой условия: наличие и корректность данных каждого донора, а именно: пол, возраст, регион проживания, национальность, анамнез; подписанное донором добровольное информированное согласие на забор, обработку, транспортировку и хранение биоматериала, а также использование его личных данных; обеспечение правильного забора, обработки, транспортировки и хранения биоматериала (венозная кровь) в соответствии с ГОСТ Р53079.4-2008.
Все образцы, попавшие в финальную выборку исследования, прошли проверку на уникальность идентификационного кода донора и зашифрованной в этом коде информации, а также проверку на отсутствие признаков гемолиза и хилеза в биоматериале. Транспортировка образцов осуществлена при постоянном контроле температурного режима.
Формирование перечня генов-кандидатов
В настоящее время описано более 15Q генов, ассоциированных с развитием БА. Среди них особый интерес представляют три условные группы генов:
гены атопии. К ним относятся IL4, IL5, IL13, IL4RA, CHI3L1, RAD50 и др., определяющие уровень общего и специфических IgE в крови, а также наличие аллергических реакций;
гены бронхиальной гиперактивности, в том числе ADRB2, TNF, IL5, IL9, NOS1, NPSR1, TAC1, TACR2, TACR1, TACR3, ADAM33, ACE и др., определяющие повышенную реактивность бронхов, которая тесно связана с уровнем IgE в крови и воспалительными процессами;
гены воспаления, такие, как TNF, IL4, IL5, IL13, ORMDL3, SCGB3A2, CCL11, IRAK3, CSF2, ALOX5, CYSLTR1, CYSLTR2, LTC4S, STAT3, STAT6 и др., определяющие количество медиаторов воспаления за счет регуляции иммунного ответа и поведения клеток воспаления в биологических жидкостях [8].
На основании 1Q7 источников сформирован перечень из 167 генов-кандидатов для поиска фенотип-генотипических ассоциаций. Перечень этих генов с кратким указанием функций кодируемых ими белков представлен в разделе «Обсуждение».
Выделение ДНК, подготовка геномных библиотек и секвенирование
ДНК из образцов цельной крови выделяли с помощью набора MagAttract HMW DNA Kit (Qiagen, Германия). Протокол выделения ДНК автоматизирован на Tecan Freedom EVO (Tecan, Швейцария). Концентрацию и чистоту выделенной ДНК измеряли с помощью микропланшетного ридера Tecan Infinite® F Nano Plus (Tecan, Швейцария).
Геномные библиотеки для секвенирования подготовлены с использованием набора Nextera DNA Flex (Illumina, США) в соответствии с рекомендациями производителя. При этом каждый образец в проточной кювете метили с помощью индексов из набора IDT-ILMN Nextera DNA UD (Illumina, США).
Концентрации геномных библиотек измеряли на спектрофотометре Tecan Infinite® F Nano Plus. Размер геномных библиотек определяли с помощью системы Agilent TapeStation 42QQ с использованием набора Agilent DNA 1QQQ (Agilent, США). Библиотечные пулы, состоящие из 24 образцов, объединяли с использованием автоматизированной станции Tecan Freedom EVO.
Полногеномное секвенирование проведено с использованием секвенатора NovaSeq 6QQQ и комплекта реагентов S4 (3QQ циклов) (Illumina, США) для парноконцевых прочтений 2 х 15Q п.н.
Биоинформатическая обработка данных полногеномного секвенирования
На первом этапе обработки первичных данных секвенирования осуществляли демультипликацию, при которой исходная выдача секвенатора NovaSeq 6000 конвертирована из формата BCL в формат FASTQ с использованием программного обеспечения bcl2fastq v2.20 [9]. Качество секвенирования всей ячейки в целом контролировали с помощью программы Illumina Sequencing Analysis Viewer v2.4.7 [10]. Качество отдельных прочтений контролировали с использованием биоинформатического инструмента FastQC v0.11.9 [11].
В финальную выборку попали образцы крови, прошедшие контроль качества по показателю равномерности распределения нуклеотидов в ридах и по GC-составу.
На втором этапе биоинформатической обработки с помощью DRAGEN [12] проведено выравнивание на референсный геном. В качестве референсного генома использовали последовательность GRCh38. d1.vd1. Образцы крови, среднее покрытие которых по геному составляло менее х30, из исследования исключали.
Наличие дубликатов в выборке проверяли с помощью программы CrossCheck [13]. Все дубликаты образцов из исследования исключали.
Поиск малых генетических вариантов
Для обработки VCF-файлов и поиска малых вариантов (SNP, индели до 50 п.н.) использовали программное обеспечение Strelka [14].
В 167 генах-кандидатах (7303 образца) обнаружено 380 564 малых генетических варианта, из которых 253 628 встретились более одного раза.
Для выявления полиморфизмов, ассоциированных с развитием БА, использовали методику поиска генетических вариантов, встречаемость которых статистически значимо различается в разных когортах. Для определения степени значимости различий использовали точный тест Фишера.
За нулевую гипотезу принят случай, при котором встречаемость «нулевого» варианта во всех четырех когортах одна и та же. Уровень значимости, при котором отвергалась нулевая гипотеза, принят равным 10-4. Расчеты проведены на языке R.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Сравнение мужских когорт
В результате проведенного нами анализа в интро-нах генов TACR3, ZNF257, FOXP1 и EGFR выявлены четыре генетических варианта, встречаемость которых статистически значимо различается (величина
р не превышает уровень значимости 10-4) в когорте мужчин с подтвержденным диагнозом БА и в когорте условно здоровых мужчин. Эти генетические варианты в когорте 2А встречаются значимо чаще (более чем в 5 раз) (табл. 1), чем в когорте 4Н.
В гене TACR3, кодирующем рецепторы тахики-нов и косвенно влияющем на тонус бронхов [15, 16], обнаружена делеция ^1461555098 (Лг4^.10362985 0_10362986Ые1). По нашим расчетам, относительный риск развития БА при наличии этой делеции равен 6.9, тогда как в норме этот показатель составляет 1.0. Как оказалось, делеция ^1461555098 (Лг4^.103629850_10362986Ые1) встречается в когорте 2А 6.2 раза чаще, чем в 4Н.
В гене ZNF257, кодирующем фактор транскрипции (белок с мотивом цинковых пальцев) [17], выявлен генетический вариант ^1199362453 (Лг19^.22076863Т>С), который в когорте 2А встречается 3 раза и отсутствует в когорте 4Н.
В гене FOXP1, кодирующем фактор транскрипции и экспрессирующемся в проксимальном эпителии дыхательных путей [18], выявлен генетический вариант ^869106717 (chr3:g.71465326del), который в когорте 2А встречается в 33.6 раза чаще, чем в когорте 4Н. Относительный риск развития БА у носителей данной мутации равен 36.0.
В гене EGFR, кодирующем трансмембранный рецептор, связывающий внеклеточные лиганды из группы эпидермальных факторов роста [19], генетический вариант ^189649077 (Лг7^.55168296а>Т)
в когорте 2А встречается в 143 раза чаще, чем в когорте 4Н. Относительный риск развития БА при данной мутации составляет 34.3.
