ф
Клин. онкогематол. 2014; 7(4): 551-563
ГЕМАТОЛОГИЯ
Klin. Onkogematol. 2014; 7(4): 551-563
|^|
HEMATOLOGY
КЛИНИКА, ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕНИЕ МИЕЛОИДНЫХ ОПУХОЛЕЙ
MYELOID
MALIGNANCIES
Ф
Аллогенная трансплантация гемопоэтических стволовых клеток при миелодиспластических синдромах и клиническое значение гиперэкспрессии гена WT1
Н.Н. Мамаев1, А.В. Горбунова1, ТЛ. Гиндина1,
Е.В. Морозова1, Я.В. Гудожникова1, ОА. Слесарчук1,
ВН. Овечкина1, АА. Рац1, ЭГ. Бойченко2,
ЕА. Украинченко3, В.М. Кравцова1, АВ. Евдокимов1,
И.М. Бархатов1, С.Н. Бондаренко1, Б.В. Афанасьев1
1 НИИ детской онкологии, гематологии и трансплантологии
им. Р.М. Горбачевой, Первый Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. акад. И.П. Павлова, ул. Рентгена, д. 12, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 197022
2 Детская городская больница № 1, ул. Авангардная, д. 14, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 198205
3 Александровская городская больница № 17, пр-т Солидарности, д. 4, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 193312
Представлены результаты аллогенной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток (аллоТГСК) у 17 больных (11 — мужского пола, 6 — женского) с миелодиспластиче-ским синдромом (3 — РА/РАКС/РЦМД, 5 — РАИБ-1, 7 — РАИБ-2 и 2 — ЮММЛ) в возрасте от 1 до 55 лет (средний возраст 26 лет). Цитогенетические исследования были проведены у всех пациентов. У 7 (41 %) из них имела место моносомия 7, которая в 4 наблюдениях была связана с другими нарушениями кариотипа. Кроме того, обнаружены делеции 11q23 (n = 3), трисомии 8 (n = 2) и 21 (n = 2), вовлечение в перестройки 3q (n = 2), транслокация t(6;9) (n = 1) и другие, более редкие нарушения кариотипа. Перед аллоТГСК гипометилирующие агенты (ГА) получили 11 (65 %) из 17 больных. У половины пациентов ГА оказались эффективными. Для подготовки к аллоТГСК были использованы аблативный (бусульфан, циклофосфамид) или с уменьшенной токсичностью (флударабин, цикло-фосфамид) режимы кондиционирования (4 и 13 больных соответственно). В связи с неприживлением трансплантата или развитием посттрансплантационных рецидивов у 6 больных трансплантации были проведены повторно. Молекулярный мониторинг минимальной остаточной болезни и раннее распознавание возможного посттрансплантационного рецидива осуществляли с помощью серийного измерения уровня экспрессии гена WT1 и донорского химе-ризма. Максимальные значения WT1 варьировали от 15 до
Allogeneic Hematopoietic Stem Cell Transplantation in Myelodysplastic Syndromes and Clinical Significance of WT1 Gene Overexpression
N.N. Mamaev1, A.V. Gorbunova1, T.L. Gindina1,
E.V. Morozova1, Ya.V. Gudozhnikova1, OA. Slesarchuk1, VN. Ovechkina1, AA. Rats1, E.G. Boichenko2,
EA. Ukrainchenko3, VM. Kravtsova1, A.V. Evdokimov1, IM. Barkhatov1, SN. Bondarenko1, B.V. Afanas’ev1
1 RM Gorbacheva Memorial Research Institute
of Children Oncology, Hematology and Transplantation, First Pavlov State Medical University of St.Petersburg, 12 Rentgena str.,
Saint Petersburg, Russian Federation, 197022
2 Municipal Children’s Hospital No. 1, 14 Avangardnaya str.,
Saint Petersburg, Russian Federation, 198205
3 Alexandrovskaya Municipal Hospital No. 17, 4 pr-t Solidarnosti, Saint Petersburg, Russian Federation, 193312
_________________ABSTRACT___________________
The results of allogeneic hematopoietic stem cell transplantation (HSCT) in 17 patients (pts, 11 male, 6 female) with myelodysplastic syndromes (3 RA/RARS/RCMD, 5 RAEB-1, 7 RAEB-2, 2 JMML) are presented. The median age was 26 years with a range between 1 and 55 years. Serial cytogenetic investigations were carried out in all of them. Seven pts demonstrated monosomy 7, which was associated with other chromosome abnormalities in 4 cases. In addition, deletion at 11q23 (n = 3), trisomy 8 (n = 2) and 21 (n = 2), involvement into rearrangement at 3q (n = 2), t(6;9) translocation, and others more rare abnormalities were found. Prior to aHSCT, 11 of 7 received hypomethylating agents (HA) which proved to be effective in a half of them. In order to prepare for aHSCT, ablative (busulfan, cyclophosphamide) or non-ablative (fluda-rabine, cyclophosphamide) conditioning regimes were applied (4 and 13 respectively). Repeated aHSCT was carried out in 6 pts because of transplant rejection or post-transplant relapses. Molecular monitoring of minimal residual disease as well as early diagnosis of these relapses was performed by means of serial tests of the WT1 gene level expression and donor chi-merism. Maximum WT1 values varied between 15 and 43133 copies/104 copies of ABL gene; and molecular relapses were registered in a half of them, including 5 patients with transformation into acute leukemia (AL). HA were used for prevention and treatment of relapses in 4 (24 %) patients; and HA were combined with donor lymphocyte infusions. Standard chemo-
© 2014 практическая медицина 551
Ф
Ф
ONCO_4_2014.indd Sec3:551
14.01.2015 15:54:46
$
Н.Н. Мамаев и др.
43 133 копий/104 копий гена ABL, а молекулярные рецидивы заболевания были отмечены у половины, в т. ч. у 5 больных с трансформацией миелодиспластического синдрома (МДС) в острый лейкоз (ОЛ). Для профилактики и лечения рецидивов у 4 (24 %) больных использовали гипометилирующие агенты, которые комбинировали с инфузиями донорских лимфоцитов. Стандартные противоопухолевые средства подключали к лечению рецидивов относительно редко. В настоящем исследовании подтверждено, что гиперэкспрессия гена WT1 является не только важным молекулярным параметром своевременной диагностики посттрансплантационных рецидивов МДС/ОЛ, но и может использоваться для оценки качества лечения пациентов.
I Ключевые слова: миелодиспластические синдромы, аллогенная ТГСК, посттрансплантационные рецидивы, минимальная остаточная болезнь, серийная экспрессия гена WT1.
Принято в печать: 30 сентября 2014 г.
Для переписки: Н.Н. Мамаев, д-р мед. наук, профессор, ул. Рентгена, д. 12, Санкт-Петербург, Российская Федерация, 197022; тел.: +7(812)233-12-43; e-mail: [email protected]
Для цитирования: Мамаев Н.Н., Горбунова А.В., Гиндина Т.Л., Морозова Е.В., Гудожникова Я.В., Слесарчук О.А., Овечкина В.Н.,
Рац А.А., Бойченко Э.Г., Украинченко Е.А., Кравцова В.М.,
Евдокимов А.В., Бархатов И.М., Бондаренко С.Н., Афанасьев Б.В. Аллогенная трансплантация гемопоэтических стволовых клеток при миелодиспластических синдромах и клиническое значение гиперэкспрессии гена WT1. Клин. онкогематол. 2014; 7(4): 551-563.
therapy was applied for these purposes relatively rarely. This study demonstrated WT1 gene overexpression to be not only an important marker for diagnosis of post-transplant MDS/AL relapses, but it also can be used for evaluation of the treatment efficacy.
I Keywords: myelodysplastic syndromes, allogeneic HSCT, post-transplant relapses, minimal residual disease, molecular monitoring, serial WT1 gene expression.
Accepted: September 30, 2014
For correspondence: N.N. Mamaev, MD, PhD, DSci, Professor,
2 Rentgena str., Saint Petersburg, Russian Federation, 197022;
Tel: +7(812)233-12-43; e-mail: [email protected]
For citation: Mamaev N.N., Gorbunova A.V., Gindina T.L., Morozova E.V., Gudozhnikova Ya.V., Slesarchuk O.A., Ovechkina V.N., Rats A.A., Boichenko E.G., Ukrainchenko E.A., Kravtsova V.M., Evdokimov A.V., Barkhatov I.M., Bondarenko S.N., Afanas’ev B.V. Allogeneic Hematopoietic Stem Cell Transplantation in Myelodysplastic Syndromes and Clinical Significance of WT1 Gene Overexpression.
