CC BY
36
УДК 619:616.5.001.17
СВ. ЧЕРНИГОВА1, Н.В. ЗУБКОВА1, Ю.В. ЧЕРНИГОВ2, НА. ПОГОРЕЛОВА1
1 Омский государственный аграрный университет им. П.А. Столыпина, Омск
2
Омский аграрный научный центр, Омск
ЭФФЕКТИВНОСТЬ ПРИМЕНЕНИЯ РАНЕВОГО ПОКРЫТИЯ «DERMARM» У ЖИВОТНЫХ С ТЕРМИЧЕСКИМИ ОЖОГАМИ
За последнее десятилетие возрос интерес к применению бактериальной целлюлозы в области медицины. Целью исследования явилось обоснование эффективности применения раневого покрытия «БегтаЯМ» на основе бактериальной целлюлозы в зоне ожогового дефекта по морфологическим изменениям тканевых структур. Исследования проведены в условиях кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства Института ветеринарной медицины и биотехнологии Федерального государственного бюджетного образовательного учреждения «Омский государственный аграрный университет имени П.А. Столыпина», лаборатории биологии с основами молекулярной биотехнологии и генной инженерии, лаборатории биохимического анализа отдела животноводства Омского аграрного научного центра. Анализ морфологических изменений тканевых структур ожоговой раны опытных животных проведен с использованием общепринятых морфометрических и гистологических методов исследования. Опубликованы данные о заживлении ожоговой раны кроликов в условиях эксперимента с применением раневого покрытия «БегтаЯМ» в сравнении с традиционными лекарственными средствами «Пантенол» и мазевой повязкой «Бранолинд Н». Сравнительный анализ репарации тканевых структур проведен после моделирования ожоговой раны, до момента заживления и получены статистически достоверные размеры зон эпителизации. В результате проведенных исследований установлено: на фоне применения раневого покрытия «БегтаЯМ» у животных с термическими ожогами отсутствуют гнойно-некротические процессы в тканевых структурах, происходит полное закрытие поврежденного участка грануляционной тканью в условиях ускоренной эпителизации. Применение для кроликов марлевой повязки с «Пантенолом» и мазевого покрытия «Бранолинд Н» способствует формированию грануляционной ткани с характерной незаконченной эпидермизацией в центральной зоне регенерата.
Ключевые слова: экспериментальная хирургия, термический ожог, раны, животные, регенерация, морфология, бактериальная целлюлоза, раневое покрытие.
Введение
В области тканевой инженерии расширяются возможности создания лекарственных препаратов и средств местной терапии ожоговых ран [1]. Возрос интерес к покрытиям биологического происхождения на основе полисахаридных комплексов [2]. Особое внимание обращено на бактериальную целлюлозу (БЦ) как перспективный материал [3]. Основными преимуществами наноматериалов на основе бактериальной целлюлозы являются способность к проницаемости газов, элиминации раневого отделяемого и низкая токсичность [4-7]. Физико-химические, адсорбционные свойства, химический состав полимера бактериальной целлюлозы, синтезируемой представителями различных видов, могут различаться, поэтому такие исследования необходимы для оценки возможности их использования на практике [8]. Все вышеперечисленное делает разработку и изучение эффективности таких раневых покрытий перспективным научным направлением как для гуманитарной, так и для ветеринарной медицины.
Цель исследования - обоснование эффективности применения раневого покрытия «БегтаЯМ» в зоне ожогового дефекта на основе морфологических изменений тканевых структур.
© Чернигова С.В., Зубкова Н.В., Чернигов Ю.В., Погорелова Н.А., 2019
Объекты и методы
Исследования проведены в рамках выполнения темы НИР АААА-А16-116040610034-2 «Разработка хирургических средств и методов для повышения качества жизни животных и оценки продуктивных свойств» в условиях кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства Института ветеринарной медицины и биотехнологии Омского ГАУ, лаборатории биологии с основами молекулярной биотехнологии и генной инженерии, лаборатории биохимического анализа отдела животноводства Омского аграрного научного центра. Сравнительная оценка ранозаживляющей противоожоговой активности раневых покрытий проведена в эксперименте на 60 кроликах породы серый великан (масса - 4535 ± 49,3 г, возраст -10 мес.). Животные находились в стандартных условиях содержания при свободном доступе к корму и воде. В исследованиях использованы клинические, гистологические, морфометрические и статистические методы.
