CC BY
79
DOI http://dx.doi.org/10.18551/rjoas.2016-06.08
КЛИНИКО-ГЕЛЬМИНТОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА СОКОЛООБРАЗНЫХ
ПТИЦ ВОЛЬЕРНОГО СОДЕРЖАНИЯ
CLINICAL AND HELMINTHOLOGICAL CHARACTERISTICS OF FALCONIFORMES BIRDS CONTAINED IN THE CONDITIONS OF KENNEL
Василевич Ф.И.*, академик РАН Vasilevytch F.I., Academician of the Russian Academy of Sciences Давыдова О.Е., кандидат биологических наук Davydova O.E., Candidate of Biological Sciences Пименов Н.В., профессор РАН Pimenov N.V., Professor of the Russian Academy of Sciences ФГБОУ ВО «Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии - МВА имени К.И.Скрябина», Москва, Россия Federal State Budgetary Educational Institution of Higher Education «Moscow State Academy of Veterinary Medicine and Biotechnology - MVA named after K.I. Skryabin»,
Moscow, Russia
*E-mail: rector@mgavm.ru
АННОТАЦИЯ
Изучены биохимические и гематологические показатели клинически здоровых птиц трех видов отряда соколообразных в условиях питомника. Проведен анализ полученных данных в отношении их значимости для оценки состояния здоровья птиц. Проведено макро- и микроскопическое, а также гельминтоовоскопическое исследование фекалий. Экстенсивность инвазии 13 видов птиц питомника гельминтами составилa 24,6%.Выявлено 7 видов гельминтов. Наибольшая частота встречаемости обнаружена для нематоды Capillaria falconis, что может свидетельствовать об образовании устойчивых очагов капилляриоза в вольерных условиях.
ABSTRACT
Biochemical and hematological parameters of clinically healthy birds of prey of three species of the order Falconiformes contained in the conditions of kennel were investigated. The data obtained were analyzed in relation to their importance for assessing health status of the birds. Macro and microscopic study of faeces as well as detection of helminth eggs were carried out. Extensiveness of helminth invasion of 13 bird species in kennel was 24.6%. 7 helminth species were identified. The highest frequency of occurrence was found for nematode Capillaria falconis, which may indicate the formation of the resistant foci of capillariasis in the conditions of aviary.
KEY WORDS
Diurnal birds of prey, Falconiformes, biochemical blood indices, morphological composition of blood, investigation of faeces samples, extensiveness of invasion, helminth species.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА
Дневные хищные птицы, отряд Falconiformes, биохимические показателей крови, морфологический состав крови, исследование проб фекалий, экстенсивность инвазии, виды гельминтов.
Многолетний опыт показывает, что единственно полноценной мерой сохранения редких видов, носителей генофонда популяции, может стать разведение их в искусственных условиях с последующей реинтродукцией (репатриацией) в природу, тем более, что в свете современных этологических представлений этот процесс при
правильном его осуществлении не представляет непреодолимых проблем [1]. В ряде стран (Великобритания, США, Канада, Египет, Арабские Эмираты, Казахстан) разработаны и успешно воплощаются в жизнь специальные программы по восстановлению популяций дневных хищных птиц в искусственных условиях, включающие реабилитацию, содержание и разведение. Актуальность природоохранных мер определяется прежде всего тем, что в настоящее время сдвиги в экосистемах, обусловленные антропогенными вмешательствами, значительны, и происходят, зачастую, в короткие сроки. Это ставит виды, даже обладающие достаточно высокой численностью в природных биотопах, на грань исчезновения в ближайшем будущем [2].
В питомниках, участвующих в природоохранных программах, содержатся, в основном, птицы, относящиеся к группам, скомбинированным по принципу систематической близости и сходства условий обитания [1]: первая группа - виды, находящиеся на грани уничтожения, природоохранные мероприятия в естественных биотопах неэффективны (орлы-могильники и др.); вторая группа - для данных видов прогнозируется снижение численности в природе в связи с антропогенной трансформацией биотопов (соколы, кречеты и др.); 3-я группа - относительно многочисленные виды, традиционные методы охраны для них эффективны (беркуты, орланы и др.). Следует отметить, что хищные птицы в трофических сетях биогеоценозов занимают верхние позиции — вершину пищевой пирамиды, многие из них являются специализированными хищниками, факультативными хищниками или падальщиками и численность их в природе никогда не бывает массовой. Это своеобразные индикаторы благополучия экосистем, поддерживающие их биоразнообразие. Многие виды попали на страницы Международной Красной книги, в Приложения Конвенции об ограничении торговли видами дикой фауны и флоры (CITES), на страницы региональных и национальных Красных книг, в том числе и Красной книги Российской Федерации1.