Сравнение женских когорт
Показано, что в когорте женщин с подтвержденным диагнозом БА пять генетических вариантов встречаются более чем в 6 раз чаще, чем в когорте условно здоровых женщин (величина р не превышает уровень значимости 10-4). Эти генетические варианты расположены в генах CYSLTR1, IL5RA, NRG1, HDC и DPP10 (табл. 2).
В гене CYSLTR1, кодирующем белок, влияющий на выработку медиаторов воспаления - лей-котриенов [16, 20], выявлен вариант ^1923038536 (chrX:g.78306516G>A), который в когорте 1А встречается в 45.8 раза чаще, чем в когорте 3Н. При этом относительный риск развития БА при наличии данной мутации равен 14.2.
В гене IL5RA, кодирующем субъединицу гете-родимерного рецептора интерлейкина 5 - цитоки-на, играющего важную роль в дифференцировке эозинофилов [21], найден генетический вариант ^181066119 (Лг3^.3102851А>а), который в когорте 1А встречается в 36.6 раза чаще, чем в когорте 3Н. При этом относительный риск развития астмы при данной мутации составляет 13.2.
В гене NRG1, кодирующем белок, индуцирующий продукцию муцинов клетками бокаловидного эпителия дыхательных путей [22], выявлен генети-
Таблица 1. Полиморфизмы, связанные с развитием бронхиальной астмы у мужчин
Хромосома Идентификатор полиморфизма Ген Встречаемость Р
когорта 2А, % когорта 4Н, %
chr3 rs869106717 (del) FOXP1 5.71 0.17 1.1х 10-5
chr4 rs1461555098 (del) TACR3 12.86 2.07 2.9х 10-5
chr7 rs189649077 (G>T) EGFR 4.29 0.03 2.4х 10-5
chr19 rs1199362453 (T>C) ZNF257 4.29 0.00 4.5х 10-5
Таблица 2. Полиморфизмы, связанные с развитием бронхиальной астмы у женщин
Хромосома Идентификатор полиморфизма Ген Встречаемость Р
когорта 1A, % когорта 3Н, %
chrX rs1923038536(G>A) CYSLTR1 2.29 0.05 6.7х 10-6
chr1 rs1219244986(T>C) MUC1 1.83 9.46 1.5х 10-5
chr3 rs2291651(G>C) MUC4 83.03 91.88 5.0х 10-5
chr3 rs181066119(A>G) IL5RA 1.83 0.05 9.5х 10-5
chr8 rs143247175(T>A) NRG1 1.83 0.05 9.5х 10-5
chr15 rs140597386(dup) HDC 4.13 0.67 6.0х 10-5
chr2 rs762042586(del) DPP10 1.83 0.05 9.5х 10-5
ческий вариант ^143247175 (Лг8^.32692193Т>А), который, как и предыдущий вариант, встречается в когорте 1А в 36.6 раза чаще, чем в когорте 3Н. Относительный риск развития БА при этой мутации также равен 13.2.
Ген HDC кодирует фермент, катализирующий синтез гистамина из L-гистидина [23]. В этом гене выявлен генетический вариант ^140597386 (chr15:g.50261726dup), который в когорте 1А встречается в 6.2 раза чаще, чем в когорте 3Н. Относительный риск развития БА у носителей данной мутации равен 5.0.
В гене DPP10, кодирующем мембранный белок семейства сериновых протеаз [16], выявлен генетический вариант ^762042586 (chr2:g.115490670del), который в когорте 1А встречается в 36.6 раза чаще, чем в когорте 3Н. Относительный риск развития БА при наличии данной мутации равен 13.2.
Генетические варианты ^2291651 (^г3: g. 1 9 5 7 5 1 14Ш>С) и ^ 12 1 9244986 (^г1: g.155189991T>C) в генах МиС1 и МиС4 у женщин-астматиков встречаются существенно реже, чем у условно здоровых женщин. Это значит, что выявленные варианты можно рассматривать как про-тективные при БА [24]. Гены МиС1 и МиС4 кодируют муцины. При этом ген МиС1 оказывает противовоспалительное действие при бронхоле-гочных заболеваниях. МиС4 опосредованно влияет на пролиферацию клеток эпителия дыхательных путей [25]. Генетический вариант ^2291651 (Лг3^.19575114Ш>С) в гене МиС4 в когорте 1А встречается несколько реже, чем в когорте 3Н. При этом относительный риск развития БА при наличии данной мутации равен 0.5, тогда как в норме этот показатель равен 1.0. Это свидетельствует о снижении риска развития бронхиальной астмы у женщин, имеющих генетический вариант ^2291651, в 2 раза. Относительный риск развития БА у женщин с генетическим вариантом ^1219244986 (Лг1^.155189991Т>С) равен 0.2, т.е. ниже единицы, что соответствует снижению вероятности развития заболевания в 5 раз.
Однако необходимо принять во внимание тот факт, что обнаруженные варианты в генах МиС1 и МиС4 находятся в GC-богатых регионах. Такое расположение негативно влияет на качество секве-нирования и, соответственно, определения генетических вариантов.
ОБСУЖДЕНИЕ
Нами проведен анализ генов, которые рассматриваются как ассоциированные с БА. Выявлены 11 полиморфизмов, встречаемость которых существенно различается у лиц с диагнозом БА и без такого диа-
гноза. При этом девять выявленных генетических вариантов увеличивают риск развития БА, тогда как два варианта снижают его. Эти девять вариантов увеличивают риск БА в 5 раз и более. Данные варианты свойственны населению Российской Федерации.
Согласно [26], до 45% женщин, болеющих бронхиальной астмой, испытывают ухудшение состояния в предменструальный период. В 2020 году полиморфизм rs2291651 в гене MUC4 был описан как один из сопутствующих признаков эндометриоза у женщин в Южной Корее [27]. В этой работе анализировали взаимосвязь между однонуклеотидными полиморфизмами в генах MUC1 и MUC4 и риском развития эндометриоза. Проведение скрининга выявило восемь генетических вариантов MUC4, в том числе rs2291651, присутствие которых коррелировало с развитием эндометриоза. Более легкие приступы БА отмечены у женщин репродуктивного возраста, которые использовали некоторые оральные контрацептивы [28]. В ряде исследований [29, 30] также показано, что колебания уровней эстра-диола и прогестерона в ходе менструального цикла влияют на выраженность симптомов бронхиальной астмы. Это означает, что при изучении генетической предрасположенности к тяжелому течению БА у женщин особое внимание следует уделять генам, связанным с женскими половыми гормонами.
В ходе исследования нами рассмотрено 167 генов-кандидатов, ассоциированных с бронхиальной астмой. В число этих генов входят HNMT, MS4A2, HRH1, HRH2, HRH3, HRH4, AOC1, HDC, кодирующие гистаминовые рецепторы, которые участвуют в процессе регуляции высвобождения гистамина [16, 23, 31-33].