Экспериментальная часть
Доклинические эксперименты проведены в соответствии с существующими международными принципами Европейской конвенции о гуманном обращении с лабораторными животными [9]. У находящихся в эксперименте животных моделировали ожог III Б степени путем нанесения контактного ожога на предварительно выбритую поверхность кожи в области спины; площадь ожога - 26,5 ± 0,3% от поверхности тела. Ожоговую травму животным наносили после введения анестетика (золетил в дозе 5 мг/100 г). Кроликам на 5-е сут проведена некрэктомия по общепринятой методике. Все животные, участвовавшие в эксперименте, были разделены на 4 группы (15 гол. в каждой). У кроликов контрольной группы после нанесения ожоговой травмы и проведения некрэктомии заживление раны проходило без применения лекарственных препаратов и раневых покрытий. Кроликам опытной группы I на раневую поверхность 2 раза в сутки наносили спрей «Пантенол» с последующим наложением марлевой защитной повязки. В опытной группе II ожоговую рану лечили с применением мазевой повязки «Бранолинд Н» (производство Германия), фиксируя марлевым бинтом, меняя ее ежедневно. У кроликов опытной группы III раневую поверхность закрывали покрытием «БегтаИМ» (на основе бактериальной целлюлозы), разработанным и производимым на кафедре продуктов питания и пищевой биотехнологии агротехнологического факультета Омского ГАУ (рис. 1). Покрытие «БегтаИМ» выкраивали в условиях операционной по полиэтиленовому шаблону, повторяя контур раны (применение - однократное).
Рис. 1. Внешний вид раневого покрытия «БегтаИМ»
Противоожоговую активность исследуемых препаратов оценивали по продолжительности полной эпителизации ожоговой поверхности, а также учитывая выраженность морфологических изменений в области раны на 7, 14, 21, 28-е сут после проведения некрэктомии. Материалом для морфологического исследования служили ткани (кожа, подкожная клетчатка, мышцы), иссеченные из зоны термического повреждения животных всех исследуемых групп в разные сроки эксперимента. Взятие биоптатов проводили эксцизионным методом как по центру, так и по периферии ран. Для этого скальпелем вырезали фрагменты пораженной кожи размером 1 х 2 см вместе с подкожной жировой клетчаткой. Образцы фиксировали в 10%-ном нейтральном забуференном формалине в течение 24 ч. Далее обезвоживали материал в изопропиловом спирте и заливали его в парафиновую смесь. На микротоме изготавливали срезы толщиной 5-7 мкм. Депарафинизированные срезы биоптатов кожи монтировали на предметном стекле и окрашивали гематоксилином-эозином по общепринятым методикам [10]. Чтение гистологических препаратов проводили с использованием микроскопа «Альтами БИО 1» с помощью программы «Альтами Studio». Морфометрические исследования выполнены с применением программы PhotoM 1.21, Microsort Exel на персональном компьютере. По качественным морфометрическим характеристикам оценивали воспалительный процесс: степень деструкции клеток в очаге воспаления, отек, ростовую активность эпидермиса, направление коллагеновых волокон, наличие плазматических клеток, фибробластов, наряду с этим изучали характер васкуляризации ран.
Математическую обработку проводили методами медико-биологической статистики с помощью программы STATISTICA 10. Расчеты - с использованием методов параметрической статистики, при этом вычисляли среднее арифметическое и стандартную ошибку средних значений. Для определения достоверности различий использовали t-критерий Стьюдента и критерий Фишера - Снедекора.
Результаты и их обсуждение
На 3-е сут после моделирования термического ожога при осмотре тканей во всех группах отмечено наличие классических признаков воспаления: гиперемия, отек окружающих тканей и краев раны, мелкоточечные кровоизлияния. Поврежденный участок был покрыт фрагментированным струпом, состоящим их разрушенных и дегенеративно измененных клеточных элементов эпидермиса и дермы. При микроскопическом исследовании кожи в месте ожога у кроликов отмечены выраженный отек всех слоев дермы, деструкция коллагеновых волокон, полнокровие капилляров. В дерме зарегистрировано очаговое скопление лейкоцитов, которые мигрировали в ткань, образуя микроабсцессы. По периферии зоны очага коагуляционного некроза сформирована зона демаркационной линии. По объективным показаниям на 5-е сут всем животным проведена хирургическая некрэктомия.