Klin. Onkogematol. 2014; 7(4): 551-563 (In Russ.).
#
#
ВВЕДЕНИЕ
Миелодиспластические синдромы (МДС) — группа клональных заболеваний системы крови, для которых характерны различной степени выраженности дисплазия 1, 2 или 3 ростков кроветворения и цитопении с возможной трансформацией в один из вариантов острых миелоидных лейкозов (ОМЛ). Единственным способом излечения этих заболеваний является аллогенная трансплантация гемопоэтических стволовых клеток (аллоТГСК), которую из-за пожилого возраста больных, а также сопутствующих заболеваний выполнить непросто. Кроме того, ситуация с лечением МДС усугубляется высокой частотой посттрансплантационных рецидивов[1].
В исследованиях последних лет показано, что в ряде своевременно диагностированных рецидивов после ауто-ТГСК при МДС с успехом могут использоваться инфузии донорских лимфоцитов (ИДЛ) и гипометилирующие агенты (ГА) [2]. Следует отметить, что предсказать или своевременно диагностировать начинающийся рецидив при МДС с помощью широко распространенных специфических молекулярных и цитогенетических маркеров не всегда представляется возможным [3], что ставит исследователей перед необходимостью поиска других, возможно менее специфичных, но прогностически более важных, параметров опухолей. Одним из таких предикторов может быть высокая экспрессия в опухолевых клетках гена WT1. К настоящему времени наибольший опыт оценки прогностического значения данного показателя в клинике накоплен при ОМЛ [4—17]. В то же время
подобных работ при МДС [18—26], особенно у больных, которым выполнена аллоТГСК [27], опубликовано значительно меньше.
Свое необычное название ген WT1 получил от опухоли Вильмса, в развитии которой он имеет приоритетное значение. Ген WT1 расположен на коротком плече хромосомы 11 в локусе 11p13 и ответственен за кодирование важного транскрипционного фактора. В физиологических условиях этот ген высоко экспрессируется в клетках развивающейся мочеполовой системы, в мезотелии, а также в незрелых элементах костного мозга, крови и селезенки [28]. При этом уровень экспрессии данного гена в костном мозге здоровых лиц выше, чем в крови [29]. Немаловажно и то, что гиперэкспрессия гена WT1 может иметь место в условиях регенерации кроветворения [30].
По сравнению с ОМЛ исследований уровня экспрессии гена WT1 при МДС проводилось меньше [2, 18—26], а полученные результаты порой противоречивы. Вместе с тем надежность этого параметра в диагностике минимальной остаточной болезни и рецидивов заболевания [23, 26], в т. ч. посттрансплантационных [2, 27], по мнению различных исследователей, довольно высокая. Установлена также его корреляционная связь с международным индексом IPSS [20]. На основании данных первых опубликованных исследований создалось впечатление, что при рецидивах МДС ген WT1 экспрессируется сильнее, чем на момент постановки диагноза, в то время как после успешно проведенной аллоТГСК уровень его экспрессии закономерно снижается. Поскольку большинство упомянутых выше исследований
552
Клиническая онкогематология
ONCO_4_2014.indd Sec3:552
14.01.2015 15:54:46
$
Значение гиперэкспрессии гена WT1 при миелодиспластических синдромах
было сфокусировано на прогностической значимости данного показателя в плане выживаемости пациентов, возможности мониторинга уровня экспрессии гена в посттрансплантационный период изучены пока недостаточно [27]. Не вызывает сомнений, что подобные исследования вскоре могут иметь чрезвычайно важное значение как в теоретическом, так и клиническом плане [2].
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Изучена в динамике экспрессия в опухолевых клетках гена WT1 у 17 больных (11 — мужского пола, 6 — женского) в возрасте от 1 до 55 лет (средний возраст 26 лет) с различными вариантами МДС: 3 — РА/РАКС/РЦМД (рефрактерная анемия/рефрактерная анемия с кольцевыми сидеробластами/рефрактерная цитопения с многолинейной дисплазией), 5 — РАИБ-1 (рефрактерная анемия с избытком бластов), 7 — РАИБ-2, в т. ч. один из апластической анемии, и 2 — ЮММЛ (ювенильный миеломоно-цитарный лейкоз). ТГСК проводили от HLA-совместимых родственных (п = 9) и неродственных (п = 14) доноров (включая вторые аллоТГСК). В 6 наблюдениях выполнена повторная аллоТГСК из-за неприживления трансплантата или из-за развития раннего посттрансплантационного рецидива (табл. 1). В качестве режимов кондиционирования у большинства больных использовались немиелоабла-тивные с флударабином и циклофосфамидом. Миело-аблативные режимы кондиционирования с бусульфаном и циклофосфамидом применены у 4 пациентов. Для профилактики реакции «трансплантат против хозяина» (РТПХ) чаще всего использовали метотрексат и микофенолат, реже — антилимфоцитарный глобулин.
Молекулярный мониторинг минимальной остаточной болезни и раннюю диагностику рецидивов заболевания осуществляли тестированием уровня экспрессии гена WT1 методом полимеразной цепной реакции в реальном времени (RT-PCR) на выделенной из клеток костного мозга и крови РНК. Донорский химеризм и уровень экспрессии гена EVI1 определяли стандартным способом [31].
РЕЗУЛЬТАТЫ
Серийные цитогенетические исследования
Серийные цитогенетические исследования были проведены у всех пациентов (табл. 2). У 7 из них имела место моносомия 7 (№ 1—7), которая в 4 наблюдениях (№ 3, 5, 6, 7) была связана с другими нарушениями кариотипа. Следует отметить, что у 2 больных (№ 1 и 2) моносомия 7
Таблица 1. Характеристика больных
Показатель Число больных
Число больных 17
Средний (диапазон) возраст, лет 26 (1-55)
Пол (мужской/женский) 11/6
Вариант МДС перед аллоТГСК
РА/РАКС/РЦМД 3
РАИБ-1 5
РАИБ-2 7
ЮММЛ 2
Результаты цитогенетического и молекулярнобиологического исследований
Моносомия 7 4
-7 с другими перестройками 3
Делеция11q23 3
Трисомия 8 2
Вовлечение 3q 2
Другие повреждения 3
Гиперэкспрессия гена EVI1 4
Тип донора, n (%)
Неродственный совместимый 13 (76)
Сиблинг 2 (12)
Родственный, частично совместимый 1 (6)
Гаплоидентичный родственный 1 (6)
Вторая аллоТГСК, n (%) 6 (35)
Гаплоидентичный родственный 4 (66)
Сиблинг 1 (17)
Неродственный совместимый 1 (17)
Среднее (диапазон) количество пересаживаемых CD34+, х 106/кг 3,49 (1,3-12,3)
Среднее (диапазон) время наблюдения, мес. 17,6 (2-47)
Трансформация в острый лейкоз, n (%) 5 (30)
Гипометилирующие агенты, n (%) 11 (65)
До аллоТГСК 7
До и после аллоТГСК 4
Инфузии донорских лимфоцитов 4
Медиана (диапазон) общей выживаемости после аллоТГСК, мес. 17,6 (2-47)
Летальный исход, n (%) 7 (41)
Причины смерти
Прогрессирование заболевания, n (%) 5 (72)
Неприживление трансплантата, n (%) 1 (14)
РТПХ, инфекция, n (%) 1 (14)
после аллоТГСК перестала определяться, а у 3-го (№ 3) сохранялась в период всего наблюдения (рис. 1). В одном из наблюдений (№ 7) моносомия 7 первоначально была выявлена до аллоТГСК методом FISH (флюоресцентная
Рис. 1. Кариотип клеток костного мозга ребенка (№ 3) c ювенильным вариантом мие-ломоноцитарного лейкоза. Иллюстрация сочетания моносомии 7 с интерстициальной делецией короткого плеча хромосомы 12 [45,XY, -7, del(12)(p11p13)]
www .medprint.ru
553
ONCO_4_2014.indd Sec3:553
14.01.2015 15:54:46
$
Н.Н. Мамаев и др.
