CC BY
50
Полученные показатели как по регионам, так и по возрастным группам оказались высокими. Число сывороток с антителами I типа в целом по обследованной группе достигало 98,8%. Несколько ниже эти показатели были в Чеченской Республике, Ярославской области, Республике Алтай. В остальных 5 обследованных регионах количество иммунных сывороток достигало 99-100%. Необходимо отметить достаточно высокие показатели средней геометрической титра антител - средний показатель 7,8
Оценивая показатели коллективного иммунитета в отдельных возрастных группах, необходимо заметить, что количество иммунных сывороток в 4 группах приближалось к 100%, и только в группе взрослыех оно было чуть ниже - 96,9%. Средняя геометрическая титра была около 8 во всех возрастных группах, кроме группы взрослыех, в которой этот показатель равнялся 6,9
Состояние коллективного иммунитета к полиовирусу II типа представлено в табл. 2.
Во всех обследованных регионах доля сывороток с антителами к полиовирусу II типа составляла от 93,8% (Воронежская область) до 98,4-100% в остальных обследованных регионах при среднем показателе 98,4%. Средняя геометрическая титра антител колебалась в пределах 6,6-8,5 к^2 при среднем показателе 7,5
Большая доля иммунных сывороток установлена практически во всех возрастных группах, она приближалась к 100%. Средняя геометрическая титра антител колебалась от 6,8 (взрослые) до 8,0 (дети 1-2 и 3-4 лет).
Состояние коллективного иммунитета к полиовирусу III типа представлено в табл. 3.
Подобно состоянию коллективного иммунитета к полио-вирусам I и II типов, показатели коллективного иммунитета к полиовирусу III типа были достаточно высокими во всех обследованных регионах: процент серопозитивных сывороток колебался в пределах 96,9-100 при средней величине 98,6%. Средняя геометрическая титра антител составила 7,4
В отдельных возрастных группах количество сывороток с антителами составляло 98,8 - 99,8%. Только в группе взрослых оно снижалось до 96,7%. Во всех возрастных группах отмечены достаточно высокие показатели средней геометрической титра антител: 6,6-7,6
Обсуждение
Проведенные исследования убедительно показали, что число иммунных лиц как в обследованных регионах, так и в отдельных возрастных группах было высоким, приближающимся к 100 %. Высок показатель и средней геометрической титра антител, величина которого никогда не опускалась ниже 6 Следовательно, качество вакцинопрофилактики во всех изученных регионах хорошее.
Случай заноса дикого полиовируса в Россию в 2010 г. указывает на то, что вакцинопрофилактика должна оставаться на высоком уровне с полным охватом детей всех возрастов, подлежащих вакцинации.
Заключение
Оценка состояния коллективного иммунитета к полиомиелиту в 8 регионах России свидетельствовала о его высоких показатели как во всех обследованных регионах, так и в отдельных возрастных группах.
Поступила 16.09.14
©КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2015 УДк 578.832.1:578.53].08
Дешева Ю. А., Смолоногина Т. А., Руденко Л. Г.
Доклиническое изучение реассортантного вакцинного штамма вируса гриппа А/17/перепел/Гонконг/97/84 (^N2)
ФГБУ «НИИ экспериментальной медицины» СЗО РАМН, 197376, г. Санкт-Петербург
в настоящем исследовании изучены свойства реассортантного штамма вируса гриппа А/17/перепел/ гонконг/97/84 (H9N2), подготовленного в отделе вирусологии ФгБУ «нииЭМ» СЗО РАМК вакцинный кандидат на основе донора аттенуации А/Ленинград/134/17 (№N2), содержащий гемагглютинин (нА) и нейрами-нидазу (Па) апатогенного птичьего вируса гриппа А(Н9П2) линии G1, проявлял свойства температурочув-ствительности и холодовой адаптации. При интраназальном введении мышам вакцинный штамм А(Н9П2) был аттенуированным, не размножался в легких, но хорошо репродуцировался в носовых ходах, вызывая выработку поствакцинальных антител. вакцинный штамм А(Н9№) был иммуногенен при введении мышам в виде как интраназальной живой гриппозной вакцины (жгв), так и инактивированной гриппозной вакцины (игв). интраназальное введение жгв подтипа A(H9N2) стимулировало выработку локальных антител, что приводило к снижению репродукции в легких заражающего вируса другой антигенной разновидности G9.
К л ю ч е в ы е с л о в а: вирус птичьего гриппа; гриппозная вакцина.
Для цитирования: Вопросы вирусологии. 2015; 60(4): 40-44.
Desheva Yu.A., Smolonogina T.A., Rudenko L.G.
