CC BY
233
ОИМ - 5 (31,3%), с прогрессирующей стенокардией - 11 (68,7%); 54 неврологических пациента (8,8%), из них ИИ -37 человек (68,5%), ПНМК - 13 (24,1%), ГИ - 4 (7,4%).
Для качественного статистического учета больных, перенесших острое нарушение мозгового кровообращения и острый инфаркт миокарда, созданы и ведутся электронные регистры.
Заключение: Создание первичных сосудистых отделений несомненно является актуальным и перспективным направлением на данном этапе развития оказания
Литература:
1. Основные показатели здоровья населения и эффективность использования ресурсов в системе здравоохранения Удмуртской Ре-
спублики за 2010 г.- Ответственные за выпуск: В.К.Гасников, И.В.Мальцева, О.А.Рукан. Ижевск. 2011. - 50 с.
2. Современные проблемы медицинского обеспечения больных с кардиологическими заболеваниями (по результатам проекта «Получение статистической информации о качестве и доступности медицинской помощи больным кардиологического профиля») Российский статистический ежегодник. Москва. 2009. -175 с.
3. Hasai D., Begar S., Wallentin L. et al. A prospective survey of the characteristics, treatments and outcomes ofpatients with acute coronary syndromes in Europe and the Mediterranean basin. The Euro Heart Survey of acute coronary syndromes (Euro Heart Survey ACS) // Eur. HeartJ. - 2002. - Vol. 15. -P. 1190-1201.
помощи пациентам с сосудистой патологией. ПСЦ на базе МУЗ МСЧ «Ижмаш» это новое подразделение в структуре больницы, но активно развивающееся. Развитие преемственности с региональными сосудистыми центрами и республиканским кардиологическим диспансером позволяет достигать показателей по лечению пациентов на уровне обще региональных.
© Е.П. Савостина, Л.А. Арсентьева, 2011 УДК 616-082.6
Е.П. Савостина, Л.А. Арсентьева СТРАТЕГИЯ МЕТОДИЧЕСКИХ ПОДХОДОВ В ПРОИЗВОДСТВЕ СУДЕБНО-МЕДИЦИНСКИХ МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКИХ ЭКСПЕРТИЗ
ГУЗ «БСМЭ МЗ Саратовской области»
В статье анализируются методические подходы в производстве судебно-медицинских молекулярногенетических экспертиз.
Ключевые слова: судебно-медицинские экспертизы.
THE STRATEGY OF METHODOLOGICAL APPROACHES TO THE PRODUCTION OF FORENSIC MOLECULAR GENETIC EXAMINATIONS
E.P.Savostina, L.A. Arsent’eva This article analyzes the methodological approaches in the production of forensic molecular genetic examinations.
Key words: forensic examinations.
Известно, что геном человека представлен набором из 46 хромосом - палочковидными частицами, расположенными в клеточном ядре и несущими генетическую информацию. Все соматические клетки человека содержат в составе ядер двойной (диплоидный) набор хромосом и только половые клетки - сперматозоиды и яйцеклетки -несут половинный (гаплоидный) набор - 23 хромосомы. Из них 22 хромосомы имеют соответственную пару и одна хромосома, непарная, определяющая пол человека. В яйцеклетках это всегда «Х»- хромосома, в сперматозоидах это «X» или «У» хромосома.
Материальным носителем наследственной информации в хромосомах является суперскрученая спираль, состоящая из двух комплементарных цепей, дезоксирибонуклеиновой кислоты - ДНК (рис.1).
Генетическая информация может копироваться при разделении цепей, что позволяет каждой из них служить матрицей нового комплементарного партнера, поэтому ДНК даже умеренной длины способна обеспе-
чить колоссальное биологическое разнообразие, не говоря уже о ДНК типичной животной клетки, достигающей в длину 1 м (3х109 н.п.). Не говоря о существовании разных видов животных, многообразие даже внутри одного вида (в том числе и человека), обусловлено тем, что молекулы ДНК их клеток имеют различную последовательность нуклеотидов и, следовательно, различное информационное содержание генетического кода.
Анализ препаратов ДНК, выделенных из огромного множества различных видов, позволил сделать следующие выводы:
- препараты ДНК, выделенные из разных тканей представителя вида имеют одинаковый состав;
- этот нуклеотидный состав не з' меняется с возрастом, не зависит от
вида жизнедеятельности и изменений окружающей среды.