Таблица 2. Результаты серийных цитогенетических исследований у больных с миелодиспластическими синдромами и аллоТГСК
Пациент Диагноз, дата Дата Время исследования
№ Инициалы, возраст (лет), пол аллоТГСК исследования Кариотип (до/после аллоТГСК)
1 Ф.Т., 22, м РАИБ-1 2.02.12
25.10.12 46,XX[20] После
27.02.12 46,XX[20] После
28.03.12 46,XX[20] После
2 А.В., 16, м РАИБ-1 2.03.11 45,XY, -7[20] До
11.05.12 7.12.11 45,XY, -7[6]/46,XY[4] До
8.05.12 46,XY[20] До
28.01.13 46,XY[20] После
14.11.13 46,XY[20] После
3 С.М., 5, м ЮММЛ 22.12.09 45,XY, -7[20] До
13.03.12 29.06.10 45,XY, -7[20] До
26.09.11 45,XY, -7[20] До
3.02.13 45,XY, -7[13]/45, idem, del(12)(p11p13)[7] До
9.04.12 46,XY[20] До
5.04.13 45,XY, -7[20] До
23.05.13 45,XY, -7[20] После
16.10.13 45,XY, -7[16]/46,XY[2] После
28.10.13 45,XY, -7[15]/45, idem, del(12)(p11p13)[5] После
18.11.13 45,XY, -7[13]/45, idem, del(12)(p11p13)[7] После
25.11.13 45,XY, -7[18]/45, idem, del(12)(p11p13)[2] После
15.04.14 45,XY, -7[14]/46, idem, +21[3]/48, idem, +19, +21[3] После
4 З.С., 18, ж РАИБ-2 30.01.07 46,XX[20] До
15.03.12 13.03.09 46,XX[20] До
25.10.12 15.03.12 45,XX, -7[20] До
7.12.12 26.04.12 45,XX, -7[20] После
23.07.12 45,XX, -7[20] После
15.10.12 45,XX, -7[20] После
5 М.В., 1, м ЮММЛ 16.10.13 45,XY, -7[16]/46,XY[2] До
11.12.13 28.10.13 45,XY, -7[15]/45,XY, -7, del(11)(q23)[5] До
25.12.13 45,XY, -7[18]/45,XY, -7, del(11)(q23)[2] После
6 П.К., 30, м РАИБ-1 22.05.13 46,XY, -7, +21[19]/46,XY[1] До
5.06.13 17.07.13 46,XY[20] После
1.08.13 5.09.13 nuc ish(CEP7,D7S486)x2[200] 46,XY[20] После После
3.10.13 46,XY[20] После
12.03.14 46,XY[20] После
7 П.Т., 54, ж РАИБ-2 1.07.13 46,XX[20] До
31.10.13 21.10.13 nuc ish(CEP7,D7S486)x1/(CEP7,S486)x2[40/160] До
9.12.13 46,XY[20] После
12.03.14 45,XX, -7, del(11)(q23)[7]/46,XX[13] После
8 П.А., 51, м РАКС 6.08.09 46,XY, del(11)(q23)[3]/46,XY[17] До
18.10.12 12.07.10 46,XY, del(11)(q23)[12]/46,XY[8] До
29.03.13 15.12.10 4.05.11 46,XY, del(11)(q23)[7]/46,XY[13] 46,XY, del(11)(q23)[16]/46,XY[4] До До
9.04.12 46,XY, del(11)(q23)[20] До
10.10.12 46,XY,del(11)(q23)[13]/46,XY[7] До
7.11.12 46,XX[20] После
28.11.12 46,XX[20] После
27.12.12 46,XX[20] После
30.01.13 46,XX[20] После
11.03.13 46,XX[20] После
24.04.13 17.06.13 nuc ish(CEPXx2)/(CEPX,CEPYx1)[192/8] 46,XX[20] После После
22.07.13 46,XX[20] После
9 К.Л., 55, ж РАИБ-2 20.05.10 9.01.14 12.11.09 46,XX[20] До
9.06.10 46,XY[20] После
26.08.10 46,XY[20] После
24.11.10 46,XY[20] После
12.01.11 46,XY[20] После
31.08.11 46,XY[20] После
19.12.11 46,XY[19]/46,XX[1] После
18.01.12 46,XX[7]/46,XY[13] После
26.03.12 46,XX[11]/46,XY[9] После
18.04.12 46,XY[2]/46,XX[9] После
16.05.12 46,XX[20] После
20.06.12 46,XY[2]/46,XX[18] После
25.07.12 46,XY[2]/46,XX, del(11)(q23)[2]/46,XX[16] После
Окончание на след. странице
554
Клиническая онкогематология
ONCO_4_2014.indd Sec3:554
14.01.2015
#
15:54:46
$
Значение гиперэкспрессии гена WT1 при миелодиспластических синдромах
Таблица 2. Окончание
Пациент Диагноз, дата аллоТГСК Дата исследования Кариотип Время исследования (до/после аллоТГСК)
№ Инициалы, возраст (лет), пол
27.08.12 46^[2]/46,ХХ, del(11)(q23)[4]/46,XX[14] После
26.09.12 46,XX, del(11)(q23)[2]/46,XX[17]/46,XY[1] После
14.11.12 46,XX[19]/46,XY[1] После
14.02.13 46,XX, del(11)(q23)[2]/46,XX[9]/46,XY[9] После
4.07.13 46,XX[16]/46,XY[4] После
25.09.13 46,XX[20] После
2.12.13 46,XX[20] После
23.01.14 46,XY[17]/46,XX[3] После
6.02.14 46,XY[20] После
10 Л.Е., 18, ж РА 14.01.12 46,ХХ[20] До
19.12.12 14.11.12 46,XX,+8[15] До
24.01.13 46,XX[20] После
14.02.13 nuc ish(CEP8)x2[200] После
27.03.13 46,XX[20] После
16.05.13 46,XX[20] После
15.07.13 46,XX[20] После
24.10.13 46,XX[20] После
27.01.14 46,XX[20 После
14.05.14 46,XX[20 После
11 Н.П., 12, м РАИБ-1 29.02.12 46,XY[20] До
9.08.12 29.02.12 nuc ish(D7S486,CEP7)x2[166] До
2.04.13 19.07.12 46,ХY[20] До
8.10.12 46,XY[20] После
23.10.12 46,ХY[20] После
26.11.12 46,XY[20] После
20.03.13 47,XY, +8[2]/46,XY[18] После
29.04.13 46,XX[20] После
20.06.13 46,XY[10]/46,XX[20] После
15.08.13 47,XY, t(2;19)(q21;q13), +8[7]/46,XX[1]/46,XY[12] После
12 М.Л., 40, ж РАИБ-2 14.12.11 46,ХХ, t(2;3)(p23;q26)[20] До
14.06.12 23.05.12 46,ХХ, t(2;3)(p23;q26)[20] До
27.06.12 46,XY[20] После
8.08.12 46,XY[20] После
5.09.12 46,XY[20] После
19.12.12 46,XY[20] После
28.02.13 46,XY[20] После
21.08.13 46,XY[20] После
30.10.13 46,XY[20] После
18.06.14 46,XY[20] После
13 Б.А., 54, м РАИБ-2 5.12.11 46,XY, t(3;5)(q25;q34)[20] До
24.04.12 4.04.12 46,XY, t(3;5)(q25;q34)[15]/46,XY[5] До
2.06.12 4.06.12 46,XY, t(3;5)(q25;q34)[8]/46,XY[12] После
26.09.12 46,XY, t(3;5)(q25;q34)[4]/46,XY[16] После
3.04.13 46,ХY, t(3;5)(q25;q34)[20] После
5.02.14 46,ХY, t(3;5)(q25;q34)[20] После
14 Р.А., 7, ж РАИБ-2 16.02.09 46,XX, t(6;9)(p23;q34) До
5.11.09 23.09.09 46,XX[20] До
(аутоТГСК) 26.11.09 46,XX[20] До
28.05.10 21.04.10 47,XX, t(6;9)(p23;q34), +8[20] До
17.05.10 47,XX, t(6;9)(p23;q34), +8[1]/46,XX[19] До
16.06.10 46,XY[2]/46,XX[18] До
24.06.10 46,XX[18] После
8.07.10 46,XX[10] После
15 М.А., 10, м РЦМД 11.02.10 46,XY[22]/92, <4n>[3] До
19.02.13 7.02.13 46,XY, del(21)(q12)[5]/92, <4n>[2]/46,XY[13] До
20.05.13 46,XY[20] После
27.02.14 46,XY[20] После
16 М.С., 16, м РАИБ-1 4.04.08 46Ж +1, dic(1;15)(p11;p11)[20] До
14.04.11 5.10.10 46,XY, +1, dic(1;15)(p11;p11)[20] До
3.02.11 46,XY, +1, dic(1;15)(p11;p11)[19]/46,XY[1] До
4.04.11 46,XY, +1, dic(1;15)(p11;p11)[20] До
3.05.11 46,ХХ[20] После
12.05.11 46,XX[20] После
16.06.11 46,XX[20] После
27.07.11 46,XX[20] После
20.10.11 46,XX[20] После
20.02.12 46,XX[20] После
28.05.12 46,XX[20] После
1.10.12 46,ХX[20] После
17 Г.А., 33, м РАИБ-2 21.03.13 46,XX[19]/46,XY[1] После
27.02.13 3.04.13 46,ХY, t(6;12)(p21;p13)[3]/46,XY[16] После
6.06.13 26.06.13 46,ХХ[20] После
www.medprint.ru
555
ONCO_4_2014.indd Sec3:555
Ф
14.01.2015
Ф
15:54:46
ф
ф
Н.Н. Мамаев и др.