Ген HDC кодирует фермент гистидиндекарбокси-лазу, который катализирует образование гистами-на из L-гистидина, а уровень мРНК HDC повышен у больных астмой [23];
IL3, IL4, IL4R, IL5, IL9, IL13, IL17, IL21R, IL18, IL18R1, IL2RB, IL1RL1, IL5RA, IL33, SCGB3A2, TNF, CCL11, IRAK3, CSF2, TSLP кодируют цито-кины, которые участвуют в воспалительных процессах. Например, IL5 стимулирует высвобождение эозинофилов в кровоток, а IL5RA регулирует их активность. Воздействие аллергенов на дыхательные пути увеличивает локальную концентрацию IL5, что коррелирует со степенью эозинофилии дыхательных путей, а IL4RA кодирует альфа-цепь рецептора IL4, который может связывать IL4 и IL13 для регуляции выработки IgE [4, 16, 21, 23, 34-40];
IL17F кодирует провоспалительный цитокин, который участвует в патофизиологических проявлениях астмы. Исследования in vivo и in vitro по-
казали, что IL17F участвует в патогенезе аллергического воспаления дыхательных путей [41];
ADRB2 кодирует бета-2-адренорецепторы, играющие важную роль в контрактильности дыхательных путей. Бета-2-адренорецепторы являются мишенью для Р2-агонистов, обладающих выраженной бронхо-дилатирующей и бронхопротективной активностью, что имеет значение для оценки эффективности терапии БА [16];
PLA2G7 кодирует ацетилгидролазу фактора активации тромбоцитов. Этот фермент катализирует расщепление PAF путем гидролиза ацетильной группы до биологически неактивных продуктов [31];
ALOX5, CYSLTR1, CYSLTR2, LTC4S кодируют белки, влияющие на выработку медиаторов воспаления - лейкотриенов, способствующих развитию различных аллергических реакций и реакций гиперчувствительности. Показано, что изменение экспрессии некоторых из них может вызывать бронхоконстрикцию дыхательных путей и гиперреактивность к бронхоконстрикторным агентам, таким, как гистамин, повышенная проницаемость сосудов, отек, повышение уровня эозинофилов и нейтро-филов, пролиферация гладкой мускулатуры, отложение коллагена и фиброз в различных тканевых участках, секреция муцина клетками бокаловидного эпителия, метаплазия бокаловидных клеток и гипертрофия эпителиальных клеток органов дыхательной системы [16, 20, 42];
PTGER2, PTGDR кодируют рецепторы проста-гландинов и участвуют в патогенезе БА [16, 43];
TBX21, TBX5 кодируют белки - факторы активации транскрипции, экспрессия этих факторов снижена в T-клетках дыхательных путей больных астмой [16, 44];
STAT6 кодирует фактор активации транскрипции семейства STAT; экспрессия этого гена значительно повышена у больных тяжелой формой БА [16];
ген STAT3 кодирует фактор активации транскрипции семейства STAT, который опосредует клеточные ответы на интерлейкины и действует как регулятор воспалительного ответа [45, 46];
STAT4 кодирует фактор активации транскрипции семейства STAT, экспрессия этого гена снижена у больных БА [47];
NPSR1 кодирует рецептор нейропептида S, повышение экспрессии этого гена в эпителии дыхательных путей вызывает активацию матриксных металлопротеиназ, которые участвуют в патогенезе БА [16, 48];
TAC1, TACR2, TACR1, TACR3 кодируют рецепторы тахикининов, которые содержатся в чувствительных нервных окончаниях, активируются под влиянием медиаторов воспаления (гистамина, фактора актива-
ции тромбоцитов, лейкотриенов) и включают в патогенез астмы механизм аксон-рефлекс, тем самым увеличивая и распространяя первоначальное воспаление. Тахикинины влияют на тонус бронхов и проницаемость кровеносных сосудов [16];
CHI3L1 кодирует гликопротеин семейства глико-зилгидролаз, играет роль в развитии воспалительной реакции по Тн2-типу [16, 49];
DENND1B кодирует белок, взаимодействующий с фактором некроза опухоли и играющий важную роль в подавлении Т-клеточных рецепторов на TH2-клетках [50, 51];
ADAM33 кодирует металлопротеазу. ADAM33 экспрессируется в различных типах клеток дыхательных путей. Экспрессия гена ADAM33 повышена у пациентов с БА, а нарушение функций этой металлопротеазы может быть связано с гиперреактивностью бронхов и ремоделированием стенки дыхательных путей, что способствует ранней манифестации бронхиальной астмы [52];
ORMDL1, ORMDL2, ORMDL3 кодируют ORM-подобные белки - ключевые регуляторы серин-пальмитоилтрансферазы, которая катализирует начальный этап биосинтеза сфинголипидов. Сфинголипиды играют важную роль в передаче сигналов в ответ на стресс, а также влияют на механические свойства клеточных мембран. Нарушение регуляции биосинтеза сфинголипидов связано с некоторыми заболеваниями, включая аллергические и воспалительные реакции, а также астму [53, 54];
VIP кодирует вазоактивный пептид, расслабляющий гладкую мускулатуру [55];
гены семейства NOS кодируют синтетазы оксида азота. Мутации в гене NOS1 приводят к снижению концентрации оксида азота при неэозинофильном фенотипе, что является маркером бронхиальной астмы, и к бронхиальной гиперактивности [56-58];
ACE кодирует ангиотензин, который превращает ангиотензин I в вазоактивный ангиотензин II, участвует в патогенезе БА, вызывая пролиферацию и повышенную сократимость гладких мышц, вызывая обструкцию легких [59];
белок RAD50, кодируемый геном RAD50, участвует в репарации двухцепочечных разрывов ДНК. На трансгенных мышах показано, что фрагмент З'-концевой области этого гена является LCR (locus control region) TH2, регулирующим экспрессию генов цитокинов [60];
PTAFR кодирует рецептор фактора активации тромбоцитов - хемотаксического фосфолипидного медиатора, который обладает сильной воспалительной, сократительной и гипотензивной активностью в отношении гладких мышц. Рецептор PAF участвует в различных патологических процессах, таких,
как аллергия, астма, септический шок, артериальный тромбоз и воспалительные процессы [16];
OPN3 кодирует рецептор, связанный с G-белком. Повышенная экспрессия OPN3 выявлена в эпителии бронхов, а также в иммунных клетках. Мутации в гене OPN3 повышают риск развития бронхиальной астмы [20, 61];
GSDMB кодирует белок, сверхэкспрессия которого в клетках бронхиального эпителия увеличивает экспрессию генов, важных как для ремоделирова-ния дыхательных путей, так и для их гиперреактивности [16, 62];
PKN2 кодирует серин/треониновую протеинкина-зу, регулирует формирование апикального соединения в бронхиальном эпителии человека [63];
РТК2 кодирует тирозиновую протеинкиназу, играет важную роль в гиперреактивности и ремо-делировании дыхательных путей [63];