Можно представить, каким многообразием генетического кода обладает новая особь Homo sapiens, получая в свой диплоидный набор хромосом сочетание отцовской и материнской генетической информации. Практически невозможно встретить двух людей, обладающих одинаковым генетическим кодом, исключение составляют только
Рис. 1 Структурная организация молекулы дезоксирибонукдеиновой кислоты - ДНК
однояйцовые или гомозиготные близнецы. Т.е. каждый человек имеет свой уникальный генетический паспорт. И, естественно, возникает вопрос, каким образом можно провести геномную дифференциацию личности и определить генетический профиль человека?
В 1985 году Jeffreys A.J. и соавт. обнаружили в геноме человека высокополиморфное семейство минисателлит-ных маркеров и впервые высказали идею о том, что изучение полиморфизма гипервариабельных локусов может иметь значение для судебной медицины. Дальнейшие исследования показали, что такую дифференциацию можно провести на выявлении индивидуальных генетических отличий, которые можно обнаружить, исследуя эти высокополиморфные участки молекул ДНК, например, участки с варьирующим числом относительно коротких нуклеотидных последовательностей, организованных в виде блоков тандемных повторов (мини- и микро-сателлитных участков ДНК гена(-ов) (Рис. 2). Высокий уровень вариабельности микро- и минисателлитов (т.н. феномен гиперполиморфизма) основан на том, что число полиморфных повторов, соединенных «голова к хвосту» в единую последовательность ДНК непостоянно и варьирует в разных аллелях данного локуса (участка или фрагмента гена хромосомы) от одного до нескольких десятков. Таким образом, для данного локуса обнаруживается набор аллелей, отличающихся числом повторяющихся единиц. У
7 повторов
хромосома отца
ПЦР
хромосома матери 3 ПОВТ°Ра
т
ПЦР
Рис. 2. Схема структуры полиморфных повторов, соединенных «голова к хвосту» в единую последовательность ДНК в разных аллелях данного локуса. VNTR или STR повторы. Длина одного VNTR-повтора 7-10 н.п. Длина одного STR -повтора 1-7 н.п.
каждого индивидуума имеется по два аллели - материнский и отцовский, равной или разной длины (соответственно гомо- и гетерозиготное состояние), которые являются строго специфичными для данного субъекта и могут служить индивидуализирующими личность признаками. Класс тандемных полиморфных локусов условно разбит на два подкласса: минисателлиты или VNTR (Variable Namber Tandem Repead) - локусы, с длиной повтора более 7 пар нуклеотидов, и микросателлиты или STR (Short Tandem Repead) - локусы, у которых длина повторяющихся единиц от 1 до 7 пар нуклеотидов, которые наиболее значимы в производстве судебно-медицинских экспертиз.
Каким же способом можно выявить эти нуклеотидные последовательности для получения идентификационного геномного паспорта личности? Имеется несколько базовых технологий молекулярно-генетического (геномного) идентификационного анализа, из которых самым распространенным является определение полиморфизма длины амплификационных фрагментов (ПДАФ) с исполь-
зованием метода энзиматической амплификации молекул ДНК, более известному как полимеразная цепная реакция (ПЦР). Амплификация - есть изолированное умножение гена или его фрагмента. Это явление достаточно распространено в биологии клетки как способ ее выживания в жестких условиях, например действия противоопухолевых или антибактериальных препаратов. Метод ПЦР, позволяющий проводить такую амплификацию в пробирке, был разработан в 1980 г. американским исследователем Mullis. Этот метод используется как в решении задач молекулярной биологии и генетики, так и в практической медицине, в том числе и в судебной, оказавшись доступным в региональных экспертных лабораториях.
Молекулярно-генетический идентификационный анализ, в основе которого лежит ПДАФ-типирование ДНК, является одним из наиболее доказательных методов анализа биологического материала при идентификации. ПДАФ-типирование отличается высокой дифференцирующей способностью, специфичностью и чувствительностью, благодаря технологии ПЦР. При ПЦР-амплификации гипервариабельных мини- и микросателлитных генетических матриц (локусов), присущих в геноме каждого человека, в ходе реакции образуются фрагменты ДНК, которые у разных людей имеют различную длину и поэтому оказываются индивидуально-специфичными. Эти полиморфные по длине фрагменты, по сути представляющие разные аллельные варианты локусов геномной ДНК, становятся доступными для сравнительного анализа в качестве индивидуализирующих личность признаков. При этом важно, что каждый ПДАФ-вариант наследуется как простой менделевский кодоминантный признак, т.е. напрямую половину от отца, половину от матери. Все это создает хорошие предпосылки для решения экспертных задач, связанных с индивидуализацией и идентификацией, так и установлением биологических родственных связей индивидуума с другими лицами (установление факта отцовства или материнства.