Таблица 3. Терапия гипометилирующими агентами до/после аллоТГСК и инфузии донорских лимфоцитов
Пациент ГА (срок, препарат) Последний визит ОВ после
№ Дата аллоТГСК До ТГСК После ТГСК ИДЛ (срок, доза CD3/кг) или дата смерти аллоТГСК, дни
1 2.02.12 1 курс А 3 курса А н/д 29.06.12 150
2 11.05.12 1 курс Д н/д н/д 19.06.14+ 738+
4 15.03.12 3 курса Д н/д н/д 22.12.12 58
25.10.12
7.12.12
6 5.06.13 3 курса Д 5.09-11.09.13, А н/д 19.06.14+ 379+
7 31.10.13 4 курса А 18.02-24.02.14, А 27.02.14 (1 х 106) 19.06.14+ 549+
18.03-22.03.14, А 15.03.14 (5,5 х 106)
8 18.10.12 2 курса А н/д н/д 19.06.14+ 549+
29.03.13 н/д н/д н/д
9 20.05.10 3 курса Д 27.09-4.10.12, А 24.02.12 (1 х 105) 8.04.14 1461
25.10-1.11.12, А 21.03.12 (5 х 105)
22.11-29.11.12, А 20.04.12 (1 х 106)
20.12-27.12.12, А 29.05.12 (5 х 106)
17.01-24.01.13, А 20.06.12 (1 х 107)
19.03-26.03.13, А 25.07.12 (1,2 х 107)
26.04-3.05.13, А 5.09-11.09.13, А 17.10- 24.10.13, А 23.11- 30.11.13, А 28.08.12 (5 х 107)
9.01.14 н/д 10.04-14.04.12, Д 24.01.12
10 19.12.12 2 курса Д н/д н/д 19.06.14+ 488+
11 9.08.12 3 курса Д н/д 14.11.12 23.07.13 27.09.13 414*
2.04.13 н/д н/д н/д
13 24.04.12 3 курса Д 27.04-4.05.13, А 6.06- 13.06.13, А 7.07- 14.07.13, А 27.09- 4.10.13, А 26.10- 3.11.13, А н/д 19.06.14+ 786+
2.06.12 10.12-17.12.13, А
17 27.02.13 3 курса А н/д 11.04.13 (1 х 106) 14.05.13 (5 х 106) 29.06.13 123
6.06.13
А — азацитидин; Д — децитабин; н/д — не делали; ОВ — общая выживаемость. * Трансформация МДС в острый лейкоз.
гибридизация in situ), а после трансплантации в комбинации с делецией 11q23 стала определяться и при стандартном цитогенетическом исследовании. Делеция 11q23 обнаружена еще у 2 больных (№ 8 и 9). В 2 наблюдениях (№ 10 и 11) в кариотипе клеток была зафиксирована трисомия 8, причем в первом случае это имело место до аллоТГСК, а во втором — после нее. Вовлечение в перестройки хромосом 3-й пары было зарегистрировано у 2 пациентов (№ 12 и 13), причем у одной из них (№ 12) с присущей этой перестройке гиперэкспрессией гена EVI1. Из других изменений кариотипа заслуживали внимания транслокация t(6;9) (№ 14), трисомия 21 (№ 3 и 6), делеция длинного плеча хромосомы 21 (21q) (№ 15), а также такие более редкие перестройки кариотипа, как: а) 46,XY, +1, dic(1;15)(p11;p11) (№ 16); б) 46,XY, t(6;12) (p21;p13) (№ 17). Следует отметить, что у 4 пациентов с различными изменениями кариотипа (№ 1, 3, 5 и 12) имела место гиперэкспрессия гена EVI1 с максимальными показателями экспрессии 16—34 копии/104 копий гена ABL.
Поскольку на результаты основного исследования могло повлиять назначение части больных ГА в предтрансплантационный период и/или после аллоТГСК с подготовительной и/или лечебной целью, мы представили эту информацию отдельно ниже, в табл. 3. Число курсов ГА варьировало от 1 до 13, причем часть из них
556
комбинировалась с ИДЛ. Естественно, в условиях такой терапии состояние гемопоэза у некоторых больных существенно улучшалось.
Терапия гипометилирующими агентами и инфузии донорских лимфоцитов
Перед аллоТГСК 65 % больных получали азацитидин (Вайдаза) или децитабин (Дакоген). В дополнение эти же препараты подключали к проводимой терапии на посттрансплантационном этапе у больных с повышенным риском развития рецидивов (№ 9 и 11), а также при обнаружении молекулярных маркеров — предшественников рецидивов (№ 13). У больных № 7, 9, 11 и 17 лечение ГА комбинировали с ИДЛ (табл. 3).
Экспрессия гена WT1
Как видно из данных, представленных на рис. 2 и в табл. 4, повышенная экспрессия гена WT1 (> 250 копий/104 копий гена ABL) имела место у 14 из 17 обследованных больных, а ее максимальный уровень был в пределах 275—43 113 копий. По нашим данным, у половины больных (№ 1, 4, 5, 6, 7, 9, 11, 12 и 16) максимальный уровень экспрессии гена WT1 был выше 1000/104 копий гена ABL. У 3 других пациентов (№ 3, 8 и 10) уровень экспрессии WT1 занимал промежуточное положение и составлял 250—1000/104 копий гена ABL, а у
Клиническая онкогематология
ONCO_4_2014.indd Sec3:556
Ф
14.01.2015
Ф
15:54:46
ф
Значение гиперэкспрессии гена WT1 при миелодиспластических синдромах
Рис. 2. Результаты серийного измерения уровня экспрессии гена WT1 у 17 больных МДС до и в различный срок после аллоТГСК. Иллюстрация сохранения повышенной экспрессии гена WT1 у большинства пациентов. Пунктирной линий обозначен пороговый уровень экспрессии гена WT1 250 копий/104 копий гена ABL
Ф
2 больных РАИБ-1 и 2 — с РАИБ-2 (№ 2, 13, 15 и 17) не превышал порогового значения. Уровень экспрессии гена WT1 прогностически не зависел от возраста и пола пациентов, варианта МДС, кариотипа клеток и даже относительного содержания бластных клеток в изучаемых тканях. Что касается литературных данных, то такая корреляция с содержанием бластных элементов была отмечена как при ОМЛ (г = 0,56; p < 0,01) [17, 32], так и у больных МДС без предшествующего лечения (г = 0,51) [26]. Отсюда правомочно допущение, что основной причиной несоответствия содержания бластных клеток и уровня экспрессии гена WT1 у этих больных МДС могло быть лечение ГА, с помощью которого возможно достижение гематологических и даже цитогенетических ремиссий приблизительно в половине наблюдений [33—35]. В качестве альтернативного объяснения может быть также рассмотрена возможность экспрессии гена WT1 клетками, не входящими в бластный и стволово-клеточный субстрат МДС [26].