A preclinical trial of the reassortant influenza virus vacc^ strain A/17/Quail/Hong
Kong/97/84 (H9N2)
Institute of Experimental Medicine, 197376, St. Petersburg, Russia in this work, we examined the reassortant influenza virus strain A/17/Quail/Hong Kong/97/84 (H9N2) prepared at the Virology Department, institute of Experimental Medicine, Russian Academy of Medical sciences. The A/ Leningrad/134/17 (H2N2)-based vaccine candidate contained hemagglutinin and the neuraminidase from the nonpathogenic avian influenza A virus A(H9N2) of the G1 antigenic lineage. The vaccine candidate showed the ts-properties and cold adaptation. When administered intranasally to mice, the vaccine strain A(H9N2) was attenuated. it did not multiply in the lungs but was reproduced well in the nasal cavity, causing the production of the post-vaccination antibody. The A/17/Quail/Hong Kong/97/84(H9N2) virus was immunogenic when administered to mice as a LAIV intranasally or as a iiV intramuscularly. intranasal A(H9N2) LAIV stimulated local production of the antibodies, which resulted in reduction in lung titers of the challenge virus G9.
Key words: avian influenza virus; influenza vaccine.
Gtation: Voprosy virusologii. 2015; 60(4): 40-44. (In Russ.)
For correspondence: Yuliya Desheva, MD,PhD, DSc; e-mail: desheva@mail.ru
Received 17.03.14
Для корреспонденции: Дешева Юлия Андреевна, д-р мед. наук, вед.науч.сотр.; e-mail: desheva@mail.ru
Вирусы птичьего гриппа подтипа А(Н9№) характеризуются высокой способностью передаваться от птиц к домашним животным и человеку в связи с легким возникновением вариантов, обладающих сродством к сиаловым рецепторам млекопитающих [1]. В сероэпидемиологических исследованиях, проведенных в Китае, выявлены антитела к вирусам А(Н9№) у 15% работников птицефабрик [2]. Вирусы А(Н9№), выделенные от людей с симптомами респираторной инфекции в Гонконге и Китае с 1997 по 2009 г [3], принадлежали в основном к антигенной линии G1 в отличие от других вирусов А(Н9№), выделенных от свиней и домашней птицы и относящихся к антигенной разновидности G9. Вирусы А(Н9№), вызвавшие случаи заболевания у людей, не являлись высокопатогенными (ВП), т. е. не обладали высокорасщепляемым гемагглютинином (НА) и не были высоковирулентными для домашней птицы [4]. Тем не менее молекулярно-генетический анализ генов, кодирующих внутренние белки вирусных изо-лятов А(Н9№), показал их сходство с ВП вирусами А(Н5№), вызвавшими вспышку среди людей в 1997 г [5]. Филогенетический анализ показал, что после 1994 г. евразийские вирусы А(Н9№) в результате процессов генетической реассортации с участием вирусов G1 и G9, циркулирующих среди дикой и домашней птицы, сформировали уже несколько антигенных линий. В последнее время в Китае доминирующими становятся линии 119.4.2.5, h9.4.2.6, представленные изолятами А(Н9№), полученными в 2005-2011 гг от кур. В то же время продолжается глобальное распространение линий 19.3.3, 19.4.1 и 19.4.2, представленных вирусами А(Н9№) А/утка/Хоккайдо/26/99, Аперепел/ГонконгЮ1/97 и А/курица/ГонконгЮ9/97, при этом две последние линии могут представлять наибольшую угрозу для здоровья населения по сравнению с другими [6]. Поскольку вирусы птичьего гриппа подтипа Н9 передаются человеку, имеют генетическое сходство с ВП вирусами А(Н5№) и широко распространены в Азии, Европе и на Ближнем Востоке, разработка вакцин, защищающих человека от гриппа подтипа А(Н9№), была включена ВОЗ в общий план предпандемиче-ской подготовки [7]. В нашей стране в доклинических и клинических испытаниях ранее были изучены вакцинные штаммы против потенциально пандемического и пандемического гриппа подтипов Н1, Н5 и Н7, полученные на основе донора аттенуации А/Ленинград/134/17/57 (Н2№) [8, 9]. Настоящее исследование посвящено изучению биологических свойств вакцинного штамма А(Н9№), разработанного на основе донора аттенуации А/Ленинград/134/17/57 (Н2№) и содержащего гены поверхностных гликопротеинов НА и нейраминида-зы (КА) от вируса птичьего гриппа А/перепел/ГонконгЮ1/97 (Н9Ш).
