CC BY
61
1,75-2,6 раза. Позднее отмечались изменения в соотношении нейтрофилов на фоне снижения общего количества лейкоцитов с 7,24 х 109кл/л непосредственно после отела до 6,38 х 109кл/л на 30-й день послеотельного периода. В контрольной группе их уровень за этот же период возрос с 8,45 до 9,63 X 109кл/л, что, по всей видимости, обусловлено воспалительными процессами в органах репродуктивной системы. В опытной группе отмечалось достоверное увеличение уровня палочкоядерных нейтрофилов, по сравнению с контрольной группой, в 1,82-2,86 раза. К 30-му дню послеотельного периода их количество в опытной группе превысило уровень в день отела в 1,6 раза. Аналогичная тенденция отмечена в контроле, но здесь за тот же период величина этого показателя выросла всего в 1,3 раза. Уровень сегментоядерных нейтрофилов, эозинофилов, моноцитов и базофилов после применения «Плацентина-А» наоборот снижался.
Содержание лимфоцитов в крови коров как опытной, так и контрольной группы увеличивалось со дня отела и до окончания периода исследований. При этом после применения «Плаценти-
на-А» оно росло быстрее, чем у животных в контроле. На 10-20 дни эксперимента уровень Т-лим-фоцитов в опытной группе был выше, чем в контрольной, в 1,37 раза, а к концу исследований разрыв сократился. Разница в содержании В-лимфо-цитов между контрольной и опытной группой оказалась наибольшей сразу после отела, когда их концентрация в крови коров опытной группы была выше в 1,5 раза (р<0,05). Воздействие «Плаценти-на-А» проявлялось и в увеличении содержания эритроцитов в крови животных опытной группы. Разница по величине этого показателя выросла с 0,71 х 10,2кл/л в начале эксперимента до 1,7 х 1012 кл/л в конце периода исследований. При этом снизилась скорость оседания эритроцитов.
Выводы. Таким образом, комплексное воздействие биологически активных веществ, входящих в состав «Плацентина-А», эффективно повышает общую и местную резистентность организма благодаря увеличению фагоцитарной активности и активации иммунного ответа на воздействие внешних факторов, что повышает адаптивные способности организма.
Литература.
1. Решетникова Н.М. Молоко и/или теленок ? Нарушение плодовитости высокопродуктивных коров: причины, следствия, рекомендации /Н.М. Решетникова, А.М. Малиновский, ТА. Мороз//Аграрный эксперт. — 2005. -№1. -С.36-38. -М2. -С.50-52. -М3. -С. 48-51.
2. Roche J.F. Reproductive management of postpartum cows/J.F. Roche, D. Mackey, M.D. Diskin/ J. Anim. Reprod. Sc. -2000. — v.60-61 -pp. 703-712.
3. Чомаев А. М. Молочная продуктивность и сроки осеменения коров./А. М. Чомаев, М. Н. Чернышова, А. А. Гольдина//Зоотехния. — 2003. - Мб - С. 29 - 30.
EFFECTIVENESS OF TISSUE DRUG “PLATSENTIN-A” USE ENHANCES REPRODUCTION
OF HIGH-PRODUCTIVITY COWS Y.A. Prytkov, M.V. Varenikov, A.M. Chomaev, V.M. Artyukh
Summary. A study of the effectiveness of tissue drug «Platsentin-A» in order to improve the reproductive function of high-productivity cows. The dynamics of morphological changes and biochemical indicators of blood from the calving to the 30-days of post-calving period in cows with the introduction of «Platsentin-A» is studied. The influence of «Platsentin-A» for the general and local body resistance by increasing phagocytic activity and the activation of immune response to the impact of external factors is suggested.
Key words: tissue drugs, service period, uterine involution, the insemination index, cows, sexual cycle, the level of productivity.
УДК 619:636.085:615.92
КОРРЕКЦИЯ ИММУНОБИОЛОГИЧЕСКИХ ПОКАЗАТЕЛЕЙ У поросят в период отъема
А.В. АНДРЕЕВА, доктор биологических наук, профессор
Е.Т. МУРАТОВА, аспирант Башкирский ГАУ E-mail: conf-bsau@mail.ru
Резюме. Изучено состояние естественной резистентности, показатели Т- и В-систем иммунитета, биохимические реакции в организме и микробно-микологи-
ческая характеристика кишечника поросят в период отъема, физиологически обоснована и практически подтверждена возможность повышения их устойчивости к стрессу, сохранности и продуктивности путем применения пробиотика «Споровит» в комплексе с аскорбиновой кислотой.
Ключевые слова: поросята-отъемыши, стресс, пробиотики, иммунодефицит, иммунобиологические показатели крови, микробиоценоз кишечника, аскорбиновая кислота.