Иллюстрацией сказанному служит история болезни больной с РАИБ-2 (№ 9), у которой начальный кариотип клеток был не изменен, а 7,8—17,0 % кроветворных элементов в костном мозге были представлены бласт-ными клетками. После аллоТГСК содержание бластных элементов на какое-то время достигло контрольных цифр, что сопровождалось высоким уровнем донорского химеризма. Однако в марте — июне 2012 г. содержание бластных клеток в костном мозге стало увеличиваться, нарастала экспрессия гена WT1 до уровня 942 копии/104 копий гена ABL (см. табл. 4). С другой стороны, в период с августа 2012 г. по декабрь 2013 г. уровень экспрессии гена WT1 стал неуклонно увеличиваться, а донорский химеризм уменьшаться (до 10—5 %), в то время как умеренное повышение содержания бластных элементов в костном мозге (до 6,4 %) было зафиксировано лишь однократно. Из данных табл. 3 следует, что именно в это время больная получала азацитидин и ИДЛ как с профилактической, так и с лечебной целью, что, естественно, могло положительно отразиться на снижении уровня бластных клеток. Однако ввиду явных морфологических и молекулярных признаков посттрансплантационного рецидива МДС больной была предложена повторная неродственная аллоТГСК от полностью совместимого неродственного донора, которая была выполнена 09.01.2014 г. Несмотря на достигнутое после аллоТГСК восстановление гемопоэза и донорского химеризма, больная умерла. Причиной смерти стало прогрессирование заболевания на фоне инфекционных осложнений и полиорганной недостаточности.
www.medprint.ru
У другого больного с РАИБ-1 (№ 11) и исходно неизмененным кариотипом содержание бластных клеток в костном мозге на предтрансплантационном этапе достигало 5,6—10,0 %, а уровень экспрессии гена WT1 был достаточно высоким (3204 копии/104 копий гена ABL). АллоТГСК (09.08.2012 г.) была неэффективной, поскольку уменьшение донорского химеризма до 5—10 % было зафиксировано уже через месяц. Начиная с октября 2012 г. число бластных клеток в костном мозге и в крови увеличилось до 49 и 21 % соответственно. В свою очередь, рост числа бластных клеток сопровождался отчетливым увеличением уровня экспрессии гена WT1 до 11 486 копий/104 копий гена ABL. На основании полученных данных была констатирована трансформация МДС в острый лейкоз (ОЛ), что послужило поводом для проведения повторной аллоТГСК (02.04.2013 г.). К сожалению, эффект аллоТГСК был недолгим. Высокий донорский химеризм и отсутствие бластных элементов в костном мозге сохранялись лишь до июня 2012 г. К этому времени результаты контрольных исследований позволили диагностировать рецидив ОЛ с увеличением содержания бластных клеток в костном мозге и крови до 32—50 и 41 % соответственно. Неудивительно, что на этом фоне увеличение экспрессии гена WT1 достигло наивысших значений (43 113 и 38 895 копий/104 копий гена ABL). Справиться с таким посттрансплантационным рецидивом ОЛ не удалось. Как и у предыдущей больной, причиной смерти стало прогрессирование основного заболевания.
Напротив, у больного № 13 с диагнозом РАИБ-2 и кариотипом клеток 46,XY, t(3;5)(q25;q34) (рис. 3) из-за быстрого неприживления трансплантата аллоТГСК оказалась неэффективной, что привело к восстановлению исходного патологического гемопоэза. Несмотря на это, с помощью длительной (13 курсов) поддерживающей терапии азацитидином удовлетворительное качество жизни сохранялось у этого пациента в течение 1,5 года.
На наш взгляд, определенный теоретический и клинический интерес представляют также данные больной № 4, у которой МДС сформировался на фоне апластической анемии, что сопровождалось наличием в кариотипе моносомии 7, нарастанием в костном мозге числа бластных клеток до 12,6 % и отчетливо повышенным уровнем экспрессии гена WT1 до 1597 и 795 копий/104 копий гена ABL. АллоТГСК от полностью совместимого неродственного донора (25.10.2012 г.) из-за неприживления трансплантата оказалась неэффективной, так же как и предпринятая вскоре после этого (07.12.2012 г.) трансплантация от гаплоидентичной матери. Однако
557
ONCO_4_2014.indd Sec3:557
Ф
14.01.2015
Ф
15:54:46
$
Н.Н. Мамаев и др.
Таблица 4. Лабораторный мониторинг больных с миелодиспластическими синдромами, перенесших аллоТГСК
Пациент № Диагноз ТГСК Дата анализа Молекулярные маркеры Бластные клетки в костном мозге/крови, % Дата смерти, причина
Вид Дата WT1 Донорский химеризм,%
1 РАИБ-1 18.01.12 3151 3,4/7,0
25.01.12 н/о -/2,0
Алло, н/р, ж 2.02.12 2.02.12 н/о -/-
27.02.12 2,1 80-90 0,6/0
16.04.12 29,5 80-90 0,8/0
14.05.12 27,3 90-95 1,6/0 РТПХкш
27.06.12 8,1 > 95 0,2/0 30.10.12
2 РАИБ-1 7.06.11 н/о 0,4/0
21.12.11 122,0 6,4/0
Алло, н/р, м 11.05.12 28.05.12 21,5 90-95 3,2/0
29.06.12 н/о > 95 7,0/0
3.07.12 н/о > 95 0,8/0
12.07.12 н/о > 95 0,4/0
9.08.12 н/о > 95 2,0/0
4.09.12 н/о > 95 2,6/0
15.10.12 44 н/о -/-
14.01.13 н/о > 95 2,4/0
28.02.13 н/о > 95 5,0/0
29.07.13 н/о > 95 -/-
14.08.13 36,2 - -/-
14.11.13 12 - 3,4/0 19.06.14+
3 ЮММЛ 15.07.10 н/о -/-
28.02.11 н/о 11,0/5,0
26.09.11 н/о 12,2/-
Гапло, р, ж 13.03.12 2.04.12 н/о < 5 -/-
Неприживление 9.04.12 н/о < 5 18,0/
16.04.12 н/о < 5 -/-
28.05.12 н/о < 5 5,0/-
17.07.12 н/о н/о 8,0/-
21.03.13 н/о н/о 5,6/-
18.11.13 н/о н/о 10,0/-
23.12.13 н/о н/о -/5,0
ОЛ 3.02.14 864 н/о 42,2/-
5.03.14 н/о н/о 14,0/- 19.06.14+
4 РАИБ-2 15.03.12 30.01.07 н/о н/о 0,8/0
13.05.08 н/о н/о 0,6/0
5.03.09 н/о н/о 0,2/0
15.03.12 н/о н/о 0,8/0
26.04.12 1597 н/о 1,8/0
23.07.12 н/о н/о 0,6/0
Алло, н/р, ж 25.10.12 15.10.12 795 н/о 12,6/0
22.10.12 н/о н/о -/0
19.11.12 н/о < 5 0/0
Гапло, р, ж 7.12.12 4.12.12 н/о н/о -/0
Неприживление 18.12.12 н/о н/о -/0
22.12.12 н/о н/о -/0 22.12.12
5 ЮММЛ 17.10.13 н/о 12,0/7,0
25.11.13 1072 10,8/8,0
5.12.13 н/о 8,2/6,0
Алло, р, ж 11.12.13 9.01.14 288 80-90 2,8/-
5.02.14 1565 10-20 8,2/-
23.03.14 н/о н/о -/0
ОЛ 24.04.14 6917 н/о 33,4/0 11.05.14
6 РАИБ-1 22.05.13 4162 9,0/0
Алло, н/р, м 5.06.13 24.06.13 н/о 90-95 0,4/0
17.07.13 2462 > 95 6,2/0
1.08.13 86,5 > 95 5,0/0
5.09.13 н/о > 95 3,8/0
4.10.13 129 > 97 н/о
10.12.13 48 100 0,2/0
12.03.14 24 > 97 1,8/0 19.06.14+
7 РАИБ-2 21.10.13 н/о 5,6/0
Сиблинг, м 31.10.13 18.11.13 18 80-89 0,8/0
18.12.13 н/о > 97 1,2/0
27.01.14 441 80-89 н/о
5.02.14 н/о 80-89 11,0/0
ОЛ 17.03.14 1033 40-49 28,2/0
18.04.14 н/о 70-79 31,4/1,0
16.05.14 30 > 97 1,2/1,0
28.05.14 72 > 97 0/0
19.06.14 н/о н/о н/о 19.06.14+
Продолжение на след. странице
558
Клиническая онкогематология
ONCO_4_2014.indd Sec3:558
14.01.2015
#
15:54:46
$
Значение гиперэкспрессии гена WT1 при миелодиспластических синдромах
Таблица 4. Продолжение
Пациент № ТГСК Дата анализа Молекулярные маркеры Бластные клетки в костном мозге/крови, % Дата смерти, причина
Диагноз Вид Дата WT1 Донорский химеризм, %
8 РАКС 6.08.09 н/о 2,6/-
9.04.12 н/о -/-
15.05.12 н/о 9,0/-
10.10.12 н/о н/о 1,4/0
Сиблинг, ж 18.10.12 7.11.12 н/о 80-90 -/0
27.12.12 н/о 90-95 0/0
10.01.13 н/о 70-80 0,2/0
30.01.13 н/о 90-95 0/-
11.03.13 н/о 90-95 0,6/
Сиблинг, ж 29.03.13 20.03.13 55 90-95 -/0
24.04.13 н/о 90-95 1,0/0
6.05.13 н/о > 95 -/0
22.07.13 н/о > 95 -/0
27.11.13 н/о > 95 -/0
23.05.14 н/о > 95 1,2/0 19.06.14+
9 РАИБ-2 30.09.09 н/о н/о 7,8/0
12.11.09 н/о н/о 10,4/0
12.01.10 н/о н/о 4,0/-
8.02.10 н/о н/о 17,0/0
18.03.10 н/о н/о 16,4/0
Алло, н/р, м 20.05.10 9.06.10 н/о 97 1,5/0
21.06.10 н/о 80-90 4,8/0
5.07.10 н/о > 95 3,8/0
26.08.10 н/о > 95 1,2/0
17.09.10 н/о > 95 -/0
7.10.10 н/о > 95 1,2/0
19.11.10 н/о 80-90 -/0
24.11.10 н/о 90-95 2,8/0
17.12.10 н/о > 95 -/0
30.12.10 н/о 80-90 -/0
13.01.11 н/о 90-95 -/0
16.02.11 н/о н/о -/0
2.03.11 н/о н/о -/0
30.03.11 н/о н/о -/0
23.05.11 н/о н/о -/0
31.08.11 н/о 80-90 3,0/0
21.12.11 н/о 50-60 4,2/0
18.01.12 н/о 40-50 3,4/0
26.03.12 н/о 30-40 7,6/0
18.04.12 н/о 30-40 3,4/0
16.05.12 н/о н/о 0,6/0
20.05.12 н/о 5-10 0,6/2,0?