Материалы и методы
Вирусы. В работе были использованы холодоадаптирован-ный (ХА) донор аттенуации А/Ленинград/134/17/57 (Н2№) [Лен/17] из коллекции отдела вирусологии ФБГУ «НИИЭМ» СЗО РАМН; реассортантный штамм А/17/перепел/Гон-конг/97/84 (Н9№) [Лен17/Н9], полученный методами классической генетической реассортации в развивающихся куриных эмбрионах (РКЭ) на основе донорского штамма Лен/17 по описанным ранее методикам [10]. Реассортант унаследовал гены НА и КА от птичьего вируса и 6 генов негликози-лированных белков от донора аттенуации Лен/17 (формула генома 6:2), что было подтверждено рестрикционным анализом ДНК-копий генов внутренних и неструктурных белков и секвенированием генов НА и КА. В исследовании также использовали вирусы гриппа подтипа А(Н9№), выделенные в Гонконге от птиц и человека: А/перепел/ГонконгЮ1/97 (Н9№) [Н9№-дт], А/Гонконг/1073/99 (Н9Ш), А/курица/ ГонконгЮ9/97 (Н9№), предоставленные Центром по контролю и предупреждению заболеваний, США. Вирусы культивировали в аллантоисной полости 10 - 11-дневных РКЭ: реассортант Лен17/Н9 и родительский штамм Лен/17 при 34°С в течение 48 ч, дикие вирусы подтипа А(Н9№) при 37°С в течение 24-26 ч.
Оценка прививочных свойств реассортантного вируса Лен17/Н9 на мышах
Патогенность изучали на самках мышей линии СВА в
возрасте 10 - 12 нед (питомник Рапполово, Ленинградская область). Мышей под легкой эфирной анестезией заражали интраназально 0,05 мл вируссодержащей аллантоисной жидкости с 6 lg или 7 lg ЭИД50 реассортантного вируса или 6 lg ЭИД50 одного из родительских штаммов. В контрольной группе животным вводили 0,05 мл стерильного фосфатного буферного раствора (ФБ). Эвтаназию проводили согласно «Правилам проведения работ с использованием экспериментальных животных» (приказ № 266 МЗ РФ от 19.06.2003). Репродукцию вирусов определяли в легких и носовых ходах мышей (по 3 из каждой группы) на 3-и сутки по показателям титрования суспензии органов в РКЭ начиная с разведения 1:10 для легких и 1:2 для носовых ходов.
Подготовка инактивированного антигена для парентеральной иммунизации. Вирус очищали и концентрировали по описанным методикам [11], после чего вирусную суспензию с содержанием 1 мг/мл (40 000 ГАЕ/мл) смешивали с предварительно разведенным в 40 раз 37% раствором формальдегида в соотношении 100:1 с последующей экспозицией не менее 3 сут при 4°С. Для определения полноты инактивации вирус в неразведенном виде, а также разведенный в 10 и 100 раз инокулировали в аллантоисную полость 10-дневных куриных эмбрионов и инкубировали в течение 2 сут при 34°C, после чего содержание вируса определяли в реакции гемаг-глютинации.
Изучение иммуногенности. Группы мышей иммунизировали реассортантным вирусом Лен17/Н9 интраназально в дозе 7 lg ЭИД50 или внутримышечно в дозе 10 мкг/0,1 мл. Часть животных иммунизировали последовательно прототипами живой (ЖГВ) и инактивированной гриппозной вакцины (ИГВ) с интервалом 21 день. В контрольных группах животным вводили родительские вирусы Лен/17 или Н9№-дт в дозе 6 lg ЭИД50 или ФБ.
Сыворотки крови и смывы из носовых ходов мышей были получены через 4 нед после последней иммунизации. Реакцию торможения гемагглютинации (РТГА) и реакцию микронейтрализации (РМН) с сыворотками проводили с использованием в качестве антигена реассортантного вируса Лен17/Н9. Реакцию нейтрализации выполняли, как описано ранее [12], за исключением того, что спектрофотометрию планшетов после окрашивания 0,2% спиртовым раствором кристаллического фиолетового проводили при длине волны 630 нм. Иммуноферментный анализ (ИФА) для определения вирус-специфических IgG и IgA выполняли по описанной методике [12] в 96-луночных планшетах («Sarstedt, Inc.», Ньютон, Северная Каролина, США), которые предварительно сенсибилизировали 100 ГАЕ/0,1 мл цельного очищенного вируса Лен17/Н9. Результаты выражали в десятичных логарифмах величины, обратной конечному разведению. За конечное разведение принимали наивысшее разведение образца, дающее оптическую плотность при длине волны 490 нм, превышающую среднюю оптическую плотность в контрольных образцах более чем на 3 стандартных отклонения.
Экспериментальное заражение. Животным, предварительно иммунизированным по схемам ЖГВ-плацебо и ИГВ-ЖГВ, а также контрольным интактным животным вводили интраназально по 0,05 мл вируса А/курица/ГонконгЮ9/97 (H9N2) в заражающей дозе 7 lg ЭИД50 Репродукцию вирусов определяли в легких и носовых ходах мышей на 3-и сутки после заражения.