В условиях ведения интенсивного животноводства существенное отрицательное влияние на состояние здоровья животных и их продуктивность оказывает технологический стресс [1]. В отъёмный период поросята подвергаются воздействию двух основных стресс-факторов — отлучение от свиноматки и смена вида корма. Переход от теплой жидкой пищи, богатой питательными веществами, к сухой влечет за собой временное нарушение аппетита, которое поросенок уже через несколько часов стремится компенсировать путем поедания высокобелкового корма на голодный желудок в количестве, которое он не способен усвоить [2]. В период отъёма пищеварительная система поросят еще недостаточно развита. Из-за недоразвитости ферментной системы желудочно-кишечного тракта, поступивший корм не полностью переваривается, избыток неусвоенных питательных веществ и продуктов их ферментации приводит к задержке в кишечнике воды. Вследствие этого развивается диарея, поросята теряют массу, происходит задержка развития
[3]. Кроме того, неусвоенная пища — благоприятный субстрат для развития патогенной кишечной микрофлоры. Вместе это приводит к резкому снижению естественной резистентности организма животных, нарушению обменных процессов и массовому проявлению вторичных иммунодефицитов
[4]. В такой период большую опасность представляет инфицирование бактериями E.coli, Salmonella и другими микроорганизмами, что приводит к массовой заболеваемости и значительному падежу [5].
Как показывает многолетний опыт различных хозяйств, добиться предотвращения заболеваемости путем вакцинаций и применения профилактических курсов антибиотикотерапии удается не всегда [6]. Поэтому актуальным представляется поиск альтернативных путей повышения резистентности, стимуляции роста и развития, увеличения сохранности поголовья с использованием пробиотических препаратов.
Целью наших исследований была разработка эффективных методов повышения иммунного статуса, коррекции микробиоценоза кишечника, профилактики желудочно-кишечных заболеваний в период отъема у поросят с применением пробиотика «Спо-ровит» в комплексе с аскорбиновой кислотой.
Условия, материалы и методы. Научно-производственные опыты проводили в условиях свинокомплекса ООО «Шаранагрогаз» Шаранского района Республики Башкортостан. Для этого по принципу аналогов сформировали 4 группы поросят (п=16) крупной белой породы в период отьема (60-ти дневного возраста). Первая группа была контрольной. Животные второй — получали пробиотик «Споро-вит» внутрь, третьей — 5 %-ный раствор аскорбиновой кислоты внутримышечно, четвертой — пробиотик «Споровит» внутрь и 5 %-ный раствор аскорбиновой кислоты внутримышечно. Разовая доза аскорбиновой кислоты в форме 5 %-ного раствора состав-
ляла 0,5 см3, «Споровита» — 1 мл на 10 кг массы тела. Препараты вводили 1 раз в день до кормления в течение 10 дней.
Перед опытом и через 10, 30, 60 дней после его начала проводили взятие крови для иммунологических исследований и фекалий для микробиологических анализов, а также определяли живую массу поросят.
Качественное и количественное исследование микрофлоры кишечника осуществляли по методу, разработанному в НИИЭМ им. Г.Н. Габричевского. Фекалии из прямой кишки отбирали в стерильную посуду с 9... 10 мл изотонического раствора натрия хлорида. Посев проводили на ряд элективных и дифференциальных сред. Выделение анаэробных бифидобактерий осуществляли посевом в среду Блау-рокка, лактобактерий — на среде МРС. Грамотрица-тельные палочки высевали на дифференциальные среды — Эндо, Плоскирева. Гемолитические свойства выделенных культур определяли на 5 %-ном кровяном агаре. Для выделения стафилококков использовали желточно-солевой агар, энтерококков — ДИФ-3, дрожжеподобных грибков — среду Сабура. Результаты переводили в десятичные логарифмы и определяли относительное соотношение различных групп микроорганизмов в кишечной популяции.
Иммуноглобулины А, М, С определяли методом одномерной радиальной иммунодиффузии в агаровом геле.
Биометрическую обработку результатов исследований проводили с использованием прикладных программ, степень достоверности устанавливали по критерию Стьюдента.
Результаты и обсуждение. До начала опыта масса поросят (рис. 1) в среднем по группам составляла
45-1
Фон 10 30 60
Рис. 1. Среднесуточный прирост массы поросят: □ — 1 контрольная группа; ■ — 2 опытная группа; □ — 3 опытная группа; 0—4 опытная группа.
от 6+0,6...7+0,5 кг. На 10 день после начала опыта у поросят контрольной группы она превысила показатели фоновых значений в 1,7 раза, во второй — в 2,07 раза; в третьей — в 2,09 раза; в четвертой — 2,11 раза. Среднесуточный прирост массы поросят в контрольной группе составил 457 г, а в опытных соответственно — 804, 737 и 860 г.
К 30 дню опыта среднесуточный прирост поросят в контрольной группе был равен 329 г, а в опытных — 529...559 г, на 60 день величина этого показа-
теля в контроле достигла 465 г, во II группе — 572, в III — 467 и IV — 639 г.
Согласно результатам микробиологических исследований фекалий у поросят в начале эксперимента в содержимом кишечника преобладали бактерии группы кишечной палочки. Титр лакто- и бифидобактерий был невысоким (рис. 2).