Исследование вещественных доказательств биологической природы и идентификация личности, основанные на молекулярно-генетической индивидуализации человека достаточно широко внедряется в практику. Ключевым для судебной медицины явилась показанная в 1985 году Gill P. и соавт. возможность применения ДНК-анализа для исследования биологического материала
- сухой крови и выделений из других объектов судебномедицинской экспертизы. А в качестве доказательного этот метод впервые был использован с целью проведения судебно-медицинской экспертизы в Англии в 1989 г. Джагертом с соавт. был описан случай идентификации личности преступника методом типирования по VNTR-локусам. В небольшом городке была изнасилована и убита учительница местной школы. По требованию населения городка была проведена геномная дактилоскопия всего мужского населения репродуктивного возраста, и на основании сравнения ПДАФ-профиля спермальной фракции, выделенной в биологическом материале жертвы, и профилей ДНК исследуемых образцов крови, был выявлен преступник.
Судебно-медицинской экспертиза основанная на молекулярно-генетической индивидуализации человека имеет особенности в разделе исследовательской части и экспертного анализа.
Исследовательская часть судебно-медицинской экспертизы (исследования) включает следующие этапы:
• получение препаратов хромосомной ДНК из объектов судебно-медицинского исследования;
• ПЦР-амплификация на матрице этой ДНК;
• регистрация амплификационных сигналов;
• позиционный анализ амплификационных сигналов, установление амплификационного (ПДАФ) - профиля.
Экспертный анализ включает интерпретацию результатов генотипирования, оценку индивидуализирующего значения ПДАФ- профиля и вычисления вероятности генетической идентичности объектов экспертизы или вероятности отцовства с целью разрешения вопросов, поставленных перед экспертизой.
Предметом судебно-медицинского молекулярногенетического исследования являются объекты биологического происхождения от трупов и живых лиц, а также следы и иные вещественные доказательства, содержащие биологический материал. Хромосомная ДНК содержится во всех клетках человека, поэтому для исследования пригодны практически любые биологические субстраты, в которых сохранен ядерный материал: кровь, буккальный соскоб, сперма, высохшие следы крови и спермы, зубы и волосы человека, отчлененные части тела и фрагменты частей тела, фрагменты скелетированных трупов, отдельные кости и т.д. За время работы из множества объектов нам запомнились:
• зуб - дело «черной вдовы»;
• два волоса на в руке трупа - убийство на почве ревности;
• вагинальные и ректальные тампоны - «банное»
дело;
• жевательная резинка - убийство в машине.
Для получения препаратов хромосомной ДНК из объектов исследования используют методы представленные на схеме (Рис. 3).
Биологический образец
Добавление литической смеси, лизис клеток
Осаждение клеточного дебриса,
депротеинизация, концентрирование и осаждение ДНК
Амплификация исследуемой ДНК
Нанесение проб (аликвот) на гель
Проведение
электрофореза
В настоящий момент эксперты - генетики располагают рядом типовых протоколов получения препаратов ДНК из различных объектов - костей, мышечной ткани, волос, смешанных следов соматических (эпителиальных) и спермальных клеток при половых преступлениях (т.н. дифференциальный лизис), регламентированных стандартными операционными процедурами (РЦСМЭ Минздрава РФ, 1999).
Следующий этап - постановка ПЦР с полученными образцами ДНК. Чувствительность ПЦР настолько высока, что для получения молекулярных копий (ампликона) исследуемого локуса достаточно наличия в реакционной смеси 1-2 нг матричной ДНК- это 10-9 г. Специфическими компонентами реакции и амплификации в целом являются олигонуклеотидные (15-30 н.п.) праймеры. Важной характеристикой является именно их специфичность, т.е. только конкретная пара праймеров определяет, какой аллельный локус будет избирательно нарабатываться в данной ПЦР (праймеры называют молекулярногенетическими ПДАФ-системами).
В настоящее время разработано несколько десятков систем на основе микросателлитных полиморфных локу-сов. Именно эти системы, сконструированные на основе коротких тандемных повторов, имеют преимущество при исследовании малых количеств ДНК или ее деградирован-
а такие встречаются
часто
в
ственных доказа-
ных останков, т.е.