20.06.12 942 30-40 5,2/0
27.06.12 н/о 30-40 -/0
25.07.12 н/о 20-30 2,4/0
20.08.12 1450 10-20 -/0
26.09.12 407 10-20 3,2/0
5.10.12 н/о 10-20 -/-
14.11.12 1225 5-10 0,4/0
14.02.13 1221 20-30 0,6/0
17.06.13 н/о 30-40 2,6/0
4.07.13 н/о 10-20 -/0
25.09.13 2190 < 5 7,6/0
2.10.13 н/о н/о 0,8/
12.11.13 н/о н/о 6,4/0
2.12.13 2747 н/о 0,8/0
Алло, н/р, м 9.01.14 23.01.14 н/о 20-29 2,0/0
30.01.14 н/о н/о -/0
6.02.14 н/о > 97 Прогрессирование
6.03.14 н/о > 97 0,4/0 8.04.14
10 РА 14.11.12 275 н/о 4,0/0
Алло, н/р, ж 19.12.12 24.01.13 0 > 95 0,6/0
14.02.13 0 > 95 0/0
16.05.13 н/о > 95 1,0/0
15.07.13 н/о > 95 0,4/0
29.10.13 26 > 97 2,0/0
27.01.14 6 > 97 1,0/0
29.03.14 5 > 95 0/0
14.05.14 15 > 97 1,0/0 19.06.14+
11 РАИБ-1 12.01.12 н/о 5,6/0
24.02.12 н/о -/0
www.medprint.ru
Продолжение на след. странице 559
ONCO_4_2014.indd Sec3:559
Ф
14.01.2015
Ф
15:54:46
$
Н.Н. Мамаев и др.
Таблица 4. Продолжение
Пациент № ТГСК Дата анализа Молекулярные маркеры Бластные клетки в костном мозге/крови, % Дата смерти, причина
Диагноз Вид Дата WT1 Донорский химеризм,%
29.02.12 3204 10,0/-
17.04.12 н/о 4,0/-
19.07.12 н/о 2,0/-
6.08.12. н/о -/0
Алло, н/р, ж 9.08.12 28.08.12 н/о 80-90 -/0
20.09.12 н/о 5-10 -/0
8.10.12 27 < 5 3,8/0
18.10.12 н/о < 5 -/0
23.10.12 н/о н/о 6,6/0
8.11.12 2220 н/о 5,0/0
21.11.12 80 н/о -/0
26.11.12 2638 < 5 2,8/0
4.01.13 н/о н/о -/20,0
7.01.13 н/о н/о /4,0
ОЛ 31.01.13 11 468 < 5 31,6/13,0
14.02.13 10 687 н/о 31,8/21,0
21.03.13 50 < 5 49,4/20,0
Гапло, р, ж 02.04.13 29.04.13 н/о > 95 0,4/-
16.05.13 н/о > 95 -/-
31.05.13 н/о > 95 -/-
20.06.13 43 113 80-90 31,8/-
25.06.13 н/о > 95 -/0
8.07.13 н/о н/о -/5,0
11.07.13 н/о 80-90 -/14,0
15.07.13 н/о 80-90 -/21,0
23.07.13 8686 10-20 49,8/41,0
13.08.13 н/о 20-30 26,0/0
15.08.13 н/о н/о 41,0/0 Прогрессирование
29.08.13 н/о н/о -/0 27.09.2013
12 РАИБ-2 2.12.10 н/о 7,2/-
2.02.11 н/о 6,6/-
25.04.11 н/о 6,4/-
18.01.12 764 -/-
18.04.12 н/о 7,4/-
23.05.12 1361 11,2/0
13.06.12 н/о 0/-
Алло, н/р, ч/с, м 14.06.12 27.06.12 58 3,8/0
11.07.12 105 > 95 5,0/0
5.09.12 34 > 97 2,2/0
28.02.13 15 > 97 1,4/0
21.08.13 н/о > 95 1,2/0
25.09.13 0 > 95 0,8/0
6.11.13 47 > 97 7,0/0
18.06.14 16 > 97 1,4/0 19.06.14+
13 РАИБ-2 23.12.11 н/о 3,0/0
4.04.12 2439 0,4/0
Алло, н/р, м 24.04.12 14.05.12 н/о < 5 4,0/-
Неприживление 2.06.12 21.05.12 н/о < 5 0,5/-
24.05.12 н/о н/о 2,5/
31.05.12 н/о < 5 -/0
4.06.12 н/о н/о 0,8/0
13.06.12 н/о < 5 0/0 Прогрессирование
26.09.12 160 н/о -/- 9.02.14
14 РАИБ-2 15.02.09 н/о 8,4/-
3.03.09 н/о 12,2/-
23.09.09 н/о 2,6/0
Ауто 5.11.09 26.11.09 н/о 0,2/0
21.04.10 н/о 2,8/0
7.05.10 1952 -/-
5.06.10 н/о 2,4/0
24.06.10 н/о 0/0
Алло, н/р, ж 28.05.10 8.07.10 н/о > 95 1,0/0
2.08.10 н/о > 95 2,4/0
9.08.10 н/о > 95 -/-
17.04.11 н/о н/о -/- РТПХ
19.08.10 н/о н/о 0/0 28.08.10
15 РЦМД 9.01.10 н/о 3,8/0
28.04.11 н/о -/0
17.01.12 0 -/0
7.02.13 н/о 0/0
Алло, н/р, м 19.02.13 5.03.13 н/о > 95 -/-
19.03.13 н/о > 95 -/-
560
Клиническая онкогематология
ONCO_4_2014.indd Sec3:560
14.01.2015
#
15:54:46
ф
Значение гиперэкспрессии гена WT1 при миелодиспластических синдромах
Таблица 4. Окончание
Ф
Пациент № ТГСК Дата анализа Молекулярные маркеры Бластные клетки в костном мозге/крови, % Дата смерти, причина
Диагноз Вид Дата WT1 Донорский химеризм,%
28.03.13 н/о > 95 3,2/0
18.04.13 н/о > 95 -/0
20.05.13 н/о > 95 2,2/0
19.06.13 н/о н/о 2,2/0 19.06.14+
16 РАИБ-1 4.04.08 н/о 6,0/0
10.02.09 н/о 6,0/0
5.10.10 н/о 0,2/0
Алло, н/р, ж 14.04.11 3.05.11 н/о 80-90 -/0
26.05.11 н/о 90-95 -/0
16.06.11 н/о 90-95 -/0
28.08.11 н/о > 95 1,0/0
24.10.11 н/о > 95 3,8/0
5.12.11 н/о > 95 1,2/0
20.02.12 н/о > 95 2,4/0
28.05.12 1025 н/о 3,4/0
1.10.12 30 > 95 0,6/0
20.03.13 163 > 95 2,8/0
20.05.13 н/о н/о 2,4/0
5.09.13 137 > 95 0,8/0
10.04.14 24 > 95 2,0/0 19.06.14+
17 РАИБ-2 16.08.12 н/о 6,0/6,0
15.11.12 н/о 15,0/6,0
18.12.12 н/о 7,7/
20.02.13 н/о 2,6/0
Алло, н/р, ж 27.02.13 21.03.13 147 90-95 2,6/0
27.03.13 1706 н/о 1,8/0
ОЛ 3.04.13 4000 10-20 31,8/-
22.04.13 н/о н/о -/0
6.05.13 997 10 3,0/0 Прогрессирование
Гапло, р, ж 6.06.13 20.05.13 н/о 10 24,0/0 29.06.13
«-» — данные неизвестны; алло — аллогенная; ауто — аутологичная; гапло — гаплоидентичная; н/о — не определяли; н/р — неродственная;
ОЛ — острый лейкоз; p — родственная; РТПХкш — реакция «трансплантат против хозяина» с поражением кишечника; ч/с — частично совместимая.