Динамику регенерации ожоговой раны животных исследуемых групп оценивали по основным критериям: степени отека тканей, времени отторжения «вторичного» струпа над регенерирующей поверхностью кожи, появлению грануляций и краевой эпителизации (табл. 1).
Таблица 1
Динамика клинического течения раневого процесса, M ± m
Очищение раны Появление краевой Заполнение раны
Группа животных от «вторичного» эпителизации, грануляционной
струпа, сут сут тканью, сут
Контрольная группа, n = 15 21,5 ± 0,5 16,7 ± 0,5 51,7 ± 0,6
Опытная группа I, n = 15 13,7 ± 0,8* 9,1 ± 0,4* 43,4 ± 1,3*
Опытная группа II, n = 15 21,8 ± 0,8& 13,2 ± 0,6* & 54,8 ± 0,8* &
Опытная группа III, n = 15 22,8 ± 0,7& 5,8 ± 0,3* & а 36,2 ± 0,7* & а
Примечание. Достоверность различий при сравнении: *р < 0,05 - с контрольной группой; р < 0,05 -с опытной группой I; ар < 0,05 - с опытной группой II.
Как видно из табл. 1, у животных опытной группы III заживление ожоговых ран проходило в среднем в 1,4 раза быстрее, чем в контроле (полное восстановление кожного дефекта отмечено на 36,2 ± 0,7 и 51,7 ± 0,6 (р < 0,05) сутки после травмы соответственно). Установлено, что эпителизация раны по периферии у животных опытной группы III начиналась на 5,8 ± 0,3 сут, это достоверно раньше, чем в опытных группах I и II (9,1 ± 0,4 и 13,2 ± 0,6 (р < 0,05) соответственно). Покрытие «DermaRM» на экссуда-тивном этапе раневого процесса фиксировалось на ране без применения дополнительного перевязочного материала и сохранялось до полного ее очищения от «вторичного» струпа. Этим объясняется более позднее очищение раны от «вторичного» струпа животных опытной группы III по сравнению с контрольными (22,8 ± 0,7 и 21,5 ± 0,5 (р < 0,05) соответственно) (рис. 2, 3). Отметим, что у кроликов опытной группы III слой эпидермиса прорастал под струп по всей пораженной поверхности кожи, на границе с «молодым» эпителием струп совместно с покрытием отделялся от дна раны.
Рис. 2. Отторжение некротизированных тканей (1). Контрольная группа, 7-е сут. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 100
Рис. 3. Однородность слоев дермы (1); формирование коллагеновых волокон (2); миграция фибробластов (3). Опытная группа III, 7-е сут. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 100
Результаты гистологических исследований позволили установить, что регенерация поврежденных тканевых структур животных с применением раневого покрытия «ОегтаКМ» проходила в более ранние сроки по сравнению с животными других опытных и контрольной групп (табл. 2).
Таблица 2
Морфологические изменения кожи кроликов с термическими ожогами на 14-е сут после хирургической некрэктомии, M ± т
Группа животных Толщина, мкм
«Вторичный» струп Лейкоцитарный вал Зона эпителия
Контрольная группа, n = 15 167,6 ± 8,1 62 ± 2,7 24,7 ± 2,1
Опытная группа I, n = 15 275,9 ± 10,2* 57,2 ± 1,5 46,5 ± 1,7*
Опытная группа II, n = 15 255,8 ± 5,9* 83,2 ± 1,8*& 21,2 ± 1,5&
Опытная группа III, n = 15 321,9 ± 8,2*&а 37,5 ± 1,3*&а 67,5 ± 3,5*&а
с опытной группой I; ар < 0,05 - с опытной группой II.
При клиническом осмотре кроликов контрольной группы на 7-е сут после хирургической некрэктомии в зоне термического ожога наблюдали отек подлежащих и окружающих тканей, а также выраженную экссудацию с раневой поверхности. Отделяемое имело вид гнойно-геморрагического экссудата, свидетельствуя о вторичном инфицировании ожоговой раны. При гистологическом исследовании тканей отмечены выраженные экссудативно-некротические процессы. Поверхность центральной зоны ожоговой раны покрыта «вторичными» некротическими массами, в зоне периферии видны микроабсцессы. В дерме сосуды расширены, с выраженным полнокровием, коллагено-вые волокна отечны и расположены хаотично, зарегистрированы признаки периваску-лярного отека. На 14-е сут зарегистрированы отторжение утолщенного «вторичного» струпа по периферии (толщина - 167,6 ± 8,1 мкм) и обильное выделение гнойного экссудата. Под струпом наблюдали небольшой лейкоцитарный вал толщиной 62 ± 2,7 мкм. На фоне воспалительной инфильтрации в дерме - появление участков грануляционной ткани толщиной 24,7 ± 2,1 мкм. На 21-е сут у кроликов контрольной группы отмечали постепенное отторжение плотного коричневого струпа. Слабое развитие процессов эпителизации у этих животных наблюдали в интервале между 35-ми и 42-ми сут, это подтверждено наличием неравномерно утолщенного слоя эпителия. Через 2 мес после моделирования ожога под эпидермальным слоем регистрировали бессосудистую плотную рубцовую ткань.
