Бактериальногрибковое сообщество в крови у амбулаторных пациентов с терапевтическими заболеваниями Текст научной статьи по специальности «Фундаментальная медицина»

ВЕСТНИК ГЕМАТОЛОГИИ, том XIV, № 4, 2018

безопасна и эффективна. Вакцинация реципиентов почки против гриппа снизила не только риск бактериальной пневмонии, но и риск отторжения трансплантата и летального исхода. Применение живых вакцин у пациентов с ИД требует соблюдения дополнительных условий. При вспышках кори этих пациентов среди контактных целесообразно вакцинировать при условиях: серонегативность, отсутствие болезни трансплантат против хозяина и истечение не менее 2 лет после трансплантации. При намеченной трансплантации солидных органов живые вакцины можно применять при отсутствии иммуносупрессии и не позже 4 недель до трансплантации. В целом при соблюдении необходимых рекомендаций вакцинация обеспечивает значительное уменьшение урона от инфекций в группах риска. При разработке рекомендаций учитывают комплекс факторов: эпидемиологические (частота и урон от инфекции в общей популяции и группах риска, этиологическая структура инфекционной заболеваемости в общей популяции и различных группах риска, пути передачи возбудителя, проживание на эндемичных территориях), иммунологические (врожденный или приобретенный ИД, дефектные звенья иммунной системы и глубина ИД, инфекционный и вакцинальный анамнез), клинико-иммунологические (роль основной

патологии и ИСТ в развитии ИД в различных группах риска; время проведения ИСТ и трансплантации, активности антител и иммуноцитов до начала ИСТ и трансплантации), биотехнологические (характеристика вакцин — живые или инактивированные, тип инактивированных вакцин), научно-организационные (наличие эффективных вакцин против инфекций с наибольшим уроном в группах риска), роль ближайшего окружения в защите групп риска.

Выводы: 1. Урон от инфекций в группах риска, обусловленного иммунодефицитами, существенно больше урона в общей популяции. Величина такого урона зависит от особенностей группы риска и применяемой иммуносу-прессивной терапии, от свойств возбудителя инфекции.

2. Научные рекомендации по защите групп риска вакцинацией разработаны с учетом широкого комплекса факторов.

3. Вакцинация иммунодефицитных лиц значительно снижает урон от контролируемых инфекций в этих группах и число источников инфекции в общей популяции.

4. Пациенты с иммунодефицитами должны рассматриваться как приоритетные группы для вакцинации, независимо от того, входят ли они в состав целевых групп в конкретной стране.

Каргальцева Н. М.1, Борисова О. Ю.2, Кочеровец В. И.3, Бурбелло А. Т.4

1 Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования «Военно-медицинская академия имени С. М. Кирова» Министерства обороны Российской Федерации, г. Санкт-Петербург

2 Федеральное бюджетное учреждение науки «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г Н. Габричевского» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, г. Москва

3 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования Первый Московский государственный медицинский университет им. И. М. Сеченова Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Москва

4 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Северо-Западный государственный медицинский университет имени И. И. Мечникова» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Санкт-Петербург

БАКТЕРИАЛЬНО-ГРИБКОВОЕ СООБЩЕСТВО В КРОВИ У АМБУЛАТОРНЫХ ПАЦИЕНТОВ С ТЕРАПЕВТИЧЕСКИМИ ЗАБОЛЕВАНИЯМИ

Введение. Полимикробность возбудителей играет как этиологическую, так и клиническую роль в заболевании. Сложность диагностики и подбора целевой антимикробной терапии сказывается на прогнозе для конкретного пациента. В литературе приводились примеры полимикробности гемокуль-тур, которые характеризовались сочетанием бактерий и грибов у стационарных (1,9 %)

и у амбулаторных (8,3 %) пациентов. Определенный симбиоз складывается у грибов p. Candida со стафилококками, потому что, как стало известно, бактериальный пептидогли-кан поддерживает рост дрожжевых клеток и инициирует рост мицелия, а инвазивная мицелиальная форма гриба способствует распространению кокковой инфекции по организму.