Я U der(3) к и И Bder(5) ft§
1 ІІ 2 5Ї 3 хя п II 4 МВ 5 $1
б 7 8 9 10 11 12
*1 и 61 м «*
13 14 15 16 17 18
йв 19 и 20 А* 21 «А 22 S X І Y
Рис. 3. Кариотип клеток костного мозга больного (№ 13) с РАИБ-2 [46,XY, t(3;5)(q25;q34)]. В условиях неприживления трансплантата заболевание протекало относительно благоприятно на фоне непрерывной (13 курсов) терапии азацитидином
следует иметь в виду, что на предтрансплантационном этапе этой пациентке было проведено 3 курса терапии децитабином, что могло способствовать как двукратному снижению уровня экспрессии гена WT1, так и углублению цитопении. Альтернативным объяснением нарастающей цитопении могло быть прогрессирование заболевания, на что указывает наибольший (12,6 %) для данной больной уровень бластных клеток в костном мозге.
Анализ результатов экспрессии гена WT1 при МДС показал, что динамика этого молекулярного маркера
www.medprint.ru
была неоднозначной как на этапе подготовки к ал-лоТГСК, так и после ее выполнения. В частности, у ряда больных уровень экспрессии гена WT1 после аллоТГСК стойко снижался (№ 1, 6, 10, 12 и 13), что сопровождалось снижением числа бластных клеток в костном мозге и исчезновением их из крови. Напротив, у других пациентов уровень экспрессии гена WT1 после аллоТГСК оставался высоким (№ 5, 9 и 11). Следует отметить, что у большинства больных с посттрансплантационными рецидивами МДС (№ 4, 7, 8, 10 и 12) зафиксированное
561
ONCO_4_2014.indd Sec3:561
Ф
14.01.2015
Ф
15:54:46
$
Н.Н. Мамаев и др.
#
молекулярным исследованием изменение уровня экспрессии гена WT1 и выявленные цитологическими методами изменения содержания бластов в анализируемых тканях носили сопряженный характер. С другой стороны, у некоторых пациентов (№ 11) морфологические признаки рецидива существенно отставали от молекулярных. Это давало реальный шанс как для предупреждения развития рецидива, так и его коррекции. В соответствии с общепринятой тактикой при появлении молекулярных, цитогенетических или морфологических признаков посттрансплантационных ремиссий иммуносупрессивную терапию следует отменять, а в протоколы лечения следует включать ИДЛ, а также ГА и, реже, цитостатические средства.
ОБСУЖДЕНИЕ
Основная цель данного исследования — оценить возможности серийного измерения уровня экспрессии гена WT1 для раннего распознавания посттрансплантационных рецидивов МДС, которые встречаются приблизительно у половины пациентов с аллоТГСК.
Как видно из представленного материала, уровень экспрессии гена WT1 был повышен у подавляющего большинства больных МДС и может быть использован в диагностике и мониторинге. В нашей, довольно гетерогенной по возрасту, цитологическим и цитогенетическим параметрам группе больных МДС эти уровни варьировали в очень широких пределах (от 0 до 43 133 копий/104 копий гена ABL). Они практически не зависели от возраста и пола больных, цитогенетического профиля опухолевых элементов и даже от относительного содержания бластных клеток в костном мозге или крови.
Результаты исследования свидетельствуют о том, что посттрансплантационные рецидивы МДС, включая трансформацию их в ОЛ, имели место у 9 (53 %) из 17 пациентов. Главными критериями для их документации стали: а) увеличение (> 5 %) содержания бластных клеток в костном мозге; б) появление бластных клеток в крови; в) обнаружение в исследуемых тканях клеток с исходным аномальным кариотипом. В свете этих данных повышенная экспрессия гена WT1 в некоторых наблюдениях (№ 11) явно предшествовала цитологически распознаваемому рецидиву, в то время как у других пациентов эти события по времени совпадали. При этом средний уровень экспрессии гена WT1 в период трансформации МДС в ОЛ (п = 5) равнялся 4305 копиям при диапазоне 864—11 468 копий/104 копий гена ABL. Для сравнения, в недавно опубликованной работе [17] средний уровень экспрессии гена WT1 ко времени постановки диагноза ОМЛ у 110 больных равнялся 9379 копиям при диапазоне от 1 до 83 200 копий/104 копий гена ABL. При этом была отмечена высокая зависимость уровня экспрессии гена WT1 от содержания бластных клеток в костном мозге (р = 0,024), но не в крови пациентов молодого возраста (р = 0,019), а также наличия у них мутации гена FLT3 (р = 0,0008).
На наш взгляд, помимо неоднородности обследованной группы пациентов с МДС одной из причин большого диапазона данных по экспрессии гена WT1 могла быть предпринятая нами попытка предупредить рецидив с помощью ГА и ИДЛ (см. табл. 3), что хорошо иллюстрирует приведенная выше история болезни № 9. Нельзя также игнорировать тот факт, что феномен по-
562
вышения числа бластных клеток при МДС и ОЛ может по-разному отражаться на течении заболевания. В частности, в случае прогрессирования или успешного лечения ОЛ опухолевая масса изменяется значительно быстрее, чем при МДС, в т. ч. трансформирующегося в ОЛ. При МДС бластные клетки в костном мозге могут сохраняться длительное время, в т. ч. за счет дисрегуляции апоптоза [35]. Если это так, то сам факт повышения экспрессии гена WT1 у большинства больных МДС представляется чрезвычайно важным и в теоретическом, и в практическом плане. Во-первых, этот феномен позволяет отграничить МДС от различных гипопластических состояний [26]. Во-вторых, сам факт регистрации у больных МДС нарастания уровня экспрессии гена WT1 может быть одним из признаков увеличения опухолевой массы, что может служить аргументом в пользу применения как ИДЛ, так и ГА. Важно то, что такое лечение желательно проводить в условиях молекулярного мониторинга, включающего серийное измерение уровня экспрессии гена WT1.
По нашим данным, эффект ГА и ИДЛ в посттрансплантационный период у ряда пациентов был несомненным. В частности, один из пациентов (№ 13), несмотря на неприживление трансплантата и быстрое восстановление аутологичного патологического гемопоэза, на фоне повторных курсов азацитидина в течение 1,5 года сохранял удовлетворительное состояние. Кроме того, терапия ГА и ИДЛ оказались также эффективными у нескольких больных с возникшими после аллоТГСК вторичными ОЛ (№ 11 и 17).
Таким образом, контролируемая молекулярным мониторингом профилактика и лечение рецидивов МДС, так же как и ОЛ [9, 10], представляются результативными. Однако для более достоверной оценки этого эффекта молекулярный мониторинг должен проводиться не беспорядочно, а строго по протоколу, с обязательным ежемесячным взятием проб крови для контроля уровня экспрессии гена WT1 в первые 3 мес. после аллоТГСК и дальнейшим урежением анализов крови: сначала до 2 раз в полгода, затем до 2 раз в год. В случае же зафиксированного нарастания уровня экспрессии гена WT1 в одной из проб все последующие анализы крови на экспрессию гена WT1 должны проводиться чаще. Можно надеяться, что такой молекулярный подход найдет применение не только для раннего выявления посттрансплантационных рецидивов МДС, но и в повседневной практике ведения больных в условиях стандартного лечения.
КОНФЛИКТЫ ИНТЕРЕСОВ
Авторы подтверждают отсутствие скрытых конфликтов интересов.
ЛИТЕРАТУРА/REFERENCES
1. Barrett A.J., Battiwala M. Relapse after allogeneic stem cell transplantation. Exp. Rev. Hematol. 2012; 3(4): 429-41.
2. Tamura K, Kanazawa T., Suzuki M. et al. Successful rapid discontinuation of immunosuppressive therapy at molecular relapse after allogeneic bone marrow transplantation in a pediatric patient with myelodysplastic syndrome. Am. J. Hematol. 2006; 81: 139-41.