ALPP кодирует плацентарную щелочную фосфа-тазу, катализирующую гидролиз моноэфиров фосфорной кислоты, уровень экспрессии этого гена ассоциирован с детской БА [63];
PTEN кодирует фосфатидилинозитол-3,4,5-трифосфат-3-фосфатазу [20]. Низкая экспрессия гена PTEN рассматривается как один из независимых факторов развития БА [64];
PRMT1 кодирует важный эпигенетический регулятор - белок-аргинин-метилтрансферазу-1, которая способствует воспалению и ремоделированию дыхательных путей при БА [65];
HSPD1 кодирует белок теплового шока, который может модулировать иммунные и воспалительные реакции, участвовать в патогенезе и/или быть маркером риска и прогноза развития некоторых заболеваний, включая БА [66];
TLR2 и TLR4 кодируют белки, входящие в семейство То11-подобных рецепторов, необходимые для распознавания патогенов и активации врожденного иммунитета. Некоторые полиморфизмы в этих генах связаны с риском развития БА [67];
ZNF208, ZNF257, ZNF676, ZNF729, ZNF98, ZNF492, ZNF99, ZNF723, ZNF728, ZNF730, ZNF91 кодируют белки с мотивами «цинковых пальцев», локализованные в области кластера факторов транскрипции, связанных с патогенезом БА [17];
B4GALT1 кодирует бета-1,4-галактозилтрансфе-разу, связан с атопическими фенотипами и воспалительными состояниями [68];
IGFBP3 кодирует белок, связывающий инсули-ноподобный фактор роста, блокирующий специфические физиологические последствия астмы IGF-независимым образом [69];
гены семейства МиС кодируют муцины. МиС7 кодирует муцин слюны, частота аллеля МиС7 с пя-
тью тандемными повторами значительно снижена при астме [20, 70]. На поздних стадиях бактериальной инфекции МиС1 играет противовоспалительную роль в дыхательных путях, которая инициируется и опосредуется подавлением передачи сигналов То11-подобного рецептора [24]. Муцин МиС4 идентифицирован как лиганд, активирующий рецепторную тирозинкиназу, которая модулирует пролиферацию эпителиальных клеток дыхательных путей при астме [25], МиС19 экспрессируется в основном в клетках подслизистых желез трахеи и слюнных желез, при аллергическом рините и хроническом среднем отите этот ген экспрессируется в эпителии. МиС5АС экспрессируется в бокаловидных клетках трахеаль-ного и бронхиального эпителия. МиС5В также экс-прессируется в эпителии и протоках подслизистой железы и, в меньшей степени, в бокаловидных клетках как трахеального, так и бронхиолярного эпителия. У многих индивидов с подтвержденным диагнозом бронхиальная астма повышен уровень мРНК МиС5АС, но понижен уровень мРНК МиС5В [71];
NRG1 кодирует белок, который индуцирует выработку муцинов МиС5АС и МиС5В бокаловидными клетками эпителия дыхательных путей человека, поэтому его ингибирование можно рассматривать как новый терапевтический подход к снижению гиперсекреции слизи при респираторных заболеваниях [22];
DACT1, DACT2 и DACT3 кодируют белки, участвующие в патогенезе БА. В тканях больных астмой значительно повышены уровни мРНК DACT1, DACT2 и DACT3 [72];
группа генов СУР кодирует белки цитохромов, которые вовлечены в метаболизм многих лекарственных средств, включая нестероидные противовоспалительные средства, пероральные антикоагулянты и антагонисты рецепторов ангиотензина, в синтез холестерина, стероидов и других липидов [20, 70, 73-77];
CHML кодирует Rab геранилгеранилтрансфе-разу, регулирующую внутриклеточный транспорт мембранных структур. Полиморфизмы в этом гене ассоциированы с развитием БА [61];
GSTT2 и GSTP1 кодируют глутатион^-транс-феразу тета-2 и глутатион^-трансферазу Р, полиморфизмы в этих генах могут быть факторами риска развития БА [78];
NAT2 кодирует ^ацетилтрансферазу 2, полиморфизмы в этом гене ассоциированы с развитием ато-пической астмы [79];
РУНШ1 кодирует интерферон-индуцируемый белок НШ-200, который принимает участие в выработке провоспалительных цитокинов в эпителиальных клетках дыхательных путей [80];
промотор гена SMAD3 значительно гиперметили-рован у пациентов, страдающих БА [81];
PGAP3 кодирует гликозилфосфатидилинозитол-специфическую фосфолипазу, которая преимущественно локализуется в аппарате Гольджи. Белки PGAP3 и ORMDL3 могут способствовать развитию БА [82];
ERBB2 кодирует рецепторную тирозинкиназу эпидермального фактора роста. Экспрессия ERBB2 ниже в свежевыделенных астматических клетках эпителия дыхательных путей, чем в клетках здоровых людей [83];
COL15A1 кодирует альфа-цепь коллагена типа XV, входящего в семейство коллагенов FACIT [16], вовлечен в метаболизм лекарственных средств, применяемых при заболеваниях легких [84];
FOXP1 кодирует фактор транскрипции семейства FOXO, экспрессирующийся в проксимальном эпителии дыхательных путей в легких, снижение экспрессии FOXP1 ингибирует раннюю дифференци-ровку секреторных клеток [18];
ACOT7 кодирует белок из семейства ацилкоэн-зимов, эпигеномное ассоциативное исследование продемонстрировало связь степени метилирования с развитием бронхиальной астмы [85];
MTHFR кодирует фермент метилентетрагидрофо-латредуктазу. Полиморфизмы гена MTHFR ассоциированы с предрасположенностью к бронхиальной астме и эффективностью глюкокортикостероидов у людей [86];
DICER1 кодирует РНК-хеликазу, участвующую в продукции цитокинов и передаче сигналов при БА [87];
SERPINC1 кодирует антитромбин III, выступающий ингибитором факторов свертывания крови, изменение уровня которого может приводить к тром-бообразованию, легочной эмболии [88];
SYNM кодирует промежуточный филамент, существует предположение об участии уровня метилирования этого гена в развитии БА [89];
GATA3 кодирует транскрипционный фактор семейства GATA. Экспрессия GATA3 значительно возрастает в дыхательных путях при астме. Увеличение экспрессии GATA3 коррелирует с изменением экспрессии IL5 и появлением гиперактивности бронхов [90];
FOXP3 кодирует фактор активации транскрипции, экспрессия этого гена снижена у больных астмой [91];
CCDC80, DAPK3, LOXL1, PROC, FUCA2, SP100, ITCH кодируют белки, связанные с презентацией антигена Т-лимфоцитам. Выявлено повышение уровня метилирования этих генов при астме [76];
ген VDR кодирует рецептор витамина D3. У детей с БА часто встречаются генетические вариан-
ты в гене VDR, которые отрицательно коррелируют с тяжестью течения астмы [92];
DPP10 кодирует мембранный белок семейства се-риновых протеаз. Мутации в этом гене повышают риск развития БА [16, 93];
