CC BY
83
Динамика изменения гемостазиологических показателей при лечении гнойных ран у телят*
Е.Н. Никулина, аспирантка, В.А. Ермолаев, д.в.н., профессор, П.М. Ляшенко, к.в.н., Ульяновская ГСХА
Травматизм животных занимает одно из ведущих мест в животноводстве. В результате травм часто возникают случайные инфицированные раны. Гнойные раны при этом составляют 40—50% среди всей выявленной хирургической патологии. Лечение таких ран является актуальной проблемой в ветеринарии до настоящего времени [1].
Литературные данные свидетельствуют о том, что в последнее десятилетие у ветеринарных хирургов значительно повысился интерес к изучению вопросов, связанных с системой гемостаза у сельскохозяйственных продуктивных животных [2]. Эта система активно участвует в реакциях защиты организма, являясь важным звеном процессов воспаления, регенерации, а также стабилизации клеточного и гуморального иммунитета.
Следовательно, изменения, происходящие в системе, свёртывающей кровь у продуктивных животных с гнойными ранами, необходимо учитывать при лечении и прогнозировании течения раневого процесса.
В связи с этими заключениями целью нашего исследования явилось изучение динамики гемо-стазиологических показателей плазмы крови у телят, с экспериментально воспроизведёнными гнойными кожно-мышечными ранами, а также изменение этих показателей в зависимости от предпринятого лечения.
Материалы и методы исследования. Работу выполняли в период с октября по декабрь 2009 г. на базе научно-производственной лаборатории «VITA» кафедры хирургии, акушерства и ОВД факультета ветеринарной медицины Ульяновской государственной сельскохозяйственной академии.
Для проведения эксперимента были подобраны десять бычков чёрно-пёстрой породы, в возрасте 12 месяцев, с живой массой 200—220 кг. Сформировали две группы по пять голов по принципу парных аналогов. Всем животным воспроизводили модель гнойной кожно-мышечной раны в области бедра с латеральной стороны. Инфицирование раны проводили путём фиксирования провизорными швами тампона, смоченного суточной микробной взвесью Enteroccocus fecalis (1 мл взвеси содержит 1 млрд микробных
клеток). Заживление ран проходило по вторичному натяжению.
К лечению приступали через сутки после инфицирования. У животных производили хирургическую очистку раны, затем смазывали раневую поверхность соответствующей эксперименту мазью: в опытной группе — Гипофаевипом, в контрольной — Левомиколем.
Кровь для исследований брали из яремной вены на протяжении всего эксперимента до нанесения ран (фоновые показатели), на 1, 3, 5, 7, 9, 11, 15, 19, 23 сутки и в день полного выздоровления.
Гемостазиологические показатели крови определяли на анализаторе показателей гемостаза АПГ2-02-П. В плазме крови определяли количество фибриногена, АЧТВ, тромбиновое и протромбиновое время. Ручными методами устанавливали показатели фибринолитической активности, фактора XII и этанолового теста.
Полученный цифровой материал статистически обрабатывали на компьютерной программе $1а11811са 6. Разницу считали достоверной при Р<0,05.
Результаты исследований. В ходе эксперимента в первую очередь изучали показатели, которые отражают сущность протекания воспалительных реакций у крупного рогатого скота: а) реакцию «фибриноген — фибрин»; б) естественный лизис фибринового сгустка «фибринолиз»; в) как дополнение учитывали показания этанолового скрининг-теста, который раскрывает сущность неполноценного распада фибриногена в процессе воспалительной реакции и является пусковым механизмом развития диссеминированного внутрисосудистого свёртывания крови (ДВС-синдрома).