3. Wertheim G.B., Bagg A. Minimal residual disease testing to predict relapse following transplant for AML and high-grade myelodysplastic syndromes. Exp. Rev. Mol. Diagn. 2011; 11(4): 361-6.
4. Brieger J., Weidmann E., Fenchel K. et al. The expression of the Wilms’ tumor gene in acute myelocytic leukemias as a possible marker for leukemic blast cells. Leukemia. 1994; 8: 2138-43.
Клиническая онкогематология
ONCO_4_2014.indd Sec3:562
14.01.2015
#
15:54:46
$
Значение гиперэкспрессии гена WT1 при миелодиспластических синдромах
#
5. Inoue K., Sugiyama H, Ogawa H. et al. WT1 as a new prognostic factor and a new marker for the detection of minimal residual disease in acute leukemia. Blood. 1994; 84: 3071-9.
6. Inoue K., Ogawa H., Yamagami T. et al. Long-term follow-up of minimal residual disease in leukemia patients by monitoring WT1 (Wilms tumor gene) expression levels. Blood. 1996; 88: 2267-78.
7. Tamaki H., Ogawa H., Inoue K. et al. Increased expression of the Wilms tumor gene (WT1) at relapse in acute leukemia. Blood. 1996; 88: 4396-8.
8. Patmasirivat P., Fraizer G., Kantarjian H. et al. WT1 and GATA1 expression in myelodysplastic syndrome and acute leukemia. Leukemia. 1999; 13: 891-900.
9. Ogawa H., Ikegame K., Kawakami M., Tamaki H. WT1 gene transcript assay for relapse in acute leukemia after transplantation. Leuk. Lymphoma. 2004; 45: 1747-53.
10. Cilloni D., Gottardi E., De Micheli D. et al. Quantitative assessment of WT1 expression by real time quantitative PCR may be a useful tool for monitoring minimal residual disease in acute leukemia patients. Leukemia. 2002; 16: 2115-21.
11. Cilloni D., Messa F., Arruga F. et al. Early prediction of treatment outcome in acute myeloid leukemia by measurement of WT1 transcript levels in peripheral blood samples collected after chemotherapy. Haematologica. 2008; 93: 921-4.
12. Candoni A, Tribelli M., Cilloni D. et al. Quantitative assessment of WT1 gene expression after allogeneic stem cell transplantation is a useful tool for monitoring minimal residual disease in acute myeloid leukemia. Eur. J. Haematol. 2009; 82: 61-8.
13. Miyawaki S., Hatsumi N., Tamaki T. et al. Prognostic potential of detection of WT1 mRNA level in peripheral blood in adult acute myeloid leukemia. Leuk. Lymphoma 2010; 51: 1855-61.
14. Zhao X.-S., Jin S., Zhu H.-H. et al. Wilms’ tumor gene 1 expression: an independent acute leukemia prognostic indicator following allogeneic hematopoietic SCT. Bone Marrow Transplant. 2012; 47: 499-507.
15. Nomdedeu J.F., Hoyos M., Carricondo M. et al. Bone marrow WT1 levels at diagnosis, post-induction and post-intensification in adult de novo AML. Leukemia. 2013; 27: 2157-64.
16. Pozzi S., Geroldi S., Tedone E. et al. Leukaemia relapse after allogeneic transplants for acute myeloid leukaemia: predictive role of WT1 expression. Br. J. Haematol. 2013, 160: 503-9.
17. Frairia Ch., Aydin S., Riera L. et al. WT1 expression in acute myeloid leukemia: a useful marker for improving therapy response evaluation. Blood. 2013; 123(21): 2588.
18. Tamaki H., Ogawa H., Ohyashiki K. et al. The Wilm’s tumor gene is a good marker for diagnosis of disease progression of myelodysplastic syndromes. Leukemia. 1999; 13: 393-9.
19. Patmasiriwat P., Fraizer G., Kantarjian H. et al. WT1 and GATA1 expression in myelodysplastic syndrome and acute leukemia. Leukemia. 1999; 13: 891-900.
20. Cilloni D., Gottardi E., Messa F. et al. Significant correlation between the degree of WT1 expression and the international prognostic scoring system score in patients with myelodysplastic syndromes. J. Clin. Oncol. 2003; 21: 1988-95.
21. Cilloni D., Saglio G. WT1 as a universal marker for minimal residual disease detection and quantification in myeloid leukemias and in myelodysplastic syndrome. Acta Haematologica. 2004; 112: 79-84.
22. Абдулкадыров К.М., Грицаев С.В., Капустин С.И. и др. Экспрессия гена опухоли Вилмса (WT1) в клетках крови больных миелодиcпластическим синдромом. Вопросы онкологии 2004; 50(6): 668-71.
[Abdulkadyrov K.M., Gritsaev S.V., Kapustin S.I. et al. Wilms tumor gene (WT1) expression in blood cells of patients with myelodysplastic syndrome. Voprosy Onkologii. 2004; 50(6): 668-71. (In Russ.)]
23. Bader P., Niemeyer C., Weber G. et al. WT1 gene expression: useful marker for minimal residual disease in childhood myelodysplastic syndromes and juvenile myelomonocytic leukemia? Eur. J. Haematol. 2004; 73: 25-8.
24. Iwasaki T., Sugisaki C., Nagata K. et al. Wilms’ tumor 1 message and protein expression in bone marrow failure syndrome and acute leukemia. Pathol. Int. 2007; 57: 645-51.
25. Qin Y.-Z., Zhu H.-H., Liu Y.-R. et al. PRAME and WT1 transcripts constitute a good molecular marker combination for monitoring minimal residual disease in myelodysplastic syndromes. Leuk. Lymphoma. 2012; DOI: 10.3109/10428194.2012.743656.
26. Ueda Y., Mizutani C., Nannya Y. et al. Clinical evaluation of WT1 mRNA expression levels in peripheral blood and bone marrow in patients with myelodysplastic syndromes. Leuk. Lymphoma. 2013; 54(7): 1450-8.
27. Lange T., Hubmann M., Burkhardt R. et al. Monitoring of WT1 expression in PB and CD34+ donor chimerism of BM predicts early relapse in AML and MDS patients after hematopoietic cell transplantation with reduced-intensity conditioning. Leukemia. 2011; 25: 498-505.
28. Maurer U., Brieger J., Weidmann E. et al. The Wilms’ tumor gene is expressed in a subset of CD34+ progenitors and downregulated early in the course of differentiation in vitro. Exp. Hematol. 1997; 25: 945-50.
29. Kwon M., Marti nez-Laperche C., Infante M. et al. Evaluation of minimal residual disease by real-time quantitative PCR of Wilms’ Tumor 1 expression in patients with acute myelogenous leukemia after allogeneic stem cell transplantation: correlation with flow cytometry and chimerism. Biol. Blood Marrow Transplant. 2012; 18: 1235-42.
30. Jacobsohn D.A., Tse W.T., Chaleff S. et al. High WT1 gene expression before haematopoietic stem cell transplant in children with acute myeloid leukaemia predicts poor event-free survival. Br. J. Haematol. 2009; 146: 669-74.
31. Мамаев Н.Н., Горбунова А.В., Гиндина ТЛ. и др. Лейкозы и миело-диспластические синдромы с высокой экспрессией гена EVI1: теоретические и клинические аспекты. Клин. онкогематол. 2012; 5(4): 361-4.
[Mamaev N.N., Gorbunova A.V., Gindina T.L. et al. Leukemias and myelodysplastic syndromes with high EVI1 gene expression: theoretical and clinical aspects. Klin. Onkogematol. 2012; 5(4): 361-4. (In Russ.)]
32. Alonso-Dominguez J.M., Tenorio M., Velasco D. et al. Correlation of WT1 expression with the burden of total and residual leukemic blasts in bone marrow samples of acute myeloid leukemia patients. Cancer Gen. 2012; 205: 190-1.
33. Gerds A.T., Deeg H.J. Transplantation for myelodysplastic syndrome in the era of hypomethylating agents. Curr. Opin. Hematol. 2012; 19: 71-5.
34. Nishihori T., Perkins J., Mishra A. et al. Pretransplantation 5-Azacitidine in high-risk myelodysplastic syndrome. Biol. Blood Marrow Transplant. 2014; 20: 776-80.
35. Raza A, Gezer S., Mundle S. et al. Apoptosis in bone marrow biopsy samples involving stromal and hematopoietic cells in 50 patients with myelodysplastic syndromes. Blood. 1995; 86(1): 268-76.
www.medprint.ru
563
ONCO_4_2014.indd Sec3:563
Ф
14.01.2015
Ф
15:54:46