CC BY
46
ANATOMIC-TOPOGRAPHICAL CHARACTERISTIC AND DYNAMIC OF MORPHOMETRIC INTESTINE OF THE GEESE OF PERESLAWL BREED WITH AGE
Dyumin M.S., Pronin V.V., Grishina D.S., Frolova L.V.
Summary
The article represents some research informations about anatomic-topographical characteristic and dynamic of morphometric intestinal perfomance of the gees of pereslawl breed with age.
УДК619:616.15:636.92
ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЙ СТАТУС КРОЛИКОВ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ НЕИОНИЗИРУЮЩИХ ИЗЛУЧЕНИЙ
Зенкин А.С., Калязина Н.Ю.
ФГБОУ ВПО «Мордовский государственный университет имени Н.П. Огарева», г. Саранск
Ключевые слова: кролики, ветеринария, гематология,
неионизирующие излучения.
Key words: rabbits, veterinary medicine, hematology, non-ionizing radiation.
Решение проблемы биологического действия неионизирующих излучений на организм животных принципиально для современной гуманной и ветеринарной медицины. Изучение оптического диапазона спектра является одним из наиболее тонких и действенных инструментов воздействия на вещество, живые организмы и значительно расширяет возможности врачей-практиков в ветеринарии. [1].
Цель нашей работы. Изучение локального воздействия неионизирующего лазерно-инфракрасного излучения на гематологию животных.
Кролики как лабораторные животные являются удобным тест-объектом при рассмотрении и анализе биологического действия излучений на организм животных. Эксперименты на животных проводились в соответствии с «Правилами проведения работ с использованием экспериментальных животных» (приложение к приказу Министерства здравоохранения СССР от 12.08.1977г. №755).
Материалы и методы. Подопытными животными служили самки кроликов в возрасте 1 года массой тела около 2,8-3,2 кг. Исследовались гематологические показатели, характеризующие состояние клеточного метаболизма, и общее состояние животных.
В наших исследованиях зона для локального воздействия лазерноинфракрасного излучения выбиралась исходя из наибольшего скопления биологически активных точек, отвечающих за кроветворение, т.е. в области лопатки с левой стороны [2]. Место воздействия выстригали, выбривали и обезжиривали 96о спиртом, чтобы осуществить непосредственный контакт насадки с кожей животного. Воздействовали на выбранную зону контактным методом, с помощью приспособленной для этого насадки квантового терапевтического аппарата для ветеринарной практики «РИКТА-01» (М2В), частотой 50 Гц, в течение 3 минут [3].
Отбор крови подопытных животных осуществляли на 3-и, 10-е и 30е сутки исследования. В цельной крови подопытных животных изучали содержание эритроцитов, лейкоцитов, лимфоцитов, нейтрофилов, а так же выводили лейкограмму. Для определения количества эритроцитов и лейкоцитов использовали методику подсчета клеток в камере Горяева (Кондрахин И.П., 1985). Дифференциальный подсчет лейкоцитов
осуществляли по общепринятой методике. Мазки крови окрашивали азур-эозином по Романовскому. Рабочий раствор в соотношении 1:10 готовили непосредственно перед применением. При этом учитывали структурные изменения в эритроцитах, нейтрофилах и лимфоцитах.
Современным из аппаратов, где применяется лазерно-инфракрасное излучение, является квантовый терапевтический аппарат для ветеринарной практики «РИКТА-01» (М2В). Его особенностью является комплексное воздействие на организм животных импульсного инфракрасного лазерного воздействия, пульсирующего широкополосного инфракрасного воздействия, пульсирующего красного света, определенным образом модулированного, и постоянного магнитного поля.
В основе терапевтического эффекта квантового воздействия лежат фотофизические и фотохимические реакции, связанные с поглощением света биотканью.
Квантовый терапевтический аппарат ветеринарный «РИКТА-01»(М2В) предназначен для лечения и стимуляции животных путем непосредственного воздействия на рефлексогенные зоны, на области проекции внутренних органов и биологически активные точки на теле животных.
Импульсное инфракрасное лазерное воздействие проникает в биоткани на большую глубину и, оказывая мощное стимулирующее воздействие на кровообращение, на функционирование клеточной мембраны, на обмен веществ, активизирует гормональные и иммунные системы саморегуляции организма животных [3].
Таким образом, при одновременном использовании вышеуказанных физических факторов улучшаются реологические свойства крови и лимфы, повышается оксигенация крови, улучшаются процессы микроциркуляции. Энергия квантов аппарата очень мала и ее недостаточно, чтобы нарушить
нормальные процессы, протекающие в организме или разорвать полимерные связи. Количество поглощенной организмом энергии зависит от количества импульсов в единицу времени, продолжительности сеанса, а так же от способности различных структур живого организма поглощать кванты света данного диапазона. Ответ организма на низкоэнергетическую стимуляцию зависит от состояния компенсаторных, адаптационных систем организма.