У животных в опытной группе I на 7-е сут после хирургической некрэктомии в результате осмотра и гистологических исследований ожогового участка наблюдали экссудативно-некротический процесс, выраженный в меньшей степени, чем у животных контрольной группы. Воспалительная инфильтрация локализована как на границе струпа и дна раны, так и в тканях дермы, свидетельствуя об увеличении скорости демаркации зоны некроза от здоровых тканей по сравнению с группой контроля. На 14-е сут в группе I отмечали малодифференцированный струп (толщина - 275,9 ± 10,2 мкм), отграниченный от дермы гистиолейкоцитарным инфильтратом (толщина - 57,2 ± 1,5 мкм), по краю раны умеренную пролиферацию эпидермиса (толщина - 46,5 ± 1,7 мкм). В со-сочковой зоне дермы коллагеновые волокна были расположены беспорядочно и рыхло. Воспалительный отек в дерме менее выражен, тем не менее регистрировали концентрические вакуоли средних размеров. На 21 -е сут наблюдали базальную мембрану эпидермиса с участками утолщения и расслоения, в шиповом слое регистрировали очаговый спонгиоз. На 28-е сут микроскопически в тканях животных исследуемой группы в большинстве наблюдений отмечено, что зона регенерата полностью покрыта эпителиальным пластом неравномерной толщины. Роговой слой эпидермиса интенсивно слу-щивался. Соединительнотканный регенерат состоял частично из плотной рубцовой ткани, а частично из волокнистой соединительной ткани (рис. 4, 5). Производные кожи отсутствовали. Отметим, что в некоторых случаях у животных группы I сохранялась очаговая воспалительная инфильтрация, зафиксировав задержку процессов регенерации.
У кроликов опытной группы II на 7-е сут после некрэктомии на поверхности ожоговых ран наблюдали выраженную серозно-гнойную экссудация. У всех животных установлены изъязвления в центральной части ожоговой раны с выраженной лейкоцитарной инфильтрацией как поверхностных, так и глубоких слоев дермы. В данной группе отличительной особенностью воспалительных проявлений явилось формирование множественных микроабсцессов и некротических изменений в подлежащих тканях кожи. Вместе с тем на 14-е сут эксперимента (по сравнению с контрольной и опытной группой I) у животных этой группы в зоне термического ожога эпителиальный слой кожи не восстанавливался. Лишь с периферии под «вторичным» струпом (толщина -
255,8 ± 5,9 мкм) определяли небольшую зону врастающего эпителия (толщина - 21,2 ± 1,5 мкм). Здесь же наблюдали скопление гнойного экссудата в центральной зоне ожогового участка с распространением на прилегающую краевую грануляционную зону, представленную тонкими соединительнотканными волокнами. На 14-е сут в зоне поражения сохранялся отек и нейтрофильная инфильтрация тканей (толщина - 83,2 ± 1,8 мкм) с распространением некротических изменений на гиподерму, что свидетельствовало о продолжающейся экссудативной фазе воспаления. У кроликов опытной группы II на 21-е сут эксперимента отмечали зону краевой эпителизации, однако центральная зона на значительном протяжении оставалась без эпителиальной выстилки и была покрыта струпом из фибрина, обрывками некротизированных волокнистых структур. На 28-е сут эксперимента вследствие продолжающихся воспалительных процессов центральная зона оставалась без эпителия и была покрыта струпом. У восьми животных группы отмечены участки с отторжением струпа и наличием гнойного экссудата. Под струпом и эпителием располагалась молодая соединительная ткань.