Статистические методы. При анализе полученных результатов определяли среднегеометрические титры, средние величины и среднеквадратическое отклонение (M ± СКО). Статистическую значимость различий устанавливали с помощью непараметрического критерия Манна - Уитни при критическом уровне значимости 0,05.
Результаты и обсуждение
В процессе отбора потенциальных кандидатов для подготовки вакцинных штаммов против возможных пандемий будущего была произведена оценка репродукции в куриных эмбрионах различных штаммов вируса птичьего гриппа подтипа Н9. Для определения верхней ограничительной температуры были изучены характеристики репродукции в
12-,
с; 5 10-
о ю 8-
сТ
X 6-
СО
О) 4-
2-
37 С 40 С
Ц Перепел/Гонконг |
41 С Гонконг/1073/99
^ Курица/Гонконг
Определение верхней ограничительной температуры инкубации в куриных эмбрионах вирусов гриппа подтипа А(Н9№), выделенных от птиц и человека. По оси абсцисс - показатели температурных режимов инкубации исследуемых вирусов А/перепел/Гонконг/О1/97 (Н9К2), А/Гонконг/1073/99 (Н9К2), А/курица/Гонконг/О9/97 (Н9К2); по оси ординат - показатели 50% эмбриональной инфекционной дозы (ЭИД), выраженные в 1ой0.
РКЭ при различных температурах следующих вирусов: А/ перепел/Гонконг/01/97 (Н9Ш), А/Гонконг/1073/99 (Н9№), А/курица/Гонконг/О9/97 (Н9К2). Показана высокая степень температуроустойчивости всех исследованных вирусов: показатели инфекционности при 40°С практически не отличались от таковых при 37°С (см. рисунок), и только при повышении температуры до 41°С репродукция указанных штаммов снижалась.
При изучении фенотипических свойств вакцинного кандидата Лен17/Н9 были продемонстрированы высокий уровень репродукции при пониженнии температуры инкубации до 25°С и практически полное отсутствие инфекционности при 40°С, что свидетельствовало о приобретении реассортант-ным вирусом Лен17/Н9 свойств температурочувствитель-ности (/^-фенотип) и холодовой адаптации (са-фенотип), являющихся маркерами аттенуации (табл. 1).
При интраназальном введении мышам линии СВА в заражающей дозе 6 - 7 ^ ЭИД50 реассортант Лен17/Н9 репродуцировался в носовых ходах в титрах 1,1 - 3,5 ^ ЭИД50/мл соответственно и не размножался в легочной ткани, где температура существенно выше, чем в носовых ходах (табл.2). Выделенный от птиц в 1999 г. вирус А(Н9К2) дикого типа размножался в легких мышей без предварительной адаптации в среднем титре 4,9 ^ ЭИД50/мл. При этом средняя потеря массы тела подопытных животных на 3 - 5-е сутки после инфекции диким вирусом А(Н9К2) не превышала 4% (данные не показаны), что подтверждает полученные ранее сведения о низкой патогенности для мышей вирусов птичьего гриппа подтипа А(Н9К2) [13].
Однократное интраназальное введение вакцинного штамма Л(Н9№) мышам вызывало образование нейтрализующих сывороточных антител к гомологичному вирусу (табл. 3). При этом уровни поствакцинальных антигемагглю-тинирующих антител не отличались от таковых в контрольной группе интактных животных, однако в ИФА выявлено наличие в поствакцинальных носовых смывах мышей иммуноглобулинов - и ^А к вакцинному вирусу. Интраназальное введение родительского вируса Лен/17 подтипа А(Н2Ы2) также вызывало формирование локальных ^А, реагирующих с вирусом А(Н9К2). Достоверное увеличение уровней поствакцинальных антигемагглюти-нирующих антител было достигнуто только в группах, включающих ИГВ (см. табл. 3). Иммунизация вакцинным штаммом А/17/пере-пел/Гонконг/97/84 (Н9№), принадлежащим к антигенной линии О1, создавала 25-50% за-
щиту от инфекции вирусом другой антигенной разновидности А/курица/Гонконг/О9/97 (Н9№) даже при отсутствии перекрестно-реагирующих антигемагглютинирующих антител (табл. 4).
Таким образом, представленный вакцинный кандидат А/17/перепел/Гонконг/97/84 (Н9№) с формулой генома 6:2 характеризовался высоким уровнем репродукции в куриных эмбрионах, температурочувствительностью, адаптацией к пониженной температуре культивирования, характерной для аттенуированного донорского штамма. Реассортантный вакцинный штамм, содержащий НА и КА апатогенного птичьего вируса гриппа А(Н9№), был аттенуированным для мышей, поскольку не размножался в легких, однако хорошо репродуцировался в носовых ходах, вызывая выработку поствакцинальных антител. Штамм А/17/перепел/ Гонконг/97/84 (Н9№) был иммуногенен при введении мышам в виде как ЖГВ интраназально, так и ИГВ внутримышечно. Интраназальное введение ЖГВ подтипа А(Н9№) стимулировало выработку локальных антител, что приводило к снижению репродукции в легких заражающего вируса другой антигенной разновидности (О9).