"СОРК" РошегРіех 16 БИОТЕХ
СБР1РО Репй Е Дтеіодепіп
РОД Р18Б51 СБР1РО
ТН01 Р21Б11 Р2Б1338
ТРОХ ТН01 Р3Б1358
vWA Р3Б1358 Р5Б818
Р3Б1358 РОД Р7Б820
Р58818 ТРОХ Р8Б1179
Р7Б820 Р8Б1179 Р13Б317
Р8Б1179 vWA Р16Б539
Р13Б317 Дтеіодепіп Р18Б51
Р16Б539 Репй Р Р19Б253
Р18Б51 СБР1РО Р13Д01
Р21Б11 Р16Б539 Р13В
Р7Б820 РЕБРРБ
Р13Б317 РОД
Р5Б818 НРЛТВ
<• лмплифмкатор Терцин модель 2 (ДНК-Теяиологиа)
Рис. 3. Общая схема выделения ДНК из образца.
Фенол-хлороформная экстракция - классический метод выделения и очистки ДНК, включающий лизис клеточных структур, депротеинизацию и выделение водной фазы, содержащей ДНК, концентрирование и осаждение ДНК. Метод достаточно прост, обеспечивает стабильность препарата ДНК в процессе хранения, однако применим в том случае, если материала для исследования много.
Если биологического материала очень мало (волос, следы крови или спермы) существуют другие варианты экстракции ДНК. Метод с использованием хелатирующей синтетической смолы «СЬе11ех», который не предполагает выделение препарата ДНК в чистом виде, его получают в виде клеточного лизата, содержащего все исходные компоненты, но в инактивированной форме. Метод с использованием нуклеосорбента, где в результате химикотемпературных условий из лизата ДНК сорбируется на гранулы сорбента, а затем смывается буферным раствором. Оба этих подхода достаточно просты и не требуют много времени, но их надежность, а также качество и стабильность полученных препаратов ДНК намного ниже, чем у фенольно-хлороформной экстракции.
разложению под воздействием разрушающих биологических и
физико-химических факторов. Наш опыт указывает, что сложно получить хорошие препараты ДНК из гнилостно измененных материалов - крови, мышечной ткани, фрагментов органов и т.п. Практически невозможно выделить ДНК из биологических объектов, обнаруженных на изделиях из натуральной кожи или дереве. Деградированное состояние ДНК, выделенной из объекта, может повлечь за собой преимущественную амплификацию, ведущую к несбалансированности аллельных сигналов у гетерозиготы или полному «выпадению» фрагмента, что в свою очередь может привести к прочтению ложного генотипа.
На этом этапе необходимо особо уделить внимание технике постановки ПЦР - специфичность реакции зависит от условий ее проведения - концентрации реагентов, их качества, заданных параметров циклов амплификации и точности их воспроизведения. При исследовании судебно-медицинских объектов не всегда удается полностью уравнять вводимые в ПЦР количества ДНК (особенно в условиях ее деградации), и нарушение соотношений праймер-матрица также приводит к появлению артефактов. Необходимо отметить и проблемы, возникающие из-за предмета-носителя, который может оказать ингибирующее действие на ПЦР, например из-за наличия красителя.
Следующий этап включает регистрацию ПЦР-продуктов и установление амплификационых геномных профилей. В данной аналитической системе индивидуальный образец крови человека характеризуется нали-
чием двух амплифицированных фрагментов разной или одинаковой длины (гетеро- и гомозиготное состояние), поскольку каждая из двух гомологичных хромосом несет свой вариант гипервариабельного локуса. Синтезированные в ходе ПЦР продукты - молекулярные копии полиморфных участков геномной ДНК накапливаются в реакционной цепи, вследствие чего количественно становятся доступными для сравнительного анализа. Продукты амплификации разделяют с помощью электрофореза в полиакриламидном геле (STR- локусы) (Рис. 4) в денатурирующих условиях. Детекцию осуществляют путем окрашивания нитратом серебра в акриламидных гелях, с последующей их фиксацией.
Более эффективна детекция амплификационных сигналов, помеченных в процессе ПЦР многоцветными флюоресцирующими красителями. Эти красители в момент электрофореза излучают определенные длины волн, регистрируемые лазером в установке для капиллярного электрофореза. Сигналы выводятся в виде пиков на экран монитора (Рис. 5). Комбинация из двух фрагментов ДНК - полос (или пиков) на электрофореграмме, которые определенным образом расположены на дорожке геля, являются амплификационным профилем ДНК, индивидуализирующей характеристикой человека.