генетические варианты в генах PHF11, SPP1, PLAUR ассоциированы с повышением уровня ^Е [94];
SLC22A5 кодирует переносчик органических катионов, уровень экспрессии этого гена снижен в бронхиальном эпителии больных астмой [95];
EPHX1 кодирует микросомальную эпоксидгидро-лазу. Высокий уровень экспрессия EPHX1 связан с повышенным риском развития БА в течение жизни [96];
CTLA4 кодирует один из белков суперсемейства иммуноглобулинов. Результаты проведенного мета-анализа показывают, что некоторые полиморфизмы в этом гене выступают в роли факторов риска развития БА [16, 97];
MMP9 кодирует матриксную металлопротеазу, участвующую в локальном протеолизе внеклеточного матрикса, миграции лейкоцитов и ремоделиро-вании дыхательных путей [98];
SOCS5 кодирует белок, принадлежащий семейству супрессоров цитокиновой сигнализации. Однонуклеотидные полиморфизмы, идентифицированные в этом гене, ассоциированы с развитием БА [99];
полиморфизмы в гене FCER2, кодирующем CD23, ассоциированы с атопией, повышенным риском обострений у пациентов с астмой и высокими уровнями ^Е в сыворотке [100];
VEGFA кодирует гепаринсвязывающий белок, один из факторов роста PDGF/VEGF. При БА наблюдается повышение экспрессии этого гена [101];
ASB3 кодирует белок, который участвует в пролиферации клеток гладкой мускулатуры и в развитии мышечных клеток. Полногеномное ассоциативное исследование выявило связь между полиморфизмами в этом гене и развитием БА [102];
CRISPLD2 кодирует секреторный белок LCCL, который увеличивает чувствительность к глюкокорти-костероидам и регулирует иммунный ответ [103];
по данным полногеномного ассоциативного исследования полиморфизмы в генах APOBEC3B, APOBEC3C, EDDM3B ассоциированы с обострениями БА [104];
полногеномное ассоциативное исследование выявило связь между полиморфизмами в гене BBS9 с эффективностью терапии астмы у детей [105];
PRKG1 кодирует циклоGMP-зависимую проте-инкиназу - ключевого медиатора сигнального пути
оксида азота (NO)/сGMP - и играет роль в расслаблении тонуса гладкой мускулатуры [16];
DNAH5 кодирует белок динеин. Экспрессия DNAH5 снижена в бронхиальном эпителии больных астмой по сравнению с группой контроля [106];
JAK1 и JAK2 кодируют тирозинкиназы, участвующие в сигнальных путях воспалительных цитоки-нов, связанные с увеличенной частотой обострений бронхиальной астмы и повышенной восприимчивостью к аллергической сенсибилизации и антигенам окружающей среды [107, 108];
CHRNA1 и CHRNA3 кодируют никотиновые аце-тилхолиновые рецепторы. Полиморфизмы в этих генах относятся к генетическим факторам риска бронхиальной обструкции [109];
TGF-в кодирует секретируемый лиганд надсемей-ства белков TGF-p. Изоформы TGF-P играют роль в регуляции воспаления дыхательных путей и процесса их ремоделирования [110];
варианты в гене НН1Р ассоциированы с хронической обструктивной болезнью легких [111];
SOD3 кодирует супероксид-дисмутазу. Экспрессия SOD3 повышена у больных БА, а некоторые генетические варианты этого гена влияют на распределение внеклеточной супероксид-дисмутазы в легких и снижают вероятность проявления симптомов БА [112];
EGFR кодирует трансмембранный рецептор, связывающий внеклеточные лиганды из группы эпи-дермальных факторов роста. В биоптатах больных астмой часто выявляют участки повреждения эпителия, которые иммуноокрашиваются EGFR, по-
вышенная экспрессия EGFR наблюдается также в морфологически интактном «астматическом» эпителии [19];
SLC11A1 кодирует белок-переносчик двухвалентного железа и марганца. В ряде исследований установлена связь полиморфизмов в этом гене с развитием заболеваний легких [113];
ZPBP2 кодирует белок, который экспрессируется в железистом эпителии бронхов. Уровни метилирования этого гена различаются у здоровых и больных БА [114].
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Обнаруженные в ходе исследования генетические варианты ряда генов, повышающие и снижающие относительный риск развития БА, могут помочь в ранней диагностике бронхиальной астмы, а также способствовать правильной постановке диагноза в спорных случаях. В перспективе анализ образцов, полученных от жителей разных регионов, поможет оценить географическое распространение генетических вариантов риска и картировать не только заболеваемость БА, но и адекватно распределить по регионам потоки финансовых и материальных средств, а также квалифицированные медицинские кадры. Заблаговременное, в том числе пренатальное, выявление лиц, склонных к БА, а также корректная постановка диагноза повысят качество медицинской помощи, снизят инвалидизацию и смертность от бронхолегочных событий, уменьшат прямые и косвенные финансовые затраты на борьбу с бронхиальной астмой. •
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1.Межрегиональная общественная организация Российское респираторное общество, Всероссийская общественная организация Ассоциация аллергологов и клинических иммунологов, Общероссийская общественная организация Союз педиатров России, Научный совет Министерства здравоохранения Российской Федерации. Клинические рекомендации. Бронхиальная астма. М., 2021. С. 7.
2.Vos T., Lim S.S., Abbafati, C., Abbas K.M., Abbasi M., Abbasifard M., Abbasi-Kangevari M., Abbastabar, H., AbdAllah F., Abdelalim A., et al. // Lancet. 2020. V. 396. № 10258. P. 1204-1222.
З.Заикина М.В. Бронхиальная астма у молодых мужчин: ранние изменения функционального состояния кардио-респираторной системы: Дис. ... канд. мед. наук. Пермь: Пермский гос. мед. ун-т, 2017. 153 с.
4.Асанов А.Ю., Намазова Л.С., Пинелис В.Г., Журкова Н.В., Вознесенская Н.И. // Педиатр. фaрмакол. 2008. Т. 5. № 4. С. 31-37.
5.The European Community Respiratory Health Survey II // Eur. Resp. J. Eur. Resp. Soc. 2002. V. 20. № 5. P. 1071-1079.
6.Белевский А.С., Зайцев А.А. // Мед. совет. 2018. № 15. С. 60-68.
7.Yung J.A., Fuseini H., Newcomb D.C. // Ann. Allergy Asthma
Immunol. 2018. V. 120. № 5. P. 488-494. 8.Чучалин А.Г., Абелевич М.М., Архипов В.В., Астафьева Н.Г., Ашерова И.К., Балаболкин И.И., Балева Л.С., Баскакова А.Е., Блохин Б.М., Богорад А.Е. и др. Национальная программа «Бронхиальная астма у детей. Стратегия лечения и профилактика». 4-е изд. М., 2012. С. 11.
9.Holtgrewe M., Messerschmidt C., Nieminen M., Beule D. // Bioinformatics. 2020. V. 36. № 6. P. 1983-1985.
10.Wright M.N., Gola D., Ziegler A. // Statistical Human Genetics. 2017. V. 1666. P. 629-647.