Вакцина, разрабатываемая против потенциально пандемических вирусов гриппа, должна обладать такими качествами, как возможность быстрой наработки вирусного материала, простота транспортировки, простота введения прививаемым контингентам и наиболее широкий спектр действия против различных антигенных разновидностей в пределах одного подтипа. ЖГВ в полной мере удовлетворяет этим требованиям, поскольку вводится интрана-зально, производится на основе высокопродуктивных ХА донорских штаммов, выпускается в лиофилизированном виде и стимулирует различные механизмы иммунного ответа, включая локальные ^А, цитотоксические CD8+-Т-лимфоциты, неспецифические факторы иммунитета (интерферон, КК-клетки) [14, 15]. В настоящем исследовании был подробно изучен созданный нами вакцинный штамм на основе вируса птичьего гриппа А/перепел/Гонконг/О1/97 (Н9К2), представляющего собой эталонный штамм антигенной линии О1.
За рубежом ранее были подготовлены и изучены вак-
Таблица 1
Репродукция реассортанта А/17/перепел/Гонконг/97/84 (Ы9П2) и родительских вирусов при различной температуре культивирования в куриных эмбрионах
Вирус Характеристика Репродуктивная активность, средние титры, ^ ЭИД50/мл ± СКО, при температуре инкубации:
34°С 25°С 40°С
А/17/перепел/Гонконг/97/84 (Н9Ш)
А/Ленинград/134/17/57 (Н2ГО)
А/перепел/Гонконг/6/97 (Н9Ш)
Вакцинный кандидат 9,8 ± 0,5 7,0 ± 0,2 1,8 ± 0,3
ХА донорский штамм
Апатогенный вирус птичьего гриппа
9,5 ± 0,3 7,3 ± 0,2
1,5 ± 0,0
8,6 ± 0,3 1,5 ± 0,0 9,2 ± 0,2
2
Таблица
Репродукция реассортантного вируса гриппа А/17/перепел/Гонконг/97/84 (Ы9П2) и родительских штаммов на 3-и сутки после интраназального введения
мышам
Препарат Характеристика Заражающая доза, >8 ЭИД50 Титры вируса в гомогенатах органов, М ± СКО 18 ЭИД50/мл
легкие (п = 3) носовые ходы (п = 3)
Лен17/Н9 Вакцинный 6 1,5 ± 0,0 1,1 ± 0,3
кандидат 7 1,5 ± 0,0 3,8 ± 0,2
Лен/17 ХА донорский 6 2,3 ± 0,5 2,5 ± 0,3
штамм
Н9Ш-дт Апатогенный вирус 6 4,9 ± 0,5 1,8 ± 0,5
птичьего гриппа
Таблица 3
Выработка сывороточных и локальных антител через 28 дней после иммунизации мышей реассортантным вакцинным штаммом А/17/перепел/Гонконг/ 97/84 (Н9П2) в
виде ЖГВ или ИГВ*
Число Поствакцинальные антитела
Препарат живот- сывороточные, локальные, М ± СKO log10
ных в СГТ
1-я иммунизация 2-я иммунизация группе РТГА РМН ИФА
IgG | IgA
ЖГВ Лен17/Н9 ФБ 5 5,0 9,1 1,6 ± 0,9 2,6 ± 0,7**
ИГВ Лен17/Н9 ФБ 6 15,9 21,8*** 1,0 ± 0,5 1,6 ± 0,7
ШШ-дт ФБ 5 6,6 11,9 1,5 ± 0,5 1,6 ± 0,4
Лен/17 ФБ 5 5,0 5,0 1,4 ± 0,4 2,4 ± 0,7#
ИГВ Лен17/Н9 ЖГВ Лен17/Н9 5 11,5 13,2 1,4 ± 0,5 1,5 ± 0,8
ЖГВ Лен17/Н9 ИГВ Лен17/Н9 5 20,0 17,4 1,2 ± 0,3 1,3 ± 0,4
Контроль (ФБ) ФБ 5 5,0 5,0 1,0 ± 0,0 1,0 ± 0,0
П р и м е ч а н и е. * - значения р даны по сравнению с аналогичными показателями в
группе интактных животных; ** - р = 0,005;
- р = 0,005; # - р = 0,035.