В процессе судебно-медицинской идентификационной экспертизы проводят позиционное сопоставление амплификационных профилей сравниваемых ДНК: а) картины распределения полос на сравниваемых дорожках геля похожи или непохожи; б) позиции соответствующих фрагментов совпадают или не совпадают. Ключевым является вопрос о том, одинаковы или неодинаковы амплифика-ционные профили ДНК, выделенные из объектов экспертизы: в одном случае - это не исключение, а в другом - исключение причастности данного лица к происхождению следов. Обязательное нанесение локусспецифичных аллельных маркеров (аллельных «лестниц») и стандартов молекулярных масс - фрагментов ДНК с заранее известными размерами, на тот же гель, где фрагментируются амплификаци-онные фрагменты исследуемой ДНК, что позволяет просто осуществлять генотипи-рование аллельных профилей.
В соответствии с п. 80.4. приложения
№ 3 к «Порядку организации и производства судебномедицинских экспертиз в государственных судебноэкспертных учреждениях Российской Федерации» (приказ МЗиСР РФ № 346н от 12.05.2010 г.) для обоснованного вывода о безусловном исключении отцовства аллели ребенка, не свойственные предполагаемому отцу, должны быть зарегистрированы не менее чем в двух несцепленных локусах, т. е. расположены на разных хромосомах. Несовпадение аллельных профилей в исследуемых препаратах ДНК имеет доказательное исключающее значение.
Если же в ходе экспертизы установлен факт совпадения ДНК-профилей, характеризующих объекты экспертизы и проведено их типирование, встает вопрос
• если генотипические аллельные комбинации двух препаратов ДНК совпадают, то какова вероятность того, что они произошли от одного человека;
• в случае экспертизы спорного происхождения детей если все аллели ребенка находят комплементарное соответствие в генотипах матери и предполагаемого отца, то какова вероятность того, что предполагаемый отец является биологическим отцом этого ребенка.
Строго обязательна вероятностная оценка генетической идентичности объектов экспертизы при условии зарегистрированного совпадения их ПДАФ-профилей.
Для того, чтобы определить индивидуализирующее значение выявленного геномного профиля, необходимо определить его распространенность в популяции - аллельную частоту (р). Ее определяют эмпирически на основании результатов популяционных исследований. Другой важной характеристикой является частота встречаемости аллеля в популяции - статистическая частота аллеля: это отношение числа генотипов, в которой присутствует данный аллель, к общему числу возможных генотипов в популяционной выборке ^). Для каждой ПДАФ-системы свои частоты встречаемости представлены в виде таблиц частотных величин для популяций, находящихся в условиях равновесия Харди-Вайнберга. Для количественной оценки индивидуализирующего значения признака используют статистическую частоту генотипа, а именно - частоту встречаемости конкретного ДНК профиля в популяции.
Рис. 5. Пример детекции амплификационных сигналов, меченных в процессе ПЦР многоцветными флюоресцирующими метками, регистрируемые лазерным датчиком в установке для капиллярного электрофореза.
A по р м К-
Разделение продуктов амплификации проведено в акриламидном геле с последующей окраской нитратом серебра
1. ПДАФ-профиль образцов ДНК по локусам FGA и D2S1338 A- аллельная лестница, К - контрольнаяя аллель
К ПО Р2 Р1 М ПО Р М А по Р м
3. ПДАФ-профиль образцов ДНК по локусу D8S1179
А- аллельная лестница.
К - контрольнаяя аллель
2. ПДАФ-профиль образцов ДНК по локусу D13S317 А- аллельная лестница, К - контрольнаяя аллель
Рис. 4. Получение ПДАФ-профилей исследуемой ДНК по STR системам.
В случае проведения сравнительного анализа образцов ДНК, полученных из материала вещественных доказательств и подозреваемых, или с случае идентификации останков используется статистически-вероятностная формула величины «инкриминирующего значения»:
Используя формулу условной вероятности Байеса отвечают на вопрос какова вероятность, что это совпадение закономерно, а не произошло по воле случайности. Эта вероятность генетической идентичности геномных профилей называют инкриминирующей вероятностью IP (Incriminating Probability).