Результаты исследований. Данные о количественных изменениях лейкоцитов и эритроцитов обобщены и представлены в таблицах 1, 2.
1. Результаты исследования крови кроликов при применении лазерноинфракрасного излучения при локальном облучении БАТ
Показатели Сроки исследования
Контроль 3 сутки 10 сутки 30 сутки
Количество тыс./мкл лейкоцитов, 7,8±0,73 12,9±1,10* 7,8±0,49 10,6± 0,84*
Количество млн./мкл эритроцитов, 4,5±0,66 8,3±0,21* 4,6±0,47 5,1± 0,29
Общее количество лимфоцитов, тыс./мкл 4,8± 1,01 9,2±0,85* 2,1±0,32 5,5± 0,76
Общее количество нейтрофилов, тыс./мкл 2,4±0,60 3,0±0,12 4,4±0,38* 4,4± 0,20*
Примечание: знаком * обозначены случаи достоверного отклонения исследованных показателей у опытных животных по сравнению с контролем, при р<0,05
2. Лейкограмма крови кроликов при применении лазерно-инфракрасного излучения при локальном облучении БАТ
Срокии ссля Б Э Нейтрофилы Л М
Ю П С
Конт- 0,3± 2,0± 0 1,4± 29,4±3,20 62,8± 4,1±
роль 0,12 0,57 0,24 4,11 0,94
3-и 0 2,0± 0 0 24,0±1,15 71,3± 3,7±
сутки 0,58 0,67 0,33
10-е 2,3± 2,0± 0 0 56,3±1,76* 27,7± 13,0±4,
сутки 2,33 0,58 5,04* 04
30-е 0,3± 2,0± 0 0 41,3±2,40* 51,3± 6,7±
сутки 0,33 0,58 2,96 1,20
Из представленных данных можно видеть, что на 3-и сутки исследования количество лейкоцитов у подопытных животных достоверно
повышалось до 12,9 ± 1,10 тыс./мкл. (р<0,05), на 10-е сутки снижалось до 7,8 ± 0,49 тыс./мкл, и к 30-м суткам вновь повысилось до 10,6 ± 0,84 тыс./мкл. (р<0,05).
Количество эритроцитов изменялось следующим образом: к 3-м суткам исследования их количество достоверно повышалось до 8,3 ± 0,21 млн./мкл. (р<0,05), а это почти в 1,8 раза больше чем в контроле, к 10-м суткам снижалось почти до исходных данных, т.е. до 4,6 ± 0,47 млн./мкл, а к 30-м суткам недостоверно повысилось и составляло 5,1 ± 0,29 млн./мкл.
При исследовании крови подопытных животных отмечалось резкое колебание количества лимфоцитов. К 3-м суткам исследования их количество возрастало почти в 2 раза по сравнению с данными контрольной группы и достоверно составляло 9,2 ± 0,85 тыс./мкл. (р<0,05). Затем к 10-м суткам исследования резко снизилось почти в 4 раза и составляло всего 2,1 ± 0,32 тыс./мкл., а к 30-м суткам повысилось, и общее количество лимфоцитов на этот срок исследования уже составляло 5,5 ± 0,76 тыс./мкл.
Общее количество нейтрофилов изменялось следующим образом. Их количество к 3-м суткам исследования недостоверно возрастало, по сравнению с контролем, и составляло 3,0 ± 0, 12 тыс./мкл. К 10-м суткам их количество увеличилось и составляло уже 4,4 ± 0,38 тыс./мкл. (р<0,05) и к 30-м суткам оставалось примерно на том же уровне 4,4 ± 0,20 тыс./мкл. (р<0,05).
В лейкограмме (таб. 2) были отмечены следующие изменения. К 10м суткам исследования возрастало количество базофилов до 2,3 ± 2,33 %, к 30-м суткам оно было близко к данным контрольной группы, и составляло 0,3 ± 0,33 %. Количество эозинофилов во все сроки исследования оставалось примерно одинаковым и составляло 2,0 ± 0,58 %. При исследовании крови подопытных животных отмечалось отсутствие юных палочкоядерных нейтрофилов, хотя в контроле их уровень равен 1,4 ± 0,24 %. На 10-е сутки исследования отмечалось резкое увеличение сегментоядерных нейтрофилов до 56,3 ± 1,76 % (р<0,05) (в контроле 29,4 ± 3,20 %), к 30-м суткам исследования их уровень понизился до 41,3 ± 2,40 % (р .<0,05). Увеличение количества лимфоцитов с 62,8 ± 4,11% в контроле до 71,3 ± 0,67 % отмечалось на 3-и сутки исследования, затем отмечено резкое уменьшение их количества почти в 3 раза, т.е. к 10-м суткам исследования до 27,7 ± 5,04 % (р<0,05) и постепенное восстановление их количества к 30-м суткам до 51,3± 2,96 %. После локального воздействия лазерно-инфракрасным излучением на точки БАТ, уровень моноцитов снижался до 3,7 ± 0,33 %, к 10-м суткам резко возрос (почти в 3 раза) до 13,0 ± 4,04%, к 30-м суткам снизился (в 2 раза) до 6,67 ± 1,20 /о и был близок к исходным данным.