В последние годы на территории Российской Федерации также появился ряд специализированных питомников, успешно воплощающих в жизнь природоохранные программы, направленные на сохранение генофонда хищных птиц. Создание таких питомников означает переход от пассивных мер по охране животного мира к активным. Однако для эффективной их работы необходимо в совершенстве овладеть технологией содержания и разведения видов в искусственных условиях, что сопряжено зачастую с объективными трудностями. В связи с этим, важная задача - разработка стандартной, хорошо документированной и апробированной технологии [1], неотъемлемой частью которой является ветеринарное обслуживание.
В настоящее время вопросы ветеринарной медицины диких и экзотических птиц активно разрабатываются. В Европе, Америке, в странах Азии и Ближнего Востока в этой области работает большое количество специалистов, существуют специализированные клиники и реабилитационные центры, в то время как в России эта область ветеринарной медицины только зарождается. Тем более, что относительно хищных птиц в доступной литературе практически не существует сведений, касающихся референтных значений биохимических, гематологических и других показателей, имеющих первостепенное значение для ранней диагностики их возможных заболеваний [3,4]. Для получения сравнимых результатов исследований необходимо учитывать также видовые, возрастные, сезонные особенности, спектр питания, фазу репродуктивного цикла. В свете вышеизложенного, существует необходимость накопления базы данных по клиническим показателям, имеющим значение для исследования физиологического статуса птиц при их содержании в питомниках, вольерах и мониторинга при их ветеринарном обслуживании. Как уже указывалось, подобные сведения относительно хищных птиц ограничены, чего не скажешь, например, о попугаях, голубях и некоторых других видах птиц [5,6]. Основной же массив литературных данных по клиническим показателям касается сельскохозяйственной птицы [7].
Клиническое обследование птиц сопровождается взятием крови, помета для лабораторных исследований, которые позволяют составить объективное представление об уровне и состоянии обмена веществ, провести дифференциальную и раннюю диагностику болезней, оценить состояние различных органов и систем.
Целью настоящей работы явилось изучение клинических лабораторных показателей у хищных птиц для развития диагностических критериев. В качестве задач определены изучение гематологических показателей крови, макро- и микроскопическое, а также гельминтоовоскопическое исследование фекалий хищных птиц отряда соколообразных, содержащихся в условиях питомника и определения значимости изученных показателей для оценки состояния здоровья птиц.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
В работе использованы 53 пробы крови от птиц трех видов семейства соколиных (соколы сапсан, балобан, кречет) и 122 пробы образцов свежих фекалий от птиц всех 13 видов отряда соколообразных специализированного питомника Российского Общественного Фонда охраны хищных птиц на территории Тульской области. Взятие крови у птиц осуществляли из яремной вены. При гематологических исследованиях проводили подсчет лейкоцитов и эритроцитов меланжерным методом и определение гемоглобина. Для определения количества лейкоцитов в камере Горяева применяли разведение 0,1%-ным раствором азура II на 0,85%-ном растворе натрия хлорида или 0,01%-ным раствором кристаллического фиолетового на 3,8%-ном растворе цитрата натрия с формалином, так как эритроциты птиц не разрушаются в жидкости Тюрка [7]. Биохимические исследования крови проводили на полуавтоматическом анализаторе «Clima MC-15» (Испания) с использованием наборов жидких стабильных реагентов, на оборудованном микропроцессором спектрофотометре. Гельминтоовоскопические исследования проводили флотационным методом с использованием насыщенного раствора аммонийной селитры (метод Котельникова) [8]. В ходе работы применяли гематологические, биохимические, микроскопические, гельминтоовоскопические, статистические методы исследований.
РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
Для изучения биохимических и гематологических показателей были сформированы репрезентативные выборки птиц семейства соколиные (Falconiformes) трех видов, представленных в питомнике наибольшим числом особей, в количестве: сапсан (Falco peregrinus) - 18; балобан (Falco cherrug) - 25; кречет (Falco rusticolus) -10. Для исследования были отобраны птицы, достаточное время находившиеся в вольерных условиях, адаптированных к содержанию в неволе, возрастные различия не составляли значительных величин (очень молодые, старые особи и особи, недавно поступившие в питомник, в экспериментальную группу не включались).