На 10 день исследований в контроле достоверных изменений не наблюдалось. У животных опытных групп количество лакто- и бифидобактерий увеличилось, по сравнению с фоновыми показателями, соответсвенно в 1,81 и 1,54 раза (вторая группа), в 1,84 и 1,65 раза (третья группа), в 2,12 и 1,65 раза (четвертая группа). Количество гемолитической кишечной палочки, стафилококков и клостридий достоверно снижалось.
К 30 дню после начала опыта уровень лакто- и бифидобактерий, у поросят второй, третьей и четвертой групп превысил показатели контроля в 2,63 и 2,74 и 2,99 раза и в 2,46, 2,16 и 2,30 раза соответственно.
На 60-й день исследований установлено, что применение пробиотика «Споровит» в комплексе с аскорбиновой кислотой способствовало коррекции микробиоценоза желудочно-кишечного тракта в сторону преобладания бифидо- и лактобактерий (до 17,73±0,2^КС)Е/ги 14±0,171§ КОЕ/г соответственно), а также снижению количества
стафилококков, клостридий и дрожжеподобных грибов.
Результаты иммунологических исследований свидетельствуют об изменениях показателей гуморального и клеточного иммунитета в различные периоды. К 30 дню после начала опыта отмечалось значительное повышение содержания иммуноглобулинов
А, в, М. В контрольной группе количество \% А превысило фоновые значения в 1,6 раз, ^ С — в 1,36 раза, 1§ М — в 1,5 раза; во второй группе — в 1,8,1,8 и 1,6 раза; в третьей — в 1,6, 1,9 и 1,4 раза и в четвертой — в 1,6,2,3 и 1,8 раза соот-
— 1 контрольная ветственно.
-----— 4 опытная группа. К 60 дню исследований
содержание иммуноглобулина А в крови первой группы животных было выше фоновых значений в 1,7, ^ в — в 1,5 и 1§ М — в 1,7 раза; во второй — в 2,2; 2,4 и 1,7 раза; в третьей — в 2,3; 2,7 и 1,5 раза; в четвертой — в 2,2; 2,8 и 2,2 раза соответственно. Увеличение содержания иммуноглобулинов А, в, М свидетельствуют о повышении естественной реактивности организма и более пластичном приспособлении организма к постнатальному периоду.
Выводы. Таким образом, согласно полученным результатам применение пробиотика «Споровит» в комплексе с аскорбиновой кислотой способствует: ингибированию условно-патогенной микрофлоры кишечного микробиоценоза;
поддержанию оптимального микробного баланса пищеварительного тракта;
сохранению высокой концентрации иммуноглобулинов А, М, в в крови продолжительное время после прекращения приема препаратов;
активизации роста и развития поросят-отьемышей.
Рис. 2 Динамика изменения количества лакто- и бифидобактерий: группа;-------— 2 опытная группа; —. — 3 опытная группа;
Литература.
1. Корнева, Г.В. Влияние синдрома стресса на заболеваемость и падеж поросят на свинокомплексе «Ворожино»/Г.В. Корнева //Ветеринария сельскохозяйственных животных,- 2006. — №5.- С.53-54.
2. Молоко и корма. Менеджмент. Мировые тенденции развития свиноводства. // Спецвыпуск №1 ноябрь 2006.- С.2-12.
3. Трончук И.С., Фесина Б.Е., Почерняев Г.М. и др. Кормление свиней,- М.: ВОАгропромиздат., 1990,- С. 76-77.
4. Прудников, С.И. Пролонгированный вестин для профилактики и терапии при инфекционных болезнях поросят/ С.И. Прудников, А.А. Духовский, Т.М. Прудникова и др. // Ветеринария. — 2008. -№6. —с. 18.
5. Кануте М. Иммунодефициты поросят и их коррекция тканевыми иммуномодуляторами: автореф. дис.... канд. вет. наук/М. Кануте.
— Кишинев, 1993. — 27с.
6. Передера С. Б. Использование стимуляторов роста при производстве свинины / С. Б. Передера //Научное наследие И. В. Бельговского и современные проблемы зоотехнии и ветеринарии: Международная научно-практическая конференция, Харьковский зооветеринарный институт. — Харьков, 1995. — С. 21-22.
7. Хохлова И. Э. Технологические и зоогигиенические методы повышения продуктивности свиней на промышленных фермах и комплексах: автореф. дис.... д-ра сельхоз. наук/И. Э. Хохлова. — Жодино, 1987. — 32 с.
8. Дедкова, А. Повышение жизнеспособности и продуктивности поросят при использовании отваров из лекарственных растений / А. Дедкова, С. Химичева// Свиноводство, — 2006. — №5. — С.25-26.
THE INCREASING OF STRESS’ STABILITY OF PIGLETS AT THE DEPRIVING PERIOD A.V. Andreeva, E.T. Muratova
Summary. The using of new generation’s probiotic “Sporovit” in complex with ascorbic acid is actuate growing and development of piglets, do some prophylactic of depriving stress of piglets, restore of useful microflora of digestive system, helping for adaptation to adult ration, raise resistance of organism to the negative factors of environment. Keywords: piglets, stress, immunodeficites, immunology factors of blood, microbiocenosis of intestine, ascorbic.