1
\
2
Рис. 4. Пролиферация клеток фибробластического Рис. 5. Формирование сосочкового слоя дермы (2)
дифферона и формирование соединительной ткани (1). Опытная группа I, 28-е сут. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 100
и эпителизация дна раны (1). Опытная группа II, 28-е сут. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 100
Ж
шт
' Mf-v
s VrV * « • Л*»
1
N
m » * t
Рис. 6. Пролиферация клеток эпителиоцитарного дифферона, формирование эпидермиса (1) и сосочкого слоя дермы (2). Опытная группа III, 28-е сут. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. х 100
В отличие от животных других исследуемых групп, у кроликов опытной группы III на 7-е сут после некрэктомии воспалительные явления слабо выражены. Положительная динамика лечения ожогов проявляется отсутствием отделяемого из раны, незначительной гиперемией в пограничной зоне со здоровыми тканями, отсутствием отека. К 7-м сут после хирургической некрэктомии отмечали наличие тонкого коричневого «вторичного» струпа, покрывающего поверхность ожоговой раны. Следует отметить, что покрытие «DermaRM» надежно фиксируется к дну раны, при пальпации зон размягчения не зарегистрированы. У кроликов опытной группы III отмечена краевая эпителизация раны. При микроскопическом исследовании в области дермы наблюдали формирование полноценных коллагеновых волокон, в грануляционной ткани выявлено умеренное количество тонкостенных сосудов. На 14-е сут при применении большинства препаратов отмечено наличие непрерывного равномерного тонкого струпа (толщина -321,9 ± 8,2 мкм) и пролиферирующего слоя эпидермиса (толщина - 67,5 ± 3,5 мкм), который прорастал под струп по всей зоне пораженной поверхности кожи. Нарастание эпителиальных клеток под струпом связываем, вероятно, с миграцией пролиферирую-щего эпидермиса с краев раны. Отделяемое из ран отсутствовало. Ожоговая рана большинства животных была заполнена молодой грануляционной тканью, состоящей из параллельно расположенных многочисленных тяжей коллагеновых волокон. На 21 -е сут струп с раневым покрытием «DermaRM» полностью десквамировался. Дно раны выстлано грануляционной тканью и покрыто слоем уплощенных клеток (рис. 6). В подлежащей дерме отмечено легкое полнокровие венозных сосудов, воспалительная инфильтрация отсутствовала. Окончательная эпителизация заканчивалась к 28-м сут, раневая поверхность имела равномерную бледно-розовую окраску, в дерме коллагеновые и эластические волокна ориентированы преимущественно горизонтально, параллельно поверхности кожи.
Выводы
У животных контрольной группы после моделирования термического ожога III Б степени заживление ожоговой раны протекало по типу неполной репаративной регенерации с длительным отторжением струпа, образованием обширной рубцовой ткани и запоздалой эпителизацией.
Применение для кроликов опытных групп I и II марлевой повязки с «Пантенолом» и мазевого покрытия «Бранолинд Н» способствует формированию грануляционной ткани с характерной незаконченной эпидермизацией в центральной зоне регенерата.
Раневое покрытие «DermaRM» при лечении животных с термическими ожогами способствует сокращению сроков заживления раны в 1,4 раза по сравнению с контролем. Регенерация тканей проходит в условиях отсутствия экссудата, для нее характерны уменьшение зон гиперемии и отека, формирование тонкого равномерного струпа, появление более быстрой пролиферации эпидермального слоя и активный рост грануляционной ткани, идентичной по структуре неповрежденной ткани, частично с отсутствием элементов придатков кожи.
Физико-химические свойства покрытия «DermaRM» способствуют его надежной фиксации на поверхности ожоговой раны на всех этапах лечения, созданию оптимальных условий для регенерации поврежденных тканевых структур.