11.de Sena Brandine G., Smith A.D. // F1000Res. 2021. V. 8. P. 1874.
12.Miller N.A., Farrow E.G., Gibson M., Willig L.K., Twist G., Yoo B., Marrs T., Corder S., Krivohlavek L., Walter A., et al. // Genome Medicine. 2015. V. 7. № 1. P. 100.
13.Najafov J., Najafov A. // Nature. 2017. V. 7. P. 5855. 14.Saunders C.T., Wong W.S.W., Swamy S., Becq J., Murray
L.J., Cheetham R.K. // Bioinformatics. 2012. V. 28. № 14. " P. 1811-1817.
15.Ramalho R., Soares R., Couto N., Moreira A. // BMC Pulm Med. 2011. V. 11. P. 41-48. 16.Stelzer G., Rosen N., Plaschkes I., Zimmerman S., Twik M.,
Fishilevich S., Stein T.I., Nudel R., Lieder I., Mazor Y., et al. // Curr. Protoc. Bioinformatics. 2016. V. 54. P. 1.30.1-1.30.33.
17.Карунас А.С., Юнусбаев Б.Б., Федорова Ю.Ю., Гималова Г.Ф., Рамазанова Н.Н., Гурьева Л.Л., Мухтарова Л.А., За-гидуллин Ш.З., Эткина Э.И., Хуснутдинова Э.К. // Молеку-ляр. биология. 2011. Т. 11. № 6. С. 992-1003.
18.Li S., Wang Y., Zhang Y., Lu M.M., DeMayo F.J., Dekker J.D., Tucker P.W., Morrisey E.E. // Development. 2012. V. 139. № 14. P. 2500-2509.
19.Puddicombe S.M., Polosa R., Richter A., Krishna M.T., Howarth P.H., Holgate S.T., Davies D.E. // FASEB J. 2000. V. 14. № 10. P. 1362-1374.
20.UniProt Consortium. // Nucl. Acids Res. 2021. V. 49. P. D480-D489.
21.Cheong H.S., Kim L.H., Park B.L., Choi Y.H., Park H.S., Hong S.J., Choi B.W., Park C.S., Shin H.D. // J. Hum. Genet. 2005. V. 50. № 12. P. 628-634.
22.Zuiker R.G., Tribouley C., Diamant Z., Boot J.D., Cohen A.F., van Dyck K., De Lepeleire I., Rivas V.M., Malkov V.A., Burggraaf J., et al. // Eur. Clin. Respir. J. 2016. V. 3. P. 31324.
23.Yamauchi K. // Nihon Rinsho. 1996. V. 54. № 2. P. 377-388.
24.Kato K., Lillehoj E.P., Lu W., Kim K.C. // J. Clin. Med. 2017. V. 6. № 12. P. 110.
25.Damera G., Xia B., Sachdev G.P. // Respiratory Res. 2006. V. 7. № 1. P. 39.
26.Arathimos R., Granell R., Haycock P., Richmond R.C., Yarmolinsky J., Relton C.L., Tilling K. // Thorax. 2019. V. 74. № 7. P. 633-642.
27.Yen C.-F., Kim M.-R., Lee C.-L. // Gynecol. Minim. Invasive Ther. 2019. V. 8. № 1. P. 4-11.
28.Nwaru B.I., Tibble H., Shah S.A., Pillinger R., McLean S., Ryan D.P., Critchley H., Price D.B., Hawrylowicz C.M., Simpson C.R., et al. // Thorax. 2021. V. 76. № 2. P. 109-115.
29. Chowdhury N.U., Guntur V.P., Newcomb D.C., Wechsler M.E. // Eur. Respir. Rev. 2021. V. 30. № 162. P. 210067.
30. Yung J.A., Fuseini H., Newcomb D.C. // Ann. Allergy Asthma Immunol. 2018. V. 120. № 5. P. 488-494.
31. Amberger J.S., Bocchini C.A., Schiettecatte F., Scott A.F., Hamosh A. // Nucl. Acids Res. 2015. V. 43. № 7. P. 89-98.
32.Yoshikawa T., Nakamura T., Yanai K. // Int. J. Mol. Sci.
2019. V. 20. № 3. P. 737.
33.Szczepankiewicz A., Br^borowicz A., Sobkowiak P., Popiel A. // Clin. Mol. Allergy. 2010. V. 8. P. 14.
34.Freihat L.A., Wheeler J.I., Wong A., Turek I., Manallack D.T., Irving H.R. // Sci. Rep. Nature. 2019. V. 9. № 1. P. 15468.
35.Matucci A., Bormioli S., Nencini F., Maggi E., Vultaggio A. // Expert. Rev. Clin. Immunol. 2021. V. 17. № 1. P. 63-71.
36.Borish L., Steinke J.W. // Curr. Allergy Asthma Rep. 2011. V. 11. № 1. P. 7-11.
37.Matera M.G., Rogliani P., Calzetta L., Cazzola M. // Drugs.
2020. V. 80. № 5. P. 449-458.
38.Gordon E.D., Palandra J., Wesolowska-Andersen A., Ringel L., Rios C.L., Lachowicz-Scroggins M.E., Sharp L.Z., Everman J.L., MacLeod H.J., et al. // JCI Insight. 2016. V. 1. № 14. P. 87871.
39.Zhang Y., Moffatt M.F., Cookson W.O.C. // Curr. Opin. Pulmonary Med. 2012. V. 18. № 1. P. 6-13.
40.Elena-Pérez S., Heredero-Jung D.H., García-Sánchez A., Estravís M., Martin M.J., Ramos-González J., Triviño J.C., Isidoro-García M., Sanz C., Dávila I. // Front. Med. (Lausanne). 2021. V. 7. P. 624576.
41.Ota K., Kawaguchi M., Matsukura S., Kurokawa M., Kokubu F., Fujita J., Morishima Y., Huang S.K., Ishii Y., Satoh H., et al. // J. Immunol. Res. 2014. V. 2014. P. 602846. 42.Theron A.J., Steel H.C., Tintinger G.R., Gravett C.M.,
Anderson R., Feldman C. // J. Immunol. Res. 2014. V. 2014. P. 608930.
43.García-Solaesa V., Sanz-Lozano C., Padrón-Morales J., Hernández-Hernández L., García-Sánchez A., Rivera-Reigada M.L., Dávila-González I., Lorente-Toledano F., Isidoro-García M. // Allergol. Immunopathol (Madrid). 2014. V. 42. № 1.
P. 64-68.
44.Edris A., de Roos E.W., McGeachie M.J., Verhamme K.M.C., Brusselle G.G., Tantisira K.G., Iribarren C., Lu M., Wu A.C., Stricker B.H., Lahousse L. // Clin. Exp. Allergy. 2022. V. 52. № 1. P. 33-45.
45. Nikolskii A.A., Shilovskiy I.P., Barvinskaia E.D., Korneev A.V., Sundukova M.S., Khaitov M.R. // Biochemistry (Moscow). 2021. V. 86. № 11. P. 1489-1501.