Известно, что при клиническом диспансерном обследовании поголовья птицы в промышленном птицеводстве проводят полное исследование систем организма определенных контрольных групп, которые формируются в зависимости от возраста и физиологического состояния [7]. В наших исследованиях при физикальном осмотре все птицы были признаны клинически здоровыми, условия содержания и кормления их полностью соответствовали видовым особенностям, кормление производилось согласно принятым нормам [1]. Проводили также исследование в естественных условиях (в вольерах), при этом обращали внимание на поведение птицы и ее общее состояние (двигательная активность, дыхание, координация, состояние оперения и пигментации конечностей, отсутствие свежих травм и повреждений, состояние глаз, частоту и характер акта дефекации). По всем перечисленным показателям отклонений не отмечали. Все исследования проводили в наименее ответственный в физиолого-этологическом отношении период - в октябре-ноябре (вне брачного сезона, подготовки
к гнездованию и гнездования, а также сезонной линьки, когда клинические показатели могут в значительной степени варьировать).
Полученные данные по результатам биохимического исследования сыворотки крови представлены в таблице 1.
Таблица 1 - Биохимические показатели сыворотки крови соколообразных птиц,
содержащихся в питомнике
Параметры Единицы измерения Сапсан (п=18) Балобан (п=25) Кречет (п=10)
т1п /тах М±т т1п/та х М±т т1п/тах М±т
Общий белок, в т.ч. 0/1 27.0/ 44.0 35.5±1. 10 30.0/ 55.0 42.5±1.27 35.0/ 55.0 20.0±2.06
альбумины 0/1 10.0/ 17.0 13.5±0.45 10.0/ 20.0 15.0±0.51 13.0/ 20.0 16.5±0.72
глобулины 0/1 17.0/ 27.0 22.0±0.65 17.0/ 30.0 23.5±0.66 15.0/ 35.0 25.0±2.06
Мочевина тто1/1 0.0/ 2.0 1.0±0.13 0.0/ 2.0 1.0±0.10 0.0/ 2.0 1.0±0.21
Мочевая кислота ито1/1 600/ 1100 850±32.38 750,0/ 1300.0 1400.0± 27.99 600,0/ 1300.0 950±71.94
Креатинин ито1/1 30.0/ 55.0 42.5±1.62 30.0/ 60.0 45.0±1.53 35.0/ 60.0 47.5±2.57
Глюкоза тто1/1 10.0/ 13.0 11.5±0.19 10.0/ 15.0 12.5±0.25 13.0/ 15.0 14.0±0.21
Холестерин тто1/1 5.0/ 7.0 6.0±0.13 5.0/ 9.0 7.0±0.21 5.0/ 8.0 6.5±0.31
Аланинамино-трансфераза и/1 100.0/ 150.0 125.0±3.24 110.0/ 170.0 195.0±3.08 110.0/ 160.0 135.0±5.14
Аспартатамино-трансфераза и/1 12.0/ 23.0 17.5±0.71 12.0/ 23.0 17.5±0.56 12.0/ 21.0 16.5±0.92
Лактатдегидрогеназа и/1 100.0/ 300.0 200.0±12.95 100.0/ 350.0 225.0±12.72 130.0/ 350.0 240.0±22.61
Щелочная фосфатаза и/1 60.0/ 150.0 105.0±5.82 80.0/ 150.0 115.0±3.59 90.0/ 160.0 125.0±7.19
Кальций тто1/1 2.0/ 3.0 2.5±0.06 2.0/ 3.0 2.5±0.05 2.5/ 3.0 2.75±0.05
Фосфор тто1/1 1.0/ 1.5 1.25±0.03 1.0/ 1.5 1.25±0.03 1.0/ 2.0 1.5±0.10
Калий тто1/1 1.5/ 2.5 2.0±0.06 1.5/ 2.5 2.0±0.05 1.5/ 2.5 2.0±0.10
Хлориды тто1/1 100/ 120.0 110.0±1,3 110.0/ 130.0 120.0±1.02 100.0/ 125.0 112.5±1.54
Натрий тто1/1 150/ 175.0 162.5±1.62 150.0/ 175,0 162.5±1.27 130.0/ 170.0 150±4.11
Железо ито1/1 5.0/ 15.0 10.0±0.65 7.0/ 15.0 11.0±0.41 8.0/ 15.0 11.5±0.72
В таблице 2 в сравнительном аспекте приведены данные, полученные разными авторами относительно биохимических показателей сыворотки крови птиц (кроме сельскохозяйственных) и их примерная клиническая интерпретация.
