CC BY
41
- Краснодар, 1958. - 103 с. 6. Павловский Е.Н. //Вестник академии наук СССР, 1939. - № 10. - С. 98. 7. Павловский Е.Н. Природная очаговость трансмиссивных болезней в связи с ландшафтной эпидемиологией зооантропонозов - М., 1964. 8. Сапунов А.Я., Андрюшенко В.Г. //Мат. докл. науч. конф. по проблеме трихинеллеза человека и животных. - Киров, 1992. -С. 177-179.
Novel agents of control of harmful mice rodents. Zozula M.V., Sapunov A.Ya., Petrie O.B., Svezhenec N.V., Vasagova Z.M. Krasnodar Scientific Research Veterinary Institute.
Summary. The high rodenticide efficacy (up to 95%) of liquefied technical ammonia was found applied by special portable devoice for treatment of holes and chelters of mice rodents “GryzNet” showed 95-100% efficacy against mice rodents.
ЭМБРИОТОКСИЧЕСКОЕ ВОЗДЕЙСТВИЕ МИГРИРУЮЩИХ
ЛИЧИНОК СВИНОЙ АСКАРИДЫ НА МЛЕКОПИТАЮЩИХ
Зорина В.В., Бекиш В.Я.
УО « Витебский государственный медицинский университет», Беларусь
Введение. Наиболее частым осложнением геогельминтозов является анемия, которая служит причиной возрастания перинатальной смертности и заболеваемости во всем мире. Специфическое и наиболее эффективное лечение гельминтозов альбендазолом, мебендазолом, ивермектином, и празиквантелем сопровождается возможными эмбрио-, фетотоксическим, мутагенным и тератогенным воздействиями [4].
Цель исследования - изучить эмбриотоксические изменения у беременных самок мышей при миграционном аскаридозе в зависимости от срока заражения.
Материалы и методы. Исследования проведены на 30-ти самках и 10 самцах белых беспородных мышей массой 16-18 г в возрасте 3-4 месяца. Животных помещали в клетки в соотношении 3 самки и 1 самец. Скрещивание проводилось в течение 24 часов. Наступление беременности у самок определяли по гиперемии наружных половых органов и наличию сперматозоидов в мазке из влагалища. Беременных самок разделяли на 3 группы по 10 животных в каждой. Мышам 1-ой группы (интактный контроль) вводили внутрижелудочно 0,2 мл 2 % крахмального геля. Мышей второй и третьей групп заражали внутрижелудочно в дозе 20 инвазионных яиц Ascaris suum на 1 г массы тела на 1-й и 10-й дни беременности соответственно [1]. На 14-й день беременности всех самок умерщвляли путем декапитации, выделяли бедренные кости и матку с эмбрионами. Эмбриотоксические изменения у
181
инвазированных самок второй и третьей групп учитывали на 14-й и 4-й дни миграции личинок аскарид соответственно.
Эмбриотоксические изменения определяли на основании рекомендаций Р.У. Хабриева и соавт. (2005 г.) и Б.И. Любимова и соавт. (1998 г.) по экспериментальному (доклиническому) изучению репродуктивной токсичности новых фармакологических веществ [2, 3]. После выделения маток определяли количество желтых тел, мест имплантации, общее количество эмбрионов, число живых эмбрионов, количество резорбций и мертвых эмбрионов, среднюю массу эмбрионов в помете и краниокаудальный размер при использовании бинокулярной лупы МБС 10 и электронных весов. Основными показателями эмбриотоксичности считали предимплантационную смертность (разность между количеством желтых тел в яичниках и количеством мест имплантации в матке) и постимплантационная смертность (разность между количеством мест имплантации и количеством живых плодов).
Результаты и их обсуждение. В группе интактного контроля предимплантационная гибель составила 1,24 %, а постимплантационная - 7,5 % (табл.).
Таблица
Показатели эмбриотоксичности при миграционном аскаридозе у белых беспородных мышей-самок на 14-й день беременности (M+SD)
Группа исследований Исследуемый''''^^ показатель Контрольная 14-й день инвазии A. suum (заражение на 1-й день беременности) 4-й день инвазии A. suum (заражение на 10-й день беременности)
Количество желтых тел 8,10+1,79 8,20+1,32 8,40+0,97
Количество мест имплантации 8,00+2,00 8,00+1,60 8,00+1,60
Общее количество эмбрионов 7,80+2,04 7,80+1,62 8,00+1,56
Количество живых эмбрионов 7,40+1,58 5,50+1,08* 6,50+1,84
Количество резорбций — 0,40+0,52* —
Количество мертвых эмбрионов 0,40+0,70 2,30+1,16* 1,50+0,85*
Средняя масса эмбрионов в помете 0,30+0,08 0,23+0,03* 0,24+0,02*
Средний краниокаудальный размер 9,98+0,64 9,05+0,75* 9,32+0,36*
Основные показатели эмбриотоксич- ности предимплантационная гибель 1,24 % 2,44 % 4,76 %
постимплантационная гибель 7,5 % 31,25 % * 20,00 %*
Примечание: *- достоверное отличие от данных контрольной группы при Р<0,01-0,05.