В лейкограмме сдвиг ядра вправо был отмечен во все сроки исследования.
Таким образом, после локального воздействия лазерноинфракрасным излучением в области точек БАТ у кроликов отмечены следующие изменения в периферической крови: увеличение количества лейкоцитов на 3-и сутки, что в основном обусловлено повышением уровня лимфоцитов; на 3-и сутки отмечено резкое увеличение количества эритроцитов и отсутствие молодых форм нейтрофилов.
Вывод. После локального воздействия лазерно-инфракрасным излучением в области точек БАТ у кроликов отмечено увеличение количества лейкоцитов, что в основном обусловлено повышением уровня лимфоцитов, а также резкое увеличение количества эритроцитов и отсутствие молодых форм нейтрофилов. Установлено стимулирующее действие данных факторов на адаптивную и защитную реакции организма.
ЛИТЕРАТУРА: 1. Бударков, В.А. Краткий радиоэкологический словарь/ В.А. Бударков, А.С. Зенкин, В.А. Киршин// Под ред. В.А. Бударкова. - Саранск, Изд-во Мордов. ун-та, 2000. - 256 с. 2. Калязина, Н.Ю. Сравнительные аспекты различных методов стимуляции кроветворения животных/Н.Ю. Калязина, А.В. Добиков, А.С. Зенкин// XXXIV Огаревские чтения. Материалы науч. конф. В 2ч. Ч.2. Естественные и технические науки. - Саранск: Изд-во Мордов. ун-та, 2006. - С. 161 - 162. 3. Методическое пособие по применению магнитноинфракрасного лазерного аппарата «РИКТА-01» (М2В) в ветеринарии. //Под редакцией к.в.н. И.И. Балкового и к.т.н. В.Н. Христофорова.-Москва: ЗАО «МИЛТА-ПКП ГИТ», 2000.-146 с.
ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЙ СТАТУС КРОЛИКОВ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ НЕИОНИЗИРУЮЩИХ ИЗЛУЧЕНИЙ
Зенкин А.С., Калязина Н.Ю.
Резюме
Проведено изучение биологического действия малых доз лазерноинфракрасного излучения в области точек БАТ на показатели крови животных. Установлено стимулирующее действие данных факторов на адаптивную и защитную реакции организма.
HEMATOLOGICAL STATUS EFFECTS IN RABBITS NON-IONIZING RADIATION
Zenkin A.S., Kalyazina N.Y.
Summary
Biological effects of little amount of laser-infrared radiation in biologically active points on blood indices was studied. The stimulating effects
of these factors on adaptive and protective organism reactions was found out.
УДК 619:615.316
БИОЛОГИЧЕСКИЕ ЭФФЕКТЫ КАДМИЯ IN VIVO И IN VITRO
НА ЖИВОТНУЮ КЛЕТКУ
Иванина А.В.
ФГБОУ ВПО «Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана»
Ключевые слова: кадмий, устрицы, жабры, гепатопанкреас,
металлотионеины, белки теплового шока.
Key words: cadmium, oysters, gills, hepatopancreas, metallothioneins, heat shock proteins.
Оптимальной моделью для изучения механизмов действия кадмия являются виргинские устрицы (Crassostrea virginica) - типичные представители эстуарий, в мягких тканях которых этот металл
накапливается. Проводится большое количество исследований по
2+
действию Cd как in vivo, так и in vitro, но к настоящему времени нет сравнительных данных по эффекту одинаковых концентраций CdCl2 на устриц в экспериментах с экспозицией in vivo, так и инкубации клеток с кадмия хлоридом в экспериментах in vitro.
Целью нашего исследования явилось сравнение действия кадмия на ткани [1] и изолированные клетки [2] виргинских устриц Crassostrea virginica.
Материалы и методы. Виргинских устриц (Crassostrea virginica), предварительно адаптированных в течение 12-14 суток, разделили случайным образом на две группы. Особи одной группы, содержавшиеся в искусственной морской воде, служили контролем; другая (опытная) группа устриц помещалась в систему аквариумов, содержащих 50 мкг/л кадмия хлорида.
Клетки изолировали из жабер и гепатопанкреаса контрольной группы устриц и инкубировали с 50 мкг/л кадмия хлорида в течение 4 часов.
Концентрация кадмия в тканях и клетках устриц (контроль и опыт) измерялась с помощью атомно-абсорбционного спектрометра AAnalyst 800 (Perkin Elmer). Экспрессию мРНК металлотионеинов проводили с помощью ПЦР в реальном времени, используя LightCycler 2.0 Real Time ПЦР (“Roche applied Science”) и QuantiTect SYBR Green набор для ПЦР (“Quagen”). Экспрессию белков теплового шока определяли методом