Таким образом, на основании полученных данных выявлено, что у хищных птиц, содержащихся в питомнике, биохимические показатели в наименее ответственный в физиолого-этологическом плане период в основном не выходят за рамки общих физиологических норм для птиц. Однако малая доступность литературных данных о референтных значениях показателей дневных хищных птиц и их интерпретации позволяет сделать лишь общие выводы об отсутствии выраженных органных патологий и нормальном протекании биохимических процессов.
Наибольшее диагностическое значение для птиц имеют такие показатели, как уровень желчных кислот, мочевой кислоты, содержание общего белка и соотношение белковых фракций, содержание электролитов. Очевидно, что учет уровней мочевины, креатинина, холестерина, активности аспартатаминотрансферазы и аланинаминотрансферазы, имеющие большое значение в диагностике патологий у млекопитающих [11], имеют минимальное диагностическое значение у хищных птиц.
Таблица 2 - Биохимические показатели крови птиц в норме, по данным разных авторов и их
интерпретация [3,6,9,10,11,12,13]
Показатель Единица измерения Норма Повышение показателя Снижение показателя Примечания
1 2 3 4 5 6
Общий белок g/| 25,0-50,0 30-60,0хх Обезвоживание, шок, воспаление, травма, инфекция Хронические заболевания печени и почек, голод, нарушение пищеварения, стресс, кровопотеря Менее 25,0 -прогноз неблагоприятный
Альбумины g/| 10.0-20.0х Гемоконцентрация (обезвоживание, усиленный гемопоэз) Хронические заболевания печени, почек, дефицит белка в рационе, болезни пищеварительно го канала, эндопаразитозы Для птиц лучшую оценку количества белковых фракций (альбумины, глобулины) дает только электрофорез
Глобулины g/| 15.0-30.0 Гиперпротеинемия совместно с гиперглобулинемией часто свидетельствует о хронических инфекциях (хламидиоз, аспергиллез, туберкулез, микоплазмоз и др.); меньше - острая инфекция, хронический гепатит. Часто повышение может быть связано и с яйцекладкой (производство антител при формировании яйца). Опасное голодание, внутреннее кровотечение, болезни органов пищеварения, печени
Глюкоза mmol/l 10.0-25.0 11 -28х Стресс -кратковременное повышение; диабет - свыше 50,0 тто1/1 Нарушения питания, токсический гепатит, физические нагрузки, новообразования Более высокий уровень по сравнению с млекопитающи ми. Менее 8 тто1/1 - угрожающе низкий
Желчные кислоты umol/l до 100хх Свыше 150-200-Дисфункция печени _* Преимущественен для птиц
Мочевая кислота штю!/! 400-1200х 119-900 тто1/1 хх Снижение функции почек (значение свыше 1200); разрушение тканей, голод, подагра, гиперкальциемия _* Преимущественен для птиц - основной продукт метаболизма азотсодержащ их соединений. Для хищных птиц характерно повышение уровня в течение 12 ч после питания.
1 2 3 4 5 6
Не является
диагности-
Мочевина тто1/1 0.3-2.0х Отмечается при шоке или критическом обезвоживании. _* ческим для птиц (не отражает функциональное состояние почек)
Не является
Креатинин ито1/1 30.0-60.0 — _* диагностическ им для птиц
Аспартат-амино-трансфераза и/1 10.0-60.0 до 330х Мышечные повреждения, повреждения гепатоцитов _* Недостаточно специфичный показатель для птиц
Недостаточно
специфичный
показатель для
Аланинамино-трансфераза и/1 100-250 _* птиц. В основном диагностическо го значения не имеет
Мышечные
Лактатде-гидрогеназа и/1 100-750 повреждения, повреждения гепатоцитов; гемолиз в пробе _*
Остеопорозы и травмы
Щелочная фосфатаза и/1 25.0500.0 костно-связочного аппарата, инфекции, новообразования костей _* Не отражает состояние печени у птиц
Однозначного
Холестерин тто1/1 5.0-10.0 Голодание, нарушение работы печени _* диагностическо го значения не имеет
Кальций тто1/1 2.0-3.0 до 4,5х Самки в период размножения (6,3 и выше) Нарушения питания, почечные патологии; усиленная яйцекладка Ниже 1,5 - у птиц сопровождается тетанией
1.0-2.0 Голодание,
Фосфор тто1/1 0,6-1,45х Почечные патологии кишечные патологии -
Калий тто1/1 1.5-3.5 Почечные патологии, ацидоз Диарея, алкалоз -
Потеря воды, острая почечная Метаболический алкалоз, нефриты и нефропатии, сопровождающи еся потерей солей
Хлориды тто1/1 100-150 недостаточность, метаболический ацидоз, гипофункция надпочечников, -
черепно-мозговая травма
Острый
гломеруло-нефрит,
Натрий тто1/1 150-175 Остеодистрофия, хроническая почечная недостаточность сердечная недостаточность, болезни печени в терминальной стадии, остеомаляция -
1 2 3 4 5 6
Железо ито1/1 2.0-20.0 Гемосидероз, гемолитическая анемия, острый гепатит, гломерулонефрит, применение эстрогенов; гемолиз сыворотки в пробе Алиментарная анемия, постгеморрагиче ская анемия, нефроз -
Примечание:
* - не имеет клинического значения или сведения о клиническом значении отсутствуют. х- попугаи
хх - вид птицы не указан.