Vвсероссийская научно-практическая конференция с международным участием «ИНФЕКЦИИ И ИНФЕКЦИОННАЯ БЕЗОПАСНОСТЬ В ГЕМАТОЛОГИИ И СЛУЖБЕ КРОВИ»

Цель. Выявление бактериально-грибковых ассоциаций в крови у терапевтических пациентов.

Материалы и методы. Материалом для микроскопического и культурального методов исследования крови служил лейкоцитарный слой пробы периферической крови. Мазки крови окрашивали по Граму. Микробиологическое исследование крови проводили по патентным методикам. Посев крови проводили на высоко питательные гемагары (сердечно-мозговые) с культивированием в аэробных и анаэробных условиях. За текущий год была исследована микробиологически кровь 25 амбулаторных пациентов с хроническими заболеваниями, среди которых были: заболевания кожи (60 %), крови (20 %), нервной системы и суставов (по 8 %) и с ознобом (4 %).

Результаты. Гемокультура была получена у 6 пациентов (24 %). Выделенные микроорганизмы состояли из 5 бактериальных штаммов и 1 штамма гриба p. Candida. Все бактериальные

Санкт-Петербург 29-30 ноября 2018 г.

штаммы были грамположительными микроорганизмами: стафилококки, стрептококк и Corynebacterium JK. Микроскопическое исследование крови показало наличие в крови грамположительных кокков и грибов в 100 % случаев. Кокки располагались в свободном состоянии между клетками крови и в адгези-рованном — на эритроцитах. Обнаруженные в мазках грибы находились в разных формах: дрожжевые клетки (100 %), в стадии почкования (28 %), нити мицелия (32 %) и в состоянии фагоцитоза (28 %).

Выводы. Назначение комплексной антибактериальной и антигрибковой терапии на основании обнаруженных бактериально-грибковых ассоциаций имело клинический результат, что подтвердило нарастающую этиологическую значимость грибов p. Candida и клинико-био-логическую особенность сообщества из грамположительных кокков и грибов p. Candida в крови при патологическом процессе.

Касьянов А. Д., Чечеткин А. В., Голованова И. С., Макеев А. Б.

Федеральное государственное бюджетное учреждение «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства», г. Санкт-Петербург

СОВРЕМЕННЫЙ ПОДХОД К ИЗМЕРЕНИЮ ОСТАТОЧНЫХ ЛЕЙКОЦИТОВ В КОМПОНЕНТАХ КРОВИ

Введение. Переливание свободных от лейкоцитов компонентов снижает риск инфицирования реципиента. При переливании алло-генных серопозитивных компонентов крови с примесью лейкоцитов, превышающей 1*106 в дозе, реципиенту могут передаваться цито-мегаловирус, вирус Эпштейна-Барр и другие герпесвирусы, Т-лимфотропный вирус человека I и II типа, парвовирусы. Кроме того, лейкоциты могут быть инфицированы аденовирусами, вирусами гриппа, кори, паротита, краснухи, ретровирусами, иерсиниями и прионами. В начале 90-х гг. наиболее распространенным был ручной способ определения с использованием метода световой микроскопии и гемоци-тометра большого объема (счетной камеры Nageotte). Внедрение в рутинную трансфузи-онную практику использования компонентов крови, обедненных лейкоцитами, стимулировало разработку технологий и валидацию методов контроля остаточных лейкоцитов в трансфузионных средах. Согласно требовани-

ям стандарта качества содержание остаточных лейкоцитов не должно превышать 106 клеток в единице в компонентах крови, обедненных лейкоцитами, что может быть подтверждено или опровергнуто лишь при использовании аппаратуры с высокой разрешающей способностью.

Цель. Определение количества остаточных лейкоцитов в лейкоредуцированных компонентах крови с помощью камеры «Nageotte» и аппарата для оптического подсчета остаточных лейкоцитов «АЭАМ-гШВС».

Материалы и методы. В качестве исследуемого материала использовали образцы эритроцитных взвесей (ЭВ) в добавочном растворе (п = 30), тромбоцитные концентраты (ТК), полученные методом афереза (п = 47), донорскую плазму до замораживания (п = 24). Остаточное содержание лейкоцитов оценивали методом световой микроскопии с помощью гемоцитометра «Nageotte» (50 мкл) и аппарата для оптического подсчета остаточных лейко-