Для статистического анализа в экспертизе спорного отцовства используются следующие формулы:
■ статистически-вероятностная формула величины «инкриминирующего значения»:
IV(Incriminating Value) = 1/nQ,
где Q - частоты генотипа с данными аллелями в популяции.
Для гомозигот величина Q= 2р, а для гетерозигот величина Q=2pjtpbr,vp.e р- частота аллеля в популяции.
■ формула условной вероятности Байеса или «инкриминирующая вероятность»:
IP (Incriminating Probability) =
= 1/(1+1/IV).
Далее пример расчета Q - частоты генотипа с данными аллелями в популяции при неисключающей экспертизе спорного отцовства. Байесова вероятность при наблюдаемом совпадении отцовского аллеля в геномном профиле ребенка с одним из аллелей предполагаемого отца что этот мужчина является его биологическим отцом, называется вероятностью отцовства PP (Paternity Probability), вычисляемой по формуле:
PP (Paternity Probability) = 1/[1+(Qa x Qb x Qc...)},
где Q - частота генотипа с данными аллелями в популяции по конкретной ПДАФ-системе.
В случае неисключения отцовства при достижении вероятности отцовства не ниже 99,90% экспертное исследование следует считать завершенным в соответствии
Статистически-вероятностные формулы, используемые для экспертного анализа ПДАФ-профилеи в экспертизе спорного отцовства
Формулы рассчета частоты генотипа ВАРИАНТ 1 : Q =2р-р2 вариант 2 : Q =(2р-р2)+ (2q-q2)
где р - отцовская частота аллеля в ------------------- популяции, q- материнская частота
аллеля в популяции, а О - частота генотипа сданными аллелями в популяции.
Формула условной вероятности Байеса или «вероятность отцовства»: PP (PaternityProbability) = 1/[1+(Qax QbxQc...)],
где Q - частота генотипа с данными аллелями в популяции по конкретной ПДАФ-системе.
вариант 1
вариант 2
м р по
"Н р ГНУ
м р по
с п. 80.6.1 (приказ МЗиСР РФ № 346н от 12.05.2010 г.). Для достижения доказательной вероятности 99,90% бывает достаточно 8-9 ПДАФ-систем. Однако частота встречаемости аллелей гр. Иванова и гр. Сидоровой в популяции настолько велика, что используя 12-15-18 ПДАФ-систем трудно достичь желаемой вероятности. Так, мы знаем кто отец, а статистика не достигает желаемой вероятности. И, наоборот, встречаются настолько редкие аллели, что с трудом можем их идентифицировать. И в качестве примера (Аракелян) можно привести судебно-медицинскую экспертизу, включающую в себя экспертизу тождества объектов и идентификацию личности по прямому биологическому родству.
Производство молекулярно-генетических экспертиз требует оснащение лаборатории автоматизированными системами анализа (секвенаторами, приборами для капиллярного электрофореза, термоциклерами для постановки ПЦР в реальном времени), позволяющими применять совершенные технологии исследования как ядерной, так и митохондриальной ДНК. Также важен специально подготовленный персонал, владеющий техникой работ с молекулой ДНК.
Судебно-медицинская молекулярно-генетическая экспертиза идентификации останков неизвестного человека (тождество объектов и идентификация личности через прямое биологическое родство)
к - к М О А 1 2 3 4 5 6 к А К - К М О А 1 2 3 4 5 6 К А
к - к М О А 1 2 3 4 5 6 к А К - К М О А 1 2 3 4 5 6 К А
© В.А. Спиридонов, К.Е. Санников, А.И. Жолобов, 2011 УДК 340.67
В.А. Спиридонов, К.Е. Санников, А.И. Жолобов ИСПОЛЬЗОВАНИЕ В СУДЕБНО-МЕДИЦИНСКОЙ ПРАКТИКЕ ИНТЕРАКТИВНОЙ БАЗЫ
ДИАТОМОВОГО ПЛАНКТОНА
ГАУЗ «Республиканское бюро судебно-медицинской экспертизы МЗ РТ» (нач. бюро - к.м.н. Н.Ш. Нигматуллин); Кафедра судебной медицины (зав. кафедрой - проф. Г.М. Харин)
ГОУ ВПО «Казанский государственный медицинский университет»
В статье проведена оценка использования в судебно-медицинской практике интерактивной базы данных диатомового планктона в Республиканском бюро судебно-медицинской экспертизы МЗ РТ.
Ключевые слова: база данных, диатомовый планктон, судебно-медицинская экспертиза.