Уровень билирубина исследованию не подлежит, вследствие отсутствия у птиц процесса трансформации биливердина в билирубин; биливердин выделяется с мочой [13-15].
Относительно видовых различий у исследованных соколов обнаружено, что между видами, находящимися в сходных условиях и физиологическом состоянии, выраженные и статистически достоверные различия основных биохимических показателей отсутствуют.
Исследование морфологического состава крови включает определение гемоглобина, количества эритроцитов, лейкоцитов и имеет большое значение, особенно при диагностике анемий и гемобластозов, явлений воспалительного характера [6,7]. На морфологический состав крови значимо влияют возраст, сезон года, порода и конституция, условия кормления и содержания [7,16]. У птиц эритроциты и тромбоциты имеют овальную форму и содержат ядра. Основные гематологические показатели крови дневных хищных птиц по литературным данным приведены в таблице 3. В таблице 4 приведены полученные нами данные при исследовании соколов трех видов.
Таблица 3 - Гематологические показатели крови хищных птиц в норме [16,17]
Показатель/вид птиц Ед. Соколы Falco sp. Орлы Aquila sp. Курганики Butco sp. Ястребы Accipiter sp.
Гематокрит 1/1 0.30-0.45 0.30-0.50 0.35-0.45 0.30-0.50
Гемоглобин Я/1 100-180 110-170 120-180 150-200
Эритроциты ж1012/! 2.0-3.5 2.0-3.0 1.65-2.5 1.5-3.0
Лейкоциты х109/! 7.0-20.0 10.0-20.0 5.0-22.0 10.0-20.0
Тромбоциты х109/! 5.0-50.0 10.0-50.0 5.0-45.0 5.0-50.0
Фибриноген Я/! <5.0 <5.0 <5.0 <5.0
Таблица 4 - Гематологические показатели у соколов в условиях питомника
Параметры Сапсан (п=18) Балобан(п=25) Кречет (п=10)
тлп/тах М±т тлп/тах М±т тт/тах М±т
Эритроциты х1012/! 2.5/ 4.0 3.0±0.06 3.0/4.0 3.25±0.03 3.0/4.0 3.7±0.1
Лейкоциты х109/! 8.0/13.0 10.5±0.36 9.0/14.0 11.25±0.28 9.0/14.0 11.1 ±0.51
Гемоглобин Я/! 120/160 140±2.59 110/165 137.5±2.80 112/160 147.6±4.93
Исходя из средних данных общеклинического анализа крови (табл. 4), можно сделать заключение, что у всех исследованных птиц полученные данные не выходят за рамки физиологической нормы. Некоторые повышения уровня лейкоцитов могут проявляться в качестве стресс-спровоцированной реакции, обусловленной манипуляциями с птицами. Видовые различия гематологических показателей семейства соколиных не выражены.
Параллельно исследовали кровь на наличие паразитических простейших. При исследовании мазков крови с использованием набора для быстрой окраски Leucodif 200 кровепаразитов не обнаруживали.
Для реализации задач работы во втором цикле анализов исследовались пробы фекалий (122 пробы от всех 13 видов двух семейств отряда соколообразных (Falconiformes)):
1. семейство Falconidae (соколиные), из них соколов - 95 проб (сапсан (Falco peregrinus) - 25; балобан (Falco cherrug) - 50; дербник (Falco columbarius) - 2; кречет (Falco rusticolus) - 16; обыкновенная пустельга (Falco tinnunculus) - 2); орлов - 17 проб (беркут (Aquila chrysaetos) - 6; могильник (Aquila heliaca) - 3; орел степной (Aquila rapax) - 2; гибриды орлов - 6); канюков (канюк обыкновенный (Buteo buteo)) - 2 пробы и коршунов (коршун черный (Milvus migrans)) - 2 пробы;
2. семейство Accipitridae (ястребиные) - 6 образцов от ястребов (ястреб тетеревятник (Accipitergentilis) - 4; ястреб перепелятник (Accipiter nisus) - 2).