46.Saik O.V., Demenkov P.S., Ivanisenko T.V., Bragina E.Y., Freidin M.B., Dosenko V.E., Zolotareva O.I., Choynzonov E.L., Hofestaedt R., Ivanisenko V.A. // J. Integr. Bioinform. 2018. V. 15. № 4. P. 20180054.
47.Трофимов В.И., Минеев В.Н., Сорокина Л.Н., Нема М.А., Лим В.В., Еремеева А.В. // Мед. акад. журн. 2013. Т. 13. № 1. С. 67-72.
48.Pietras C.O., Vendelin J., Anedda F., Bruce S., Adner M., Sundman L., Pulkkinen V., Alenius H., D'Amato M., Söderhäll C., et al. // BMC Pulm. Med. 2011. V. 11. P. 39.
49.Komi D.E.A., Kazemi T., Bussink A.P. // Curr. Allergy Asthma Rep. 2016. V. 16. № 8. P. 57.
50.Sleiman P.M., Flory J., Imielinski M., Bradfield J.P., Annaiah K., Willis-Owen S.A., Wang K., Rafaels N.M., Michel S., Bonnelykke K., et al. // N. Engl. J. Med. 2010. V. 362. № 1. P. 36-44. 51.Fiuza B.S.D., de Silva M.J., Alcantara-Neves N.M., Barreto M.L., Costa R.D.S., Figueiredo C.A. // Mol. Immunol. 2017. V. 90. P. 33-41. 52.Sharma N., Tripathi P., Awasthi S. // Allergy Rhinol. (Providence). 2011. V. 2. № 2. P. 63-70.
53.Paulenda T., Draber P. // Allergy. 2016. V. 71. № 7. Р. 918930.
54.Luthers C.R., Dunn T.M., Snow A.L. // Front. Immunol.
2020. V. 11. P. 597945.
55.Pavón-Romero G.F., Serrano-Pérez N.H., García-Sánchez L., Ramírez-Jiménez F., Terán L.M. // Front. Cell. Dev. Biol.
2021. V. 9. P. 663535.
56.Ferraro V., Carraro S., Bozzetto S., Zanconato S., Baraldi E. // Asthma Res. Pract. 2018. V. 4. P. 9.
57.Батожаргалова Б.Ц., Дьякова С.Э., Петрова Н.В., Мизер-ницкий Ю.Л., Зинченко Р.А. // Рос. вест. перинатол. педиатр. 2019. Т. 64. № 5. С. 55-68.
58.Bouzigon E., Monier F., Boussaha M., Le Moual N., Huyvaert H., Matran R., Letort S., Bousquet J., Pin I., Lathrop M., et al. // PLoS One. 2012. V. 7. № 5. P. 36672.
59.Сардарян И.С., Желенина Л.А., Галустян А.Н., Коростов-цев Д.С., Иващенко Т.Э. // Рос. вест. перинатол. педиатр. 2008. Т. 53. № 1. С. 44-48.
60.Li X., Howard T.D., Zheng S.L., Haselkorn T., Peters S.P., Meyers D.A., Bleecker E.R. // J. Allergy Clin. Immunol. 2010. V. 125. № 2. P. 328-335.
61.White J.H., Chiano M., Wigglesworth M., Geske R., Riley J., White N., Hall S., Zhu G., Maurio F., Savage T., et al. // Hum. Mol. Genet. 2008. V. 17. № 13. P. 1890-1903.
62.Das S., Miller M., Beppu A.K., Mueller J., McGeough M.D., Vuong C., Karta M.R., Rosenthal P., Chouiali F., Doherty T.A., et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2016. V. 113. № 46. P. 13132-13137.
63.Krautenbacher N., Flach N., Böck A., Laubhahn K., Laimighofer M., Theis F.J., Ankerst D.P., Fuchs C., Schaub B.
// Allergy. 2019. V. 74. № 7. P. 1364-1373.
64. Wen X., Yan J., Han X.-R., Zheng G.-H., Tang R., Liu L.-F., Wu D.-M., Lu J., Zheng Y.-L. // J. Thorac. Dis. 2018. V. 10. № 1. P. 202-211.
65. Zhai W., Sun H., Li Z., Li L., Jin A., Li Y., Chen J., Yang X., Sun Q., Lu S., et al. // J. Immunol. 2021. V. 206. № 1. P. 11-22.
66. Wancheng T., Weici L. // Respirilogy. 2001. V. 5. P. 227-230.
67. Yang M., Wu T., Cheng L., Wang F., Wei Q., Tanguay R.M. // Respirat. Res. 2005. V. 6. № 1. P. 18.
68. Hansel N.N., Diette G.B. // Proc. Am. Thorac. Soc. 2007. V. 4. № 1. P. 32-36.
69. Lee Y.-C., Jogie-Brahim S., Lee D.-Y., Han J., Harada
A., Murphy L.J., Oh Y. // J. Biol. Chem. 2011. V. 286. № 20. P. 17898-17909.
70. Mcguckin M., Thornton D., Whitsett J. Mucosal Immunol. Cambridge: Acad. Press Books, 2015. V. 1. P. 231-250.
71. Bonser L.R., Erle D.J. // J. Clin. Med. 2017. V. 6. № 12. P. 112.
72. Zhang C., Yang P., Chen Y., Liu J., Yuan X. // Exp. Ther. Med. 2018. V. 15. № 3. P. 2674-2680.
73. Yildirim Yaroglu H., Calikoglu M., Tamer Gümüs L. // Med. Princ. Pract. 2011. V. 20. № 1. P. 39-42.
74. Niewinski P., Patkowski J., Orzechowska-Juzwenko K., Hurkacz M., Wolanczyk-Medrala A., Nittner-Marszalska M. // Adv. Clin. Exp. Med. 2005. V. 14. P. 1175-1180.
75. Yim E.-Y., Kang H.-R., Jung J.-W., Sohn S.-W., Cho S.-H. // Asia PacAllergy. 2013. V. 3. № 4. P. 231-240.
76. Ntontsi P., Photiades A., Zervas E., Xanthou G., Samitas K. // Internat. J. Mol. Sci. 2021. V. 22. № 5. P. 2412.
77. Laitinen T. // Meth. Mol. Biol. 2007. V. 376. P. 213-234.
78. Liang S., Wei X., Gong C., Wei J., Chen Z., Chen X., Wang Z., Deng J. // Respirology. 2013. V. 18. № 5. P. 774-783.
79. Pawlik A., Juzyszyn Z., Gawronska-Szklarz B. // Arch. Med. Res. 2009. V. 40. № 4. P. 264-267.
80. Massa D., Baran M., Bengoechea J.A., Bowie A.G. // J. Biol. Chem. 2020. V. 295. № 14. P. 4438-4450.
81. DeVries A., Wlasiuk G., Miller S.J., Bosco A., Stern D.A., Lohman I.C., Rothers J., Jones A.C., Nicodemus-Johnson J., Vasquez M.M., et al. // J. Allergy Clin. Immunol. 2017. V. 140. № 2. P. 534-542.