Таблица 4
Защита мышей, иммунизированных вакцинным штаммом А/17/перепел/Гонконг/97/84 (Н9П2), от реинфекции антигенно отличающимся вирусом птичьего гриппа А/курица/
Гонконг^9/97 (Н9Ш)
Препарат Поствакцинальные антитела к штамму А/курица/Гонконг/ G9/97 (H9N2) в РТГА, СГТ Выделение заражающего вируса из легких Выделение заражающего вируса из носовых ходов
выделено/всего средние титры вируса ± СКО lg ЭИД50/мл выделено/всего средние титры вируса ± СКО lg ЭИД50/мл
ЖГВ < 5,0 3/4 4,2 ± 2,0 2/4 1,1 ± 0,3
ИГВ-ЖГВ < 5,0 2/4 3,1 ± 1,8 2/4 1,3 ± 0,5
Контроль < 5,0 4/4 6,9 ± 0,6 4/4 2,0 ± 0,8
ного реагирования вирусов А(Н9К2) с антителами к современным эпидемическим вирусам гриппа по сравнению с другими вирусами птичьего гриппа, такими как Н5 или Н7 [19].
В нашем исследовании представлены результаты первого опыта по созданию отечественного вакцинного штамма для ЖГВ подтипа А(Н9№). Получено еще одно экспериментальное подтверждение способности донора аттенуации Лен/17 при скрещивании с температуроустойчивыми вирусами птичьего гриппа передавать признаки аттенуации реассортантным штаммам при сохранении последними иммуногенности и протективной активности. В целом представленные результаты свидетельствуют о том, что вакцинный кандидат А (Н9К2) может быть использован для производства как живой, так и инактивирован-ной гриппозных вакцин, поскольку не только обладает высокой репродуктивной активностью в РКЭ, но и, как показано в эксперименте на мышах, способен индуцировать иммунный ответ при интраназальном введении в виде прототипа ЖГВ и парентеральном введении в виде прототипа ИГВ.
ЛИТЕРАТУРА (п.п. 2-8, 11 см. REFERENCES )
19
(ФБ)
цинные штаммы на основе рекомендованных ВОЗ вирусов А/Гонконг/1073/99 (Н9№) и А/курица/ГонконгЮ9/97 (Н9№) [16, 17]. В доклинических и клинических испытаниях инактивированных вакцин на основе вируса А/ Гонконг/1073/99 (Н9№) было обнаружено, что субъединичная вакцина значительно уступала в иммуногенности цельновирионной. У 40% лиц до 1970 года рождения наблюдалась перекрестная реакция предвакцинальных сывороток с вирусом А(Н9К2), что может объясняться ранее перенесенной инфекцией, вызванной вирусами А(Н2К2), период циркуляции которых завершился в конце 60-х годов ХХ века. Поствакцинальные титры антигемагглюти-нирующих и нейтрализующих антител в этой возрастной группе достигали протективных значений (> 1:40) при однократном введении субъединичной вакцины, в то время как среди большинства людей более молодого возраста, привитых двукратно субъединичным или цельновирион-ным препаратом, интенсивность иммунного ответа была крайне низкой [16].
В клинических испытаниях была также изучена ЖГВ на основе американского донора аттенуации А/Энн Арбор/6/60(Н2№) и штамма А/курица/ГонконгЮ9/97 (Н9№) [18]. Была показана безвредность препарата; 4-кратные серо-конверсии антигемагглютинирующих антител после двукратного интраназального введения в дозе 8,2 ^ ТЦИД50 наблюдались у 58% лиц, которые были серонегативными до прививки. Отмечено, что хотя участниками исследования были лица не старше 1968 года рождения, среди них около 30% до прививки были серопозитивными к штамму А(Н9№), что объясняется авторами перекрестным реагированием антител, приобретенных к современным сезонным вирусам гриппа. Авторы делают вывод о необходимости обследования прививаемых контингентов до иммунизации вакциной А(Н9№). Ряд исследований подтверждает высокий уровень перекрест-
1. Каверин Н.В., Смирнов Ю.А. Межвидовая трансмиссия вирусов гриппа А и проблема пандемий. Вопросы вирусологии. 2003; 48(3): 4-10. 9. Дешева Ю.А., Смолоногина Т.А., Сергеева М.В., Рекстин А.Р., Свэйн Д., Климов А.И. и др. Изучение биологических свойств холодоадап-тированного реассортантного штамма вируса гриппа подтипа H7N3. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. 2009; 1: 31-6.
10. Дешева Ю.А., Руденко Л.Г., Александрова Г.И., Смолоногина Т.А. Штамм вируса гриппа для производства живой и инактивирован-ной гриппозной вакцины. Патент РФ № 2464309, 2012.
REFERENCES
1. Kaverin N.V., Smirnov Yu.A. Interspecies transmission of influenza A viruses and influenza pandemics. Voprosy virusologii. 2003; 48(3): 4-10. (in Russian)
2. Wang M., Fu C.X., Zheng B.J. Antibodies against H5 and H9 avian influenza among poultry workers in China. N. Engl. J. Med. 2009; 360(24): 2583-4.