При микроскопических исследованиях фекалий определяли переваримость, оцениваемую визуально у птиц по количеству детрита, наличие кристаллов мочевой кислоты и их цвет, а также консистенцию и количество фекалий, частоту дефекации. Макро- и микроскопические исследования не выявили отклонений от нормы, признаков наличия мочекислого диатеза, нарушений пищеварения и усваиваемости кормов. Идентификацию гельминтов проводили с использованием справочников и определителей [18,19,20].
Выявлено, что заражение птиц гельминтами составило 24,6% (инвазировано 30 из 122 исследованных проб). При этом клинических признаков гельминтозов не наблюдали. Однако нельзя исключить, что в условиях питомника, отличающихся от естественных условий обитания птиц, с развитием стресса, изменениями в питании и образе жизни, снижением иммунитета гельминтозы в определенный момент могут перейти в клинически выраженное заболевание.
Всего у соколообразных вольерного содержания выявлено 7 видов гельминтов, из них нематод - 4 вида, трематод - 2 вида, акантоцефал - 1 вид (рис. 1-7). Заражение гельминтами обнаружено у 11 из 13 исследованных видов соколообразных. Отсутствие гельминтов у канюков и коршунов может объясняться малой выборкой.
У всех инвазированных птиц обнаруживалась нематода Capillaria falconis - вид, обладающий максимальной частотой встречаемости. Это свидетельствует о формировании в данном питомнике устойчивых очагов капилляриоза. В природе заражение этим геогельминтозом хищных птиц происходит, в основном, через паратенических хозяев (беспозвоночных и птиц) [21]. В условиях неволи, при отсутствии паратенических хозяев, цикл развития гельминта происходит прямым путем, через контаминированные яйцами гельминтов корма и внешнюю среду.
Рисунок 1 — Яйцо нематоды СарШапа falconis Рисунок 2 — Яйцо нематоды
(оригинал, об.8, ок.10) (оригинал, об.8, ок.10)
Рисунок 3 - Яйцо нематоды Physaloptera alata (оригинал, об.40, ок.10)
Рисунок 4 - Яйцо нематоды Аscaridia sp. (оригинал, об.8, ок.10)
Рисунок 5 - Яйцо трематоды Strigea falconis (оригинал, об.8, ок.10)
Рисунок 6 - Яйцо трематоды Neodiplostomum attenuatum (оригинал, об.8, ок.10)
Рисунок 7 - Яйцо гельминта Acantocephala sp.sp, (оригинал, об.8, ок.10)
В отношении распределения гельминтофауны по видам птиц можно отметить, что у соколов сапсана и балобана обнаружено 2 вида гельминтов (нематода C. falconis, трематода Strigea falconis), эктенсивность инвазии (ЭИ) составила 12,6% ; у кречета - 3 вида (нематоды C. falconis, Porrocaecum depressum, трематода Strigea falconis), с ЭИ 31%, наблюдались микстинвазии двумя видами гельминтов; у ястребов - 7 видов (нематоды C. falconis, Porrocaecum depressum, Аscaridia sp., Physaloptera alata, трематоды Strigea falconis и Neodiplostomum attenuatum, а также скребни Acantocephala
spp.), ЭИ составила 100% особей птиц, с микстинвазиями в различных сочетаниях; у всех видов орлов, а также у дербника, пустельги обнаружили только 1 вид — C. falconis. По литературным данным, выявленные паразитоценозы часто встречаются у соколообразных в природной среде многих регионов [18,21,22].
ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ
Спецификой болезней птиц является характер их течения, а именно — отсутствие видимых клинических признаков вплоть до последней, разрешающей стадии болезни, когда медикаментозное вмешательство, как правило, уже не является эффективным [23]. Согласно нашим наблюдениям, порядка 90-95% случаев заболеваний и падежа хищных птиц в специализированном питомнике, организованном согласно правилам, относится к незаразной этиологии. В основном, они связаны с неизбежно возникающими нарушениями естественных потребностей хищников в двигательной активности. Из-за недостатка моциона выявляется следующий каскад патологических изменений в организме, ведущий к возникновению болезни: гиподинамия в вольерах (ведущее звено) + обильная белковая пища — интоксикация — дистрофия органов и тканей [23]. У дневных хищных птиц в вольерах объективно встречается атрофия жировой ткани и скелетной мускулатуры, дистрофия миокарда, печени, почек, изъязвление слизистой оболочки желудка, клинически характеризующиеся проявлениями мочекислого диатеза, метаболического нефрита, гепатоза и холестаза, т.е признаками токсической дистрофии печени и почек, развивающимися в связи с недостатком моциона даже на фоне сбалансированного кормления [24].