На момент предпринимаемого лечения в опытной и контрольной группах животных по сравнению с показателями здоровых животных количество фибриногена уменьшается с 3,7 до 2,56 и 3,18 г/л соответственно. Мы это связываем с оперативным вмешательством (воспроизведением экспериментальной кожномышечной раны). Максимальный подъём уровня фибриногена отмечали на третьи сутки лечения гнойных ран в обеих группах. С шестых суток до конца лечения отмечали постепенное снижение уровня фибриногена в опытной и контрольной группах, но в последней значения фибриногена были выше. Так, на 23-и сутки они равнялись в
* Работа выполнена при финансовой поддержке Министерства образования РФ. Государственный контракт № 12.741.11.0126
опытной группе 2,97 г/л, в контрольной — 3,2 г/л. Мы это связываем с вторичным инфицированием в контрольной группе животных.
В фоновых показаниях исследований значений фибринолиза мы не выявили особых различий, они составили 1,13—1,37%. Активизация фибринолитической активности началась через час после нанесения ран. Эти показатели были схожими и не имели достоверной разницы: в опытной группе они составили 2,98%, в контрольной — 2,82%.
В разгар начавшихся воспалительных процессов в ране с третьих по девятые сутки лечения наблюдали следующие изменения. В опытной группе фибринолитическая активность с шестых по 23-е сутки лечения начинала плавно уменьшаться, её значения составляли от 11,34 до 3,43% соответственно дням. К концу лечения уровень фибринолиза незначительно превышал физиологическую норму (2,31%). В контрольной же группе на шестые и девятые сутки фибринолитическая активность была выше, чем в опытной, её значения составили 18,77 и 17,25% соответственно дням эксперимента. С 12-х суток лечения в этой группе отмечалось снижение уровня фибринолиза, но и на момент выздоровления он был высоким по сравнению с опытной группой животных и с фоновыми показателями — 4,01% (при норме 1,9—2,2%).
При исследовании этанолового скрининг-теста в фоновых показателях все животные реагировали отрицательно. На третьи сутки лечения в опытной и контрольной группах 60% (три из пяти) животных реагировали положительно, а на шестые — в 100%. Начиная с девятых суток в опытной группе образование продуктов деградации фибрина (ПДФ) уменьшилось до 60% (три из пяти), а в контрольной — до 80% (четыре из пяти животных). На 12-е сутки положительно реагирующих животных на этаноловый тест в опытной группе осталось 20% (один из пяти
животных), в контрольной — 60% (три из пяти). На 15-е сутки в обеих группах 20% животных реагировали положительно. На 23-и сутки в опытной группе все животные реагировали отрицательно, а в контрольной — 20% (один из пяти) — положительно.
Таким образом, в обеих группах отмечено усиление гиперкоагуляционных процессов с первых суток лечения, далее в опытной группе равновесие между процессами коагуляции восстановилось. В контрольной группе отмечались процессы вторичной гиперкоагуляции, что связано с вторичным инфицированием ран из-за возникновения резистентных штаммов микроорганизмов к лекарственному веществу мази Левомиколь — левомицетину, которые активизировали плазменный гемостаз.
Реактивный фибринолиз в контрольной группе свидетельствует о крайнем проявлении активизации системы гемостаза с включением всех его звеньев и развитием диссеминированного внутрисосудистого свёртывания крови (ДВС-синдрома) в результате вторичного инфицирования и воздействия эндотоксинов присутствующей микрофлоры раны.
Заключение. Анализ проведённых исследований плазмы крови у телят с экспериментально воспроизведёнными гнойными кожномышечными ранами показал, что в опытной группе, где применяли лечение гидрофильной мазью Гипофаевип, гемостазиологические показатели восстанавливались с фоновыми значениями в более короткие сроки по сравнению с контрольной.
Литература
1. Ермолаев В.А., Никулина Е.Н. Динамика морфологических показателей крови бычков с гнойными ранами // Учёные записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им Н.Э. Баумана. Казань, 2010. Т. 203. С. 109-114.
2. Ермолаев В.А., Семёнов Б.С., Лютинский С.И. Методы исследования системы гемостаза в ветеринарии: метод. рекоменд. Ульяновск: УГСХА, 1998. 73 с.