11 2 1 S.V. Chernigova , N.V. Zubkova , Yu.V. Chernigov , N.A. Pogorelova
1Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin, Omsk
2Omsk Agrarian Research Center, Omsk
Efficiency of the application of the previous coating of "DermaRM" in animals with thermal burns
Over the past decade, the interest in the use of bacterial cellulose in the field of medicine has increased. The purpose of this study was to substantiate the effectiveness of the use of wound dressing "DermaRM" based on bacterial cellulose in the area of the burn defect on the morphological changes in tissue structures. Research was conducted in the conditions of the Department of Diagnostics, Internal Non-communicable Diseases, Pharmacology, Surgery and Obstetrics of the Institute of Veterinary Medicine and Biotechnology of the Federal State Budgetary Educational Institution "Omsk State Agrarian University named after P.A. Stolypin, a laboratory of biology with the basics of molecular biotechnology and genetic engineering, a laboratory of biochemical analysis of the department of animal husbandry of the Omsk Agricultural Research Center. Morphological changes in the tissue structures of a burn wound in experimental animals were carried out using conventional morphometric and histological methods. The article publishes data on the healing of a burn wound in rabbits under experimental conditions using the wound coating "DermaRM" in comparison with traditional medicinal products "Panthenol" and the ointment dressing "Branolind N". A comparative analysis of the repair of tissue structures after the simulation of a burn wound until the moment of healing has been carried out and statistically significant sizes of epithelial zones have been obtained. As a result of the research, it was established that, against the background of the application of the wound coating "DermaRM" in animals with thermal burns, there are no purulent-necrotic processes in tissue structures, the damaged area is completely closed with granulation tissue under conditions of accelerated epithelization. The use of the gauze dressing with "Panthenol" and the ointment coating "Branolind N" to the rabbits contribute to the formation of granulation tissue with characteristic incomplete epidermization in the central zone of the regenerate.
Keywords: experimental surgery, thermal burns, wounds, animals, regeneration, morphology, bacterial cellulose, wound covering.
Список литературы
1. Чернигова С.В. Динамика перекисного окисления липидов при термических ожогах (экспериментальное исследование) / С.В. Чернигова, Ю.В. Чернигов // Современные проблемы развития фундаментальных и прикладных наук : материалы I Междунар. науч.-практ. конф. - Praha, Czech Republic, 2016. - С. 25-30.
2. Современные представления о строении целлюлоз (обзор) / Л.А. Алешина [и др.] // Химия растительного сырья. - 2001. - № 1. - С. 5-36.
3. Mechanical and thermal properties of bac-terial-cellulose-fibrereinforced Mater-Bi® bionano-composite / H. Nainggolan et al. // Nanotechnol. -2013. - 4. - Р. 325-329.
4. Nanofibre based biomaterials - Bioactive nanofibres for wound healing applications / F. Ko et al. // In Proceedings of the 2012 International Conference on Biomedical Engineering and Biotechnology (iC-BEB). - Macau, Macao, China, 2012. - P. 389-392.
5. Biosynthesis and Characterization of Nano-cellulose-Gelatin Films / S. Taokaew et al. // Materials. -2013. - № 6. - P. 782-794.
6. Nanocomposite prepared by immobilising gelatin and hydroxyapatite on bacterial cellulose nanofibres / J. Wang et al. // Micro Nano Lett. - 2011. -№ 6. - P. 133-136.
7. Местное лечение ран и раневой инфекции по результатам анонимного анкетирования хирургов
References
1. Chernigova S.V. Dinamika perekisnogo okislenija lipidov pri termicheskih ozhogah (jeksperi-mental'noe issledovanie) / S.V. Chernigova, Ju.V. Chernigov // Sovremennye problemy razvitija fundamen-tal'nyh i prikladnyh nauk : materialy I Mezhdunar. nauch.-prakt. konf. - Praha, Czech Republic, 2016. -S. 25-30.
2. Sovremennye predstavlenija o stroenii cel-ljuloz (obzor) / L.A. Aleshina [i dr.] // Himija rasti-tel'nogo syr'ja. - 2001. - № 1. - S. 5-36.
3. Mechanical and thermal properties of bac-terial-cellulose-fibrereinforced Mater-Bi® bionano-composite / H. Nainggolan et al. // Nanotechnol. -2013. - № 4. - P. 325-329.
4. Nanofibre based biomaterials - Bioactive nanofibres for wound healing applications / F. Ko et al. // In Proceedings of the 2012 International Conference on Biomedical Engineering and Biotechnology (iC-BEB). - Macau, Macao, China, 2012. - P. 389-392.
5. Biosynthesis and Characterization of Nano-cellulose-Gelatin Films / S. Taokaew et al. // Materials. -2013. - № 6. - P. 782-794.
6. Nanocomposite prepared by immobilising gelatin and hydroxyapatite on bacterial cellulose nano-fibres / J. Wang et al. // Micro Nano Lett. - 2011. -№ 6. - P. 133-136.
7. Mestnoe lechenie ran i ranevoj infekcii po rezul'tatam anonimnogo anketirovanija hiTurgov Rossii.
России. Раны и раневые инфекции / В.В. Привольнев [и др.] // Журнал имени проф. Б.М. Костюченка. -2016. - № 3(1). - С. 19-24.