182
У зараженных в дозе 20 яиц A. suum на 1 г массы тела мышей с 1-го дня беременности на 14-й день инвазии количество желтых тел, мест имплантаций, общего числа эмбрионов достоверно не отличались от контрольных показателей (табл. 1). Количество живых эмбрионов достоверно снизилось в 1,34 раза по отношению к интактному контролю. У инвазированных самок наблюдался рост числа резорбций, который составил 0,40+0,52. Количество мертвых эмбрионов увеличилось в 5,75 раз в сравнении с контролем. Средняя масса эмбрионов достоверно снизилась в 1,3 раза, а средний краниокаудальный размер уменьшился в 1,1 раза по сравнению с контролем. У зараженных самок предимплантационная гибель не изменилась. Постимплантационная гибель в 4,16 раза достоверно превышала контрольный показатель.
При заражении на 10-й день беременности к 4-му дню миграции личинок аскарид количество желтых тел, мест имплантации, общее число эмбрионов, количества живых эмбрионов и резорбций у мышей не отличались от контрольных показателей (табл. 1). Число мертвых эмбрионов достоверно увеличилось по сравнению с контролем в 3,75 раза. Средняя масса эмбрионов и краниокаудальный размер достоверно в 1,25 и 1,07 раза соответственно были меньше, чем в группе интактного контроля. У инвазированных животных предимплантационная гибель достоверно не изменилась по отношению к контролю. Постимплантационная гибель достоверно увеличилась в 2,66 раза по сравнению с контрольным показателем.
Установлено, что миграция личинок аскарид сопровождается эмбриотоксическим эффектом на 4-й и 14-й дни инвазии, который характеризуется ростом постимплантационной гибели в 2,66 и 4,16 раза соответственно. Постимлантационная гибель возрастала за счет увеличения числа мертвых эмбрионов в среднем в 3,75-5,75 раза соответственно. Эмбриотоксический эффект миграции личинок аскарид также
характеризовался уменьшением средней массы эмбрионов и
краниокаудального размера в среднем в 1,07-1,3 раза по отношению к контрольным показателям. Полученные нами результаты, согласуются с данными J. Blaszkowska [5], которая в 1998 г. установила, что ингибиторы из тканей Ascaris lumbricoides и A. suum обладают эмбритоксическим и тератогенным действиями, достоверно повышая число погибших эмбрионов и увеличивая у них аномалии развития. В дальнейшем автором было показано [6], что внутрибрюшинное введение пепсинового ингибитора из тканей свиной аскариды самкам мышей линии BALB/c c 6-го по 15-й дни беременности сопровождается увеличением постимплантационной гибели за счет роста внутриматочных резорбций, гибели эмбрионов, а также характеризуется снижением массы эмбрионов и оссификации их скелетов.
Литература: 1. Бекиш В.Я. // В кн.: Пятый Республиканский съезд специалистов клинической лабораторной диагностики Беларуси. Материалы съезда. - 1997. - Мн. - С. 140-141. 2. Любимов Б.И. // Ведомости
183
Фармакологического Комитета. - М.: - 1998. - №1. - 20с. 3. Хабриев Р.У. и др. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / 2-е изд., перераб. и доп. - М.: ОАО «Издательство «Медицина», 2005. - 832 с.4. Bialek R., Knobloch J. // Z Geburtshilfe Neonatol. - 1999. - Vol. 203, № 3. - P. 128-133. 5. Blaszkowska J. // Acta Parasitologica. - 1998. - Vol. 43, № 2. - P. 103-108. 6. Blaszkowska J. // Reprod. Toxicol. - 2008. - Vol. 25, № 2. - P. 263-270.
Embryotoxic effects of migrating Ascaris suum larvae in mammals.
Zorina V.V., Bekish V.Ya. Vitebsk State Medical University.
Summary. It had been established that migrating A. suum larvae showed embryotoxic effects in pregnant mice on days 4 and 14 post infection. Postimplantation lethality increased by 2,66 and 4,16 times respectively. Also embryotosic effects manifested in decrease of emryo mass and size values at average by 1,07-1,3 times. A. suum larval metabolites were responsible for those toxic effects.
АССОЦИИРОВАННЫЕ ИНВАЗИИ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА В РАЗНЫХ ПРИРОДНО-КЛИМАТИЧЕСКИХ ПОЯСАХ ДАГЕСТАНА
Зубаирова М.М.
Дагестанская государственная сельскохозяйственная академия
Крупный рогатый скот инвазирован на территории Дагестана Thelazia rhodesi (Desmarest, 1827), Th. gulosa Railliet et Henry, 1910, Th. skrjabini Erchow, 1928, Gongylonema pulchrum Molin, 1857, Setaria labiato-papillosa (Alessandrini, 1838), Filaria gutturosa, Neumann, 1910, F. lienalis (Stiles, 1892) Railliet et Henry, 1910, Stefanofilaria dedoesi Ihle-Landerberg, 1933, S.stilesi Chitwood, 1934 (1,2,3).
В данной работе использованы материалы прижизненного клинического обследования и промывания глаз 600, биопсии кожи 700 животных и посмертных исследований 700 туш и внутренних органов крупного рогатого скота в равнинном, предгорном, горном поясах Дагестана, проведенные 20022008 годы.
Результаты исследований показали, что возбудители телязиоза крупного рогатого скота распространены очагово в равнинной ЭИ 8,3-17,6%, ИИ 2-8 экз., в предгорной соответственно 2,6-19,5% и 3-11 экз. и очень ограниченно в горах до 1500 м н.у.м. 1,0-2,0% и 1-3 экз. Gongylonema pulchrum скот инвазирован в равнинном ЭИ 9,8-38,5%, ИИ 3-47 экз., соответственно в предгорной 5,0-31,6% и 2-28 экз., в горной 2,1-18,3% и 2-19 экз. Setaria labiato-papillosa зарегистрирован у крупного рогатого скота в равнинной, ЭИ
184