Таким образом, в условиях питомника при значительной концентрации поголовья на ограниченных площадях, даже при соблюдении общих зоогигиенических условий и полноценном кормлении, существенно повышается опасность возникновения незаразных заболеваний, травм, а также болезней инвазионной и смешанной этиологии. Ранняя и точная диагностика болезней позволяет своевременно и правильно организовать ветеринарно-санитарные и лечебно-профилактические мероприятия по их ликвидации. В этих условиях на первый план выходят биохимические и гематологические исследования как маркеры функционального состояния организма и раннего выявления нарушений в состоянии здоровья. Для этих целей необходим постоянный контроль клинических показателей по референтным значениям, на динамику которых влияют объективные факторы, связанные с биологией и условиями содержания птиц [3,4,5]. Сложность интерпретации показателей связывается также с большим числом физиолого-этологических параметров, подлежащих учету [3,17].
Макро- и микроскопическое исследование образцов фекалий также может служить надежным маркером первичной диагностики и оценки состояния здоровья таких специфических объектов, как хищные птицы при вольерном содержании. При этом ценность данных исследований возрастает в связи с их неинвазивностью.
Исследования состава паразитофауны могут иметь достаточно большое значение в оценке клинического статуса содержащихся в неволе птиц. Выявленный состав напрямую зависит от трофико-хорологических связей хозяина. В связи с этим, логично, что наиболее разнообразным составом гельминтофауны среди дневных хищных птиц как в природе [21,22], так и в наших исследованиях, обладают ястребы.
За исключением капиллярий и аскаридий, все выявленные паразиты относились к биогельминтам, обладающим сложным циклом развития со сменой хозяев. У птиц, изъятых из естественных биотопов, в дальнейшем следует ожидать отсутствия повторного заражения и естественного обеднения видового состава паразитофауны в условиях вольерного содержания. Однако следует подчеркнуть, что большинство выявленных видов паразитов являются высокопатогенными для птиц. Так, физалоптеры вызывают изъязвление слизистой оболочки пищеварительного канала, рвоту, гибель [25], трематоды-стригеаты при неблагоприятном течении болезни -сильное нарушение пищеварения, диарею, сопровождающуюся угнетением и
летаргией [18,26], акантоцефалы - прободные язвы тонкого кишечника. В свою очередь, с высокой долей вероятности можно ожидать значимого увеличения экстенсивности и интенсивности инвазии геогельминтами в связи с образованием устойчивых очагов.
О широком распространении капилляриоза в природе среди соколообразных свидетельствуют литературные данные [18,21,25]. Капиллярии при высокой интенсивности инвазии в кишечнике вызывают у соколов анорексию, расстройства пищеварения, орофарингеальное и эзофагальное поражение [25]. Все это свидетельствует о необходимости в дальнейшем разработки адекватных мер борьбы с выявляемыми в питомниках гельминтозами, в первую очередь - с капилляриозом, учитывающими биологические особенности хищных птиц, и о необходимости проведения дегельминтизации при помещении их в условия вольерного содержания. Очевидно также, что заражение всех исследованных птиц биогельминтами произошло во время их обитания в природе.
ВЫВОДЫ
Значения биохимических показателей сыворотки крови у соколиных птиц вольерного содержания в условиях питомника, исследованные в период физиологического покоя, не обнаруживают значимых отклонений от известных данных и могут являться показателями клинического состояния. Видовых различий у птиц трех видов семейства соколиные не выявлено. Полученные результаты могут служить для обогащения имеющихся данных и установления точных референтных значений биохимических показателей крови хищных птиц семейства соколиных.
Исследования фекалий могут являться надежными маркерами первичной оценки состояния здоровья птиц при содержании в искусственных условиях.
Обнаружена высокая зараженность у хищных птиц вольерного содержания гельминтами различных систематических групп без проявления клинических признаков гельминтозов.
Для хищных птиц вольерного содержания существует риск развития клинически выраженного капилляриоза, ассоциированного с нематодой C. falconis, в связи с формированием устойчивых очагов инвазии.
БИБЛИОГРАФИЯ
1. Флинт В.Е. Разведение редких видов птиц - М.:Агропромиздат,1986. -206с.
2. Алтухов Ю.П. Генетические процессы в популяциях - М.:Наука, 1983.- 276с.