82. Stein M.M., Thompson E.E., Schoettler N., Helling
B.A., Magnaye K.M., Stanhope C., Igartua C., Morin A., Washington C., Nicolae D., et al. // J. Allergy Clin. Immunol. 2018. V. 142. № 3. P. 749-764.
83. Inoue H., Hattori T., Zhou X., Etling E.B., Modena B.D., Trudeau J.B., Holguin F., Wenzel S.E. // J. Allergy Clin. Immunol. 2019. V. 143. № 6. P. 2075-2085.
84. Maghsoudloo M., Azimzadeh Jamalkandi S., Najafi A., Masoudi-Nejad A. // Mol. Med. 2020. V. 26. № 1. P. 9.
85. Cardenas A., Sordillo J.E., Rifas-Shiman S.L., Chung W., Liang L., Coull B.A., Hivert M.-F., Lai P.S., Forno E., Celedón J.C., et al. // Nat. Commun. 2019. V. 10. № 1. P. 3095.
86. Li M., Tang Y., Zhao E.-Y., Chen C.-H., Dong L.-L. // Zhongguo Dang Dai Er Ke Za Zhi. 2021. V. 23. № 8. P. 802-808.
87. Hudon Thibeault A.-A., Laprise C. // Genes (Basel). 2019. V. 10. № 11. P. 932.
88. Bai J., Zhong J.-Y., Liao W., Hu R., Chen L., Wu X.-J., Liu S.-P. // Mol. Med. Rep. 2020. V. 22. № 5. P. 3607-3620.
89. Gunawardhana L.P., Gibson P.G., Simpson J.L., Benton M.C., Lea R.A., Baines K.J. // Epigenetics. 2014. V. 9. № 9. P. 1302-1316.
90. Ray A., Cohn L. // J. Clin. Invest. 1999. V. 104. № 8. P. 985-993.
91. Vale-Pereira S., Todo-Bom A., Geraldes L., Schmidt-Weber
C., Akdis C.A., Mota-Pinto A. // Clin. Exp. Allergy. 2011. V. 41. № 4. P. 490-496.
92. Hou C., Zhu X., Chang X. // Exp. Ther. Med. 2018. V. 15. № 3. P. 2773-2776.
93. Allen M., Heinzmann A., Noguchi E., Abecasis G., Broxholme J., Ponting C.P., Bhattacharyya S., Tinsley J., Zhang Y., Holt R., et al. // Nat. Genet. 2003. V. 35. № 3. P. 258-263.
94. Holloway J.W., Beghe B., Holgate S.T. // Clin. Exp. Allergy. 1999. V. 29. P. 1023-1032.
95. Mukherjee M., Brown A., Pritchard D.I., Bosquillon C. // Physiological Soc. 2013. V. 30. P. 11.
96. Salam M.T., Lin P.-C., Avol E.L., Gauderman W.J., Gilliland F.D. // Thorax. 2007. V. 62. № 12. P. 1050-1057.
97. Zheng Y., Wang H., Luo L., Liao L., You L., Wang J., Li Q. // Medicine (Baltimore). 2018. V. 97. № 28. P. 11380.
98. Ohbayashi H., Shimokata K. // Curr. Drug Targets Inflamm. Allergy. 2005. V. 4. № 2. P. 177-181.
99. Аверьянов А.Б., Черкашина И.И., Никулина С.Ю., Максимов В.Н., Шестовицкий В.А. // Терапевтический архив. 2019. Т. 3. С. 27-30.
100. Chan M.A., Gigliotti N.M., Aubin B.G., Rosenwasser L.J. // Am. J. Respir. Cell. Mol. Biol. 2014. V. 50. № 2. P. 263-269.
101. Ding Q., Sun S., Zhang Y., Tang P., Lv C., Ma H., Yu Y., Xu S., Deng Z. // COPD. 2020. V. 15. P. 357-365.
102. Israel E., Lasky-Su J., Markezich A., Damask A., Szefler S.J., Schuemann B., Klanderman B., Sylvia J., Kazani S., Wu R., et al. // Am. J. Respir. Crit. Care Med. 2015. V. 191. № 5. P. 530.
103. Kachroo P., Hecker J., Chawes B.L., Ahluwalia T.S., Cho M.H., Qiao D., Kelly R.S., Chu S.H., Virkud Y.V., Huang M., et al. // Nat. Heart, Lung, Blood Inst. Trans-Omics for Precision Med. Consortium. 2019. V. 156. № 6. P. 1068-1079.
104. Hernandez-Pacheco N., Farzan N., Francis B., Karimi L., Repnik K., Vijverberg S.J., Soares P., Schieck M., Gorenjak M., Forno E., et al. // Clin. Exp. Allergy. 2019. V. 49. № 6.
P. 789-798.
105. Perez-Garcia J., Espuela-Ortiz A., Lorenzo-Diaz F., Pino-Yanes M. // Pharmgenomics Pers. Med. 2020. V. 13. P. 89-103.
106. Lee J.H., McDonald M.-L.N., Cho M.H., Wan E.S., Castaldi P.J., Hunninghake G.M., Marchetti N., Lynch D.A., Crapo J.D., Lomas D.A., et al. // Respir. Res. 2014. V. 15. № 1. P. 97.
107. Dengler H.S., Wu X., Peng I., Rinderknecht C.H., Kwon Y., Suto E., Kohli P.B., Liimatta M., Barrett K., Lloyd J., et al. // Sci. Transl. Med. 2018. V. 10. № 468. P. 2151.
108. Tabèze L., Marchand-Adam S., Borie R., Justet A., Dupin C., Dombret M.-C., Crestani B., Taillé C. // Eur. Respir. J. 2019. V. 53. № 6. P. 1802248.
109. Finsterer J. // Orphanet. J. Rare Dis. 2019. V. 14. P. 57.
110. Al-Alawi M., Hassan T., Chotirmall S.H. // Respir. Med. 2014. V. 108. № 10. P. 1409-1423.
111. Li X., Howard T.D., Moore W.C., Ampleford E.J., Li H., Busse W.W., Calhoun W.J., Castro M., Chung K.F., Erzurum S.C., et al. // J. Allergy Clin. Immunol. 2011. V. 127. № 6.
P. 1457-1465.
112. Gaurav R., Varasteh J.T., Weaver M.R., Jacobson S.R., Hernandez-Lagunas L., Liu Q., Nozik-Grayck E., Chu H.W., Alam R., Nordestgaard B.G., et al. // JCI Insight. 2017. V. 2. № 17. P. 95072.
113. Smit J.J., Folkerts G., Nijkamp F.P. // Trends Immunol. 2004. V. 25. № 7. P. 342-347.
114. Moussette S., Al Tuwaijri A., Kohan-Ghadr H.-R., Elzein S., Farias R., Bérubé J., Ho B., Laprise C., Goodyer C.G., Rousseau S., et al. // PLoS One. 2017. V. 12. № 2. P. 0172707.