8. Чернигова С.В. Динамика метаболизма коллагена при термических ожогах / С.В. Чернигова, Ю.В. Чернигов // Актуальные вопросы ветеринарной хирургии : материалы Междунар. науч.-практ. конф., посвящ. Дню Российской науки. -Омск, 2016. - С. 191-196.
9. Хабриев Р.У. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Р.У. Хабриев. - М. : Медицина, 2005. - 354 с.
10. Алексеева Н.Т. Гистохимическая характеристика эпидермиса при заживлении кожных ран под действием различных региональных факторов / Н.Т. Алексеева, Д.Б. Никитюк, С.В. Клочкова // Крымский журн. экспериментальной и клинической медицины. - 2016. - № 6(3). - С. 10-14.
Чернигова Светлана Владимировна, д-р
вет. наук, доц., проф. кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства факультета ветеринарной медицины, Омский ГАУ, [email protected]; Зубкова Наталья Викторовна, аспирант кафедры диагностики, внутренних незаразных болезней, фармакологии, хирургии и акушерства факультета ветеринарной медицины, Омский ГАУ, [email protected]; Чернигов Юрий Владимирович, д-р вет. наук, заведующий отделом животноводства, глав. науч. сотр., Омский АНЦ, [email protected]; Погорелова Наталья Анатольевна, канд. биол. наук, доц. кафедры продуктов питания и пищевой биотехнологии агротехно-логического факультета, Омский ГАУ, [email protected].
Rany i ranevye infekcii / V.V. Privol'nev [i dr.] // Zhur-nal imeni prof. B.M. Kostjuchjonka. - 2016. - № 3(1). -S. 19-24.
8. Chernigova S.V. Dinamika metabolizma kollagena pri termicheskih ozhogah / S.V. Chernigova, Ju.V. Chernigov // Aktual'nye voprosy veterinarnoj hirurgii : materialy Mezhdunar. nauch.-prakt. konf., posvjashh. Dnju Rossijskoj nauki. - Omsk, 2016. -S. 191-196.
9. Habriev R.U. Rukovodstvo po jeksperimen-tal'nomu (doklinicheskomu) izucheniju novyh farma-kologicheskih veshhestv / R.U. Habriev. - M. : Medicina, 2005. - 354 s.
10. Alekseeva N.T. Gistohimicheskaja harak-teristika jepidermisa pri zazhivlenii kozhnyh ran pod dejstviem razlichnyh regional'nyh faktorov / N.T. Alekseeva, D.B. Nikitjuk, S.V. Klochkova // Krymskij zhurn. jeksperimental'noj i klinicheskoj mediciny. -2016. - № 6(3). - S. 10-14.
Chernigova S.V., Doc. Vet. Sci., Prof., Omsk SAU, [email protected]; Zubkova N.V., Postgraduate Student, Omsk SAU, [email protected]; Chernigov Yu.V., Doc. Vet. Sci., Omsk Agrarian Research Center, [email protected]; Pogorelova N.A., Cand. Biol. Sci., Ass. Prof., Omsk SAU, [email protected].
УДК 619:616.34-008.314.4:636.2:616-053:591.11:591.4 А.А. ЭЛЕНШЛЕГЕР, А.В. ТРЕБУХОВ
Алтайский государственный аграрный университет, Барнаул
ВЛИЯНИЕ ПРОБИОТИЧЕСКОГО ПРЕПАРАТА «ВЕТОМ 2» НА КЛИНИКО-БИОХИМИЧЕСКИЙ СТАТУС ТЕЛЯТ
Традиционно в терапии животных с патологией желудочно-кишечного тракта применяются хи-миотерапевтические средства. При этом их использование может привести к подавлению части микрофлоры, обеспечивающей защитные функции и не позволяющей потенциальным патогенам избыточно колонизировать кишечник. Сегодня выпойка пробиотиков является эффективным методом восстановления баланса кишечных микроорганизмов. Цель исследований - изучить клинический и биохимический статус больных диспепсией телят, а также влияние препарата «Ветом 2» на организм телят во время реабилитации после антибиотикотерапии. Исследования велись в учхозе «Пригородное» на телятах черно-пестрой породы в осенне-зимний период. Были отобраны телята в возрасте 2-3 суток, здоровые и боль-
© Эленшлегер А.А., Требухов А.В., 2019