3. Дягилец Е.Ю., Тимерин И.В. Возрастные и сезонные особенности биохимических показателей крови птиц // Материалы Vni Междунар.конгресса по проблемам ветеринарной медицины мелких домашних животных - Москва,6-8 апреля, 2000. -М.,2000. - С.60-63.
4. Дягилец Е.Ю., Белоновская О.С. Возрастные отличия биохимических показателей крови попугаев // Вопросы физико-химической биологии в ветеринарии - Сб.статей.
- М.,2002. - С.56-62.
5. Дягилец Е.Ю., Белоновская О.С. Сезонные отличия биохимических показателей крови попугаев // Вопросы физико-химической биологии в ветеринарии - Сб.статей.
- М.,2002. - С.63-67.
6. Пименов Н.В. Диагностика, профилактика и меры борьбы с основными инфекциями в голубеводстве - М.: Колос, 2010. - 96с.
7. Азаубаева Г.С. Картина крови у животных и птиц - Курган: Зауралье, 2004. - 168с.
8. Котельников Г.А. Гельминтологические исследования животных и окружающей среды - М.: Колос, 1984. -с.47.
9. Vergueau-Grosset C., Beaufrere H., Ammersbach M. Clinical biochemistry // Avian medicine. - Chart 13.Advances in clinical pathology and diagnostic medicine - 1994.-Wingers Publication.- P.487-510.
10. Greenacre C.B., Flatland B., Souza M.J. Comparison of avian biochemical test results with Abaxis Vet Scan and Hitachi 911 analyzers //J.Avian.Med.Surg.- 2008.-v.22.- P.291-299.
11. Пименов Н.В. Клиническая интерпретация биохимических показателей крови животных. Методические указания.- М.:МГАВМиБ, 2005. - 32с.
12. Hochlithner M. Biochemistries// Avian medicine. Principles and Application.- 1994.-Wingers Publication.- P.223-243.
13. Lumeij J.T. The influence of blood sample treatment on plasma potassium concentration in avian blood//Avian pathology. - 1985.- v.14.- P.257-260.
14. Woerpel R., Rosskopf W. Clinical experience with avian laboratory diagnostics//Vet.Clin.of N.-Amer.:Small Animal Pract. - 1984. -v.14,№2. - P.249-286.
15. Flammer K. Basic laboratory diagnostic techniques in avian practice // Proc.Assoc.Avian.Vet.- 1985. - 283-293.
16. Samour J., Howlett J.C. Haematology analisys // Avian medicine.-ed.2. - Philadelphia P.A., 2008.
17. Скрылева К.А., Микляева М.А. Гормоны крови хищных птиц// Изучение и охрана хищных птиц Северной Евразии: Матер.V Междунар.конф. по хищным птицам Северной Евразии. - Иваново, 4-7 февр.2008.
18. Atcinson C.T., Thomas N.J., Hunter D.B. Parasitic diseases of wild birds - Yowa, 2008. -557p.
19. Черепанов А.А., Москвин А.С., Котельников Г.А., Хренов В.М. Дифференциальная диагностика гельминтозов по морфологическому строению яиц и личинок гельминтов - М., 1999. - 76с.
20. Мозговой А.А. Аскаридаты животных и человека // Основы нематодологии. - т. 2, кн.2. - .- М.: Наука, 1953. - С. 343-349.
21. Валуев В.А. Гельминты диких птиц Башкоркостана // Ж. Паразитология, 2010. - т. 44. - №5.- С.419-422.
22. Иванов В.М., Калмыков А.П., Семенова В.В. Влияние трофических связей у птиц на их гельминтофауну в дельте Волги и Северном Каспии // Поволжск. экол. журн.. -2013. - №1. - С29-41.
23. Ежков В.О.Заболеваемость экзотических птиц в Казани // Матер.Междунар.Науч.-Практ.конф.- Казань, 2003. - Ч.1.- С.347-348.
24. Ежков В.О. Морфологические особенности нарушения метаболизма у диких, экзотических и декоративных птиц // Ветеринарный врач. - 2007. - №4. - С.14-17.
25. Маилян Э.С. Гельминтозы птиц семейства Falconidae (соколиные) (по материалам стран региона Персидского залива) // Актуальные проблемы инфектологии и паразитологии: Матер.1 Междунар.юбилейн.конф., посв.110-летию со дня открытия проф. К.Н. Виноградовым сибирской двуустки у человека.-Томск, 2-5 апр.2011. - М.: РУДН, 2011.
26. Dedrick M.L. Note on a strigeid trematode: an intestinal parasite of a prairie falcon // J. of the North Amer. Falconers Assoss. - 1965.- N4. - P.12-14.