3. Peiris M., Yuen K.Y., Leung C.W., Chan K.H., Ip P.L., Lai R.W. et al. Human infection with inluenza H9N2. Lancet. 1999; 354: 916-7.
4. Saito T., Lim W., Suzuki T., Suzuki Y., Kida H., Nishimura S.I. et al. Characterization of a human H9N2 influenza virus isolated in Hong Kong. Vaccine. 2001; 20(1-2): 125-33.
5. Guan Y., Shortridge K.F., Krauss S., Chin P.S., Dyrting K.C., Ellis T. et al. H9N2 influenza viruses possessing H5N1-like internal genomes continue to circulate in poultry in southeastern China. J. Virol. 2000; 74(20): 9372-80.
6. Jiang W., Liu S., Hou G., Li J., Zhuang Q., Wang S. et al. Chinese and global distribution of H9 subtype avian influenza viruses. PLoS One. 2012; 7(12):e52671.
7. World Health Organization. Antigenic and genetic characteristics of influenza A(H5N1) and influenza A(H9N2) viruses for development of candidate vaccines viruses for pandemic preparedness - February 2011. Wkly Epidemiol. Rec. 2011; 86(11): 93-100. Available at: http://www. who.int/wer/2011/wer8611.pdf
8. Rudenko L., Kiseleva I., Mironov A., Desheva J., Larionova N., Chirkova T. et al. Development of pandemic live attenuated influenza vaccine (LAIV) in Russia. Influenza Other Respir. Viruses. 2011; 5(Suppl. 3): 333-7.
9. Desheva Yu.A., Smolonogina T.A., Sergeeva M.V., Rekstin A.R., Swayne D., Klimov A.I. et al. Study of biological properties of cold-adapted reassortant strain of influenza virus subtype H7N3. Zhurnal mikrobiologii, epidemiologii i immunologii. 2009; 1: 31-6. (in Russian)
10. Desheva Yu.A., Rudenko L.G., Aleksandrova G.I., Smolonogina T.A. Influenza Virus Strain for Producing Live and Inactivated Influenza Vaccine. PatentRF № 2464309, 2012. (in Russian)
11. Shirvan A.N., Moradi M., Aminian M., Madani R. Preparation of neuraminidase-specific antiserum from the H9N2 subtype of avian influenza virus. Turk. J. Vet. Anim. Sci. 2007; 31(4): 219-23.
12. Rowe T., Abernathy R.A., Hu-Primmer J., Thompson W.W., Lu X., Lim W. et al. Detection of antibody to avian influenza A(H5N1) virus in human serum by using a combination of serologic assays. J. Clin. Microbiol. 1999; 37(4): 937-43.
13. Lu X., Renshaw M., Tumpey T.M., Kelly G.D., Hu-Primmer J., Katz J. M. Immunity to influenza A H9N2 viruses induced by infection and vaccination. J. Virol. 2001; 75: 4896-901.
14. Johnson P. R., Feldman S., Thompson J. M., Mahoney J. D., Wright P. F. Immunity to infuenza A virus infection in young children: a comparison of natural infection, live cold-adapted and inactivated vaccines. J. Infect. Dis. 1986; 154: 121-6.
15. Rudenko L.G., Arden N. H., Grigorieva E., Naychin A., Rekstin A., Kli-mov A. et al. Immunogenicity and efficacy of Russian live attenuated
and U.S. inactivated influenza vaccines used alone and in combination in nursing home residents. Vaccine. 2001; 19: 308-18
16. Stephenson I., Nicholson K.G., Glück R., Mischler R., Newman R.W., Palache A. M. et al. Safety and antigenicity of whole virus and subunit influenza A/Hong Kong/1073/99(H9N2) vaccine in healthy adults: phase I randomized trial. Lancet. 2003; 362: 1959-66.
17. Chen H., Subbarao K., Swayne D., Chen Q., Lu X., Katz J. et al. Generation and evaluation of a high-growth reassortant H9N2 influenza A virus as a pandemic vaccine candidate. Vaccine. 2003; 21:1974-9.
18. Karron R.A., Callahan K., Luke C., Thumar B., Mc Auliffe J., Schappell E. et al. A live attenuated H9N2 influenza vaccine is well tolerated and immunogenic in healthy adults. J. Infect. Dis. 2009; 199(5): 711-6.
19. Todd S., de Bruin E., Nhat N.T., Koopmans M., Boni M.F. Potential for H9-positive serological signals in humans due to cross-reactivity among influenza subtypes. J. Infect. Dis. 2014; 210(1) 161-3.
Поступила 17.03.14
© КОЛЛЕКТИВ АВТОРОВ, 2015 УДК 615.371:578.832.1].036.8
Боравлева Е.Ю.1, Чвала И.А.2, Ломакина Н.Ф.1, Репин П.И.2, Мудрак Н.С.2, РуденкоЛ.Г.3, Гамбарян А.С.1,
Дрыгин В.В.2
Испытание апатогенного вируса гриппа Ы5Ю в качестве живой
ветеринарной вакцины
'ФГБНУ «Институт полиомиелита и вирусных энцефалитов им. М.П. Чумакова», 142782, г. Москва; 2 ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных», 600901, г. Владимир; 3ФГБНУ «Институт экспериментальной медицины», 197376, г. Санкт-Петербург
Сравнивали 4 экспериментальных штамма, сконструированных в лаборатории молекулярной биологии вирусов гриппа ФГБНУ «ИПВЭ им. М.П. Чумакова», с апатогенным Н5Ш-вирусом A/duck/Moscow/4182/2010 (dk/4l82) в качестве живой ветеринарной вакцины. Экспериментальные штаммы содержали Н5-гемагглюти-нин от вакцинного штамма VNH5N1-PR8/CDC-RG (VN-PR8) или аттенуированного вируса, полученного путем селекции из высоковирулентного Afchicken/Kurgan/3/2005 (H5N1). Внутренние гены и нейраминидаза экспериментальных штаммов были либо от холодоадаптированного донора аттенуации A/Leningrad/134/17/57 (H2N2), либо от непатогенного Н6№-вируса A/gull/Moscow/3100/2006. В опытах на мышах было показано, что все испытанные штаммы непатогенны для мышей, после однократной вакцинации вызывают высокий прирост антител и хорошо защищают от последующего заражения высоковирулентным вирусом H5N1. Индекс патогенности на курах всех экспериментальных штаммов равен нулю при значении 2,89 для вируса А/ ehicken/Kurgan/3/2005 (H5N1). Сравнивали разные схемы вакцинации цыплят. Штамм dk/4182 при аэрозольной вакцинации 1-дневных цыплят был апатогенен, обеспечивал высокий и равномерный прирост антител и полную защиту от последующего заражения вирусом A/сhicken/Kurgan/3/2005.
К л ю ч е в ы е с л о в а : вирус гриппа; H5N1;ветеринарная вакцина.
Для цитирования: Вопросы вирусологии. 2015; 60(4): 44-49.
Boravleva E.Y.1, Chvala I.A.2, Lomakina N.F.1, Repin P.I.2, Mudrak N.S.3, Rudenko L.G.3, Gambaryan A.S.1,
Drygin V.V.2
Testing of apathogenic influenza virus H5N3 as a poultry live vaccine
1 M.P. Chumakov Institute of Poliomyelitis and Viral Encephalitides, 142782, Moscow, Russia; 2Federal Center for Animal Health (FGBI "ARRIAH"), 600901,Vladimir, Russia; institute of Experimental Medicine, 197376, St. Petersburg,
Russia
Four H5N2 experimental vaccine strains and the apathogenic wild duck H5N3 influenza virus A/duck/ Moscow/4182/2010 (dk/4182) were tested as a live poultry vaccine. Experimental strains had the hemagglutinin of the A/Vietnam/1203/04 strain lacking the polybasic Ha cleavage site or the hemagglutinin from attenuated virus (Ku/ at) that was derived from the highly pathogenic influenza virus A/chicken/Kurgan/3/2005 (H5N1). The hemagglutinin of the Ku-at has the amino acid substitutions Asp54/Asn and Lys222/Thr in HA1 and Val48/ile and Lys131/Thr in HA2, while maintaining the polybasic HA cleavage site at an invariable level. The other genes of these experimental strains were from the H2N2 cold-adapted master strain A/Leningrad/134/17/57 (VN-Len and Ku-Len) or from the apathogenic H6N2 virus A/gull/Moscow/3100/2006 (VN-Gull and Ku-Gull). A single immunization of mice with all tested strains elicited a high level of serum antibodies and provided complete protection against the challenge with the lethal dose of Afchicken/Kurgan/3/05. The pathogenicity indexes of the Ku-at and the other strains for chicken were virtually zero, whereas the index of the parent H5N1 virus A/chicken/Kurgan/3/2005 was 2.98. intravenous, intranasal, and aerosol routes of vaccination were compared. it was shown that the strain dk/4182 was totally apathogenic for one-day-old chicken and provided complete protection against the highly pathogenic H5N1 virus.
Key words: influenza virus A; H5N1; poultry vaccine.
Gtation: Voprosy virusologii. 2015; 60(4): 44-49. (In Russ.)
For correspondence: Aleksandra Gambarya, MD, PhD,ScD; e-mail: al.gambaryan@gmail.com
Received 30.11.13
Для корреспонденции: Гамбарян Александра Сергеевна, д-р биол. наук, зав. лаб. молекулярной биологии вирусов гриппа; e-mail: al.gambaryan@gmail.com
